Adulto. Son de 30 mm de envergadura. Las hembras son palomillas con cuerpo robusto. Los colores varían de amarillo pálido a café claro. Los machos son palomillas ligeramente pequeñas, cuerpo más adelgazado, y más oscuro que la hembra; descripción según CABI (2000).
Fig. 4.17 Adulto hembra y macho de O. nubilalis, respectivamente. Fuente: CABI, 2000.
Biología y Hábitos
Davidson (1992), menciona que el barrenador pasa el invierno como larva completamente desarrollada escondida en las partes de la planta en que se ha alimentado. La pupación ocurre a finales de primavera, y las palomillas adultas aparecen en mayo y junio. Después de madurar, las hembras comienzan a depositar sus huevos en masa de 15 a 35, en el reverso de hojas inferiores. Cada hembra puede depositar 500 o más durante su ciclo de vida. Los huevos eclosionan aproximadamente en siete días. La larva se alimenta primero sobre las hojas, y después, de la vaina de la hoja y del verticilio; con frecuencia causan daños a la espiguilla en desarrollo. Su crecimiento como larva es máximo en unos 35 días. El porcentaje de larvas de la primera generación que se convierte en pupas, emergen como adultos y producen generaciones viables, es variable en diferentes latitudes del “Cinturón del Maíz”, y aumenta de Norte a sur. Una tercera generación se presenta en algunas áreas, y frecuentemente es una plaga de la papa en otoño. El Dr. Hoffmaster ha observado una cuarta generación parcial en Virginia. La causa de ésta variación se relaciona con la temperatura y el fotoperiodo. La pupación a mitad del verano esta asociada con la duración del fotoperiodo. Los barrenadores que alcanzan la madurez después de fotoperiodos reducidos a menos de 14.75 horas tienden a entrar a un estado de diapausa. Esta duración del fotoperiodo se presenta en Madison, Wisconsin, el 25 de julio. La pupación se realiza si los barrenadores llegan a su quinto estadio antes de esa fecha. Los periodos prolongados de alta temperatura antes del 25 de julio incrementan la pupación, mientras que los periodos de baja temperatura reducen la pupación y elevan el numero de larvas en diapausa. En clima frío y lluvioso durante el mes de junio reduce la infestación de barrenadores, así como los veranos muy secos y los inviernos extremadamente fríos.
Daños
El daño al maíz es causado por los primeros estadios de larvas, los cuales se alimentan de las hojas produciendo la destrucción de la superficie foliar y de la
nervadura central. Estadios larvarios posteriores barrenan todas las partes del tallo y las mazorcas, lo que provoca ruptura de tallos y espiguillas del maíz, desarrollo deficiente de la mazorca antes de ser cosechadas (Davidson, 1992).
Fig. 4.18 Daños sobre hojas, tallos y resultados de una infestación de O. nubilalis en maíz, respectivamente. Fuente: VanDyk, 1996.
Hospederos
Hospederos primarios: Zea mays (maíz), Poaceae (hierbas), Avena sativa (avena),
Echinochloa crus-galli (zacate de agua), Hordeum vulgare (cebada), Pennisetum glaucum (mijo perla), Setaria italica (mijo alemán), Sorghum, Sorghum halepense
(zacate johnson). Hospederos secundarios: Capsicum annun, Amaranthus,
Chrysanthemum, Glycine max, Gossypium, Helianthus annuus, Lycopersicon esculentum, Malus domestica, Phaseolus vulgaris, Prunus persica, Solanum tuberosum (papa), Triticum aestivum (trigo) (CABI, 2000).
Manejo de la Plaga
Muestreo.
Las palomillas pueden ser muestreadas con trampas de luz oscura y de feromonas. Las trampas de feromonas atraen solamente a machos; mientras que ambos sexos se capturan con trampas de luz oscura, éstas tienden para ser más confiables, pero pueden capturar gran cantidad de otros insectos, haciendo necesario clasificar mucho. Los huevos se pueden muestrear por examinación visual, pero esto es un esfuerzo muy desperdiciador de tiempo (Capinera, 2000).
Estrategias de Control.
Control cultural. Destrucción o utilización de todos los residuos del cultivo y los desechos de plantas donde los barrenadores pueden pasar el invierno. Enterrar todos los residuos de cosecha y hierba, juntar y quemar todo el desecho de la planta, cortado y picado o ensilado de maíz, rastreo o barbecho para enterrar larvas, siembra tardía de maíz en áreas de una generación, sembrar variedades resistentes. Otras son la rotación de cultivos (generalmente con leguminosas), eliminar posibles plantas hospederas en los márgenes de los campos (Metcalf & Flint, 1984).
Control biológico. Liberaciones de especies nativas de Trichogramma spp. (himenópteros: Trichogrammatidae) proporciona niveles variables y moderados de supresión (Capinera, 2000). El control microbial generalmente da buenos resultados, particularmente cuando los tratamientos son aplicados correctamente de una manera oportuna. Las preparaciones a base de Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki son altamente eficientes, especialmente contra larvas de primer estadio (CABI, 2000).
Control químico. Las aplicaciones líquidas se hacen generalmente coincidiendo con la puesta de huevos en un esfuerzo de prevenir la infestación, si los perforadores del maíz están presentes en un campo; sin embargo, el tiempo crítico del tratamiento está momentos antes que emergen las espigas, o en la aparición completa de éstas. En maíz para grano, las aplicaciones de insecticida para la segunda generación se pueden hacer fuera de los campos del maíz en áreas de hospederos potenciales, donde los adultos tienden a agregarse (Capinera, 2000).
Plantas resistentes. El desarrollo reciente de organismos genéticamente modificados promete ser un profundo descubrimiento en resistencia del hospedero principal a Ostrinia nubilalis. El maíz genéticamente modificado con Bacillus thuringiensis es una planta en la cual el gen insecticida de la proteína CRY A1 de B. thuringiensi subsp. kurstaki se introduce y es expresado (CABI, 2000).
Regulación Fitosanitaria
NOM-018-FITO-1995
Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas del maíz. En esta norma establece como productos de cuarentena absoluta a las plantas de maíz, así como sus envases y empaques, originarios y procedentes de los países afectados por plagas cuarentenarias enunciados en esta Norma Oficial. Para Ostrinia nubilalis lo procedente de Europa: Austria, Bélgica, Bulgaria, República Checa, República Eslovaca, Dinamarca, España, Francia, Alemania, República Helénica, Hungría, Italia, Noruega, Países Bajos, República Polaca, Portugal, Rumania, Suecia, Suiza, Reino Unido de la Gran Bretaña e Irlanda del Norte, Yugoslavia, Ucrania, República de Moldova y Federación Rusa. Asia: Irán, Israel, Libania, Siria, Turquía y Chipre. Africa: Argelia, Egipto, Jamahiriya Arabe Libia Popular y Socialista, Marruecos y Túnez. América: Canadá y Estados Unidos de América. Productos de cuarentena parcial: Se consideran de cuarentena parcial al grano de maíz para consumo, maíz palomero y semilla de maíz para siembra. La importación al país de estos productos está condicionada a la elaboración de un análisis de riesgo ajustándose a las normas NOM-005-FITO- 1995 y NOM-006-FITO-1995. Se prohíbe introducir cualquier cantidad de productos de cuarentena parcial que no cumplan con las disposiciones fitosanitarias establecidas en este ordenamiento.
Phyllocnistis citrella (STAINTON)
Sinónimos
Lithocolletis citricola y Phyllocnistis citricola Shiraki
Nombre Común
Minador de la hoja de los cítricos, citrus leaf miner leafminer of citrus. Antecedentes Históricos
El minador de los cítricos era relativamente desconocido hasta los mediados de los años setenta, cuando en Australia, fue reportada por primera vez como plaga. Primero fue descrita en 1856 y el primer reporte de Australia en 1918 y de Sudáfrica desde 1908. Puesto que alcanzo el status de plaga, su rango se amplio rápidamente por todo el mundo. Fue descubierto en la Florida en 1993. Estas palomillas se convirtieron rápidamente en un problema significativo, con índices de la infestación hasta de 90% de huertas en algunas áreas de Florida en el año de su introducción. Antes de 1995, fue descubierto en Texas, América Central, México, y varias islas del Caribe (Jones, 2001).
Origen y Distribución
Se señala como centro de origen el continente Asiático y fue descrito por primera vez en Calcuta (India), en 1856 por Stainton. Se ha extendido por todo el continente
Asiático.
Se encuentra presente en territorios desde Arabia Saudita hasta la India, en China, Filipinas, Taiwán, el sureste del Japón, Nueva Guinea y en varias islas del Pacífico del sur y de Australia. Se observa en Africa del este, desde Sudán hasta Yemén. En América se observó por primera vez en las Bahamas, en 1993 y después ingresó al estado de Florida y actualmente se encuentra en los estados de Alabama, Louisiana y Texas (EUA). En ese mismo año se introdujo en Cuba, en las Islas Caimán, Belice y Costa Rica. En 1994 fue detectado en Puerto Rico, República
Dominicana, El Salvador, Guatemala, Honduras, Jamaica, México, Nicaragua y Panamá. En 1995 se dispersó a Colombia y Venezuela (DGSV, 1994; Heppner, 1993b; Said y Rodríguez, 1995; Sponagel y Díaz, 1994; Knapp et al,1994).
Importancia Económica
Las pérdidas económicas debido al minador de los cítricos incluyen 1) Incremento en los costos para proteger árboles y fruta cítrica joven, 2) Reducción de ventas a pequeños productores y 3) Incremento en los costos de producción en la huerta, o directamente, con el uso de los pesticidas (en gran parte ineficaz), o indirectamente, con los tratamientos que interrumpen control biológico y programas de manejo integrado de plagas (Jones, 2001).
Además se menciona que es capaz de trasmitir el cancer de los cítricos,
Xanthomonas citri, enfermedad registrada en la India y recientemente en los Estados Unidos (Heppener, 1993; citado por Bautista et al, 1999).
Ubicación Taxonómica
Según Borror et al (1996), la ubicación taxonómica del Minador de los Cítricos es la siguiente: Reino Animal Phyllum Arthropoda Clase Insecta Orden Lepidoptera Suborden Heteroneura Familia Gracillariidae Género Phyllocnistis
Morfología