Diagnóstico nutricional de micronutrientes en ananas comosus l merr var roja trujillana en el Valle Santa Catalina, La Libertad

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(1)Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS. RO. ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE AGRONOMÍA. “DIAGNÓSTICO NUTRICIONAL DE MICRONUTRIENTES EN. AG. Ananas comosus L. Merr. VAR. ROJA TRUJILLANA EN EL VALLE SANTA CATALINA, LA LIBERTAD”. DE. TESIS. PARA OPTAR EL TÍTULO PROFESIONAL DE. :. Br. ROMERO JARA WENDOLYN KATIA.. IO. TE. AUTOR. CA. INGENIERO AGRÓNOMO. BI BL. ASESOR :. Ing. ZAVALETA ARMAS JULIO CÉSAR.. TRUJILLO - PERÚ 2017. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(2) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. PRESENTACIÓN. Señores miembros del jurado evaluador:. Con el fin de cumplir con las disposiciones legales vigentes contenidos en el reglamento. de grados y títulos de la facultad de ciencias agropecuarias de la Universidad Nacional de Trujillo, someto a vuestro elevado criterio la tesis titulada: “DIAGNÓSTICO. NUTRICIONAL DE MICRONUTRIENTES EN Ananas comosus L. Merr. VAR. ROJA TRUJILLANA EN EL VALLE SANTA CATALINA, LA LIBERTAD” con. RO. el propósito de obtener el título profesional de Ingeniero Agrónomo.. CA. DE. AG. Trujillo, octubre del 2017.. BI BL. IO. TE. Br. Romero Jara, Wendolyn Katia.. i Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(3) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. “DIAGNÓSTICO NUTRICIONAL DE MICRONUTRIENTES EN Ananas comosus L. Merr. VAR. ROJA TRUJILLANA EN EL VALLE SANTA CATALINA, LA LIBERTAD”. Presentado por:. Br. Romero Jara, Wendolyn Katia.. RO. Asesorado por:. AG. Ing. JULIO CÉSAR ZAVALETA ARMAS.. DE. Sustentada y aprobada, ante el siguiente jurado calificador.. PRESIDENTE. TE. CA. M. Sc. MIRYAM MAGDALENA BORBOR PONCE. BI BL. IO. M. Sc. CÉSAR MANUEL APOLITANO URBINA SECRETARIO. M. Sc. ÁNGEL PEDRO LUJAN SALVATIERRA MIEMBRO. ii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(4) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. DEDICATORIA. La presente tesis está dedicada en primer lugar a Dios por su protección divina, por guiarme por el camino del bien para lograr mis objetivos.. AG. RO. A mi madre Maximina Jara Herrada por todo su cariño incondicional y su paciencia a largo de mi vida.. BI BL. IO. TE. CA. DE. A mis hermanas Nathaly, Ladi, Perla y también a todos mis amigos por ser parte fundamental en mi vida.. Wendolyn K. Romero Jara.. iii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(5) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. AGRADECIMIENTO. RO. Agradezco en primer lugar a Dios ya que sin el nada puedo hacer, Dios es quien nos concede el privilegio de la vida y nos brinda todo lo necesario para cumplir nuestras metas y gracias a él logre concluir mi carrera. . A mi madre Maximina Jara Herrada por su apoyo incondicional y por todo su cariño por ser una madre luchadora y esforzarse para ver a sus hijas profesionales, gracias mami ya que sin ti no hubiese sido posible lograr esta meta.. DE. AG. A mis hermanas: Ladi quien me ayudó mucho con los tramites cuando yo no tenía tiempo y también a Nathaly y Perla por formar parte fundamental de mi vida y por brindarme todo su apoyo cuando más lo necesite.. A Edward, una persona muy especial quien me brindo todo su apoyo en los momentos que mas lo necesite y siempre estuvo ahí para ayudarme en todo.. IO. TE. CA. A mi asesor el ing. Julio Zavaleta Armas por guiarme en este recorrido para así poder cumplir mi meta.. BI BL. A todos mis amigos Juan, Joffre, Zelandia, Susana, Roberto, Wilmer que de una u otra manera me ayudaron y motivaron para cumplir mi meta.. Wendolyn K. Romero Jara.. iv Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(6) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. RESUMEN. La investigación se desarrolló de mayo del 2016 a marzo del 2017, con el objetivo de obtener el diagnóstico nutricional de micronutrientes en Ananas comosus L. Merr. Var.. Roja Trujillana en el valle Santa Catalina, La Libertad. Se realizaron 11 análisis de aguas,. 33 de suelos y 33 foliares en las localidades de Laredo, Puente Arquito, Shiran, Poroto, Canseco, Concon, Platanar, Guayabito, Samne, Rayampampa y Plazapampa. Las muestras de suelos y foliares se tomaron de campos de piña de primera, segunda y tercera. campaña de producción de piña Roja Trujillana. De 33 muestras de suelo evaluadas, correspondientes a 11 localidades, con cultivo de piña Roja Trujillana el 100% son. RO. medios a altos en hierro disponible, 100% de medios a altos en cobre disponible, 100%. de medios a altos en zinc disponible, 85% de medios en manganeso disponible y el 100% medios a altos en boro soluble a un pH de 5.28 y 1.56 dS/m de conductividad eléctrica. AG. promedios. De 33 muestras foliares de piña Roja Trujillana evaluadas, correspondientes a 11 localidades del valle Santa Catalina, 52% presenta deficiencia en Fe, 67% deficiencia en Cu, 73% normalidad en Mn, 79% deficiencia en Zn y 100% de normal a alto en B. Los. DE. niveles de nutrientes aportados por el suelo no explican las deficiencias generalizadas de Fe, Cu y Zn en planta. Con la edad del cultivo se incrementan las deficiencias en el cultivo de piña Roja Trujillana, en la primera campaña presenta 5 localidades deficiencia. CA. de Fe, 4 localidades deficiencia de Cu y 6 localidades deficiencia de Zn, en la segunda campaña 6 localidades deficiencia de Fe, 7 localidades deficiencia de Cu y 9 localidades. TE. deficiencia de Zn y en la tercera campaña 6 localidades deficiencia de Fe, 11 localidades. IO. deficiencia de Cu y 11 localidades deficiencia de Zn.. BI BL. Palabras claves: piña Roja Trujillana, micronutrientes y diagnóstico nutricional.. v Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(7) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. ABSTRACT. The research is conducted May 2016 to September 2017, whith the aim of obtaining the. nutritional diagnosis of macronutrients in Ananas comusus L. Merr. Var. Roja Trujillana. in the valley Santa Catalina, La Libertad. 11 water analysis, 33 soil and foliar 33 were performed in the towns of Laredo, Puente Arquito, Shiran, Poroto, Canseco, Concon, Platanar, Guayabito, Samne, Rayampampa and Plazapampa. Soil samples were taken. from leaf and pineapple fields first, second and third production season Roja Trujillana pineapple. Of 33 soil samples evaluated, corresponding to 11 localities, with 100% Roja. Trujillana pineapple cultivation are medium to high available iron, 100% medium to high. RO. available copper, 100% medium to high available zinc, 85% of media in available manganese and 100% medium to high in soluble boron at a pH of 5.28 and 1.56 dS / m of electrical conductivity averages. Of 33 leaf samples of Roja Trujillana pineapple. AG. evaluated for 11 villages in the valley Santa Catalina, 52% presented deficient Fe, 67% Cu deficiency, 73 regular % Mn, 79% Zn deficiency and 100% of normal to high B. The levels of nutrients contributed by the soil do not explain the generalized deficiencies of. DE. Fe, Cu and Zn in plant. With the age of cultivation deficiencies increase in the cultivation of Roja Trujillana pineapple, in the first campaign it presents 5 localities deficiency of Fe, 4 localities deficiency of Cu and 6 localities deficiency of Zn, in the second campaign 6. CA. localities deficiency of Fe, 7 localities Cu deficiency and 9 localities Zn deficiency and in the third campaign 6 localities Fe deficiency, 11 localities Cu deficiency and 11 localities. TE. Zn deficiency.. BI BL. IO. Key words: pineapple Roja Trujillana, micronutrients and foliar analysis.. vi Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(8) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. ÍNDICE. Pág.. PRESENTACIÓN ..................................................................................................i. JURADO CALIFICADOR ................................................................................. ii. DEDICATORIA .................................................................................................. iii AGRADECIMIENTO .........................................................................................iv RESUMEN ............................................................................................................. v ABSTRACT ..........................................................................................................vi INDICE GENERAL .......................................................................................... vii. RO. Índice de tablas ................................................................................................ix. Índice de figuras ............................................................................................. xii CAPITULO I: INTRODUCCIÓN ...................................................................... 1. AG. CAPITULO II: REVISIÓN DE LITERATURA ............................................... 2 2.1. Generalidades del cultivo de piña .......................................... 2 2.2. Descripción botánica .............................................................. 2. DE. 2.3. Descripción morfológica ........................................................ 2 2.4. Ecología y fisiología ............................................................. 4 2.5. Diagnóstico nutricional .......................................................... 7. CA. 2.6. Micronutrientes ...................................................................... 9 2.6. Síntomas de carencias nutricionales ..................................... 12. TE. CAPITULO III: MATERIALES Y MÉTODOS ............................................. 13 3.1. Ubicación del área experimental ......................................... 13. BI BL. IO. 3.2. Condiciones climatológicas ................................................ 13 3.3. Materiales ........................................................................... 13 3.4. Metodología ........................................................................ 16 3.4.1. Toma de muestras ............................................................ 16 3.4.2 Análisis de calidad de agua ............................................... 16. 3.4.3. Análisis de fertilidad de suelos ........................................ 17 3.4.4. Análisis foliares ................................................................ 18. vii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(9) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. CAPITULO IV: RESULTADOS Y DISCUSIONES ....................................... 19 4.1. Diagnóstico de calidad de agua ............................................ 19. 4.2. Diagnóstico de fertilidad de suelos ...................................... 23 4.2.1. pH y conductividad eléctrica ..................................... 23 4.2.2. Hierro ......................................................................... 24. 4.2.3. Cobre .......................................................................... 26 4.2.4. Zinc ............................................................................ 28 4.2.5. Manganeso ................................................................. 30. 4.2.6. Boro ............................................................................ 32 4.3. Diagnóstico foliar ................................................................ 34. RO. 4.3.1. Hierro foliar ............................................................... 34 4.3.2. Cobre foliar ............................................................... 37. 4.3.3. Zinc foliar ................................................................... 40. AG. 4.3.4. Manganeso foliar ........................................................ 43 4.3.5. Boro foliar .................................................................. 46 CAPITULO V: CONCLUSIONES ................................................................... 49. DE. CAPITULO VI: RECOMENDACIONES ........................................................ 50 CAPITULO VII: REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ............................... 51. BI BL. IO. TE. CA. ANEXOS .............................................................................................................. 55. viii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(10) PE CU AR IA S. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. ÍNDICE DE TABLAS. Título. Pág.. Tabla 1. Lugares y ubicación de la investigación .......................................................... 15 Tabla 2. Resultados e interpretación de calidad de agua del valle Santa Catalina,. La Libertad ........................................................................................................ 21. Tabla 3. Guía de interpretación de calidad de agua de riego .......................................... 70 Tabla 4. Guía de interpretación de los resultados análisis foliar en piña ....................... 70. RO. Tabla 5. Guía de interpretación de pH de los Suelos ..................................................... 72 Tabla 6. Guía de interpretación de conductividad eléctrica ........................................... 72 Tabla 7. Guía de interpretación de análisis de suelos agrícolas ..................................... 73. AG. Tabla 8. Promedio de pH y conductividad eléctrica del valle Santa Catalina, La Libertad....................................................................................... 73 Tabla 9. Resultados de análisis foliares en micronutrientes de piña Roja Trujillana ..... 74. DE. Tabla 10. Resultados de análisis de suelos en micronutrientes de piña Roja Trujillana 75 Tabla 11. Porcentaje de hierro en los suelos en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 76. CA. Tabla 12. Porcentaje de cobre en los suelos en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 76. TE. Tabla 13. Porcentaje de manganeso en los suelos en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 76. IO. Tabla 14. Porcentaje de zinc en los suelos en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 76. BI BL. Tabla 15. Porcentaje de boro en los suelos en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 77. Tabla 16. Porcentaje de hierro foliar en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 77. Tabla 17. Porcentaje de cobre foliar en niveles del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................................................... 77. ix Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(11) PE CU AR IA S. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Tabla 18. Porcentaje de manganeso foliar en niveles del valle Santa. Catalina, La Libertad ....................................................................................... 77 Tabla 19. Porcentaje de zinc foliar en niveles del valle Santa. Catalina, La Libertad ....................................................................................... 78 Tabla 20. Porcentaje de boro foliar en niveles del valle Santa. Catalina, La Libertad ....................................................................................... 78 Tabla 21. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Laredo,. La Libertad ...................................................................................................... 78 Tabla 22. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Puente. RO. Arquito, La Libertad ....................................................................................... 79 Tabla 23. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Shiran, La Libertad ...................................................................................................... 79. AG. Tabla 24. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Poroto, La Libertad ...................................................................................................... 79 Tabla 25. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Canseco,. DE. La Libertad ...................................................................................................... 80 Tabla 26. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Concon, La Libertad ...................................................................................................... 80. CA. Tabla 27. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Platanar, La Libertad ...................................................................................................... 80. TE. Tabla 28. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Guayabito, La Libertad ...................................................................................................... 81. IO. Tabla 29. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Samne, La Libertad ...................................................................................................... 81. BI BL. Tabla 30. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Rayampampa, La Libertad ...................................................................................................... 81. Tabla 31. Resultados e interpretación de análisis de suelos de Plazapampa, La Libertad ...................................................................................................... 82. Tabla 32. Mapa temático del diagnóstico foliar en primera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 82. x Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(12) PE CU AR IA S. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Tabla 33. Mapa temático del diagnóstico foliar en segunda campaña de piña. Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 83 Tabla 34. Mapa temático del diagnóstico foliar en tercera campaña de piña. BI BL. IO. TE. CA. DE. AG. RO. Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 83. xi Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(13) PE CU AR IA S. Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. ÍNDICE DE FIGURAS Título. Pág.. Figura 1. Reacción, conductividad eléctrica (dS/m) y contenido de. microelementos en el agua de riego del valle Santa Catalina,. La Libertad ............................................................................................... 22 Figura 2. Variación del pH y conductividad eléctrica (dS/m) en los suelos. del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................... 23 Figura 3. Calificación del nivel de hierro en los suelos del valle Santa. RO. Catalina, La Libertad ............................................................................... 24 Figura 4. Variación del porcentaje de hierro en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad ................................................................... 25. AG. Figura 5. Calificación del nivel de cobre en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad ............................................................................. 26 Figura 6. Variación del contenido de cobre en los suelos del valle. DE. Santa Catalina, La Libertad..................................................................... 27 Figura 7. Calificación del nivel de zinc en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad ............................................................................... 28. CA. Figura 8. Variación del contenido de zinc en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad..................................................................... 29. TE. Figura 9. Calificación del nivel de manganeso en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad ............................................................................... 30. IO. Figura 10. Variación del contenido de manganeso en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad ............................................................................. 31. BI BL. Figura 11. Calificación del nivel de boro en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad ............................................................................... 32. Figura 12. Variación del contenido boro en los suelos del valle Santa Catalina, La Libertad..................................................................... 33. Figura 13. Calificación del nivel de hierro foliar en la hoja “D” de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad............................. 34. xii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(14) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. Figura 14. Niveles de hierro foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana. del valle Santa Catalina, La Libertad ...................................................... 35 Figura 15. Niveles de hierro foliar en hoja “D” de primera campaña de piña Roja. Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad .................................... 36 Figura 16. Niveles de hierro foliar en hoja “D” de segunda campaña de piña Roja. Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad .................................... 37 Figura 17. Niveles de hierro foliar en hoja “D” de tercera campaña de piña Roja. Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad .................................... 38 Figura 18. Calificación del nivel de cobre foliar en hoja “D” de piña. RO. Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad............................. 39 Figura 19. Niveles de cobre foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................................... 40. AG. Figura 20. Niveles de cobre foliar en hoja “D” de primera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 41 Figura 21. Niveles de cobre foliar en hoja “D” de segunda campaña de piña Roja. DE. Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 42 Figura 22. Niveles de cobre foliar en hoja “D” de tercera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 43. CA. Figura 23. Calificación del nivel de zinc foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad.............................. 44. TE. Figura 24. Niveles de zinc foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................... 45. IO. Figura 25. Niveles de zinc foliar en hoja “D” de primera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 46. BI BL. Figura 26. Niveles de zinc foliar en hoja “D” de segunda campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 47. Figura 27. Niveles de zinc foliar en hoja “D” de tercera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 48. Figura 28. Calificación del nivel de manganeso foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad.............................. 49. xiii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(15) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. Figura 29. Niveles de manganeso foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................... 50. Figura 30. Niveles de manganeso foliar en hoja “D” de primera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 51. Figura 31. Niveles de manganeso foliar en hoja “D” de segunda campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 52. Figura 32. Niveles de manganeso foliar en hoja “D” de tercera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 53 Figura 33. Calificación del nivel de boro foliar en hoja “D” de piña. Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad.............................. 54. RO. Figura 34. Niveles de boro foliar en hoja “D” de piña Roja Trujillana. del valle Santa Catalina, La Libertad ....................................................... 55 Figura 35. Niveles de boro manganeso foliar en hoja “D” de primera campaña de piña Roja. AG. Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 56 Figura 36. Niveles de boro foliar en hoja “D” de segunda campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 57. DE. Figura 37. Niveles de boro foliar en hoja “D” de tercera campaña de piña Roja Trujillana del valle Santa Catalina, La Libertad ..................................... 58 Figura 38. Normas de Riverside para evaluar la calidad de las aguas de riego. CA. (U.S. Soil Salinity Laboratory) ................................................................ 71 Figura 39. Elección de la hoja “D” en piña var. Roja Trujillana en el valle. TE. Santa Catalina, La Libertad .................................................................... 84 Figura 40. Muestreo de hoja “D” en piña var. Roja Trujillana en el valle. IO. Santa Catalina, La Libertad...................................................................... 84. BI BL. Figura 41. Muestreo foliar en campos de producción de piña 2° campaña en Laredo del valle Santa Catalina, La Libertad........................................... 84. Figura 42. Muestras foliares de piña etiquetados del valle Santa Catalina, La Libertad ............................................................................................... 85. Figura 43. Muestras foliares de 1°, 2° y 3° campaña de Guayabito cortadas a 25 cm de las hojas “D” en el Laboratorio de análisis de suelos, aguas y foliares de la Universidad Nacional de Trujillo ....................... 85. xiv Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(16) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. Figura 44. Llenado de las muestras foliares en sobres manila en el Laboratorio de análisis de suelos, aguas y foliares de la Universidad. Nacional de Trujillo ............................................................................... 86 Figura 45. Muestras foliares de piña en la estufa a una temperatura de 70 °C. por 24 a 48 horas en el Laboratorio de análisis de suelos, aguas y. foliares de la Universidad Nacional de Trujillo..................................... 86 Figura 46. Molino de cuchillas listo para moler las muestras foliares del Laboratorio de análisis de suelos, aguas y foliares de la. Universidad Nacional de Trujillo .......................................................... 86 Figura 47. Muestreo de suelos en Poroto del valle Santa Catalina, La Libertad..... 87. RO. Figura 48. Mezcla de las 15 submuestras de suelo del valle Santa Catalina,. La Libertad ............................................................................................ 87 Figura 49. Muestra de suelo, tierra fina seca al aire en el Laboratorio de. AG. análisis de suelos, aguas y foliares de la Universidad Nacional de Trujillo .............................................................................................. 87 Figura 50. Toma de muestra de agua del canal de riego de Shiran del valle. BI BL. IO. TE. CA. DE. Santa Catalina, La Libertad ................................................................... 87. xv Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(17) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 1.. PE CU AR IA S. CAPITULO I INTRODUCCIÓN. Las exportaciones peruanas de piña hacia el mercado internacional son aún pequeñas, estas llegaron a US$ 27 mil en el año 2014. Por lo que es claro llevar a. cabo acciones no solo de promoción, sino también de desarrollo del producto (Sunat, 2015).. Actualmente en el valle Santa Catalina se cultiva más de 800 ha de piña y se están. incrementando dichas áreas, se estima que el rendimiento promedio es de 40 t.ha-1 (46,500 unidades), que son comercializadas principalmente en Trujillo, Chiclayo, Chimbote y Lima (Gobierno Regional La Libertad, 2015).. RO. En la literatura sobre piña Roja Trujillana, existe el diagnóstico nutricional en macronutrientes (Reyes, 2015). Sin embargo, los micronutrientes son de importancia. AG. para complementar la fertilización para lograr buenas producciones de piña. Los aspectos fundamentales que considerar en la fertilización son: el análisis foliar, el tipo de suelo y la calidad del agua de riego (Pelayo-Saldívar, 1992; Mosqueda et. DE. al., 1996). Ello con el fin de obtener un máximo rendimiento a bajo costo (Mata y Mosqueda, 1995). Estos estudios ayudan a programar una fertilización adecuada que permita mejorar y aumentar la producción. Asimismo, con la dosificación adecuada. CA. de fertilizante disminuirán los riesgos de contaminación de suelos y aguas. En relación con lo escrito anteriormente, se aprecia que no hay investigaciones en. TE. micronutrientes en plantas de piña Roja Trujillana. Ante esta situación, se consideró necesario realizar el presente estudio en diagnóstico nutricional en micronutrientes en piña Roja Trujillana, tomando en cuenta las tres campañas de producción. Por lo. IO. tanto, el presente estudio tiene como objetivo realizar el diagnóstico nutricional de. BI BL. micronutrientes en Ananas comosus L. Merr. Var. Roja Trujillana en el valle Santa. Catalina, La Libertad., con el fin de lograr buenas cosechas y así mejorar la calidad de vida de las familias de los productores.. 1 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(18) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.. PE CU AR IA S. CAPITULO II. REVISIÓN DE LITERATURA.. 2.1. Generalidades del cultivo de piña.. Mitis (2015, p.9) cita a Jiménez (2005) quien argumenta que la piña es originaria de América del Sur, del centro y Sureste de Brasil, y Noreste de Argentina y Paraguay. Ha. sido seleccionada desarrollada y domesticada desde tiempo prehistóricos. En la. actualidad los frutos de piña y sus derivados tienen gran importancia económica en las regiones tropicales y subtropicales del mundo.. La piña es una planta herbácea, monocotiledónea, perenne que mide hasta un metro. RO. de altura, con un tallo rodeado de 30 a 40 hojas, largas, gruesas y con espinas; en. las variedades seleccionadas las espinas duras y finas sólo están en la punta. La. AG. fruta se forma sobre un pedúnculo de unos 100 a 150 mm de longitud en el ápice del tallo. La fruta es compuesta, ya que las flores de color lavanda junto con sus brácteas adheridas a un eje central (corazón), se hacen carnosas y se unen para. DE. formar la fruta de piña, la cual madura cinco meses después de la floración (Jiménez, 1999, p.18).. CA. 2.2. Descripción botánica. Es una planta herbácea, perenne, alógama, productora de frutos múltiples de alto valor nutritivo. El tamaño de la planta es variable y depende de factores como clima,. TE. suelo, variedad y densidad (IICA, 1983, p.4). 2.3. Descripción morfológica.. IO. A. Tallo.. El tallo está anclado al suelo por medio del sistema radical; una vez desarrollado. BI BL. mide hasta 80 o 100 mm de diámetro. Posee las yemas para el desarrollo de retoños y raíces. El tallo es de consistencia herbácea, de forma redondeada, generalmente de 30-60 cm de altura, carnoso y rígido con entrenudos cortos; se continúa en el pedúnculo floral, luego en el eje central de la inflorescencia, con lo cual forma una sola masa terminando en el ápice en una corona de hojas (Jiménez 1999, p.18).. 2 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(19) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. B. Retoño y estructuras para reproducción vegetativa. De las yemas del tallo salen los retoños propiamente dichos. Del pedúnculo de la fruta salen hijos y de la parte superior de la fruta sale la corona. Todos poseen yemas. de raíces. Una cuarta estructura llamada hapa (mitad hijo, mitad retoño) se encuentra entre el eje de las hojas y el pedúnculo (Jiménez 1999, p.18).. C. Hojas.. En una planta madura existen de 60 a 80 hojas adheridas al tallo, en un arreglo. espiral. Las hojas poseen venas paralelas y tienen espinas, excepto el cultivar Cayena. Lisa; sin embargo, ésta posee el gen recesivo de espinas, que se pueden manifestar en. RO. situaciones de estrés. Retienen un 7% del agua adsorbida por las raíces (Jiménez, 1999, p.19). Las hojas están cubiertas por un polvo blanco llamado tricomas que protegen a la hoja de la pérdida de agua, las estomas están en el envés de las hojas,. (Jiménez, 1999, p.19).. AG. controlando la transpiración por medio de las células guardianes o buliformes. Las hojas reciben una clasificación para conocer su edad y usos posteriores en. DE. análisis. La hoja "A" es la más vieja (puede haber hasta cuatro). La hoja "D" es la más madura y la más larga, y se utiliza para los análisis foliares de nutrición.. D. Raíces.. CA. (Jiménez, 1999, p.19).. TE. Fonseca (2010, p.6) cita a Jiménez (1999) que argumenta que en general, la mayoría de las raíces son fibrosas, adventicias y secundarias. Asimismo, este autor. IO. cita a Py (1969) que dice que en conjunto el sistema radical de las plantas adultas dependen esencialmente de las características físicas del suelo, estructura, aireación y. BI BL. humedad.. 3 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(20) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. E. Inflorescencia y fruta. La inflorescencia comienza en el ápice del tallo como un cono, el cual pasa por varias etapas y produce flores de color lavanda (violeta). Las flores de la base se abren primero, en 20 días todas las flores se abren. Se producen de 100 a 200 flores. por inflorescencia y el desarrollo de la fruta es partenocárpico. Sin embargo, puede ocurrir polinización cruzada, por lo que se producirán semillas (Jiménez, 1999, p.20). 2.4. Ecología y fisiología. A. Temperatura.. La piña es una planta tropical que crece y desarrolla mejor en un rango de temperatura entre 20 a 27° C, con poca oscilación durante el año. Temperaturas. RO. mayores de 32° C y menores de 18° C limitan de algún modo el desarrollo de la. planta. A su vez, se ha encontrado que cuando la temperatura es menor a 20° C,. AG. disminuye considerablemente la absorción por las raíces de nitrato y otros compuestos (INIA, 1997, p.11).. DE. B. Pluviometría.. La pluviosidad anual de las áreas de selva en las que se cultiva piña se encuentra en el rango de 600 a 2500 mm y aún más. Frutos procedentes de alta pluviosidad no. CA. resisten bien el transporte. Para un aprovechamiento comercial de piña, el rango de pluviosidad anual más adecuado está entre 1000 a 1500 mm, con cierta distribucióndurante el año. No obstante, la piña se originó en una zona semiárida y. TE. ha desarrollado un tipo de hoja adaptada a tolerar una humedad relativamente baja. IO. (INIA, 1997, p.11).. C. Altitud.. BI BL. La altitud óptima para la siembra de Piña es de 150 - 240 m.s.n.m. Si se siembra más alto la planta se queda más pequeña y los frutos son más pequeños y cilíndricos. El color de la pulpa es más pálido, el sabor es pobre y ácido. Si se siembra a nivel del mar, el crecimiento es más acelerado, el fruto más grande, pero la pulpa pierde consistencia y resiste menos al transporte (Bonilla, 1992, p.4).. 4 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(21) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. D. Suelo. Un buen drenaje en el suelo es un factor principal para el éxito en el cultivo de la piña. El crecimiento de la piña es muy lento en terrenos pesados y cualquier exceso. de humedad resulta inadecuado para la planta. Los suelos arenosos, francos arenosos, franco limosos, franco arcilloso y arcillosos son todos satisfactorios para la piña,. siempre que tengan un drenaje y fertilidad adecuados. La piña muestra buena adaptación a los suelos ácidos y ligeramente ácidos (pH 5.5 a 6.5), no así a los suelos alcalinos ni salinos (INIA, 1997, p.12). E. Fertilización.. Toda planta necesita un suelo fértil para poder crecer y producir frutos. Es más, si el. RO. objetivo es exportar es necesario mantener niveles nutricionales acordes a la calidad. que se exige. Ahora bien, los suelos normalmente tienen una capacidad máxima para. AG. aportar nutrimentos; a partir de ese nivel hay que aplicar fertilizantes para suplir el faltante que la planta necesita para producir el fruto esperado (Zuñiga et al., 2010, p.37).. DE. Desde el punto de vista químico, la acidez del suelo (pH) es la característica más relevante para el cultivo de piña. Estudios realizados en el campo muestran que el pH óptimo está entre 4,50 y 5,50 (Zuñiga et al., 2010, p.38).. CA. La disponibilidad de nutrimentos en el suelo influye en el rendimiento del cultivo de la piña. Si ésta no es adecuada, es preciso agregar fertilizantes químicos o tomar las medidas del caso para corregir las deficiencias. Por otra parte, la siembra continua. TE. sobre el mismo terreno hace que, después de algunos años, el rendimiento empiece a bajar, por agotamiento de las reservas en la capa fértil del suelo (Zuñiga et al., 2010,. IO. p.38).. Aunque se ha generalizado la idea de que es posible cultivar la piña en suelos pobres,. BI BL. las investigaciones han demostrado lo contrario, es decir que se trata de una planta que requiere de cantidades apreciables de varios elementos minerales y que su reacción a las aplicaciones de estos nutrientes es muy satisfactoria (INIA, 1997, p.19).. 5 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(22) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. El INIA (1997, p.19) reporta que la fertilización de la plantación de piña requiere de mucho discernimiento, pues la aplicación de los elementos minerales ya sea en exceso o en forma inoportuna dentro del ciclo de crecimiento de la planta, puede. estimular un desarrollo exuberante del follaje a expensas de una adecuada fructificación.. En la nutrición de la piña, al igual que en otros cultivos, el nitrógeno cumple un rol. de primer orden. Así, una dosis alta de este elemento da lugar a un crecimiento. vegetativo prolongado, demorando el inicio de la floración. Asimismo, una aplicación de nitrógeno después de la floración puede producir un excesivo desarrollo de la corona, originando la formación de la “corona múltiple” o. RO. “fasciación de la corona”. Con un adecuado aporte en nitrógeno, las hojas de estas. plantas tienen un color verde oscuro y son comparativamente largas y anchas (INIA, 1997, p.19).. AG. El INIA (1997, p.23) reporta que utilizando como base una plantación de piña con 38 000 plantas/ha (disposición surcos dobles con distanciamiento de 0.30 m entre plantas, 0.50 m entre surcos y 2.30 m entre calles) y suelos de la costa con baja. DE. fertilidad la dosis es 304 N – 76 P2O5 – 228 K2O – 38 MgO.. G. Variedad Roja Trujillana.. CA. La piña “Roja Trujillana”, cultivada en el valle de Moche tiene un crecimiento vigoroso, las hojas de un color verde rojizo, de tamaño mediano y relativamente. TE. angostas, bordes lisos y fuertes espinas en la punta. La formación de hijuelos en la base del fruto es abundante, entre 6 a 7 en promedio. En la base del tallo forma 3. IO. hijuelos en promedio. El fruto alcanza un peso entre 0.8 a 1.6 kg, de forma cilindrocónica, la cascara de color rojo vinoso durante el crecimiento y marrón oscuro a la. BI BL. madurez; la cascara es gruesa, que le confiere buena resistencia al transporte. El fruto tiene alta acidez y de sabor agradable para su consumo al estado fresco (INIA, 1997, p.8).. 6 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(23) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. 2.7. Diagnóstico nutricional. Barahona y Sancho (1991, p.24) sostienen que antes de iniciar la fertilización, se recomienda tomar muestras de suelo y en lo posible muestras foliares, para realizar los respectivos análisis. Esto permite programar en forma más exacta las necesidades de calcio, elementos mayores y menores del cultivo. El análisis de los suelos, previo al establecimiento de la plantación de piña,. proporcionará importante información para orientar la fertilización. En los suelos de la costa es conveniente determinar, además de los contenidos de los nutrientes minerales, la cantidad de sales especialmente de sodio y niveles de boro, que como. es conocido por encima de ciertos límites puede efectuar el cultivo de este frutal. RO. (INIA, 1997, p.20).. Asi mismo el aspecto vegetativo y el análisis foliar de piñales establecidos. AG. contribuirán a estructurar el plan de fertilización. En este caso el análisis foliar recomendable, en especial para plantaciones comerciales, indicará si el contenido en las hojas corresponde a niveles deficientes, normales o excesivos. Es de importancia. DE. que las hojas que se utilizan para realizar análisis foliar sean de 3 a 5 meses de edad que corresponden a hojas jóvenes completamente desarrolladas u hojas “D” (INIA, 1997, p.21).. CA. En piñales comerciales, el agricultor que utiliza análisis foliar obtendrá una mayor economía en sus costos de fertilizantes, abonará con mayor eficiencia y corregirá las deficiencias antes de que aparezcan los síntomas característicos de las hojas. Cuando. TE. estos síntomas se hacen notorios en las hojas, el estado de mal nutrición está muy avanzado (INIA, 1997, p.21).. IO. Como medidas de apoyo para manejar la nutrición de la piña, se realizarán análisis foliares y de suelo para medir la cantidad de nutrientes que se están aportando a la. BI BL. plantación y revisar que los niveles de elementos de uso delicado, como el nitrógeno, por la formación de nitratos y su efecto contaminador del agua y los vegetales, estén bajo control. Con este procedimiento, se busca establecer lineamientos de fertilización que permitan aportarle a la planta la cantidad adecuada de nutrientes, sin ocasionar daños innecesarios al ambiente (Zuñiga et al., 2010, p.37-38).. 7 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(24) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. Fonseca (2010, p.1) cita a Kass (1996) quien afirma que en la planta debe existir un equilibrio entre los elementos esenciales, de modo que se logre un contenido óptimo alrededor de las raíces de las plantas, para así lograr adecuadas concentraciones en la. solución del suelo, y en sus mecanismos de disponibilidad. Evitando caer en errores que ocasionen deficiencia nutricional de las plantas, un antagonismo a la hora del. mezclado de los productos o una toxicidad por el uso indiscriminado de un elemento. que se presente altamente disponible, y que éste pueda provocar lesiones en la raíz, follaje, o en los meristemos de crecimiento y reproducción.. Salinas y García (1985, p.15) citan a Ulrich (1952), quien descubrió que es importante determinar previamente los niveles críticos nutricionales del suelo y de la. contenido. de. nutrimentos. por. debajo. del. cual. la. producción. declina. AG. significativamente.. RO. planta; en la mayoría de los esquemas de diagnóstico, dicho nivel se refiere al. Los análisis foliares comúnmente se utilizan como herramienta de diagnóstico para futuras correcciones de nutrientes problema, un análisis de tejido de planta joven. (Aldana, 2011, p.1).. DE. permite hacer a tiempo correcciones de fertilización durante el ciclo de crecimiento. Es muy importante que las hojas que se utilicen para el análisis foliar sean. CA. seleccionadas apropiadamente. La hoja por muestrearse es la denominada hoja “D”, la cual corresponde el cuarto verticilo de las hojas fisiológicamente activas, contando desde la base de la planta. El momento indicado para el muestreo es al inicio de la. TE. diferenciación floral. Un grupo de 10 hojas “D” corresponden a otras 10 plantas tomadas al azar de cada 5 ha, aproximadamente, constituye normalmente una. IO. nuestra. Las hojas deben ser sanas, libres de plagas y enfermedades. Cada muestra se coloca en bolsas de papel y se envía a laboratorio para el análisis respectivo. Los. BI BL. muestreos se repetirán al inicio de cada floración mayor (INIA, 1997, p.21). La hoja muestreada es la hoja "D" cuya base es cuadrada. Esta hoja alcanza ese estado "D" al cabo de 4 meses. Después de su aparición del centro de la roseta. A través del estado vegetativo, siempre se encontrarán dos hojas correspondiente y estado "D". Los cuales serán las hojas más largas. La muestra debe ser tomada 15. 8 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(25) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. días después de la última fertilización y con una frecuencia mensual o cada 2 meses desde el cuarto mes hasta la inducción floral. El número de plantas a muestrear es de. 25 a 50 plantas por sitios de muestreo seleccionados por cada lote. Este sitio debe ser un área representativa del lote a muestrear (Suárez, 2012, p.19-20).. Fonseca (2010, p.5) cita a Jiménez (1999) quien afirma que la hoja "D" está dividida en tres secciones: la base blanca, el medio, y la punta. La base blanca se usa para. determinar los niveles de potasio, calcio, magnesio, y fósforo; el medio se usa para determinar nitrógeno, hierro y azufre.. Fonseca (2010, p.18) cita a Peña et al. (1996) quien argumenta que las hojas “D”, son las hojas más jóvenes que han terminado prácticamente su desarrollo. Son las. RO. más largas si se desarrollan en un medio favorable y su tejido basal es frágil. Son las. utilizadas para conocer el estado nutricional de las plantas. Además, es una variable muy importante para conocer la forma como se va comportando el crecimiento de. AG. dicha planta. 2.8. Micronutrientes.. DE. Los microelementos, oligoelementos, elementos menores, elementos trazas o micronutrimentos fueron descubiertos como elementos esenciales en el decenio de 1920, con el desarrollo de métodos de análisis de laboratorio más sensibles y. CA. precisos (Arnon, 1939 citado por Arnon, 1951) y son los que la planta utiliza en cantidades muy pequeñas como catalizadores de los procesos metabólicos de las mismas (Schütte, 1966), dentro de ellos se encuentra el hierro, manganeso, zinc,. TE. cobre, molibdeno, boro y cloro (Sauchelli, 1969) y más recientemente el níquel (Bertsch, 1995).. IO. Estos elementos se consideran esenciales porque su omisión es causa directa de un crecimiento anormal de las plantas o que no puedan completar su ciclo de vida. BI BL. (Arnon y Stout, 1939), por lo que su ausencia produce síntomas visuales que son superables sólo con el suministro del nutrimento (Bertsch, 1995).. 9 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(26) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. Calderón y Cardos (2005, p.9) citan a Molina (2002) quien argumenta que las plantas de piña requieren programas de fertilización intensiva porque extraen una gran. cantidad de nutrientes, principalmente nitrógeno (N) y potasio (K) y otros como el calcio (Ca), magnesio (Mg), hierro (Fe) y zinc (Zn).. La piña es un cultivo de gran extracción de nutrimentos, principalmente N y K (400 y 600 kg. ha-1, respectivamente), por lo que requiere de un programa de fertilización. intensivo para alcanzar altos rendimientos. La piña además es exigente en otros. nutrimentos como Ca (20-60 kg. ha-1), Mg (15-50 kg. ha-1), Zn (5-15 kg. ha-1) y Fe (3-8 kg. ha-1). Dado que la mayoría de los suelos donde se cultiva son de naturaleza. ácida, con frecuencia es necesario la aplicación de esos nutrimentos para llenar los. RO. requerimientos del cultivo (Molina, 2002, p.91-92).. El hierro es un microelemento que favorece la absorción de nitrógeno en la planta. En consecuencia, su deficiencia se manifiesta como hojas cloróticas. Las hojas de la. AG. corona se tornan amarillas y en casos severos, las plantas toman un color rojo purpura, agravándose ante la deficiencia de humedad en el suelo. A pH muy alto o muy bajo, el hierro no está disponible. Su fuente de suministro es el sulfato de hierro. DE. a razón de 6 a 17 kg. ha-1, fraccionados en aplicaciones foliares semanales antes de la inducción floral (Pretelt, 2003, p.23).. Los síntomas de deficiencia de zinc se muestran en las hojas al tomar éstas una. CA. apariencia curvada y torcidas y el crecimiento se detiene; se observa también incremento en la producción de retoños y se pierde el predominio del meristemo. TE. apical. La corona se queda pequeña y toma una forma de roseta. Para corregir la deficiencia de zinc a cantidades de 6 a 16 kg. ha-1, en las aplicaciones foliares y si es. IO. necesario, después del pétalo seco (Pretelt, 2003, p.24). La piña tiene requerimientos nutricionales específicos. Entre ellos el N, P, Ca, K y B.. BI BL. La carencia o exceso de algunos elementos puede afectar la apariencia, vitalidad y calidad de la planta, en consecuencia, de la fruta (Jiménez, 1999, p.63). Fonseca (2010, p.12) cita a Kass (1996) quien afirma que la aplicación de los elementos nitrógeno, fósforo, potasio, calcio, magnesio, hierro es esencial para lograr los rendimientos y la calidad deseados; pero si la planta absorbe en forma. 10 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(27) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. indiscriminada el elemento altamente disponible, sufre lesiones en la raíz, el follaje o en los meristemos de crecimiento y reproducción.. La fertilización adecuada es un factor muy importante, para esto se debe tomar en. cuenta factores como horas luz y la disponibilidad de humedad, características. nutricionales del suelo asociadas a los requerimientos de la planta (Jiménez, 1999, p.76).. Fonseca (2010, p.12) cita a Castro (1982) quien descubrió que las necesidades nutricionales de la planta de piña aumentan con su desarrollo, son crecientes según. crece la plantación hasta el momento de la inducción floral, después de ésta las. necesidades son mucho menores. La planta vive en parte por sus reservas, pero. RO. continúa sin embargo absorbiendo elementos.. La extracción de nutrientes en piña en orden de mayor a menor cantidad es la siguiente: K > N > Ca > Mg > P > S > Fe > Mn > Zn > Cu (Información Agraria,. AG. 2010, p.1).. Salamanca (1997, p.25) cita a Ruggiero (1982) quien sostiene que las extracciones de. de Zn y 311 de B.. DE. micronutrientes en g. ha-1 de la piña son 5094g de Fe, 191g de Cu, 2456g de Mn, 403. Salamanca (1997, p.25) cita a Jones, Wolf y Mills (1991) quienes reportan que el contenido de micronutrientes en hoja “D” son: Boro 30 ppm, Cobre 10 ppm, Fierro. CA. 100 a 200 ppm, manganeso 50 a 200 ppm y Zinc 20 ppm. El INIA (1997, P.21) cita a Figueroa (1970), quien reportó que el contenido de. TE. nutrientes en hoja “D” de plantas de piña con crecimiento y fructificación normales, los rangos aproximados son: cobre 21 ppm, Fierro 58 ppm, manganeso 140 ppm y. IO. Zinc 84 ppm.. Asimismo, Calderón y Cardas (2005, p.10) citan a Meléndez y Molina (2002). BI BL. quienes recomiendan para obtener una buena producción de piña los rangos de micronutrientes en las hojas “D” deben ser de 15 a 30 ppm de B, 10 a 50 ppm de Cu, 50 a 100 ppm de Fe y 20 a 30 ppm de Zn.. 11 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(28) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. 2.9. Síntomas de carencias nutricionales. La deficiencia de boro produce un deterioro del sistema vascular de la planta, que en. casos avanzados causa la muerte de los meristemos terminales. La hoja presenta una. consistencia coriácea; los frutos resultan anormales en tamaño y forma. En un corte longitudinal del fruto se observa áreas llenas de goma. El desarrollo de raíces es pobre debido a la escasez de este micronutriente (INIA, 1997, p.20).. El elemento cobre, requerido en pequeñas cantidades, cumple un rol importante en la nutrición de la piña. La carencia de éste produce un crecimiento lento y las hojas. aparecen con un ondulamiento a modo de canal. Al iniciarse la floración, las hojas pierden su turgencia presentando un aspecto de marchitez (INIA, 1997, p.20).. RO. En las plantas con deficiencia de fierro se observa un amarillamiento de las hojas. nuevas mientras que las hojas adultas permanecen verdes. En casos avanzados de carencia de este elemento, se incrementa este amarillamiento de las hojas hasta. AG. tornarse casi blanca. En suelos con un contenido alto de calcio, la deficiencia de fierro en las plantas se inicia con un ligero tinte rojizo de las hojas nuevas. El fruto de la piña con insuficiencia de fierro alcanza una maduración precoz y tiene baja. DE. acidez. Las raices muestran un limitado crecimiento, con ápices de color marrón y pocas raicillas (INIA, 1997, p.20).. En plantas con deficiencia de manganeso se nota un amarillamiento del parénquima. CA. en las hojas nuevas, permaneciendo las nervaduras de un color verde normal. El crecimiento vegetativo y el fruto, aparentemente, no resultan muy afectados por esta. BI BL. IO. TE. carencia (INIA, 1997, p.20).. 12 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(29) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. CAPITULO III. 3. MATERIALES Y MÉTODOS. 3.1. Ubicación del área experimental.. La investigación se realizó en el valle Santa Catalina entre Laredo y Plazapampa,. correspondiente a las localidades con mayor área de producción de piña Roja Trujillana, mayo del 2017 a setiembre del 2017. El área evaluada corresponde a los. cultivos localizados a lo largo del río Moche entre las cotas 143 a 1700 m.s.n.m. entre Laredo y Plazapampa, respectivamente. Los puntos de muestreo se detallan en. 3.2. Condiciones climatológicas.. RO. la tabla 1.. En la sección del valle Santa Catalina, comprendida entre Laredo y Plazapampa, las. AG. temperaturas medias anuales fluctúan de 18.82 a 25.41°C, con precipitaciones. 3.3. Materiales. A. Equipos.  Estufa.. DE. pluviales de 8.2 a 162.4 mm/año (Gobierno Regional La Libertad, 2014)..  Refrigeradora.. CA.  Agitador magnético  Campana de vidrio.. TE.  pHmetro..  Conductivímetro.. IO.  Balanza electrónica..  Balanza analítica.. BI BL.  Espectrofotómetro..  Cámara de extracción de gases..  Molino de cuchillas para muestras foliares..  GPS..  Computadora.. 13 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(30) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. B. Materiales de laboratorio.  HCl.  Sobres manila/papel kraff.  Pipeta 1mL.  Vaso de precipitación 100 mL.  Bagueta de vidrio.  Probeta 500 mL.  Bombilla.  Papel toalla.. RO.  Papel higiénico.  Pizeta..  Tijera.. DE.  Kuter.. AG.  Fuentes de plástico.  Agua destilada.. PE CU AR IA S.  Cámara digital.. C. Materiales de campo.  Libreta de campo.. CA.  Papel bond 80 g..  Plumón de tinta indeleble.. TE.  Bolsas herméticas.  Lapicero.. IO.  Lápiz.. BI BL. D. Materiales de escritorio.  Memoria USB..  Papel bond 80 g..  Lapicero..  Lápiz.. 14 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(31) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. CAMPAÑA. EDAD DE CULTIVO. 1. 1 año. 2 3 1 2 3. 2 años 4 años 1 año 2 años 3 años. 1. 2 años. Mois es Sanchez Ventura. 2. 3 años. Víctor Zavaleta Rodriguezz. 3. 4 años. Mois es Arteaga Minchola. 1. 1 año. Edm undo Gutierrez Es pejo. 2. 3 años. Nélida Mariños. 3. 4 años. 1. 2 años. 2. 3 años. Puente Arquito. Shiran. Poroto. Cans eco. 3 1. TE. Guayabito. IO. Sam ne. Jobito Alvarado. Alcides Gutierrez. 4 años. 8 m es es 2 años. BI BL. S: 08º59.618' w: 078º41.005' h: 1447 m s nm S: 08º00.528' w: 078º46.310' h: 621 m s nm S: 08º00.373' w: 078º46.300' h: 605 m s nm S: 08º00.491' w: 078º46.236' h: 616 m s nm. Hernan Collave Mendez. S: 08º01.108' w: 078º47.222' h: 556 m s nm. Santos Avalos. S: 08º01.943' w: 078º47.400' h: 538 m s nm. Hernan Collave Mendez. S: 08º01.108' w: 078º47.222' h: 556 m s nm. Wilfredo Gutierrez Ibañez. S: 08º00.323' w: 078º44.694' h: 767 m s nm S: 08º00.309' w: 078º44.802' h: 767 m s nm. 4 años. Pedro Hilario Lucas. 1. 9 m es es. Eduardo Salgado Moya. 2. 3 años. Juan Avalos Ram os. 3. 4 años. Nicolas Garcia Mendes. 1 2 3. 2 años 3 años 4 años. Julian Raym undo. 1. 18 m es es. 2 3. 2 años 3 años. Eduardo Salgado Moya. S: 08º59.618' w: 078º41.005' h: 1447 m s nm. 1. 16 m es es. Carlos Gutierrez Gonzales. S: 08º00.140' w: 078º40.723' h: 1673 m s nm. 2. 2 años. Eulalia Quis pe Es pinola. S: 08º00.128' w: 078º41.033' h: 1510 m s nm. Rayam pam pa. Plazapam pa. S: 08º00.752' w: 078º45.245' h: 685 m s nm S: 08º00.727' w: 078º44.951' h: 712 m s nm S: 08º00.458' w: 078º45.084' h: 763 m s nm. 3. CA. Platanar. S: 08º04.379' w: 078º57.288' h: 143 m s nm. Cirilo Rodriguez. DE. Concon. 2. CORDENADAS. RO. Laredo. PRODUCTOR. Abraham Salvador Garcia. AG. LUGAR. PE CU AR IA S. Tabla 1. Lugares y ubicación en donde se realizó la investigación. 3. 4 años. 1. 15 m es es. 2. 3 años. 3. 4 años. Francis co Gom ez. Ricardo Gom ez Perez. S: 08º00.667' w: 078º41.886' h: 1178 m s nm S: 08º00.323' w: 078º44.694' h: 767 m s nm S: 08º00.651' w: 078º41.920' h: 1147 m s nm S: 08º03.652' w: 078º44.345' h: 1202 m s nm. S: 07º59.594' w: 078º39.907' h: 1720 m s nm S: 07º59.206' w: 078º39.298' h: 1734 m s nm. s: sur, w: oeste, h: altitud.. 15 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(32) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 3.4.1. Toma de muestras.. PE CU AR IA S. 3.4. Metodología.. Se tomaron muestras de agua, suelos y foliares de Laredo, Puente Arquito, Shiran, Poroto, Canseco, Concon, Platanar, Guayabito, Samne, Rayampampa y Plazapampa (Tabla 1). En cada localidad se tomaron tres (3) muestras foliares,. tres (3) muestras de suelo y una (1) muestra de agua para determinar el estado nutricional en micronutrientes de la piña Roja Trujillana. Todas las muestras. (foliar, suelo y agua) fueron adecuadamente etiquetadas. Las determinaciones. físico-químicas de suelos, químicas de agua y foliares se realizaron en el Laboratorio de Análisis de Suelo, Agua, Fertilizantes y Foliares de la Universidad. RO. Nacional Agraria La Molina – Lima.. Solo se escogieron 11 localidades representativas en todo el territorio del valle Santa Catalina y tres campos de cada localidad, un campo por cada campaña y. AG. solo una muestra de agua por cada localidad debido a que el costo de los análisis es elevado y no se cuenta con los recursos economicos para realizar la evaluación. DE. en su totalidad.. 3.4.2. Análisis de calidad de agua (Bazán, 1996, p.38). Las muestras de agua fueron tomadas del canal que abastecía de agua a los. CA. campos en los cuales se tomaron las muestras foliares y de suelos. Se emplearon envases plásticos de 600 ml totalmente limpios los cuales fueron llenados en la fuente de agua de riego a favor de la dirección del flujo del agua por tres veces,. TE. hasta el borde y tapados sin dejar espacio de aire alguno y se enviaron lo más rápido a Laboratorio de Análisis de Suelo, Agua, Fertilizantes y Foliares de la. IO. Universidad Nacional Agraria La Molina, en donde se mantuvo en refrigeración hasta el momento en el que se realizaron los análisis químicos.. BI BL. Las determinaciones analíticas en las muestras de agua se efectuaron directamente, sin realizar preparación alguna, excepto alcanzar la temperatura ambiente después de la refrigeración. El pH y la conductividad eléctrica se determinaron mediante un potenciómetro y una celda de conductividad, respectivamente. El sodio, calcio, magnesio y potasio se determinaron por. 16 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(33) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. espectrofotometría de absorción atómica. Sulfatos por precipitación con cloruro de bario. B por el método del carmín sulfónico. Cloruros por precipitación con. cloruro de plata. Carbonatos y bicarbonatos por volumetría empleando como indicadores fenolftaleína y rojo de metilo y la titulación con ácido sulfúrico 0.1N. La determinación de nitratos mediante el método del ácido salicílico.. Los resultados de los análisis de agua fueron interpretados de acuerdo a la tabla de. calidad de agua de riego de Ramírez (2010), (anexos tabla 3) y el Diagrama del. Departamento de Agricultura de Estados Unidos del Manual 60 (U. S. Salinity Laboratory, 1954) (anexos, figura 23).. 3.4.3. Análisis de fertilidad de suelos (Bazán, 1996, p.1).. RO. Las muestras de suelos correspondieron a los campos en los cuales se tomaron las muestras foliares. En cada campo se recolectó una muestra compuesta por 15 sub. AG. muestras (a una profundidad de 30 cm.) tomadas al azar al recorrer el campo en zic zac cortando la pendiente.. Las muestras fueron secadas en bandejas a luz solar indirecta y luego pasadas por. DE. tamiz N° 10 (malla de 2 mm) para obtener una muestra de tierra fina seca al aire sobre la que se realizaron las determinaciones analíticas.. CA. A. Determinaciones analíticas.. El pH y la conductividad eléctrica se determinaron en el extracto de saturación mediante el uso de un potenciómetro y una celda de conductividad,. TE. respectivamente. La determinación de Fe, Cu, Mn y Zn en base a quelatantes en base DTPA como extractante y cuantificada mediante absorción atómica. El B. IO. extraído con agua caliente utilizando un condensador de reflujo y cuantificada mediante el carmín sulfúrico. El pH y conductividad eléctrica de los suelos. BI BL. fueron interpretados de acuerdo con la tabla de Zavaleta (2013, p.23) (anexos tabla 9 y 10). Los resultados de los análisis de suelos fueron interpretados de acuerdo con la tabla de interpretación de análisis de suelos agrícolas de Guerrero (2013).. 17 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(34) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PE CU AR IA S. 3.4.4. Análisis foliares (Bazán, 1996, p.43). Las muestras foliares se tomaron de campos de piña de tres edades diferentes (1ra,. 2da y 3ra campaña). Cada campo fue recorrido en zic zac y en el trayecto se tomaron al azar 25 hojas maduras completamente desarrolladas (Hoja “D”) antes de la inducción floral (Suárez, 2012).. Las muestras foliares fueron empquetada y etiquetadas. En el laboratorio las hojas fueron lavadas con agua para sacar todas las partículas de suelo, luego con. agua acidulada con HCl 0.03N y finalmente se enjuagó con agua destilada.. Después del lavado se eliminó el tercio superior de las hojas y la sección restante se llevó a peso seco en una estufa por convección forzada a 65°C hasta peso. RO. contante. Concluido el secado se realizó la molienda de las hojas empleando un. molino de cuchillas. Luego de la molienda las muestras fueron empaquetadas y etiquetadas en bolsas plásticas para su envío a la Universidad Nacional Agraria la. AG. Molina.. Los resultados de los análisis foliares fueron comparados con los estándares nutricionales propuesta por Meléndez y Molina (2002) para calificar el estado. DE. nutricional de la piña evaluado en bajo, normal, alto para Fe, Cu, Zn y B; y Jones, Wolf y Mills (1991) para calificar el estado nutricional del cultivo en Mn (anexos. BI BL. IO. TE. CA. tabla 4).. 18 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

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