Cuantificación de macronutrientes, micronutrientes y vitamina c e identificación de vitaminas liposolubles presentes en el tubérculo de oxalis tuberosa molina “oca” del caserío de Huangamarca – Otuzco – La Libertad

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(1)Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE FARMACIA Y BIOQUIMICA. O. Q. UI M. IC A. ESCUELA ACADEMICO PROFESIONAL DE FARMACIA Y BIOQUIMICA. AC. IA. Y. BI. TESIS I. RM. “Cuantificación de Macronutrientes, Micronutrientes y vitamina C e identificación. FA. de vitaminas liposolubles presentes en el Tubérculo de Oxalis tuberosa Molina “oca”. TANTAQUILLA CUEVA ANA MARIA. BI BL. IO. AUTORES:. TE. CA. DE. del caserío de Huangamarca – Otuzco – La Libertad ”.. ZAVALETA RODRIGUEZ EVELYN GIULIANA. ASESOR:. MG. JOSE GAVIDIA VALENCIA. TRUJILLO – PERU 2010. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(2) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. DEDICATORIAS. UI M. IC A. A Dios A ti padre celestial porque día a día iluminas mi camino. Gracias señor por darme la fuerza cuando sentía desfallecer por todo lo que me haz dado en la vida, y hacer posible la culminación de este trabajo de investigación.. BI BL. IO. TE. CA. DE. FA. RM. AC. IA. Y. BI. O. Q. A mis padres A ti mamita, por tu amor y cariño que me diste, por enseñarme a luchar y lograr mis metas. Desde donde Dios te tenga se que me estas viendo y compartes conmigo mis alegrías. A ti papa, por el apoyo y la confianza. Porque a través de todos los momentos compartidos, lograste inculcarme ese espíritu luchador y de trabajo que te caracteriza. Siempre están en mi corazón.. A mis hermanos Gracias por todo el apoyo que siempre me brindan y por los buenos momentos que hemos pasado juntos. Los quiero mucho. Ana María Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(3) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. A DIOS: Por haberme dado la vida. Por estar siempre a mi lado dándome la fuerza necesaria para seguir adelante. Por ser mi amigo y confidente.. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. AC I. A. Y. BI. O. Q. UI. M IC. A. Así mismo por confortarme en los momentos difíciles y mostrarme el camino correcto que debo seguir.. A MI MADRE: Por ser la persona que siempre ha estado a mi lado aconsejándome y cuidándome, brindándome su amor y confianza. Por su gran fortaleza, y sabiduría para afrontar los problemas. Por el gran esfuerzo que ha realizado para darme educación.. Evelyn Giuliana. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(4) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. A MI PADRE:. O. Q. UI. M IC. A. Quién me ha cuidado y protegido todos estos años. Por haberme mostrado la realidad del mundo en que vivimos, haciéndome mas fuerte para afrontar los problemas.. BI. A MI HERMANO:. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. AC I. A. Y. Por ser mí amigo y compañero en la vida. Por darme su cariño y cuidados en mis momentos de debilidad.. A MI TIA ARMINDA: Quién nos ha apoyado en momentos difíciles, brindándonos su cariño y comprensión. Por ser una persona de gran fortaleza.. Evelyn Giuliana. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(5) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. O. Q. UI. M IC. A. AGRADECIMIENTOS. BI. Un especial agradecimiento a nuestro asesor:. AC I. A. Y. Mg. José Gavidia Valencia. RM. Por brindarnos su amistad, ayuda y consejos, los del. FA. cuales nos permitieron la culminación. BI BL IO. TE CA. DE. presente trabajo de Investigación.. Ana María y Evelyn Giuliana. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(6) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. UI M. IC A. MIEMBROS DEL JURADO. (PRESIDENTE). BI. O. Q. YURI CURO VALLEJOS. (MIEMBRO). AC. (MIEMBRO). BI BL. IO. TE. CA. DE. FA. RM. GUILLERMO RUIZ REYES. IA. Y. JOSE GAVIDIA VALENCIA. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(7) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INDICE. Pág. RESUMEN________________________________________________i. IC A. ABSTRACT _______________________________________________ii. UI M. I. INTRODUCCIÓN__________________________________________1. BI. O. Q. II. MATERIAL Y METODO___________________________________7. IA. Y. III. RESULTADOS____________________________________________ 30. RM. AC. IV. DISCUSION_______________________________________________35. DE. FA. V. CONCLUSIONES__________________________________________41. CA. VI. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS_________________________42. BI BL. IO. TE. ANEXOS_________________________________________________46. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(8) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. RESUMEN. El presente trabajo tiene como objetivo cuantificar. los Macronutrientes y. Micronutrientes y vitamina C e identificar las vitaminas liposolubles presentes en el tubérculo de Oxalis tuberosa Molina “Oca” del Caserío de Huangamarca – Otuzco - La. IC A. Libertad.. UI M. Se determinó la concentración de macronutrientes, Calcio, Hierro, Fósforo, Vitamina C. O. Q. y se identificó Vitaminas liposolubles presentes en el tubérculo de Oxalis tuberosa. Y. BI. Molina “Oca” del Caserío de Huangamarca – Otuzco - La Libertad. Los resultados. AC. IA. obtenidos fueron: Humedad 83.83 %, extracto seco 16.17 %, cenizas 1.05 %, acidez. RM. (expresado en ácido láctico) 0.039 g, carbohidratos totales 12.47 %, fibra 1.6 %,. FA. proteínas totales 1.14 %, grasa 0.83 %, Calcio 22.08 mg, Hierro 1.88 mg y Fósforo. DE. 34.46 mg, Vitamina C 38.29 mg, Vitamina A reacción (+), Vitamina D reacción (+),. IO BI BL. Leyenda:. TE. CA. Vitamina E reacción (-), Vitamina K reacción (-).. + : Reacción positiva - : Reacción negativa. Palabras Claves: Oca, Macronutrientes, Micronutrientes. i Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(9) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. ABSTRACT The objective of the present work is quantifying of macronutrients, micronutrients and C Vitamin and identifies liposolubles Vitamins presents in Oxalis tuberosa Molina “Oca” tuber of hamlet Huangamarca – Otuzco - La Libertad.. The composition of macronutrients, Calcium, Phosphorus, Iron and C Vitamin; also. IC A. liposolubles Vitamins were identified in the Oxalis tuberosa Molina “Oca” tuber of. UI M. hamlet Huangamarca – Otuzco - La Libertad. The results were Moisture 83.83 %,. O. Q. extract dry 16.17 %, ash 1.05 %, acidity (expressed in lactic acid) 0.039 g, totals. Y. BI. carbohydrates 12.47 %, fiber 1.06 %, totals proteins 1.14 %, fat 0.83 %, Calcium. AC. IA. 22.08mg, Iron 1.88mg and Phosphorous 34.46 mg, C Vitamin 38.29 mg, A Vitamin. FA. RM. reaction (+), D Vitamin reaction (+), E Vitamin reaction (-), K Vitamin reaction (-).. CA. +: positive reaction. DE. Legend:. BI BL. IO. TE. - : negative reaction. Key words: Oca, Macronutrients, Micronutrients. ii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(10) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. INTRODUCCION El Perú a través de las diferentes épocas ha contribuido al mundo con innumerables recursos vegetales. Por este hecho, nuestro país está considerado como centro de origen de diferentes especies de cereales, tubérculos y frutales que tienen elevado valor nutritivo pero. M IC. A. debido a la carencia de un desarrollo tecnológico e investigaciones básicas es que no se ha. UI. logrado el mejoramiento de estos cultivos, por ello son poco conocidos dificultando así su. Q. mayor aprovechamiento, siendo solamente favorecido por la población aborigen y. Y. BI. O. lugareños donde crecen estos vegetales en forma silvestre y semisilvestres 1.. AC I. A. Desde un punto de vista general los tejidos vegetales o animales generalmente son sistemas. RM. acuosos de carbohidratos, proteínas y grasas; disueltas en la fase acuosa se encuentran los. FA. carbohidratos solubles, las proteínas los ácidos grasos, las sales minerales, las vitaminas,. DE. los compuestos fisiológicos activos y los pigmentos 2.. TE CA. Los carbohidratos son los macronutrientes más abundantes en los productos fotógenos. Es. BI BL IO. la forma de alimento energético más barata y de más fácil digestión, y se puede obtener sin mayores dificultades. Estos carbohidratos una vez absorbidas por el organismo son transportados, almacenados, metabolizados y transformados casi exclusivamente en función energética. Aunque las grasas o las proteínas pueden remplazarlas como fuente de energía en casi todas las células del cuerpo, el hombre no puede prescindir totalmente de ellos, por ello se recomienda una ingesta mínima de glúcidos entre 80 y 100 gramos por día lo que supone un aporte de 50 a 60% de energía total consumida en la dieta 3, 4.. 1 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(11) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. La fibra es aquella parte de los oligosacáridos y polisacáridos y sus derivados (hidrofílicos) que no pueden ser descompuesta en componentes absorbibles por las enzimas digestivas humanas en el estómago e intestino delgado, ayudando así al organismo a eliminar los residuos alimenticios u otros elementos tóxicos susceptibles a provocar cáncer al colon. Es por ello que el consumo de fibra recomendable es de 25g por persona diariamente 5, 6.. M IC. A. Las proteínas son nutrientes esenciales para el organismo y son la única fuente de sustancia. UI. nitrogenada que admite el organismo para sintetizar sus propias proteínas, ya sea durante el. O. Q. crecimiento o la constante renovación de sus tejidos. Es por ello que se recomienda una. BI. ingesta de 0,75g/Kg de peso corporal al día en un adulto joven y de 2,2g/Kg de peso. AC I. A. Y. corporal al día en lactantes 2.. RM. Los minerales son elementos reguladores del metabolismo y constituyen tan solo el 4% de. FA. los tejidos del organismo y son indispensables por lo que deben ser aportados con la dieta.. DE. El calcio y fósforo son constituyentes del tejido óseo, de ahí la importancia de su. TE CA. incorporación a la dieta. Participan en numerosos procesos biológicos de tal importancia que se ha desarrollado un complejo sistema de regulación homeostática para mantener sus. BI BL IO. concentraciones séricas en unos límites muy estrechos 7, 8, 9.. El hierro es fundamental para la formación de hemoglobina, responsable del aporte de oxígeno a las células musculares. El contenido total de hierro de un individuo normal es aproximadamente de 3,5 a 4 g en la mujer y de 4 a 5 g en el hombre 7, 10.. 2 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(12) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. En individuos con un estado nutricional óptimo alrededor del 65 % se encuentra formando parte de la hemoglobina, el 15 % está contenido en las enzimas y la mioglobina, el 20 % como hierro de depósito y solo entre el 0,1 y 0,2 % se encuentra unido con la transferrina como hierro circulante 7, 10.. Las vitaminas son micronutrientes que no van aportar energía, pero que son necesarias para. M IC. A. la regulación de los procesos metabólicos que se dan en el organismo. Con una. UI. alimentación sana y equilibrada las necesidades vitamínicas suelen estar cubiertas, pero en. O. Q. algunos casos puede ser necesario suplementarlos. Desempeñan una función importante en. BI. la construcción y restauración de los tejidos, de esta manera la vitamina C interviene en la. AC I. A. Y. formación de colágeno, la vitamina D contribuye con la configuración del hueso 3, 7.. RM. La vitamina A es necesaria para percibir la luz con la retina, la vitamina K intervine en la. FA. formación de protrombina en el hígado y la vitamina E tiene carácter antioxidante al igual. TE CA. DE. que la vitamina C 7.. En las comunidades rurales de los Andes, la alimentación es esencialmente a base de. BI BL IO. vegetales, predominando los tubérculos como papa, oca y mashua, que son ricos en hidratos de carbono, pero pobres en algunos aminoácidos esenciales 11.. El género Oxalis está muy extendido en nuestro país, forma parte de la vegetación de las lomas costaneras; siendo más frecuente en los niveles medios de los andes, predominando las hierbas pequeñas provistas de rizomas carnosos que se introducen entre las rocas. En la ceja de la montaña viven especies arbustivas de flores anaranjadas o amarillentas 12.. 3 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(13) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. La oca pertenece a la familia Oxalidaceae que incluye ocho géneros. El género Oxalis tiene más de 800 especies. La mayor parte se encuentra en Sud América con una gran diversidad de formas. Oxalis tuberosa es la única cultivada como especie alimenticia 13. Oxalis tuberosa de la familia Oxalidácea es llamada “oca” en Perú, Bolivia, Ecuador, Chile y Argentina. En Venezuela es llamada “Cuiba”, en Colombia “Ibia” y en México “Papa. M IC. A. Extranjera”. Es una planta herbácea y anual. Posee tallos cilíndricos y suculentos los cuales. UI. brotan de la base de la planta, presentando entrenudos muy cortos en la parte inferior.. O. Q. Posee inflorescencia axilar dispuesta en dos cimas de cuatro o cinco flores. Los tubérculos. BI. presentan diferentes aspectos pudiendo ser elipsoides, cilíndricos, claviformes, etc. Y. AC I. A. Y. presentan variedad de colores 14.. RM. La “oca” es originaria del altiplano peruano-boliviano. Su distribución va desde Venezuela. FA. hasta Chile y Argentina. Crece en ambientes templado-fríos, entre los 3000 y 4000 msnm.. DE. Es una planta adaptada al clima de los andes, produce tubérculos de agradable sabor y alto. TE CA. contenido calórico, siendo así uno de los alimentos preferidos del poblador andino. Por todas estas razones es el tubérculo que más se cultiva después de la papa. La “oca” se. BI BL IO. prefiere en zonas rurales, el consumo es mayor cuanto más periférica es la zona; se consume en diversas preparaciones hasta dos veces a la semana en épocas de cosecha 14, 15. Según Ferreyra la “oca” tiene la siguiente clasificación taxonómica: Clase Orden Familia Género Especie Nombre vulgar. : Dicotiledónea : Geraniales : Oxacidaceae : Oxalis : Oxalis tuberosa Molina : “oca” 4. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(14) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Los tubérculos alcanzan longitudes de 5 a 15 cm de forma muy variada: cilíndrica a ovoides, y de color llamativo: blanco, morados a casi negro, rosados o amarillos, a menudo con áreas enteras de distinto color, uniformes o punteado. Las yemas tienen tamaño y profundidad diferentes, según el clon y a menudo son de distinto color 15.. El fruto es una cápsula de 5 lóculos, de pared membranosa y encerrada en el cáliz. M IC. A. persistente. Las semillas se forman en número de 1 a 3 o más en cada lóculo; Son elipsoides. UI. de más o menos 1 mm. de longitud, de superficie granulosa y de color pardo claro u oscuro.. O. Q. La dehiscencia de las cápsulas de Oxalis, en general, es explosiva al extremo de ser difícil. Y. BI. el encontrar semillas en frutos maduros16.. AC I. A. Los tubérculos de oca tienen una alta variación en sus niveles nutritivos. Como promedio. RM. tiene un 84,1% de agua, 1,1% de proteína, 13,2% de carbohidratos, 0,6% grasa y 1,0% de. FA. fibra. El contenido vitamínico varía, pero puede tener cantidades significativas de retinol. DE. (vitamina A) y los tubérculos amargos contienen hasta 500 ppm de ácido oxálico 17.. TE CA. Este informe busca incrementar el interés por Oxalis tuberosa Molina “oca” como parte de. BI BL IO. la dieta balanceada, por lo cual es importante conocer los contenidos de macro y micronutrientes.. 5 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(15) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. PROBLEMA:. ¿Cuál es la concentración de macronutrientes, micronutrientes y vitamina C; además que vitaminas liposolubles están presentes en el tubérculo de Oxalis tuberosa Molina “oca” del Caserío de Huangamarca – Otuzco - La Libertad?. M IC. A. HIPÓTESIS:. Q. UI. Implícita. Y. BI. O. OBJETIVO:. A. 1. Cuantificar los macronutrientes, micronutrientes y vitamina C e identificar las. AC I. vitaminas liposolubles presentes en el tubérculo de Oxalis tuberosa Molina “oca”. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. del Caserío de Huangamarca – Otuzco - La Libertad.. 6 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(16) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. MATERIAL Y MÉTODO 1. MATERIAL. 03 Balones Kjeldahl de 500 ml. . 01 Bureta de 25 ml. . 03 Cápsulas de porcelana. . 03 varillas de vidrio. . 03 Crisoles de porcelana. . 01 Desecador. . 02 Embudos. . 04 Fiolas de 25 ml. . 05 Fiolas de 100 ml. . 02 Fiolas de 250. . 01 Fiola de 500 ml. . UI Q O BI Y A AC I. RM FA. DE. TE CA. BI BL IO. . M IC. . A. 1.1. Material de laboratorio:. 03 Lunas de reloj 03 Matraces Erlenmeyer de 500 ml. . 01 Mortero con pilón. . 03 Pipetas de 5 ml. . 03 Pipetas de 10 ml. . 02 Probetas de 25 ml. . 02 Probetas de 100 ml 7. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(17) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 03 refrigerantes a reflujo. . 20 Tubos de ensayo. . 03 Vasos de precipitación de 100ml. . 03 Vasos de precipitación de 250ml. . 01 Micropipeta. A. . M IC. 1.2. Equipos de laboratorio:. 01 Espectrofotómetro “THERMO GENESIS 10uv”. . 01 Equipo de destilación Pirex (Balón, tubos de conexión y refrigerante). . 01 Extractor Soxhlet Pirex (Balón, extractor y refrigerante). . 01 Estufa eléctrica “Tomos”. . 01 Balanza de 1 kg de capacidad “OHAUS”. . 01 Balanza analítica “Toledo”. . 01 Mufla eléctrica “Thermolyne”. . 01 Cocina eléctrica “Surge”. . 1 Balanza analítica “Othaus”. . Q O. BI. Y. A AC I. RM. FA. DE. TE CA. BI BL IO. . UI. . 1 Equipo para destilación 1 Estufa “Thelco”. . 1 Extractor Soxhlet. . 1 Fotocolorímetro Klett – Summerson. . 1 pH- METRO Hanna Instruments pH. 8 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(18) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 1.3. Reactivos.. Acido acético glacial q.p. . Alcohol isobutílico. . Acido ascórbico 0,02% P/V. . Solución de Acido metafosfórico 20 % P/V. . Carbonato de calcio anhidro. . Cloroformo. . Cloruro de sodio anhidro. . Indicador murexida. . Solución buffer acetato (pH 4,5). . Solución de 2,6-diclorofenolindofenol 0,05% P/V. . Solución de acetato de plomo al 30 % P/V. . Solución de acido 1,2,4-aminonaftolsulfonico al 25% P/V. . Solución de acido tricloroacético al 5% P/V. . Solución de anaranjado de metilo 0,1% P/V. . Solución de azul de metileno al 1 % P/V. . M IC UI Q O BI Y A. AC I. RM. FA. DE. TE CA. BI BL IO. . A. . Solución de acido clorhídrico 0,1N. Solución de clorhidrato de hidroxilamina. . Solución de EDTA sódica 0,02 N. . Solución de Fehling A. . Solución de Fehling B. . Solución de fenolftaleína al 1 % P/V. 9 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(19) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Solución de ferrocianuro de potasio 1 % P/V. . Solución de molibdato de amonio al 2,5 % P/V. . Solución de NaOH 40% P/V. . Solución de rojo de metilo al 1 % P/V. . Solución de acido bórico al 4%. . Solución metanólica KOH 20% P/V. . Solución patrón de cloruro de calcio 0,2 N. . Solución patrón de hierro. . Solución patrón de fósforo. . Solución reductora de cloruro de mercurio 1% P/V. . Solución reductora de cloruro férrico. . Solución saturada de sulfato de sodio. . Sulfato de cobre anhidro. . Sulfato de potasio anhidro. UI Q O BI Y. A. AC I. RM. FA. DE. TE CA. . BI BL IO. 1.4. Otros:. . 1 Espátulas. . 1 Filtro rojo 600um. . 1 Filtro verde 540 um. . 2 soportes con pinza. . 2 trípodes con triangulo. . M IC. A. . 2 Cocinas eléctricas 1 desecador. 10 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(20) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. . 5 tapones de jebe. . 1 piceta de 250 ml.. 2. MÉTODO. 2.1. TOMA DE LA MUESTRA:. M IC. A. Las muestras del tubérculo Oxalis tuberosa “Oca” proveniente del Caserío de. UI. Huangamarca, Provincia de Otuzco, Departamento de La Libertad fueron. análisis bromatológico se utilizó tubérculos de Oxalis tuberosa,. RM. Para el. AC I. A. Y. 2.2. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA 18. BI. O. Q. tomados de los tubérculos maduros y con buen estado de conservación.. FA. proveniente del Caserío de Huangamarca, Provincia de Otuzco, Departamento de. DE. La Libertad los cuales, una vez llevados al laboratorio fueron conservados en. TE CA. recipientes secos y estériles, hasta el momento del análisis.. BI BL IO. 2.3. DETERMINACION DE CARACTERES ORGANOLEPTICOS 18. Las determinaciones fueron realizadas teniendo en cuenta: color, olor, sabor, consistencia, textura.. 2.4. DETERMINCIONES FISICAS 2.4.1. Humedad “Método Gravimétrico de la Estufa” 18. Fundamento: Este método se basa en la pérdida de peso que experimenta un cuerpo cuando este es sometido a la acción del calor. 11 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(21) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Procedimiento:. En una cápsula de porcelana previamente tarada se colocó 10 g de muestra problema, llevó a estufa a 100° C durante 3 horas, dejamos enfriar en desecador y pesamos.. M IC. A. Cálculos:. O. Q. UI. %Humedad =. Y. BI. 2.4.2. Extracto seco:. AC I. A. Fundamento: El extracto seco se obtuvo por diferencia para lo cual se resto. RM. de 100 al porcentaje de humedad.. DE. FA. Cálculos:. TE CA. %Extracto seco = 100 - % humedad. BI BL IO. 2.4.3. Cenizas: “Método por incineración directa” 18. Fundamento: Consiste en la incineración de un cuerpo y su posterior cuantificación a través de la pesada.. Procedimiento:. En un crisol de porcelana previamente tarada colocamos 5 g de muestra problema, llevó a sequedad en la estufa a 100° C, dejamos enfriar, agregamos 10 ml de alcohol 96°, se inflamó y volvió a repetir este 12 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(22) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. procedimiento, luego llevamos a la mufla a 700° C hasta obtener cenizas blancas, enfriamos y pesamos.. Cálculos:. UI. M IC. 2.4.4. Medición de pH: “Método Potenciométrico” 18. A. % Ceniza =. O. Q. Fundamento: Consiste en la medición de la concentración de los iones. Y. BI. hidronio.. RM. AC I. A. Procedimiento:. FA. El instrumento fue calibrado con solución buffer (acetato de sodio) de pH. DE. conocido (4.68) que se ajusto con el botón de compensación de temperatura. TE CA. a 20°C y se llevó con el botón de calibración al valor de pH de la solución de calibración, finalmente se introdujo los electrodos limpios en la solución. BI BL IO. ensayo y se realizo la lectura.. 2.5. DETERMINACIONES QUIMICAS: 2.5.1. Acidez:”Método de acidimetría” 18. Fundamento: Se basa en la cuantificación de acidez existente en una determinada sustancia por valoración con un álcali apropiado.. 13 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(23) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Procedimiento:. En un matraz colocamos 5 g de la muestra problema debidamente triturado, se agregó 80 ml de agua destilada; dejamos en contacto 2 horas y filtramos. Lo obtenido fue aforado a 100 ml, luego se agregó III gotas de fenolftaleína y procedió a hacer el dosaje con solución de NaOH 0,1N hasta la obtención. M IC. A. de una coloración ligeramente rosada, se anotaron los ml gastados y se. Q. UI. efectuaron los cálculos.. Y. BI. O. Cálculos:. RM. DE. 2.5.2. Proteínas. FA. % Acidez =. AC I. A. 1 ml de Na OH 0,1 N _________ 0,0049 g. H2SO4. TE CA. a) Dosaje de Proteínas totales: “Método Semimicro Kjeldahl” 18, 19. BI BL IO. Fundamento: Se basa en la transformación del nitrógeno orgánico en nitrógeno amoniacal por acción del ácido sulfúrico concentrado en caliente y ayudado por la presencia de sustancias catalizadoras; su posterior destilación previa dilución y alcalinización recibiendo el amoniaco destilado en una cantidad exactamente medida y en exceso de un ácido valorado y determinado el exceso de este acido por titulación con una solución de hidróxido de sodio de la misma normalidad.. 14 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(24) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Por diferencia se encuentra el numero de mililitros del acido valorado que se ha combinado con el amoniaco.. Procedimiento:. M IC. Digestión: Disgregación de la materia orgánica. A. El método semi-micro de kjeldahl consta de tres partes fundamentales.. Q. UI. En un balón kjeldahl colocamos en el mismo orden y cantidades las. BI. O. siguientes sustancias: 1 g de muestra problema previamente desecada, 1 g. AC I. A. Y. de mezcla catalizadora, 10 ml de ácido sulfúrico concentrado.. RM. El balón con su contenido se colocó en un soporte con una inclinación de hasta que la muestra se. FA. 45° y en seguida calentamos sobre rejilla. DE. carbonizó por completo, quitamos la rejilla y calentó a fuego directo. TE CA. teniendo cuidado, en primer lugar agitando de vez en cuando. El final de la digestión se evidenció por la aparición de un color verde esmeralda. BI BL IO. característico.. Destilación: Destilación del amoniaco.. Dejamos enfriar en el balón kjeldahl y se pasó a un balón de 500 ml y diluyó con 200 ml de agua destilada. Luego neutralizamos con NaOH al 40% P/V hasta reacción ligeramente alcalina, utilizamos fenolftaleína como indicador.. 15 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(25) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Por separado en un matraz erlenmeyer se colocó 25 ml H3BO3 al 4%, agregarnos III gotas de rojo de metilo y llevamos el matraz al extremo del refrigerante procurando que esté sumergido en el ácido. Agregamos al balón un exceso de NaOH al 40% P/V (40 ml) y se adaptó al dispositivo destilatorio y procedió a la destilación. Fueron suficientes que destilen. A. 150 ml y se comprobó colocando en el extremo del refrigerante un papel. M IC. rojo de tornasol, el cual no debe virar al azul lo que nos indica la no. O. Q. UI. destilación del amoniaco.. Y. BI. Titulación:. AC I. A. El destilado obtenido se tituló con HCl 0,1N (F: 0,1241) hasta viraje del. RM. indicador del amarillo al rojo, obteniéndose el número de mililitros de. TE CA. Cálculos.. DE. FA. HCl que se han combinado con el amoniaco.. 0,0014 g de Nitrógeno. BI BL IO. 1ml HCl 0,1 N. F = 5,7 para productos fotógenos. 16 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(26) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.5.3. Grasas:”Método de Soxhlet” 18, 19. Fundamento: Se basa en la extracción de la grasa de una sustancia mediante un disolvente orgánico en forma continua en el que la solubilidad. M IC. A. de la grasa en el solvente es cuantitativa, porque siempre actúa en estado puro. Para esta determinación empleamos el extractor Soxhlet el cual consta. Q. UI. de las siguientes partes: balón, extractor (donde se colocara la sustancia. BI. O. problema previamente dispuesto en un cartucho de papel de filtro) y. AC I. A. Y. refrigerante (donde se produce la condensación del solvente).. RM. Procedimiento:. FA. En un mortero de porcelana se coloco 10g de la muestra problema triturado,. DE. se mezcló con cantidad suficiente de arena lavada y calcinada, que permite. TE CA. ampliar la superficie de contacto de la muestra con el solvente, luego se pasó a un cartucho de papel filtro y colocó en el extractor. En el balón. BI BL IO. previamente pesado se colocó el solvente, y se armó el equipo Soxhlet, todo el conjunto se colocaron a la acción del calor efectuando la extracción hasta que el líquido pasó a incoloro.. Luego se destiló el disolvente y el residuo que queda se llevó a completa desequedad en estufa y se pesó. Por diferencia se obtuvo la grasa existente en la cantidad de muestra tomada.. 17 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(27) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Cálculos:. % Grasa =. 2.5.4. Carbohidratos solubles: “Método de Fehling” 18, 19. A. Fundamento: Se basa en que ciertas azúcares que presentan carácter. M IC. reductor, reducen a las sales de cobre al estado oxido cuproso (Cu2 O) en. Q. UI. solución alcalina y en presencia de una sal orgánica que lleva en su. Y. BI. O. molécula radicales alcohólicos.. AC I. A. Procedimiento:. FA. RM. a) Determinación de Glúcidos Totales:. DE. Tomamos 3g de muestra problema debidamente triturada, con 80 ml de. TE CA. agua destilada, más 5 ml de HCl concentrado, y llevamos a ebullición en baño maría con refrigerante de reflujo durante 2 horas, luego de. BI BL IO. enfriarse, neutralizamos con solución de NaOH al 40% P/V, empleando como indicador papel de tornasol, luego agregamos 4 ml de acetato de plomo solución al 30% P/V mas 3 ml de solución saturada de Na2SO4, se. filtró y finalmente el filtrado obtenido aforamos a 250 ml.. Por otro lado en un matraz erlenmeyer de capacidad adecuada medimos 5 ml de Fehling “A” y 5 ml de Fehling “B” (F: 0,062) diluido con 50 ml de agua destilada, agregamos III gotas de indicador azul de metileno, llevamos a ebullición y de una bureta dejó caer la solución análisis en 18 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(28) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. pequeñas porciones, procurando mantener la ebullición. El final fue cuando el indicador se decoloró totalmente.. Cálculos:. UI. M IC. A. % Carbohidratos =. BI. O. Q. b) Determinación de Glúcidos Solubles Reductores Libres:. Y. En un matraz colocamos 5 g de muestra homogeneizada con 50 ml de. AC I. A. agua destilada, dejándose 30 min. en contacto, luego agregamos 4 ml de. RM. acetato de plomo al 30 % P/V y 3 ml de solución saturada de sulfato de. FA. sodio, luego filtró y aforó a 100 ml. Por separado en un matraz. DE. erlenmeyer agregamos 5 ml de Fehling “A” y 5 ml de Fehling “B” (F:. TE CA. 0,047) con 50 ml de agua destilada y III gotas de azul de metileno, luego llevamos a ebullición dejando caer de una bureta el aforado anterior en. BI BL IO. pequeñas porciones, procurando mantener la ebullición.. El final de la valoración se evidenció por la decoloración total del indicador azul de metileno y la aparición de un precipitado de color rojo ladrillo. Se anotó el número de mililitros gastados y relacionó a 100 el resultado para obtener el porcentaje.. 19 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(29) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. c) Determinación de Glúcidos Solubles Totales:. Del aforado para determinar glúcidos solubles reductores libres se tomó 50 ml y agregó 2 ml de HCl cc y llevamos a ebullición en baño maría con refrigerante de reflujo, durante 2 horas, luego se dejó enfriar y neutralizó con NaOH al 40% P/V, utilizando como indicador papel de. M IC. A. tornasol y luego se aforó a 100 ml. Por separado en un matraz. UI. Erlenmeyer se agregó 5 ml de Fehling “A” mas 5 ml de Fehling “B” (F:. O. Q. 0,047), se diluyó con 50 ml de agua destilada y se agregó III gotas de. Y. BI. azul de metileno y llevó a ebullición dejando caer de la bureta el aforado. AC I. A. anterior, procurando mantener la ebullición.. RM. El final de la valoración se evidencio por la decoloración total del. FA. indicador azul de metileno y la aparición de un precipitado de color rojo. DE. ladrillo. Se anoto el número de mililitros y se relaciono a 100 el. TE CA. resultado para obtener el porcentaje.. BI BL IO. d) Determinación de Glúcidos Solubles no Reductores:. Se obtuvo restando el porcentaje de glúcidos solubles reductores libres del porcentaje de glúcidos solubles reductores totales.. e) Determinación de Glúcidos Insolubles:. Se obtuvo restando el porcentaje de glúcidos solubles totales del porcentaje de glúcidos totales.. 20 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(30) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.5.5. Fibra Cruda: “Método de Hennenberg” 20. Fundamento: Se basa en la insolubilidad de la fibra en ácidos y álcalis diluidos.. Procedimiento:. M IC. A. En una luna de reloj pesamos 2 g de muestra y se transfirió a un erlenmeyer. UI. de 500 ml luego agregamos 200 ml de H2SO4 al 1,25% V/V y se conectó a. O. Q. un refrigerante de reflujo dejándolo hervir durante 30min., agitando. Y. BI. periódicamente. Posteriormente se filtró y lavó el erlenmeyer con 50 ml de. AC I. A. agua destilada hirviente. Mientras calentamos 200 ml de NaOH al 1,25%. RM. P/V con el cual arrastramos el residuo del filtro al matraz erlenmeyer. A. FA. través de un orificio en la base del papel filtro, conectamos nuevamente a. DE. refrigerante de reflujo y se hizo hervir durante 30 min.. TE CA. Por separado en una luna de reloj colocamos un papel de filtro y secamos en la estufa a 100º C por 30min. Luego dejamos enfriar en el desecador y. BI BL IO. pesamos el papel. Con este papel ya tarado, filtramos el contenido del matraz erlenmeyer y lavamos el mismo con 50 ml de agua destilada hirviente, 25 ml de H2SO4 al 1,25% V/V hirviente, 150 ml de agua destilada hirviente (3 porciones de 50 ml cada uno) y 25 ml de alcohol 96º.. Llevamos el embudo con el papel filtro a estufa durante 15min. luego se sacó el papel filtro y colocamos en el desecador para luego pesarlo. El resultado obtenido relacionó a 100 para expresarlo en porcentaje. 21 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(31) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.6. DETERMINACION DE MICRONUTRIENTES: 2.6.1. Minerales: a) Dosaje de calcio: “Método Complexométrico”. Fundamento: Se basa. 18, 20. en que la murexida o púrpura de amonio,. M IC. A. indicador metálico sensible, en un medio amortiguador apropiado (pH 11-13) forma con los iones metálicos, complejos coloreados, poco. Q. UI. estables; por ejemplo con el calcio forma el complejo de calcio-. BI. O. murexida de color rosado. La complexota EDTA, extrae el calcio del. Y. complejo color rosado de calcio-murexida, el cual se rompe dando lugar. AC I. A. a la formación de un complejo incoloro tipo quelato de complexonato. FA. RM. de calcio, más estable que el anterior complejo coloreado.. DE. Después de todo, el calcio forma su complejo con el EDTA la solución. TE CA. de color rosa vira al color azul violeta, color de la murexida a pH alcalino, lo cual indica el punto final de la titulación.. BI BL IO. Procedimiento:. Se pesó 0.1g de cenizas y se le añadió II gotas de HCl, luego se diluyó con agua destilada, se filtró y aforo a 100 mL. Se tomó 5mL de aforo anterior y diluyó con agua destilada hasta 25 mL, se llevó a pH 6,8 con amoniaco concentrado luego se añadió 25 mL de agua destilada, 1 mL de solución NaOH 2N y 0,2g de indicador para calcio.. 22 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(32) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Se tituló con la solución de EDTA sódica o solución versenato 0,02N hasta que el color cambió de rojo al azul violeta. Se anotó los mL de la solución de EDTA sódica gastados.. fierro:. “método. calorimétrico. UI. de. de. Munsey. con. Q. b) Dosaje. M IC. A. Cálculos:. Y. BI. O. fenantrolina” 18, 20. AC I. A. Fundamento: Se basa en que el Ion ferroso fija mediante valencias. RM. secundarias tres moléculas de fenantrolina por cada molécula de fierro,. FA. dando lugar a la formación de un complejo tipo quelato de color rojo. DE. naranja, el cual tiene sus valencia verdaderas libres (dos ) para formar. TE CA. sales divalentes con diversos ácidos, principalmente HCl.. La coloración obtenida sirve para la cuantificación calorimétrica por. BI BL IO. comparación con una solución patrón de fierro.. Procedimiento:. . Preparación de los Estándar. En cuatro fiolas de 100 ml se mide 5, 10, 15 y 20 ml de solución patrón de fierro respectivamente, se le añade 2 ml de HCl a cada una de ellas y se aforó a 100 ml. 23 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(33) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. . Obtención de la Curva:. De cada una de los Standard preparados anteriormente, se tomó 2 ml y se colocaron en cuatro fiolas de 25 ml luego a cada una de ellas se les agregó 1 ml de la solución de clorhidrato de hidroxilamina y se dejó en reposo durante 5min. En seguida se añadió 5 ml de solución. M IC. A. buffer de acetato y 1 ml de solución de fenantrolina. Por último,. O. Preparación del Blanco:. Y. BI. . Q. UI. aforamos todas las fiolas con agua destilada, y se homogenizó.. AC I. A. Se siguió el mismo procedimiento para la obtención de la curva, pero. Procedimiento para muestra examen.. DE. FA. . RM. sin el agregado de la solución Standard.. TE CA. Tomamos 0,1g de cenizas; se añadió 5 mL de HCl y luego se evaporó a sequedad sobre un baño de vapor. Se agregó al residuo. BI BL IO. obtenido 2 mL. de HCl, se calentó 5 minutos bajo una luna de reloj y se pasó por filtración a una fiola de 100 mL y aforó con agua destilada.. Tomamos con pipeta 2 ml del aforo anterior y se le agregó 1 ml de solución de clorhidrato de hidroxilamina y se dejó en reposo durante 5min. Luego añadimos 5 ml de solución buffer de acetato, 1 ml de solución de fenantrolina, y aforamos a 25 ml con agua destilada.. 24 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(34) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Se homogenizó y efectuó la lectura a 540 nm. con la cual obtuvimos la curva. c) Dosaje de Fósforo:”Método de Fiske y Subbarow” 18, 20. Fundamento: Se basa en el desarrollo de una coloración azul por. M IC. A. formación de un compuesto fosfomolibdoso por reducción selectiva del. UI. fosfomolibdato bajo la acción del ácido aminonaftosulfònico.. Preparación de los Estándar. AC I. A. Y. . BI. O. Q. Procedimiento:. RM. En cuatro fiolas de 50 ml se midió 2, 4, 6 y 8 ml de solución patrón. DE. Obtención de la Curva:. TE CA. . FA. de fósforo y se aforó a 50 ml con ácido tricloroacético al 5%.. De cada uno de los Standard preparados anteriormente, tomamos 5. BI BL IO. ml y colocamos en cuatro fiolas de 25 ml. Luego a cada una de ellas se le agregó 1 ml de solución de molibdato de amonio, 4 ml de solución de ácido aminonaftolsulfónico, luego mezclamos y. aforamos con agua destilada; después volvimos a mezclar. Se dejó en reposo 10 min. y se hicieron las lecturas, con cuyos datos se trazó la curva.. 25 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(35) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. . Preparación del Blanco:. Se siguió el mismo procedimiento para la obtención de la curva, pero sin el agregado de la solución Standard.. . Procedimiento para muestra examen.. M IC. A. Se colocó en una fiola de 100 mL 0,1g de cenizas y aforamos con. UI. ácido tricloroacético al 5% P/V, mezclamos y filtramos. De este. O. Q. filtrado tomamos 5 mL y se colocamos en una fiola de 25 mL, se. Y. BI. añadimos en esta misma fiola 1 mL de solución de molibdato de. AC I. A. amonio al 2,5% P/V y 0,4 mL de ácido aminonaftolsulfónico al. RM. 0,25% P/V, se mezcló y aforó a 25 mL con agua destilada. Se volvió. FA. a mezclar, y se dejó en reposo 10 min. Luego se efectuó la lectura a. TE CA. 2.6.2. Vitaminas:. DE. 660 nm, con la cual obtuvimos la curva.. BI BL IO. Vitaminas Hidrosolubles: 21 a) Cuantificación de vitamina “C”: método de Tillmans. Fundamento: Este método se basa en la reducción del 2,6 diclorofenolindofenol por el acido ascórbico.. 26 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(36) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Procedimiento:. Pesamos 10g de muestra fresca y colocamos en un matraz aforado de 100 ml. Agregamos 25 ml de ácido metafosfórico al 20% y enrasó con agua. Mezclamos bien, luego tomamos 10 ml de la disolución y colocó en un erlenmeyer. y. se. procedió. a. titular. con. solución. de. 2´6. M IC. A. diclorofenolindofenol hasta un suave color rosa persistente durante 15. Q. UI. segundos.. BI. O. Se calculó el contenido de vitamina C de la muestra como miligramos por. RM. Vitaminas Liposolubles: 21. AC I. A. Y. 100g.. DE. FA. a) Vitamina “A”: Reacción de Carr Price. TE CA. Procedimiento:. En una cápsula de porcelana , colocamos 1g de la muestra de grasa. BI BL IO. obtenida del tubérculo, agregamos III gotas de cloroformo, se homogeneizó y llevó a sequedad, luego agregamos V gotas de solución clorofórmica de tricloruro de antimonio al 30% P/V, la aparición de una ligera coloración azul indica presencia de Vitamina A.. 27 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(37) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. b) Vitamina “D”: Reacción de Lieberman- Bouchard. Procedimiento:. En una cápsula de porcelana, colocamos 1g de. muestra de grasa. obtenida del tubérculo, agregamos 2 ml de cloroformo, V gotas de. M IC. A. anhídrido acético y II gotas de H2SO4 q.p., la aparición de una coloración. UI. azul indica la presencia de Vitamina D.. BI. O. Q. c) Vitamina “E”: Reacción de acido acético y sulfúrico. AC I. A. Y. Procedimiento:. RM. En una cápsula de porcelana, colocamos 1g de muestra de grasa obtenida. FA. del tubérculo, agregamos II gotas de ácido acético y II gotas de H2SO4. DE. q.p., la aparición de una coloración amarilla indica la presencia de. TE CA. Vitamina E.. BI BL IO. d) Vitamina “K”: Reacción de hidróxido de potasio y metanol. Procedimiento:. En una cápsula de porcelana, colocamos 1g de la muestra de grasa obtenida del tubérculo, agregamos 10 ml de metanol y 1 ml de KOH 20% en metanol, y calentamos. La aparición de una coloración marrón indica la presencia de Vitamina K.. 28 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(38) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 2.7. ANALISIS ESTADISTICO:. A los resultados obtenidos de las experiencias se aplicó las siguientes pruebas estadísticas: Q crítico, Promedio, Desviación estándar, Límites de confianza y Coeficiente de Variación.. M IC. A. Q crítico: se hizo uso de la tabla que contiene los valores críticos del cociente de. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. AC I. A. Y. BI. O. Q. UI. rechazo.. 29 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(39) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. RESULTADOS CUADRO 1: Caracteres organolépticos del tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina “oca” proveniente del Caserío de Huangamarca – Otuzco - La. OLOR. SABOR CONSISTENCIA TEXTURA. AC I. A. Y. COLOR. BI. O. Q. UI. M IC. A. Libertad.. SOLIDO. ASPERA. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. AMARILLO SUIGENERIS DULCE. 30 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(40) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. CUADRO 2: Composición porcentual físico-química del tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina “oca” proveniente del Caserío de Huangamarca –. A. Otuzco - La Libertad.. DESVIACIÓN. UI. PROMEDIO. Q. COMPONENTES. M IC. Contenido en g/100g de muestra. ESTÁNDAR  0,36. 83,83. Extracto Seco. 16,17. Cenizas. 1,05.  0,05 0,02. AC I. A. Y. Humedad. RM. BI. O. (%). 6,65. FA. pH.  0,36. 0,039063.  0,000036. Carbohidratos Totales. 12,47.  0,17. Proteínas. 1,14.  0,05. Grasas. 0,7.  0,03. Fibra. 1,00.  0,00. BI BL IO. TE CA. DE. Acidez. 31 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(41) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. CUADRO 3: Composición porcentual de calcio, hierro y fósforo presentes en el tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina “oca” proveniente del. M IC. A. Caserío de Huangamarca – Otuzco - La Libertad.. COMPONENTES. UI. Contenido en mg/100g de muestra Desviación Estándar. 22,08.  0,00. FA. RM. AC I. Calcio. A. Y. BI. O. Q. Promedio. 1,88.  0,15. 34,46.  0,24. TE CA. DE. Hierro. BI BL IO. Fósforo. 32 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(42) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. CUADRO 4: Determinación de Vitamina C presentes en el tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina “oca” proveniente del Caserío de Huangamarca –. M IC. A. Otuzco - La Libertad.. BI. O. Q. UI. Acido Ascórbico mg/100g. Desviación Estándar. RM. AC I. A. Y. Promedio.  2,93. BI BL IO. TE CA. DE. FA. 38,29. 33 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(43) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. CUADRO 5: Determinación cualitativa de las vitaminas liposolubles presentes en el tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina “oca” proveniente del. Reacción de Identificación. UI. VITAMINAS. M IC. A. Caserío de Huangamarca – Otuzco - La Libertad.. Reacción de Carr – Price. Vitamina D. Reacción de Lieberman – Bouchard. Vitamina E. Reacción de Ácido acético y sulfúrico. Vitamina K. Reacción de Hidróxido de potasio y metanol. + + -. TE CA. DE. FA. RM. AC I. A. Y. BI. O. Q. Vitamina A. Resultado. BI BL IO. Leyenda:. +:. Reacción positiva. -:. Reacción negativa. 34 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(44) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. DISCUSIÓN. En el cuadro 1, se observa que las características psicosensoriales presentan total normalidad, es decir que corresponde a un tubérculo fresco y maduro.. A. Los caracteres organolépticos se refieren a los análisis externos, los que se. M IC. efectuaron en el menor tiempo posible, ya que estos pueden variar de un día para. Q. UI. otro debido a factores ambientales como luz, calor, humedad, etc 23, 24.. BI. O. La oca se consume en múltiples formas. Fresca se puede consumir en la sopa,. A. Y. cortada, como puré, se consumen como si fueran humitas, etc. Cuando las ocas son. RM. AC I. soleadas se consume preferentemente con miel de panel 25.. FA. En el cuadro 2, se observa la composición porcentual de las determinaciones físicas. DE. y químicas del tubérculo Oxalis tuberosa “Oca”. Dentro de las cuales están el. TE CA. porcentaje de humedad, extracto seco, cenizas, pH, acidez, carbohidratos totales, proteínas, grasa y fibra. La humedad es el agua se encuentra en los alimentos en tres. BI BL IO. formas: como agua de combinación, como agua adsorbida y en forma libre, aumentando el volumen. El agua de combinación está unida en alguna forma química como agua de cristalización o como hidratos. El agua adsorbida está asociada físicamente como una monocapa sobre la superficie de los constituyentes de los alimentos. El agua libre es aquella que es fundamentalmente un constituyente separado, con facilidad se pierde por evaporación o por secado. Dado que la mayor parte de los alimentos son mezclas heterogéneas de varias sustancias, pueden contener cantidades variables de agua de los tres tipos. Hay muchos métodos para la 35 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(45) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. determinación del contenido de humedad de los alimentos, variando en su complicación de acuerdo a los tres tipos de agua y a menudo hay una correlación pobre entre los resultados obtenidos. Sin embargo, la generalidad de los métodos da resultados reproducibles, si las instrucciones empíricas se siguen con fidelidad y pueden ser satisfactorios para uso práctico 4, 26.. M IC. A. El método oficial para determinar el porcentaje de humedad es mediante el método. UI. gravimétrico de la estufa .Un valor por encima de los valores establecidos recurriría. O. Q. a la presencia principalmente de mohos. El porcentaje de humedad encontrado en el. Y. BI. tubérculo oca fue de 83,83%. Respecto a la determinación del extracto seco se. nutritivas que se encuentran. AC I. A. obtuvo 16,17%, éste valor nos da una estimación de la cantidad de sustancias en el tubérculo y está compuesto por lípidos,. FA. RM. carbohidratos, proteínas, fibra y minerales 26.. DE. Las cenizas de un alimento son un término analítico equivalente al residuo. TE CA. inorgánico que queda después de calcinar la materia orgánica. Las cenizas normalmente, no son las mismas sustancias inorgánicas presentes en el alimento. BI BL IO. original, debido a las perdidas por volatilización o a las interacciones químicas entre los constituyentes. El porcentaje de cenizas encontradas fue del 1,05%, esto nos va a permitir cuantificar los minerales que contiene el tubérculo y nos da una estimación de estos 26, 27.. Con respecto al pH es de 6,65; esto nos indica un grado de acidez bastante alto. El pH es un importante proceso de maduración debido a que la acidez varía con el grado de madurez y variedad del tubérculo. Este valor indica la concentración de 36 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(46) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. iones hidrogeno y su relación con el deterioro de los alimentos durante el proceso se almacenamiento, donde ocurre cambio por acción enzimático y desarrollo de microorganismos 26, 28.. El porcentaje de acidez encontrado fue de 0,039063 g de acido láctico/ 100g de muestra, siendo de suma importancia en el proceso de maduración, esencial en el. M IC. A. desarrollo del aroma incrementa la consistencia del fruto la cual participa en la. UI. formación del color. La acidez se debe ya sea al ácido cítrico o a ácidos grasos. O. Q. provenientes de la desintegración proteica y en menor parte del desdoblamiento de. Y. BI. las grasas 28.. AC I. A. Cuando un azúcar reductor se calienta en condiciones básicas se degrada y algunos. RM. de los productos de degradación reducen los iones cúpricos para formar oxido. FA. cuproso. Una amplia variedad de métodos se han utilizado para determinar azucares. DE. reductores, todos estos han sido variaciones del método de Fehling. Estas. TE CA. variaciones han sido para cada tipo de alimento, en cualquier caso el principal logro de modificaciones ha sido mejorar la precisión de reducción y eliminar cualquier. BI BL IO. factor que interfiera con la producción de oxido de cobre, de los factores estudiados, la alcalinidad del reactivo, la proporción, el tiempo de calentamiento, la concentración del azúcar, parecen ser los más importantes. La oca (Oxalis tuberosa) presentó 13,42% de carbohidratos totales, 12,47% de carbohidratos solubles totales, 10, 0% de carbohidratos solubles reductores libres, 0,95% de carbohidratos no solubles y 1,97% de carbohidratos solubles no reductores, lo cual indica que es una buena fuente de energía 3, 10, 26.. 37 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(47) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. Los tubérculos como la oca son de bajo contenido proteico. Presentan una disminución en aminoácidos esenciales lo que limita la síntesis de proteínas tisulares en los preescolares y escolares, pero en el adulto las proteínas de la oca cubren los requerimientos. En nuestro estudio se determinaron las proteínas totales mediante el método Kjeldahl, las cuales fueron del 1,14% 25.. M IC. A. Los constituyentes grasos de los alimentos consisten en diversas sustancias lípidas.. UI. El contenido de “grasa” (algunas veces llamado extracto etéreo o grasa cruda) se. O. Q. puede considerar como compuesto de lípidos “libres”, o sea aquellos que pueden ser. Y. BI. extraídos por disolventes menos polares como éter de petróleo y éter etílico,. AC I. A. mientras que los lípidos combinados necesitan disolventes más polares tales como alcoholes para su extracción. El contenido de grasa obtenida fue de 0,7%, este valor. FA. RM. es bajo y se debe a que el tubérculo en estudio posee una alta cantidad de agua 26, 27.. DE. El contenido de fibra obtenido en la oca fue de 1,00%. La fibra produce efectos. TE CA. beneficiosos en el organismo porque está constituida por polisacáridos cuyo componente principal es la celulosa, indigerible por el organismo humano pero. BI BL IO. importante porque contribuye con su masa a la excitación normal del peristaltismo intestinal y porque el arrastre de todas las sustancias de desecho provenientes de la degradación de los alimentos y que no son aprovechados por el organismo 23, 27.. Determinar los elementos minerales de los productos alimenticios es muy difícil debido a como se presentan en estos. Para determinarlos se utilizaron las cenizas, debido a que la incineración destruye la materia orgánica cambiando la naturaleza del alimento; las sales metálicas de los ácidos orgánicos se convierten en óxidos o 38 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(48) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. carbonatos o van a reaccionar durante la incineración para formar fosfatos, sulfatos o haluros 9,26.. El término elementos minerales es poco preciso porque en los minerales se encuentran elementos orgánicos como carbono, hidrógeno, nitrógeno, oxígeno y azufre. Sirve para agrupar a aquellos elementos, en su mayoría metálicos, que se. M IC. A. presentan en cantidades minoritarias en los alimentos, y que suelen determinarse. Q. UI. como elementos más que como compuestos específicos o grupos de compuestos 9,26.. BI. O. En el cuadro 3 observamos la composición porcentual de micronutrientes: calcio,. Y. Hierro y Fósforo presentes en el tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina. AC I. A. “oca”. La concentración de minerales obtenidas en 100 gramos de muestra fresca de. FA. RM. oca fue de: 22,08mg de calcio; 1,88mg de hierro y 34,46mg de fósforo.. DE. El calcio, participa en la coagulación, en la correcta permeabilidad de las. TE CA. membranas y a su vez adquiere fundamental importancia como regulador nervioso y neuromuscular, modulando la contracción muscular (incluida la frecuencia. BI BL IO. cardíaca), la absorción y secreción intestinal y la liberación de hormonas. El fósforo y el calcio se encuentran en equilibrio en el organismo, ya que la abundancia o la carencia de uno afectan la capacidad de absorber el otro 9,26.. El hierro interviene en la formación de hemoglobina y glóbulos rojos, como así también en la actividad enzimática del organismo. Dado que participa en la formación de hemoglobina de más esta decir que transporta el oxígeno en sangre y que es importante para el correcto funcionamiento de la cadena respiratoria 10.. 39 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(49) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. En el cuadro 4 se observa la determinación de Vitamina C presente en la parte comestible del tubérculo maduro de Oxalis tuberosa Molina “Oca”, que fue de 38.29 mg/ 100g de muestra. La importancia de esta vitamina es bien entendida, particularmente como antioxidante y en la síntesis del colágeno 29.. En el cuadro 5 se muestra que el tubérculo Oxalis tuberosa están presentes las. A. Las vitaminas son sustancias orgánicas, no relacionadas. M IC. vitaminas A y D.. UI. estructuralmente entre sí, que precisan ser ingeridas en pequeñas cantidades con la. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. AC I. A. Y. BI. O. Q. dieta. El cuerpo necesita vitamina D para absorber el calcio 30.. 40 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(50) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. CONCLUSIONES.. 1. El tubérculo Oxalis tuberosa “oca” cuenta con un buen porcentaje de. A. carbohidratos (13.42 %), pero bajo porcentaje de proteínas (1.14%) y grasas. M IC. (0.7%).. UI. 2. En cuanto a los minerales, el tubérculo Oxalis tuberosa “oca” aporta mayor. O. Q. concentración de calcio (22.08 mg), fósforo (34.46 mg) y en menor cantidad el. Y. BI. hierro (1.88 mg).. AC I. A. 3. Las Vitaminas identificadas del tubérculo Oxalis tuberosa “oca” son: A, D y la. BI BL IO. TE CA. DE. FA. RM. cantidad encontrada de Vitamina C es 38.29mg/100g de muestra fresca.. 41 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(51) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS. 1. Mostacero, L. Mejía, C. Gamarra, T. Catalogo de frutales nativos del Perú. Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología. Universidad Nacional de Trujillo. Trujillo - Perú. 2002. PP.15-17. M IC. A. 2. Serra M, Aranceta B: Nutrición y Salud Pública. 2º ed. México. D.F: Masson;. UI. 2006. PP. 1-9. Q. 3. Instituto de Nutrición Y Dietético. Macronutrientes y Micronutrientes 1ªed.. BI. O. España: Fundación Iberoamericana; 1999. PP. 1-46. A. Y. 4. Vasquez M, Cós B, López – Mondedeu, Alcaraz Cebrián. Alimentación y. AC I. nutrición. 2º ed. España: Días De Santos; 2005. PP.1-45,101.. RM. 5. Hernández R, Sastre G. Tratado de nutrición. Ediciones España: Díaz de Santos,. FA. 1999 PP.126. TE CA. 2004. PP. 1-15. DE. 6. Matarese, L. Gottschlich M. Nutrición Clínica y práctica. 2º ed. México: Masson;. BI BL IO. 7. Mataix Verdau, J. et al. Nutrición y Dietética. Aspectos sanitarios. (Tomo I y II). Consejo General de Farmacéuticos. Madrid. 1993. 8. Tomassi, G. Phosphorus – an essential nutrient for human diet. 2002. IMPHOS Newsletter 16: 1- 3. 9. Torres A, Cannata JB. Metabolismo calcio-fósforo y sus alteraciones. En Nefrología clínica. Madrid: Editorial Médica Panamericana; 2003. PP. 91-92 10. Bellido Guerrero, De Luís Román. Manual de Nutrición y Metabolismo. España: Díaz De Santos; 2002. PP. 277-291. 42 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.

(52) Biblioteca Digital - Dirección de Sistemas de Informática y Comunicación. 11. Organización de las Naciones Unidas para la agricultura y la alimentación (FAO/WHO/UNU). Human energy requirements. Roma, 17-24 October 2001. 12. Ferreyra, R. Flora del Perú Dicotiledóneas. Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima, Perú. 1986. 13. Zeder A, Bradley B, Emshwiller, Smith D. Origins of domestication and. A. polyploidy in the Andean Tuber Crop Oxalis tuberosa Molina (Oxalidaceae).. M IC. Tesis PhD, Cornell University, Ithaca. 2006.. Q. UI. 14. M. Moraes R., B. Ollgaard, L. P. Kvist, F. Borchsenius & H. Balslev. Botánica. BI. O. Económica de los Andes Centrales, Universidad Mayor de San Andrés, La Paz,. Y. 2006. AC I. A. 15. Leon, J. Botánica de los Cultivos Tropicales. Instituto Interamericano de. RM. Cooperación para la Agricultura. San José – Costa Rica; 2000. PP. 445.. FA. 16. Cardenas, M. Manual de Plantas Económicas de Bolivia. Editorial los Amigos del. DE. Libro. Werner Guttentag. La Paz – Cochobamba. Bolivia; 2005. PP. 333.. TE CA. 17. Proyecto Andino de Tecnologías Campesinas.Comida y biodiversidad en el mundo andino. Perú: Illustrated; 2000.. BI BL IO. 18. Silva, J. Bromatología Analítica. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Trujillo (Perú); 1998. PP.52-60 19. Silva J, Gonzales G, Gavidia J, Jara R, Mantilla M: Guía de Practicas de Nutrición. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Perú; 2007.. PP. 1-10. 20. Silva J, Gonzáles G, Gavidia J, Jara R, Mantilla M: Guia de Práctica de Bromatología. Universidad Nacional de Trujillo. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Perú; 2007. PP. 46-53. 43 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No Comercial-Compartir bajola misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/2.5/pe/.