Efecto del fosetil aluminio y oxamilo sobre la germinación, crecimiento y la capacidad antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum en condiciones de laboratorio

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(1)Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE. ÁT IC. A. Y. CO. M. UN I. CA. CI. Ó. N. MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA. AS. DE. IN. FO. RM. Efecto del fosetil aluminio y oxamilo sobre la germinación, crecimiento y la capacidad antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum en condiciones de laboratorio. TESIS. TE. M. PARA OPTAR EL TÍTULO DE. N. DE. SI S. BIÓLOGO – MICROBIÓLOGO. CC. IO. AUTORA: Br. MARIA DEL CARMEN MANNUCCI MACINES. DI. RE. ASESOR: MsC. JUAN HÉCTOR WILSON KRUGG. TRUJILLO-PERÚ 2015. i Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(2) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. CO. M. Dr. ORLANDO GONZÁLES NIEVES. UN I. CA. CI. Ó. N. AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO QUE OTORGAN EL TITULO PROFESIONAL DE BIOLOGO – MICROBIOLOGO. ÁT IC. A. Y. Rector de la Universidad Nacional de Trujillo. RM. Dr. RUBÉN VERA VÉLIZ. IN. FO. Vicerrector Académico de la Universidad Nacional de Trujillo. DE. Dr. STEBAN ALEJANDRO ILICH ZERPA. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. M. AS. Secretario General de la Universidad Nacional de Trujillo. ii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(3) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. CA. CI. Ó. N. AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS QUE OTORGAN EL TITULO PROFESIONAL DE BIOLOGO – MICROBIOLOGO. UN I. Dr. JOSE MOSTACERO LEON. Y. CO. M. Decano de la Facultad de Ciencias Biológicas. ÁT IC. A. Dr. WILLIAN ZELADA ESTRAVER. FO. RM. Secretario de la Facultad de Ciencias Biológicas. IN. Dra. BERTHA SORIANO BERNILLA. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. M. AS. DE. Directora de la EAP de Microbiología y Parasitología. iii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(4) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. DEL ASESOR. CI. Ó. N. El que suscribe, Asesor de la presente Tesis titulada:. CA. Efecto del fosetil aluminio y oxamilo sobre la germinación, crecimiento y la capacidad. UN I. antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma. Y. ÁT IC. A. CERTIFICA. CO. M. harzianum en condiciones de laboratorio.. FO. las debidas orientaciones brindadas al tesista.. RM. Que ésta Tesis ha sido ejecutada de conformidad con su correspondiente proyecto y con. IN. Respecto al informe, éste ha sido revisado y acoge las observaciones y sugerencias. DE. pertinentes, por lo que autorizo a la Br. María del Carmen Mannucci Macines continuar. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. M. AS. con los trámites correspondientes.. ____________________________________ Ms.C. Juan Héctor Wilson Krugg ASESOR. iv Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(5) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. PRESENTACIÓN. CI. Ó. N. Señores miembros del jurado dictaminador:. UN I. CA. En cumplimiento con las disposiciones establecidas en el Reglamento de Grados y Títulos de la Universidad Nacional de Trujillo, ponemos a vuestra consideración y. CO. M. criterio el trabajo de investigación titulado: “Efecto del fosetil aluminio y oxamilo. Y. sobre la germinación, crecimiento y la capacidad antagonista de Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum en condiciones de. ÁT IC. A. asperellum, Trichoderma. RM. laboratorio”, con el propósito de obtener el Título Profesional de Biólogo –. FO. Microbiólogo.. IN. Esperando que vuestro criterio sea de comprensión por errores u omisiones. SI S. TE. M. AS. DE. cometidos en la elaboración del presente trabajo, me someto a vuestro dictamen.. DI. RE. CC. IO. N. DE. Trujillo, Diciembre 2015. ____________________________________ María del Carmen Mannucci Macines Bachiller en Ciencias Biológicas. v Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(6) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. UN I. ________________________________________ DRA. MANUELA LUJÁN VELÁSQUEZ. FO. RM. ÁT IC. A. Y. CO. M. PRESIDENTE. CA. CI. Ó. N. MIEMBROS DEL JURADO. IN. _______________________________________. DE. Ms.C. JUAN HÉCTOR WILSON KRUGG. ____________________________________ Ms.C. EDUARDO MUÑOZ GANOZA VOCAL. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. M. AS. SECRETARIO. vi Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(7) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. APROBACIÓN Los profesores que suscriben, miembros del jurado dictaminador, declaran que. N. la presente tesis ha cumplido con los requisitos formales y fundamentales, siendo. CO. M. UN I. CA. CI. Ó. aprobada por UNANIMIDAD.. Y. ________________________________________. ÁT IC. A. DRA. MANUELA LUJÁN VELÁSQUEZ. AS. DE. IN. FO. RM. PRESIDENTE. M. _______________________________________. SECRETARIO. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. Ms.C. JUAN HÉCTOR WILSON KRUGG. ____________________________________ Ms.C. EDUARDO MUÑOZ GANOZA VOCAL. vii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(8) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. DEDICATORIA. UN I. CA. CI. Ó. N. A Dios, por guiarme e iluminar mi camino, bendiciéndome y brindándome la fortaleza para lograr este primer objetivo en mi vida, además de siempre brindarme su infinito amor.. IN. FO. RM. ÁT IC. A. Y. CO. M. A mis queridos padres Pilar y Gustavo, que siempre supieron darme sus sabios consejos y que con su amor, tiempo y dedicación me hicieron una persona de bien, que a pesar de su pronta partida aún siguen a mi lado, siendo mis ángeles y que desde el cielo siempre están cuidándome y guiando mis pasos. Todo mi esfuerzo es para Ustedes y este primer logro es para su orgullo también el suyo. Los Amo Mucho.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. M. AS. DE. A mi querida hermana Blanca; que a pesar de la distancia siempre está conmigo brindándome su amor y su apoyo incondicional, dándome siempre una palabra de aliento en los momentos que más lo necesito. Mi amor y mi respeto siempre para ti. Gracias por creer siempre en mí.. viii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(9) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. AGRADECIMIENTO. UN I. CA. CI. Ó. N. A mis padres, hermana y a mi sobrino Gustavo, por ser mi fuerza y mi gran razón para lograr mis objetivos, por confiar siempre en mí, por su dedicación y por su amor.. RM. ÁT IC. A. Y. CO. M. A mi asesor Juan Wilson Krugg, por los conocimientos brindados en la realización de este proyecto, siendo fundamental su apoyo, tiempo, dedicación y paciencia; por la confianza brindada durante este tiempo y por ser un ejemplo como profesional.. TE. M. AS. DE. IN. FO. A mis incondicionales amigas Claudia y Diana, no solo por la gran amistad que nos une, sino por el apoyo en todos los momentos vividos, porque siempre tiene una palabra de aliento cuando más lo necesito y porque siempre están conmigo. Las quiero mucho.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. A mis grandes amigos Vania, Ysabel y Julio, por su valiosa amistad y por su apoyo incondicional, porque siempre están en los buenos y malos momentos, por ser parte de mi familia.. ix Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(10) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. RESUMEN. Ó. N. Se evaluó el efecto del fosetil aluminio y oxamilo sobre la germinación,. CA. CI. crecimiento, y la capacidad antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma. UN I. atroviride y Trichoderma harzianum en condiciones de laboratorio. Se trabajó con. M. dos concentraciones de fosetil aluminio (6000 ppm y 10000 ppm), de igual manera. CO. con oxamilo (960 ppm y 1200 ppm) con sus respectivos controles (0ppm). El efecto. A. Y. del fosetil aluminio y oxamilo sobre la germinación se determinó adicionando 1mL. ÁT IC. de cada dilución (doble concentrado) de cada uno de ellos a frasquitos de penicilina. RM. que contenían 1 mL de suspensión de esporas estandarizadas de Trichoderma. FO. asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum. incubándose a 25°C. IN. por 24 horas; se realizó el recuento de esporas germinadas de cada concentración.. DE. Para determinar el efecto de los químicos sobre el crecimiento se incorporó las. AS. concentraciones de cada uno de ellos en Agar Papa Sacarosa, y se sirvió en placas de. TE. M. Petri, con sus respectivos controles, luego se sembró por puntura Trichoderma. SI S. asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum. en la parte central e. DE. incubó a temperatura ambiente. A partir del segundo día de siembra se realizó la. IO. N. medición en centímetros el radio de crecimiento micelial, hasta que el hongo cubra. CC. toda la superficie de la placa control. Para evaluar la capacidad antagonista, de cada. RE. placa con el químico que evidenció crecimiento se enfrentó con Rhizoctonia sp. en. DI. cultivo dual. Se encontró que fosetil aluminio inhibe la germinación y el crecimiento de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum al obtener como resultados 0% tanto en la germinación como en el crecimiento, no presentando capacidad antagonista. Sin embargo los resultados con oxamilo. x Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(11) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. demuestran que las concentraciones de éste no afectan significativamente en la germinación ni en el crecimiento, además no inhibe la capacidad antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum, al. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI S. TE. M. AS. DE. IN. FO. RM. ÁT IC. A. Y. CO. M. UN I. CA. CI. Ó. N. crecer completamente sobre la colonia del patógeno (Rhizoctonia sp.).. xi Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(12) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. INDICE Pág.. Ó. N. AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO ...................... ii. CA. CI. AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO ..................... iii. M. UN I. DEL ASESOR ...................................................................................................................... iv. CO. PRESENTACION ..................................................................................................................v. ÁT IC. A. Y. MIEMBROS DEL JURADO .............................................................................................. vi. RM. APROBACION ................................................................................................................... vii. FO. DEDICATORIA................................................................................................................. viii. DE. IN. AGRADECIMIENTO ..........................................................................................................ix. AS. RESUMEN .............................................................................................................................x. SI S. TE. M. INDICE ................................................................................................................................ xii. DE. INTRODUCCIÓN .................................................................................................................1. IO. N. MATERIAL Y MÉTODO.....................................................................................................9. CC. 1. MATERIAL DE ESTUDIO......................................................................................9. RE. 1.1.Material biológico ..................................................................................................9. DI. 2. MÉTODOS ...............................................................................................................9 2.1 Reactivación de los cultivos de Trichoderma asperellum, Trichoderma. atroviride y Trichoderma harzianum ..................................................................................... 9. xii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(13) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 2.2. Evaluación del efecto de fosetil aluminio y oxamilo sobre Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum..................................10. Ó. N. 2.2.1. Evaluación del efecto de fosetil de aluminio y oxamilo sobre la germinación. CI. de esporas de Trichoderma asperellu, Trichoderma atroviride y Trichoderma. UN I. CA. harzianum ..............................................................................................................10. M. 2.2.1.1. Preparación de las soluciones doble concentradas de fosetil de aluminio y. CO. oxamilo ...........................................................................................................................10. Y. 2.2.1.2. Preparación del inóculo de esporas ..................................................................10. ÁT IC. A. 2.2.1.3. Inoculación e incubación ..................................................................................11. RM. 2.2.1.4. Lectura de los resultados..................................................................................12. FO. 2.2.2 Evaluación del efecto de fosetil aluminio y oxamilo sobre el crecimiento de. IN. Trichoderma asperellu, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum ..............12. DE. 2.2.2.1 Preparación del medio de cultivo.................................................................... 12. AS. 2.2.2.2. Siembra e incubación ........................................................................................ 13. TE. M. 2.2.2.3. Lectura ................................................................................................................ 13. SI S. 2.2.3. Evaluación del efecto de fosetil aluminio y oxamilo sobre la capacidad. DE. antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma. N. harzianum .......................................................................................................................14. CC. IO. 2.2.4. Análisis de datos ..................................................................................................15. RE. RESULTADOS ....................................................................................................................16. DI. DISCUSIÓN .........................................................................................................................35 CONCLUSIONES ...............................................................................................................38 RECOMENDACIONES ......................................................................................................39 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS................................................................................40. xiii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(14) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. ANEXOS ..............................................................................................................................44 Anexo 1. Cultivos puros de Trichoderma asaperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum.. Ó. N. Anexo 2. Cultivo puro de Rhizoctonia sp.. CA. CI. Anexo 3. Caldo papa sacarosa a diferentes concentraciones de fosetil aluminio usadas. UN I. para la germinación de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y. CO. M. Trichoderma harzianum.. Y. Anexo 4. Caldo papa sacarosa a diferentes concentraciones de oxamilo usadas para la. ÁT IC. A. germinación de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum.. RM. Anexo 5. Análisis de varianza (ANOVA) de la tasa de germinación de T. asperellum. IN. FO. para el nematicida oxamilo 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm.. DE. Anexo 6. Análisis de varianza (ANOVA) de la tasa de germinación de T.atroviride. M. AS. para el nematicida oxamilo 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm. TE. Anexo 7. Análisis de varianza (ANOVA) de la tasa de germinación de T.harzianum. DE. SI S. para el nematicida oxamilo 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm. N. Anexo 8. Análisis de varianza (ANOVA) de la tasa de crecimiento de T.asperellum. CC. IO. para el nematicida oxamilo 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm. RE. Anexo 9. Análisis de varianza (ANOVA) de la tasa de crecimiento de T.atroviride para. DI. el nematicida oxamilo 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm Anexo 10. Análisis de varianza (ANOVA) de la tasa de crecimiento de T.harzianum para el nematicida oxamilo 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm. xiv Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(15) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. AC I. Ó. N. INTRODUCCIÓN. IC. Durante muchos años el control de enfermedades se basó casi exclusivamente en el uso. M UN. de control químico. Éste se basa en la utilización de sustancias de síntesis químicas sobre. CO. el producto agrícola para la prevención y/o erradicación de enfermedades. Dichas. Y. sustancias denominadas comúnmente plaguicidas, pesticidas o agrotóxicos aplicadas en. IC. A. la forma y el momento han constituido una efectiva medida contra el ataque de. ÁT. patógenos.1 El bajo costo con relación a los beneficios obtenidos, la disponibilidad de. RM. productos, la facilidad de la aplicación y la efectividad alcanzada, fueron algunas de las. FO. razones que determinaron el auge de este tipo de control en las décadas del 60 y 70. Sin. DE. IN. embargo, a lo largo del tiempo se demostró que el uso indiscriminado de plaguicidas trae. EM AS. numerosos problemas. Entre ellos cabe destacar los peligros a la salud de los aplicadores y consumidores, la contaminación del medio ambiente y la falta de efectividad por la. ST. aparición de patógenos resistentes1; 2.. DE. SI. Debido a los problemas anteriormente descritos se plantea actualmente la sustitución. N. total o parcial del control químico por métodos alternativos. Según Lewis y Papavizas “se. CC. IO. trata de un control flexible, con la aplicación multidimensional, que integra distinto tipos. RE. de control tales como, control biológico, físico y cultural junto con las estrategia. DI. necesarias de control químico para la restricción de enfermedades, manteniendo la viabilidad económica sin dañar el agroecosistema. 2, 3. 1 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(16) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. Las enfermedades producidas por microorganismos fitopatógenos, tales como bacterias, nematodos u hongos, constituyen la mayor causa de pérdida en la producción. Ó. N. agrícola, tanto en cosecha como en postcosecha. Dentro de los distintos fitopatógenos, los. AC I. hongos constituyen uno de los principales grupos tanto por la diversidad de especies. M UN. IC. existentes como por las pérdidas que originan. 4 La manera tradicional de combatir tales pérdidas se basa en el empleo de compuestos químicos (control químico), los cuales se. CO. caracterizan por una elevada eficacia y por una gran rapidez en el control, pero también. Y. por ser tóxicos inespecíficos que eliminan, junto con los organismos fitopatógenos, otros. ÁT. IC. A. organismos beneficiosos.5. RM. Los inconvenientes que presenta el control químico se han potenciado en los últimos. FO. años debido al cambio en los sistemas de cultivo (monocultivos, explotaciones intensivas,. IN. etc.). Esto, unido a una mayor concienciación social ante el enorme deterioro. DE. medioambiental que supone la utilización masiva de compuestos químicos, ha provocado. EM AS. un gran interés en la búsqueda de sistemas de control alternativos. 6; 7 En este sentido, una. ST. estrategia que está dando un buen resultado es la utilización de microorganismos que son. SI. antagonistas de los agentes infecciosos y que desplazan a éstos de una manera natural. DE. (control biológico), por lo que se propone un Manejo Integrado de Plagas (MIP), en los. N. que de forma armónica se incrementa el uso de bioplaguicidas y se hace un uso racional. CC. IO. de los plaguicidas sintéticos.5-8. RE. Las estrategias de manejo integrado de plagas (MIP) dentro de las estrategia de la. DI. agricultura sustentable en nuestros días, incluyen a los enemigos naturales de artrópodos plaga, hongos y bacterias fitopatógenas ( i.e., parasitoides, depredadores y patógenos como bacterias, hongos, nematodos, etc.) para minimizar los efectos negativos del uso de 2. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(17) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. químicos y su impacto al ambiente.. 9. Los métodos biológicos son una de las posibles. estrategias a utilizar en el manejo de las enfermedades, principalmente de aquéllas. Ó. N. ocasionadas por los hongos del suelo. De esta manera, es posible la introducción o el. AC I. incremento de algunos microorganismos antagonistas, los cuales tienen la capacidad de. IC. inactivar los propágulos del patógeno, reducir su número o afectar el desarrollo de la. M UN. enfermedad.10. CO. En el mundo se conoce un grupo importante de hongos y bacterias que presentan. A. Y. efecto antagónico sobre otros microorganismos. Este efecto es aprovechado por el. RM. que se desarrollan en la parte foliar de las plantas. 11. ÁT. IC. hombre para la regulación, tanto de patógenos cuyo hábitat es el suelo, como aquellos. IN. FO. Los antagonistas contribuyen a la atenuación de los daños que causan las. DE. enfermedades en los agroecosistemas donde existan condiciones para su desarrollo y. EM AS. conservación. Para lograr este objetivo los microorganismos beneficiosos presentan diferentes modos de acción que les permita ejercer su efecto biorregulador. Estos. ST. atributos, de conjunto con la capacidad de multiplicarse abundantemente, se encuentran. DE. SI. entre los de mayor importancia para su selección como agentes de control biológico. 12. N. Desde los primeros estudios en esta temática hasta el presente, entre las especies más. CC. IO. ampliamente estudiadas y aplicadas como control biológico se encuentran las del género. RE. Trichoderma, debido a su eficaz control, capacidad reproductiva, plasticidad ecológica,. DI. efecto estimulante sobre los cultivos y recientemente se detectó su acción como inductor de resistencia sistémica en la planta a diferentes patógenos. 13. 3 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(18) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. En particular el uso de especies del género Trichoderma ha merecido la atención máxima como agente de biocontrol. Trichoderma es un hongo natural del suelo o de. Ó. N. materiales vegetales en estado de descomposición, que se presenta en numerosos suelos de. AC I. uso agrícola y tiene la capacidad de adaptarse a varios ambientes, la habilidad de este para. M UN. IC. atacar o inhibir otro tipo de hongos como los fitopatógenos, lo hace un buen agente para el control biológico de los mismos Varios mecanismos de acción antagónica del hongo. CO. Trichoderma se han demostrado durante años, lo que explica el control microbiano de. Y. fitopatógenos con su uso en antibiosis, lisis de células, micoparasitismo, competencia por. ÁT. IC. A. espacio y nutrientes y persistencia en el medio ambiente. 9;14. RM. Los mecanismos por los que las cepas del género Trichoderma desplazan al. FO. fitopatógeno son fundamentalmente de tres tipos: competición directa por el espacio o. 15. . Estos mecanismos se ven favorecidos por la. DE. directo sobre el hongo fitopatógeno.4;. IN. nutrientes, producción de metabolitos antibióticos, ya sea volátil o no volátil y parasitismo. EM AS. habilidad de los aislamientos de Trichoderma para colonizar la rizósfera de las plantas.9. ST. Durante el micoparasitismo, el antagonista localiza al patógeno y se enrolla alrededor. SI. de las hifas de éste, provocando su muerte. La importancia relativa depende de cada pareja. DE. de antagonista-patógeno y de las condiciones ambientales. 16El género Trichoderma sp. es. IO. N. capaz de efectuar un control biológico frente a hongos que invaden tanto la raíz como la. CC. parte aérea y en postcosecha, tales como a Rhizoctonia solani, Sclerotium rolfsii, Pythium. RE. sp, Colletotrichum sp, Fusarium oxysporum, y Phythophthora4, , entre otros, responsables. DI. de las enfermedades más importantes que atañen a las cosechas de mayor importancia económica de nuestro país, tales como café, tabaco, caña de azúcar, tomate y plantas ornamentales.17 4. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(19) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. La selectividad de aislamientos particulares de Trichoderma sobre los fitopatógenos se debe a factores de reconocimiento que determinan en forma inicial la acción de. Ó. N. antagonismo de un hongo sobre otro y que, posteriormente, desencadenan respuestas. AC I. típicas de micoparasitismo, como producción de enzimas líticas. En estudios respecto al. M UN. IC. mecanismo de acción de Trichoderma sobre Rhizoctonia spp. y Sclerotium spp. se ha encontrado que la interacción inicial entre antagonista y fitopatógeno obedece a la acción. CO. de lectinas durante el proceso de reconocimiento y posteriormente se inicia la liberación al. Y. medio de diversas enzimas con actividad quitinolítica, glucanolítica, celulolítica y. IC. A. proteolítica que tienen como finalidad degradar las estructuras del hongo fitopatógeno y. RM. ÁT. después nutrirse de los productos resultantes de la actividad enzimática. 18. FO. Existen especies de Trichoderma, como T. viride, T. harzianum, T. aureoviride, T.. IN. atroviride, T. hamatum, T. koningii; de las cuales la primera es la más estudiada entre. DE. numerosos agentes de control biológico, por ser fácilmente adaptables a las condiciones. EM AS. climáticas y ser factibles de aislar, propagar y evaluar in vitro. 19; 20 nemáticidas, fungicidas,. ST. Entre los controladores químicos se encuentran los. SI. insecticidas, bactericidas y herbicidas teniéndose entre ellos al VIDATE 24 LS cuyo. DE. principio activo es el Oxamil: S-Metil N’,N’-dimetil-N(metilcarbamoiloxi)-1-tio-. IO. N. oxamimidato4el cual es un “nematicida-insecticida” del grupo de los “carbamatos” que se. CC. aplica al suelo o al follaje para el control de nematodos, insectos chupadores y algunos. RE. ácaros que afectan gran variedad de cultivos. Tiene acción sistémica completa con. DI. movimiento basipetálico, acropetálico dentro de la planta. El Oxamyl se mueve en mayor proporción hacia los puntos de crecimiento del sistema radicular y meristemas. La protección en la planta del Oxamyl en movimiento se da de tres maneras: foliar trans5. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(20) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. laminar, sistémico en el suelo, hidrofílico y lipofílico. Promueve la producción de citoquininas las que a su vez promueven la división celular y el crecimiento radicular,. Ó. N. efecto verde se incrementa la fotosíntesis. Los efectos observados en su modo de acción. AC I. esta hiperactividad, incoordinación, convulsiones, parálisis, muerte. El producto es. M UN. IC. absorbido por las raíces y el follaje se transloca en forma ambimòvil (floema-xilema). Se degrada rápidamente en gas carbónico, agua y amoniaco y no afecta a predatores y abejas. CO. una vez que el rocío de la aspersión se ha secado sobre el follaje. Su vida media en el suelo. Y. es de 2 a 3 semanas, persistiendo en las raíces para proporcionar efecto “nematostático”. ÁT. IC. A. por más de 60 dìas.21; 22. RM. Uno de los compuestos químicos sintéticos utilizados para el control de plagas causado. FO. por hongos fitopatógenos, es el fosetil aluminio cuyo nombre comercial es “Aliette”, es un. IN. fungicida con doble sistemia, ascendente y descendente, y de rápida penetración, que. 23. de enfermedades producidas por hongos Oomicetes, en particular. EM AS. hasta tubérculos). DE. protege con aplicaciones foliares completamente las plantas (hojas, tallos, raíces, frutos y. ST. Mildiú, Phytophthora y Pythium. Es transportado por xilema y floema a toda la planta,. SI. incluyendo raíces y rebrotes que se forman después de las aplicaciones 23, 24. Presenta dos. DE. tipos de efectos, un efecto directo, que es aplicado preventivamente, evitando infecciones. IO. N. (inhibe la germinación de esporas y penetración del hongo), y un efecto indirecto,. CC. reforzando las defensas naturales de la planta ocasionando un incremento en los niveles de. RE. fitoalexinas (sustancias con alto efecto fungitóxicos) 23 .Este fungicida se aplica en campo a. DI. la concentración de 3 kg/hectárea en los cultivos de cebolla. 24 Al utilizar métodos en forma conjunta (químicos y biológicos) se busca que ambos controladores, siendo aplicados a un mismo sustrato, muestren compatibilidad, es decir 6. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(21) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. que ninguno de ellos minimice o inhiba al otro. Cuando uno de ellos afecta al otro se dice que son incompatibles y por lo tanto no deben aplicarse juntos. 19. AC I. Ó. N. Se realizaron estudios de compatibilidad in vitro de Trichoderrna sp. con diferentes. IC. plaguicidas químicos y los fungicidas zineb, mancozeb y thiram en tratamientos al suelo en. M UN. presencia del hongo, encontrándose que los plaguicidas oxicloruro de cobre, metalaxyl, dimethomorph, trifluralin, napropamida y dimetoato son compatibles in vitro con. CO. Trichoderrna sp. y el benomil se considera como tóxico". Los fungicidas zineb, mancozeb. A. Y. y thiram ejercen una toxicidad ligera in vitro, aunque en tratamientos al suelo se. ÁT. IC. consideran compatibles. 25En condiciones de campo Trichoderma sp. puede permanecer en. 26. T. harzianum posee resistencia innata a la. FO. recomendados en el cultivo del tabaco.. RM. el suelo por más de cincuenta días bajo el efecto de tratamientos con plaguicidas. IN. mayoría de los agroquímicos, incluyendo a los fungicidas. Sin embargo, el nivel de. DE. resistencia difiere entre cepas. La mayoría de cepas de T harzianum destinadas al control. ST. rango de agroquímicos.27. EM AS. biológico poseen información relacionada con la susceptibilidad o resistencia a un amplio. SI. Reducir el uso de agroquímicos para el control fitosanitario y minimizar el impacto. DE. hacia el ambiente es uno de los retos actuales, ya que las consecuencias de su uso son la. IO. N. disminución de la biodiversidad en los agroecosistemas, contaminación ambiental y la. RE. CC. disminución en la salud de los trabajadores y el consumidor final.. DI. Actualmente, las tendencias internacionales han llevado al desarrollo de programas de. manejo integrado para el control de las enfermedades, los que consideran una combinación de diversos métodos de control que podrían potenciar el efecto de una sola. 28 Entre estos. 7 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(22) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. destacan el uso de químicos tradicionales en conjunto con antagonistas como Trichoderma spp.. Ó. N. Debido a que Trichoderma spp. es uno de los controladores biológicos más. AC I. utilizados contra diversos fitopatógenos, es necesario realizar estudios acerca de los efectos. M UN. IC. de fungicidas y nematicidas aplicados a los cultivos a fin de poder utilizarlos dentro de un programa de manejo integrado de plaga. Esto permitirá a los agricultores seleccionar los. Y. minimizar cualquier efecto nocivo en la eficacia del controlador.. CO. componentes apropiados y planear los tratamientos fúngicos o químicos adecuados para. IC. A. Por todo lo expuesto, el objetivo del presente estudio está orientado a evaluar el. RM. ÁT. efecto del fosetil aluminio y oxamilo sobre la germinación, crecimiento y capacidad. FO. antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma las. IN. harzianum en condiciones de laboratorio, proponiéndose que al incrementarse. DE. concentraciones del fosetil aluminio y oxamilo, disminuye la germinación, crecimiento y. EM AS. la capacidad antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. Trichoderma harzianum... 8 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(23) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. Ó. N. MATERIAL Y MÉTODO. Cultivos. puros de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y. CO. . M UN. IC. AC I. 1. Material de estudio:. Trichoderma harzianum. proporcionado por el Laboratorio de Fitopatología. A. Y. del Departamento Académico de Microbiología y Parasitología de la. Nematicida-Insecticida Oxamil , cuyo principio activo es S-Metil N’,N’-. RM. . ÁT. IC. Facultad de Ciencias Biológicas Universidad Nacional de Trujillo.. IN. Fungicida fosetil aluminio, cuyo principio activo es “Aluminium tris-O-. EM AS. ethylphosphate”.. DE. . FO. dimetil N(metilcarbamoiloxi)-1-tío-oxamimidato. SI. ST. 2. Métodos:. DE. 2.1 Reactivación de los cultivos de Trichoderma asperellum, Trichoderma. DI. RE. CC. IO. N. atroviride y Trichoderma harzianum. Los cultivos puros de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum proporcionados. por. el Laboratorio de. Fitopatología, fueron sembrados por puntura en frasquitos de vidrio conteniendo Agar Papa Sacarosa inclinado e incubados a temperatura ambiental (aprox. 25 ± 2 ºC), durante 7 días. 9. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(24) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 2.2. Evaluación del efecto de fosetil aluminio y oxamilo sobre Trichoderma. asperellum,. Trichoderma. atroviride. y. Trichoderma. y oxamilo. IC. 2.2.1. Evaluación del efecto de fosetil de aluminio. AC I. Ó. N. harzianum.. M UN. sobre la germinación de esporas de Trichoderma asperellum,. CO. Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum.. 2.2.1.1. Preparación de las soluciones doble concentradas de. A. Y. fosetil de aluminio y oxamilo. ÁT. IC. Se llevó a cabo diferentes diluciones de fosetil de aluminio en. RM. caldo Papa Sacarosa hasta alcanzar las concentraciones de 6000. FO. y 10000 ppm. , a partir del producto original.. IN. Se procedió de igual manera con el oxamilo hasta alcanzar las. DE. concentraciones de 960 y 1200 ppm.. EM AS. 2.2.1.2. Preparación del inóculo de esporas. ST. A partir de uno de los cultivos monospóricos se sembró en. SI. frascos planos de vidrio conteniendo Agar Sabouraud inclinado y se El inóculo de esporas se obtuvó. agregando 10 mL de agua destilada estéril a cada frasco plano de. DI. RE. CC. IO. N. DE. incubó a 25°C por 7 días.. vidrio agitándolo moderadamente a fin de liberar las esporas del hongo. La suspensión resultante fue colocada en un matraz estéril donde se determinó la concentración de esporas mediante el recuento en Cámara de Neubauer. Luego esta suspensión se diluyó con agua destilada estéril hasta obtener una concentración final de. 10 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(25) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 105 esporas/mL.. Ó. N. 2.2.1.3. Inoculación e incubación. AC I. Se colocó 1 mL de cada dilución de fosetil de aluminio. M UN. IC. doble concentrado en frasquitos de vidrio estériles, a los cuales se les agregó 1mL de la suspensión de esporas obtenido previamente, con. CO. lo cual se obtuvo una dilución o concentración final de 105 esp/mL y. Y. concentraciones finales de fosetil de aluminio de 6000 y 10000 ppm.. IC. A. Se prepararó también una suspensión de esporas control (0 ppm),. RM. ÁT. agregando 1 mL de la suspensión de esporas en 1mL de caldo Papa. FO. Sacarosa. Se realizaron 4 repeticiones, incluyendo el control, las. IN. cuales se incubaron a 25°C durante 24 horas.. DE. Se procedió de manera similar con el nematicida oxamilo.. EM AS. Se colocó 1 mL de cada dilución de oxamilo doble concentrado en frasquitos de vidrio estériles, a los cuales se les agregó 1mL de la. ST. suspensión de esporas obtenida previamente, con lo cual se obtuvo. 960 y 1200 ppm. Se prepararó también una suspensión de esporas control (0 ppm), agregandole 1 mL de la suspensión de esporas en 1mL de caldo Papa Sacarosa. Se realizaron. 4 repeticiones,. incluyendo el control, los cuales se incubó a 25°C durante 24 horas.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. una dilución de 105 esp/mL y concentraciones finales de oxamilo de. 11 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(26) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 2.2.1.4. Lectura de los resultados. Ó. N. Luego del periódo de incubación, se realizó el recuento en. AC I. microscopio (40 X), de cada frasquito de penicilina. Se contó solo. M UN. IC. esporas germinadas para cada concentración del fungicida y del nematicida evaluado, incluyendo el control. Los resultados fueron. CO. expresados como porcentaje promedio de germinación el cual se. Y. obtuvo comparando el número de esporas germinadas en los. IC. A. frasquitos con las diferentes concentraciones del fungicida y del. RM. ÁT. nematicida en relación a las del grupo contro l.. crecimiento. de. Trichoderma. asperellum,. Trichoderma. IN. el. FO. 2.2.2 Evaluación del efecto de fosetil aluminio y oxamilo sobre. DE. atroviride y Trichoderma harzianum. EM AS. 2.2.2.1 Preparación del medio de cultivo Se prepararó Agar Sabouraud en seis matraces conteniendo. ST. 250 mL de medio cada uno. El medio de cultivo se esterilizó en. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. autoclave y se dejó enfriar hasta una temperatura aproximada de 50 °C. Estando aún fundido el medio, a dos de los matraces se les adicionó fosetil aluminio en cantidad suficiente para obtener una concentración final de 6000 y 10000 ppm., respectivamente, y a otros dos más se les adicionó oxamilo en cantidad suficiente para obtener la concentración final de 960 y 1200 ppm respectivamente. Al medio contenido en los dos matraces restantes no se le agregó. 12 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(27) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. ni el fungicida ni el nematicida, a fin de utilizarlo como control respectivamente. Luego, el medio de cultivo de cada uno de los seis. Ó. N. matraces se sirvió en placas de Petri estériles (cinco placas por cada. M UN. IC. AC I. concentración, incluyendo el control).. 2.2.2.2. Siembra e incubación.. cultivo puro de Trichoderma asperellum,. CO. A partir del. Y. Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum se sembró por. IC. A. puntura en la parte central de las placas Petri conteniendo Agar Papa. RM. ÁT. Sacarosa previamente preparadas en el paso anterior (cinco placas por. FO. concentración incluidas las placas del control); las cuales se incubaron. IN. a temperatura ambiente (aprox. 25 ± 2°C) hasta que el hongo cubrió. EM AS. DE. toda la superficie de la placa control.. 2.2.2.3. Lectura. ST. A partir del segundo día de siembra, y hasta que el hongo. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. cubrió toda la superficie de la placa control, se midió el radio de crecimiento micelial en centímetros (cm.) del hongo en diferentes direcciones, obteniendo un radio promedio de crecimiento por día por cada concentración del fungicida y el grupo control, al igual que el del nematicida y el grupo control. Los resultados de crecimiento de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum se expresaron en centímetros y en. 13 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(28) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. porcentaje de crecimiento (%C), teniendo en cuenta el crecimiento alcanzado por el grupo control (100%), de la siguiente manera:. N. 𝑅𝑎𝑑𝑖𝑜 𝑝𝑟𝑜𝑚𝑒𝑑𝑖𝑜 𝑑𝑒 𝑙𝑎 𝑐𝑜𝑙𝑜𝑛𝑖𝑎 𝑝𝑟𝑜𝑏𝑙𝑒𝑚𝑎 𝑥 100 𝑅𝑎𝑑𝑖𝑜 𝑝𝑟𝑜𝑚𝑒𝑑𝑖𝑜 𝑑𝑒 𝑙𝑎 𝑐𝑜𝑙𝑜𝑛𝑖𝑎 𝑡𝑒𝑠𝑡𝑖𝑔𝑜. IC. AC I. Ó. %𝐶 =. M UN. 2.2.3. Evaluación del efecto de fosetil aluminio y oxamilo sobre la. CO. capacidad antagonista de Trichoderma asperellum, Trichoderma. Y. atroviride y Trichoderma harzianum.. IC. A. Se realizó empleando la técnica de cultivo dual. Para ello se utilizó. de la placa Petri el hongo patógeno. RM. puntura en un extremo. ÁT. placas Petri con 15 mL de Agar Papa Sacarosa. Se sembró por. FO. (Rhizoctonia sp.) y en el extremo opuesto el antagonista. DE. IN. (Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma. EM AS. harzianum.), el cual haya presentado crecimiento en la placa con la concentración del fungicida y del nematicida con distancia de 4.5 cm. ST. aproximadamente entre ellos. Como testigo se colocó en una placa. SI. Petri Rhizoctonia en un extremo sin la presencia de Trichoderma spp.. DI. RE. CC. IO. N. DE. Posteriormente los cultivos se incubaron a 25 ºC durante siete días, se realizó lecturas cada 24 horas. A los siete días de incubación se evaluó el grado de antagonismo según la escala de Bell y col., donde:. Grado Antagónico 1: Trichoderma sp. crece completamente sobre la colonia del patógeno y cubre la superficie del medio de cultivo.. 14 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(29) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. Grado Antagónico 2: Trichoderma sp. crece al menos en las dos. Ó. N. terceras partes de la superficie del medio de cultivo.. AC I. Grado Antagónico 3: Trichoderma sp. y el patógeno cubren. M UN. IC. aproximadamente la mitad de la superficie del medio de cultivo.. CO. Grado Antagónico 4: El patógeno crece al menos en las dos terceras. Y. partes del medio de cultivo limitando el crecimiento de Trichoderma. RM. ÁT. IC. A. sp.. FO. Grado Antagónico 5: El patógeno crece sobre la colonia de. DE. IN. Trichoderma sp. ocupando toda la superficie del medio de cultivo.. EM AS. 2.2.4. Análisis de datos. ST. La determinación del efecto del fungicida Fosetil Aluminio y. nematicida. Oxamilo. sobre. Trichoderma. asperellum,. SI. del. analizando el porcentaje de germinación y el porcentaje de. DI. RE. CC. IO. N. DE. Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum, se realizó. crecimiento de Trichoderma spp.,en las diferentes concentraciones del fungicida y del nematicida, y los datos se procesaron en base a la prueba de Análisis de Varianza Unidireccional (ANOVA), según el paquete estadístico SPSS v. 1. 15 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(30) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. AC I. Ó. N. RESULTADOS. IC. Al evaluar el efecto de las concentraciones de 6000 ppm y 10000 ppm de fosetil. M UN. aluminio y de 960 ppm y 12000 ppm de oxamilo sobre el crecimiento, germinación y la. CO. capacidad antagonista de Trichoderma spp. se obtuvo que :. El porcentaje de germinación de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride. A. Y. y Trichoderma harzianum a las concentraciones de fosetil aluminio a las 24 horas de. ÁT. IC. incubación, fue el 100% en la concentración 0 ppm y en 6000 y 10 000 ppm 0%. Figuras. RM. 1; 2 y 3 respectivamente.. IN. FO. El porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma asperellum, a las concentraciones de fosetil. DE. Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum,. EM AS. aluminio a los cuatro días de incubación, fue el 100% en 0 ppm y en 6000 y 10000 ppm 0%. Figuras 4; 5 y 6 respectivamente.. a las. SI. ST. El porcentaje promedio de germinación de Trichoderma asperellum. DE. concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a las 24 horas de incubación,. CC. IO. Figura 7. N. estadísticamente mediante ANOVA no existe diferencia significativa entre ellas (Anexo 5).. RE. El porcentaje promedio de germinación de Trichoderma atroviride. a las. DI. concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a las 24 horas de incubación, estadísticamente mediante ANOVA no existe diferencia significativa entre ellas (Anexo 6). Figura 8. 16. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(31) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. El porcentaje promedio de germinación de Trichoderma harzianum. a las. concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a las 24 horas de incubación,. Ó. N. estadísticamente mediante ANOVA si existe diferencia significativa, sin embargo entre las. AC I. concentraciones 960 ppm y 1200 ppm, estadísticamente mediante ANOVA no existe. M UN. IC. diferencia significativa. (Anexo 7). Figura 9. El porcentaje de crecimiento radial de Trichoderma asperellum. las. 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a los cuatros días de. CO. concentraciones de. a. A. Y. incubación, estadísticamente mediante ANOVA no existe diferencia significativa (Anexo. ÁT. IC. 8). Figura 10. RM. Crecimiento radial de Trichoderma asperellum frente a las concentraciones de. IN. FO. oxamilo, a los cuatro días de incubación. Figura 11. las. 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a los cuatros días de. EM AS. concentraciones de. a. DE. El porcentaje de crecimiento radial de Trichoderma atroviride. incubación, estadísticamente mediante ANOVA no existe diferencia significativa (Anexo. SI. ST. 9). Figura 12.. DE. El crecimiento radial de Trichoderma atroviride frente a las concentraciones de. IO. N. oxamilo, a los cuatro días de incubación .Figura 13. CC. El porcentaje de crecimiento radial de Trichoderma harzianum. a. las. DI. RE. concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a los cuatros días de incubación, estadísticamente mediante ANOVA no existe diferencia significativa (Anexo 10).Figura 14. 17 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(32) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. El crecimiento radial de Trichoderma harzianum frente a las concentraciones de oxamilo, a los cuatro días de incubación. Figura 15. AC I. Ó. N. El cultivo dual de Trichoderma asperellum, Trichoderma. atroviride y. IC. Trichoderma. harzianum con Rhizoctonia sp. a las concentraciones de oxamilo a los 10. Trichoderma harzianum. presentan. M UN. dias de incubación, observándose que Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y grado antagónico 1, debido a que estas crecen. CO. completamente sobre la colonia de Rhizoctonia sp.y cubre la superficie del medio de. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. EM AS. DE. IN. FO. RM. ÁT. IC. A. Y. cultivo. Figura 16. 18 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(33) M UN. 120%. CO. 100%. 100%. IC. A. Y. 80%. ÁT. 60%. RM. 40%. 0% 0 ppm. IN. FO. 20%. DE. porcentaje de germinación de T. asperellum(%). IC. AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 0%. 0%. 6000 ppm. 10000 ppm. ST. EM AS. Concentración de fosetil aluminio (ppm). SI. Fig. 1. Porcentaje promedio de germinación de Trichoderma asperellum a. DE. las concentraciones de 0 ppm, 6000 ppm y 10000 ppm de fosetil aluminio. DI. RE. CC. IO. N. a las 24 horas de incubación en condiciones de laboratorio.. 19 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(34) M UN. IC. AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. Y. CO. 100%. 100%. IC. A. 80%. RM. ÁT. 60%. FO. 40%. IN. 20% 0% 0 ppm. DE. Porcentaje de germinación de T. atroviride (%). 120%. 0%. 0%. 6000 ppm. 10000 ppm. EM AS. Concentración de fosetil aluminio ( ppm). ST. Fig. 2. Porcentaje promedio de germinación de Trichoderma atroviride a las. SI. concentraciones de 0 ppm, 6000 ppm y 10000 ppm de fosetil aluminio a las 24. DI. RE. CC. IO. N. DE. horas de incubación en condiciones de laboratorio.. 20 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(35) M UN. IC. AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 100%. CO. 100%. A. Y. 80%. ÁT. IC. 60%. RM. 40%. FO. 20%. IN. 0% 0 ppm. 0%. 0%. 6000 ppm. 10000 ppm. Concentración de fosetil aluminio (ppm). EM AS. DE. Porcentaje de germinación de T. harzianum (%). 120%. Fig. 3. Porcentaje promedio de germinación de Trichoderma harzianum a las. SI. ST. concentraciones de 0 ppm, 6000 ppm y 10000 ppm de fosetil aluminio a las 24. DI. RE. CC. IO. N. DE. horas de incubación en condiciones de laboratorio.. 21 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(36) AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. IC M UN. 100% 100%. CO. 80%. A. Y. 60%. ÁT. IC. 40% 20%. RM. Porcentaje de crecimiento de T. asperellum (%). 120%. 0%. FO. 0% 0 ppm. 6000 ppm. 0% 10000 ppm. DE. IN. Concentración de fosetil aluminio (ppm). EM AS. Fig. 4. Porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma asperellum a las concentraciones de 0 ppm, 6000 ppm y 10000 ppm de fosetil aluminio a los cuatro. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. días de incubación en condiciones de laboratorio.. 22 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(37) AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. IC. 100%. M UN. 100%. CO. 80%. Y. 60%. IC. A. 40% 20%. ÁT. Porcentaje de crecimiento de T. atroviride (%). 120%. RM. 0% 0 ppm. 0%. 0%. 6000 ppm. 10000 ppm. DE. IN. FO. Concentración de fosetil aluminio (ppm). EM AS. Fig. 5. Porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma atroviride a las concentraciones de. 0 ppm, 6000 ppm y 10000 ppm de fosetil. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. aluminio a los cuatro días de incubación en condiciones de laboratorio.. 23 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(38) Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. AC I. 100%. M UN. IC. 100%. 80%. CO. 60%. A. Y. 40%. IC. 20% 0%. RM. 0 ppm. 0%. 0%. 6000 ppm. 10000 ppm. ÁT. Porcentaje de crecimiento de T. harzianum (%). 120%. IN. FO. Concentración de fosetil aluminio (ppm). DE. Fig. 6. Porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma. EM AS. harzianum a las concentraciones de 0 ppm, 6000 y 10000 ppm de fosetil. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. aluminio a los cuatro días de incubación en condiciones de laboratorio.. 24 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(39) N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. Ó AC I. 100%. 81.01%. IC. 78.24%. 80%. M UN. 100%. 60%. a. a. Y. 20%. CO. a. 40%. A. Porcentaje de germinacion de T. asperellum (%). 120%. IC. 0%. 960 ppm. 1200 ppm. ÁT. 0 ppm. FO. RM. Concentración de oxamilo (ppm). IN. Fig. 7. Porcentaje promedio de germinación de Trichoderma asperellum a. DE. las concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a las 24. EM AS. horas de incubación en condiciones de laboratorio.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. a: p> 0,05; no existe diferencia significativa. 25 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(40) AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 100%. M UN. IC. 100%. 100%. 98%. a. CO. 96%. a. Y. 94%. IC. A. 92% 90%. ÁT. Porcentaje de germinación de T. atroviride (%). 102%. 88%. 960 ppm Concentración de oxamilo (ppm). a. 1200 ppm. FO. RM. 0 ppm. 92%. IN. Fig. 8. Porcentaje promedio de germinación de Trichoderma atroviride a las. DE. concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a las 24 horas. EM AS. de incubación en condiciones de laboratorio.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. a: p> 0,05; no existe diferencia significativa. 26 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(41) N AC I. Ó. 120%. 100%. 100%. IC. 88.71%. 77.26%. M UN. 80% 60%. a. CO. b. 40%. b. Y. Porcentaje de germinación de T. harzianum (%). Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. IC. A. 20%. ÁT. 0%. 960 ppm. 1200 ppm. RM. 0 ppm. FO. Concentración de oxamilo (ppm). IN. Fig. 9. Porcentaje promedio de germinación de Trichoderma harzianum a. DE. las concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de oxamilo a las 24. EM AS. horas de incubación en condiciones de laboratorio.. ST. a: p< 0.05; Existe diferencia significativa. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. b: p> 0,05; no existe diferencia significativa. 27 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(42) Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. AC I IC. 100%. 100%. a. 74.49. a. a. CO. 60%. M UN. 79.35%. 80%. A. Y. 40%. IC. 20%. ÁT. Porcentaje de crecimiento de T. asperellum (%). 120%. 0%. 960 ppm. RM. 0 ppm. 1200 ppm. IN. FO. Concentración de oxamilo (ppm). DE. Fig. 10. Porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma. EM AS. asperellum a las concentraciones de 960 y 1200 ppm de oxamilo a los cuatro días de incubación en condiciones de laboratorio.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. ST. a: p> 0,05; no existe diferencia significativa. 28 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(43) Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. ÁT. IC. A. Y. CO. M UN. IC. AC I. A. C. SI. ST. EM AS. DE. IN. FO. RM. B. DE. Fig. 11. Crecimiento radial de Trichoderma asperellum a diferentes. 960 ppm; C. 1200 ppm.. DI. RE. CC. IO. N. concentraciones de oxamilo a los cuatro días de incubación: A. 0 ppm; B.. 29 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(44) AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. M UN. IC. 100%. 100%. CO. 80% 60%. 47.44%. 48.72%. Y. a. A. 40%. a. a. IC. 20%. ÁT. Porcentaje de crecimiento de T. atroviride (%). 120%. RM. 0% 0 ppm. 960 ppm. 1200 ppm. DE. IN. FO. Concentración de oxamilo (ppm). EM AS. Fig. 12. Porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma atroviride a las concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de. ST. oxamilo a los cuatro días de incubación en condiciones de laboratorio.. DI. RE. CC. IO. N. DE. SI. a: p> 0,05; no existe diferencia significativa. 30 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(45) CO. M UN. IC. AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. ST. C. DE. SI. B. EM AS. DE. IN. FO. RM. ÁT. IC. A. Y. A. concentraciones de oxamilo a los cuatro días de incubación: A. 0 ppm; B. 960 ppm; C. 1200 ppm.. DI. RE. CC. IO. N. Fig. 13. Crecimiento radial de Trichoderma atroviride a diferentes. 31 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(46) AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. 100%. IC. 100%. M UN. Porcentaje de crecimiento de T. harzianum (%). 120%. Y. a. IC. A. 60%. CO. 80%. ÁT. 40%. 26.21%. 0%. a. 960 ppm. a. 1200 ppm. Concentración de oxamilo (ppm). EM AS. DE. IN. 0 ppm. FO. RM. 20%. 30.34%. Fig. 14. Porcentaje promedio de crecimiento radial de Trichoderma. ST. harzianum a las concentraciones de 0 ppm, 960 ppm y 1200 ppm de. SI. oxamilo a los cuatro días de incubación en condiciones de laboratorio.. DI. RE. CC. IO. N. DE. a: p> 0,05; no existe diferencia significativa. 32 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(47) AC I. Ó. N. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. RM. ÁT. IC. A. Y. CO. M UN. IC. A. C. SI. ST. EM AS. DE. IN. FO. B. DE. Fig. 15. Crecimiento radial de Trichoderma harzianum a diferentes. N. concentraciones de oxamilo a los cuatro días de incubación: A. 0 ppm; B.. DI. RE. CC. IO. 960 ppm; C. 1200 ppm.. 33 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(48) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. M UN. IC. AC I. Ó. N. A. a. RM. ÁT. IC. A. Y. CO. B. b. b. IN. FO. a. a. b. CC. IO. N. DE. SI. ST. EM AS. DE. C. RE. Fig. 16 Cultivo dual de: A) Trichoderma asperellum vs Rhizoctonia sp a las. DI. concentraciones de 960 ppm (a) y 1200 ppm (b). B) Trichoderma atroviride vs Rhizoctonia sp. a las concentraciones de 960 ppm (a) y 1200 ppm (b). C) Trichoderma harzianum vs Rhizoctonia sp a las concentraciones de 960 ppm (a) y 1200 ppm (b) .a los 10 días de. incubación. 34 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..

(49) Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo. DISCUSIÓN. AC I. Ó. N. En relación al efecto del fungicida fosetil aluminio en la germinación de. Trichoderma asperellum Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum. en las figuras. M UN. IC. 1; 2 y 3 se observa 100% de germinación en 0 ppm, sin embargo en las concentraciones de 6000 y 10 000 ppm no se observa germinación evaluado a las 24 horas. Asimismo en la. CO. figuras 4; 5 y 6 se observa que el porcentaje promedio de crecimiento radial de. A. Y. Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum es 100% en 0. ÁT. IC. ppm y 0% en 6000 y 10 000 ppm, evaluado a los cuatro días. Estos resultados. RM. probablemente se deban a que cuando se inicia el proceso de germinación, la espora. FO. absorbe agua del medio ambiente29, probablemente en este momento junto con el caldo de. germinación.30Los. resultados. obtenidos. DE. su. IN. Papa haya ingresado el fungicida, haciendo que la espora detecte condiciones adversas para concuerdan. con. lo. reportado. por. EM AS. Cholango(2009)31 quien encontró que el fungicida Score, el cual no debería afectar a Trichoderma, ya que sus hongos diana son Erysiphe spp., Alternaria spp.,Botrytis cinerea,. SI. ST. es incompatible con Trichoderma sp.; asimismo Muiño y col32 encontraron que. DE. Trichoderma spp. es incompatible con benomil que es usado para controlar solamente a. CC. IO. N. hongos fitopatógenos.. RE. Debido a los resultados obtenidos en el presente trabajo, el fungicida fosetil. DI. aluminio inhibe totalmente el crecimiento y la germinación de Trichoderma asperellum, Trichoderma atroviride y Trichoderma harzianum en consecuencia este fungicida no debería ser aplicado en campo donde se necesita la acción de Trichoderma spp. 35. Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis..