Prevalencia y control de parásitos internos en equinos

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(1):. programa de estudios para graduados en ciencias agrarias. TESIS DE GRADO. MAGISTER SCIENTIAE.

(2) 'L.35. !e9 5c(OrS z. 11.

(3) /. PREVALENCIA Y CONTROL DE PARASITOS INTERNOS EN EQUINOS. -. *. TESIS. PRESENTADA AL PROGRAMA DE ESTUDIOS PARA GRADUADOS UNIViRSIDAD NACIONAL - INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO. JJIJOTECA An,---.---• ... e. 25 ENE; 1990. *. •. POR. -. •. GUSTAVO LOPEZ VALENCIA COMO REQUISITO PARCIAL PARA OPTAS EL dRADO DE MAGISTER SCIENTIAE. JULIO,. 1975. BOGOTA, COLOMBIA.

(4) TESIS APROBADA POR COMITE CONSEJERO. fi. Dr. GUILLERMO MATEUS V.. ¡. Dr. DANILO PARRA G.. Dr. TIRSO DE PAULA MOLINA -. - ----. *,IOTEC. M. ENE. 1999. II.

(5) El presidente de tesis y el consejo examinador de grado, no serán respon217 de los sables de las ideas emitidas por el candidatoArtículo . ( Estatutos de la Universidad Nacional,). .iii.

(6) DEDICO:. A mi esposa e hijos. A mi padre y hermanos. 1. Iv.

(7) Expreso mi sincero agradecimiento al Dr. Guillermo Mateus V., consejero y orientador en la realización del presente trabajo; al Dr. Danilo Parra G., guía desinteresado en la identificación de los parásitos así como también al Dr. Héctor Eduardo Gonzélez por su vaUosa ayuda en los estudios histo-. - patológicos.. -. r. *. H.

(8) Agradezco al Instituto Colombiano Agropecuario ICA; a la Universidad Nacional de Colombia; a los laboratorios Merck Sharp & Dohme por su aporte económico para consecución de animales y equipos usados en el experimento:. • A las siguier. tes personas expreso un profundo reconocimiento por su valiosa colaboración en la realización del presente estudio:. Doctores Otoníel Vizcaino y Hernán Zaraza del Programa de Parasitología y Entomología Veterinarias del ICA; a los doctores Tirso Molina y Otto Sánchez del Programa Nacional de Patología; a la señorita Elvira Luque, Bacterióloga del Laboratorio de Patología Clínica; al señor Ancízar Fernández Técnico del Laboratorio de Uf stopatologfa y .a los señores Crfstbal Bautista y José Renón Aponte del Programa de Parasitología y Entomología Veterinarias del ICA.. -. vi.

(9) CONTENIDO Página INTRODUCC N. ... 2. REVISIONDE LITERATURA. ..................... ... ... ............ 1. 3. 2.1. Trichostrongylus axei. 2.2. Habronema ......................... 2.3. Parscaris equorum ....................7. 2.4. Strongyloides westeri. 2.5. Strongylus vulgaris. 2.6. Strongylus equinus ...................11. 2.7. Strongylus edentatus ......................11. 2.8. Trfchonerna sp. 2.9 Triodontophorus 2.10 Oxyuris eguf. Ii. 6. ....................8 .................1O. .....................12 SP. ........... ........................ 13 .13. 2.11 Céstodos ......................... 2.12 Control de parásitos en equinos .......... 15. ................... 18. 3.1 Fase 1. Prevalencia de parésitos internos . . . .. 18. 3. MATERIALES Y METODOS. 3.2 Fase 2. Efecto del compuesto 2-( 14-Thyazoly1)-5 ¡sopropoxy carbonylamino benzfmidazole sobre parásitos internos de equinos .......20. 3.3 Control de parásitos internos en equinos 4.. RESULTADOS. .. 23. .........................24. 4.1 Fase 1. Prévalencia de parásitos internos en equin6s vi¡. 24.

(10) Pgina. 4.1.1. 24. .. Parásitos adultos. • 4.1.2. Población de larvas, infectantes . . . .. . ... 25. 4.1.3. Huevos de parásitos en la materia fecal . .. 25. 4.1.4. ... Patología macroscópica .......,. ..... 26. 4.1.5. Patología microscópica ................ 27. 4.1.5.1 Estómago. 27. 4.1.5.2 Intestino grueso. 27. 4.1.5.3 Hígado. ......•.. 27. •. .. ... 4.1.5,4 Arterias ilíacas y mesentéricas. 4.1.6 .4.2. Patología clínica. 28. . . .. 28. . ............ FASE 2. EFECTO DEL COMPUESTO 2-(4_THYAZ0LYL)-5,ISOPROPDXY CARBONYLAMINO BENZIMIDAZOLE SOBRE PARASITOS GÁTROTNTESTINALES EN EQUINOS ........ 28. Examen coproparasitario........... .. 29. Parásitos adultos. 29. 4.2.3. Parásitos adultós encontrados en la materia fecal. 30. 4,2.4. Población de larvas infectantes .. 31. 4.2.5. Efectividad de los tratamientos. 4.2.6. Hematología. 4.2.7. Patología macroscópica . . . .. 4.2.8. Patología microscópica ............... 33. 4.2.8.1 Estómago ....................... 34. 4.2.8.2 1itestino grueso .................. 34. 4.2.8.3 Hígado. 34. 4.2.8.4 Arterias ilíacas y mesentéricas ............ 34. 4.2.1 - 4.2.2. •. .. 31 32. . ' .............. 32. • . .. r'. Viii. --. C!. -.

(11) /. Página. 4.2.8. 5 Bazo. . . • • • • •. • • - -.. 4.2.8.6 Riñón ................ .... ........ 4.3. 3. CONTROL DE PARASITOS GASTROINTESTINALES DE. FASE. QUINOS.. - 35. 35. É-. .. 4.3.1. Parásitos adultos eliminados con las.heces ......36. 4.3.2. Examen de materia fecal ..............,. ... .. 36. 4.3,3. Población de larvas infectartes .. 36. 5. DISCUSION. . .. . . .. ................................37. • 6. RESUMEN ...................................42 7 SUMMARYJI .. -. 91. BIBLIOGRAFIA. ANEXOS. Ix. ____. 44. e.

(12) /. LISTA DE TABLAS. NúmeroPágina. 20. 1. Distribución de los animales para el tratamiento .. 2. Esquema de trabajo real izado .................22. 3. Control de parásitos internos en equinos .........-. 4. Parásitos gastrointestinales de equinos naturalmente in-. 23. fectados .................................46. 5. Local izaciónde los parásitos en el tracto gastrointestinal de los equinos . . .. 6. 8. .. . , .. . .. ....... 47. Distribución de los parásitos por sexo y estado dedesarrolio en el tracto gastrointestinal ......... . . . .. 48. Población de larvas en cultivo de materia fecal. . . . .. 49. Lesiones microscópicas observadas en tejidos de equinos con infestación naturalde parásitos ............50. 9. Valores hemáticos promedios en equinos infectados naturalmente con parásitos internos. 10.. .............51. Promedio huevos de parásitos gastrointestinales antes del tratamjento.........................52. 11. Promedio de huevos por gramo de pequeños y grandes Strongylus. X. -.

(13) •. Numero 12 •. 1. .. ............................-. .............•... Peueños y grandes Strongylus encontrados a la necropsia. ................. 17. • .............. ............... •. 61. Parásitos adultos encontrados en la materia fecal de equrnos tratados. ,20. 60. Distribución por sexo de los parásitos adultos encontrados a la necropsia ..................• . . . .. 19. 59. Localización de -'los parásitos en el tracto gastrointestinal de los equinos. Grupo III. 18-. 58. Localización de los parásitos enel tracto gastrointestinal de los equinos. Grupo II. •. 57. Localización de los parásitos en el tracto gastrointesti nal de los equinos. Grupo 1. 16. 514. 55. de los animales tratados . ................ 15. Página.. Parásitos gastrointestinales encontrados a la necropsia de los equinos tratados. 14. .. Promedio huevos de parásitos gastrointestinales en fecha de necropsia. 13. .. » 62. Población de larvas en cultivo de materia fecal. . . . .. 63. 21 • Valores hemáti » cos promedios para los tres grupos de equinos en experimentación . ........• •. 22. ......... .. 64. Lesiones microscópicas encontradas en los tejidos de los tres grupos de animales experimentales. •. xi. ..........65 -. .. •.

(14) Número. Página. 23. Parásitos adultos eliminados con la materia fecal . . . .. 24. Huevos de parásitos. por gramo de heces encontrados en los animales experimentales . ., . . . . . ............. 25. 66. 67. Población de larvas de parásitos en cultivo de materia fecal. ...............................68. .xII.

(15) LISTA DE FIGURAS. Pégina. Numero. Cépsu) bucal de Trichonema sp....................69. 2. Bolsas caudal de un macho de Trichonema sp.......... 70. 3. Trichonema sp. Larva infectiva. . . . .... ........ 71. 4. Strongylus vulgaris. Larva infectiva. ............ 72. 5. Estómago de un equino con infestación alta de Trichostrongylus áxei. Severa inflamación catarral............ 73. 6. Larvas de Strongylus sp en arteria ilíaca ............ 74. 7. Intestino grueso parasitado por nemétodo .. ... .......-. 75. 18 9. Hfperplasia glandular de un estómag'oparasitado ....... . 76. Focos necróticos y corte transversal de Strongylus sp en arterias mesentéricas ..................... 10. Pequeños y grandes Strongylusobtenidos por lavado del colon mayor .............................. 11. 12. Parásitos adultos eliminados con las heces. ......... .. 78 79. Diferencias de promedios de huevos de parésitos én animales tratados. • 13. 77. .... . .. • • • • • • • • ..........80. Diferencias de promedios de parásitos adultosen animales tratados. ............ xiii. 82.

(16) /. Página. Número. -14 15. Válvula iliocecal afecta da por Anoplocephala perfoliata i Ciego de un equino parasitado por Anoplocephala perfoliata .............. 16. ... ....,. ...........85. Ulceras en estómago de un equino con alta infestación •. de Trichostrojjy. 17. ............. 87. Hepatitis necrótica fócal y cirrosis portal ocasionadas ........... 88. Larvas infectivas de nemátodos intestinales de equinos.. 89. por larvas de Strongyussp'. . .. 19. 86. Múltiples úlceras en la porción fúndica de un estómago altamente parasitado . . . . . . . ... . . . ... . . . .. • 18. 84. xiv.

(17) •. 1., INTRODUCCION. La ganadería caballar ha sido un factor importantísimo en el avance de la civilización humana puesto que se ha utilizado desde-tiempos antiguos como medio de transporte, en labores de campo y en 1 idés guerreras. En los últimos tiempos las explotaciones equinas se han incrementado notoriamente en diferentes modalidades y es así como se han especializado en labores de campo, esparcimiento, actividades militares, justas deportí:vas ( ecuestre, polo, hípica, etc ), siendo además el punto de atracción en ¡ ganaderas del pas.. las exposiciones .. No obstante el incremento de la industria equina, ésta ha tenido serías limitaciones debido a factores adversos tales como las enfermedades carenciales, infecciosas , y parasitarias.. En nuestro medio son muy pocos los trabajos que se han realizado sobre parasitismo gastrointestinal en equinos o solo se han hecho en forma fragmentaria.. •. -. A pesar de los pocos estudios, los resultados obtenidos indican que existe alta incidencia de parásitos y se encuentran extraordinariamente difundidos, afectando la casi totalidad de la población equina del país.. Los pocos datos existentes indican que los parásitos gastrointestinales constituyen un serio obstáculo en las explotaciones equinas, más aún cuando las lesiones y síntomas que producen son similares a las producidas .por agentes infecciosos o transtornos alimenticios en las cuales el ucóli_. S.

(18) 2 co" es la manifestación principal y solo mediante la identificación y cuan tificación de los parásitos gastrointestinales, asT como su localización y lesiones producidas, seria posible valorar la magnitud de los problemas que -. ocasionan.. •. •. iI•. Por las razones anotadas se estima conveniente realizar este trabajo teniendo fundamentalmente los siguientes objetivos:. 1.. Conocer. la población natural de prsítos internos en equinos y determinar las especies de mayor incidencia.. 2.. Estudiar los cambios y lesiones en los tejidos producidos por los diferentes tipos de parásitos.. 3.. Relacion9r los valores hemáticos con el grado de parasitismo.. _4. Determinar en equinos la efectividad del 2(4-Thiazolyl)-5-isopropoxycar• •. bonylamino benzimidazole (CBZ), antihelmíntico de amplio espectro, de e'. ficacia comprobada contra parásitos gastrointestinales de bovinos.. /. 1.

(19) 2. REVISION DE LITERATURA. Los parásitos han constituido siempre uno de los principales problemas de los anf r. les domésticos y a pesar de que están ampliamente difundi-. dos en los equinos han sido muy poco estudiados (15).. En Colombia los trabajos sobre parasitismo en equinos se han realizado en formá fragmentaria y,hace falta una idea más clara acerca de la distribución geográfica y lesiones producidas, ya que los problemas sanitarios .se han venido multiplicando debido al auge que han tomado las explotaciones equinas en el país (15).. Los equinos son afectados por mas de 75 especies de parásitos internos, los cuales pueden vivir:- en el estómago, intestino, hígado, pulmones, arterias ilíacas y mesentéricas, en donde se alimentan de sangre o de sustancias orgánicas; la mayoría irritan y lesionan los tejidos donde se localizan y además ocasionan graves transtornos al organismo por las toxinas que producen (2,15).. Mateus (15) utilizando 100 equinos de la. Sabana de Bogotá, encontró por medio de examen de materia fecal los siguientes géneros de parásitos: Strongylus 95?, Trichonema 91?, Parscaris 15?, Oxyuris 5, D4ctyocaulus 3, Paranoplocrephala 12,Strongylus8 y Nernatodirus 1.. 1. .. Losparsitos ms comunes viven principalmente en el tracto digesti y o; los adultos depositan los huevos en la luz intestinal, éstos son expulsados con las heces y • en condiciones favorables de temperatura y humedad embrionan para dar origen a un primer estado larvario (Li), éste a su vez.

(20) • • evolucionaa un segundo estado larvarió (L2), el cual pasa después de un •. tiempo al estado infectivo (13) y en esta forma los equinos adquieren los parásitos al ingerir pastos o aguas contaminadas (11+,21).. Cuando los parásitos en su estado •infectivo (L3) llegan al tracto di estivo, en la mucoa gastrointestinal sufren las otras mudas (L4 y L5) para luego alcanzar su estado adulto yconinuar el ciclo con' la postura de huevos. Algunas larvas migran a trav4s de los tejidos y regresan- al intestino-para completar su maduración. Otros parásitos requieren de un huésped intermediario como Musca doméstica, y Stomoxys calcitrans para desarrollar su estado infectvo (L3) (2,11).. •. Los parásitos más frecuentes en el tracto digestivo de los equinos. son. -- 2.1. Trichostrongylits ¿Me¡.. Es un parásito muy pequeño que se localiza en el est6magoyes similar al que ocurre en el aboniaso de los bovinos :.y ovinos; generalmente los equinos se contaminan- al pastar en potreros donde existen bovinos y ovinos parasitados (5,22).. Cuando las condiciones ambientales de humedad y calor son adecuadas, los huevos que han salido al exterior con las heces, embrionan en 10 a 15 días y dan origen a larvas (Li), éstas pasan a (L2), las cuales trepan por las hojas de los pastos húmed?s durante la noche y descienden a la raíz cuando dsapareceel rocío. • s larvas (L2) pasan a (L3) y los equinos se •. contaminan cuando ingieren estas últimas; en el estomago pasan a (Lb) y(L5) luego se transforman en adultos. El período prepatente es de 20 a 30 días. -•.

(21) /. para el Trichostrongylus axei (14). Este parásito inicialmente causa una inflamación catarral del estómago que posteriormente conduce a una gastritis hipertr6fica crónica (5,11,22).. Las lesiones varían grandementé, sin embargo en la mayoría de los casos aparecen como áreas botonosas o lesiones pedunculadas, las que se proyectan en la luz del estómago implicando la mayor parte de la porción glandular (5,11,16,2122).. Los cambios histológicos fueron estudiados por Petit et.' al. citados por Soulsby (22) quienes encontraron que los acinos glandulares son dilatados por los parásitos produciéndose descamación del epitelio con infiltra•. ción de leucocitos especialmente eosinófi1os.. Los equinos infectados con Trichostrongylus axei, muestran generalmente un apetito irregular, diarrea y constipación; en invasiones muy severas puede desarrollarse una hipoproteinemia debido a la hipertrofia marcada de lam(icosa gástrica y pérdida de la proteína plasmática que generalmen-' •. te se acompaña de una anemia hipocrómica,y de un aumento dé eosinóphilos. circulantes (22).. El diagnóstico de este parásito puede hacerse mediante identificación. •. • • de las larvas (L3) obtenidas por cultivo de heces; también puede hacerse identificando los huevos en examen de materia' fecal, pero este método es difícil debido a que los huevo son 'muy similares a los de otros nemátodos 6,22) / E't diagnóstico post-morten es relativamente fácil por las lesiones •. hipertróficas en la mucosa del estómago que contienen los parásitos inmadu-.

(22) /. ros, sin embargo es necesario observar lá mucosa al microscopio por el tama'3. ño tan pequeño de los parásitos. El diagnóstico también puede hacerse por identificación de los parásitos adultos (6,22).. 2.2. Habronema sp.. Es otro parásito del estómago de los equinos '—requiere para su desarrollo un huésped intermediario. Las larvas salen al exterior con las heces y son ingeridas por las larvas de Musca doméstica y Stomoxys calcitrans y a-. llí evolucion3n hasta localizarse más tarde en la proboscis de la mosca adulta. Las larvas son depositadas en los labios, fosas nasales y heridas de los equinos cuando las moscas se alimentan (8,14,23).. Los parásitos adultos producen una gastritis catarral crónica, dependiendo las lesiones del número de parésitos. Como respuesta a la inflama-- ción crónica se produce -una severa proliferación glandular que ocasiona fi-brosis y atrofia del tejido, además puede presentarse abscesos y en ocasiones perforación de. la pared estomacal (8,14,16,22).. En las habronemiasis gástricas generalmente se presentan cólicos y enflaquecimiento progresivo y en la forma cuténea se presentan heridas que cursan con prurito intenso y sin tendencia a la cicatrización (úlceras de verano); cuando se localizan en la conjuntiva determinan la formación de pequeños nódulos que se vuelven granulosos y con áreas amarillentas; se produce lagrimeo, fotofobia y edema de los párpados (16,21,22).. El diagnst , ico de este parásito es difícil ya que la cubierta de los huevos es destruida por las soluciones corrientes de flotación utilizadas.

(23) /. ... ... .. .7. en los exámenes fecales; el diagn6stico se basa generalmente en el hallazgo de los parásitos en la necropsia y muchas veces es posible obtener parásitos adultos mediante lavado gástrico, utilizando soluciones como el Bicarbonato de Sodio sumir. stradas por sondaesofágica. El diagn6stico dehabronemiasis cutánea puede, establecerse demostrando las larvas en raspado de las lesiones (8,14,21).. .. No se ha podido demostrar la efectividad de antihelmínticos contra los parásitos adultos; contra las formas cutáneas han demostrado alguna efectividad productos fosforados, pero generalmente se requiere cauterización de las granulaciones (8,11,16,21,22,23).. 2.3. Parascaris equorum.. .. Este parásito se local iza en el intestino delgado; es un nemátodo de --gran tamaño y las hembras depositan los huevos dentro del intestino en nGme-ro, de 200.000 por día, estos salen con las heces y en condiciones favorables —de temperatura y humedad pueden permanecer viables hasta por dio (22).. 5. años en el me-. -.. Durante el desarrollo la larva muda una vez dentro del huevo para dar origen a la larva (L2) que es la infectiva; generalmente la infecci6n ocurre por ingestión de los huevos con el alimento (13,22).. Cuando los huevos llegan al intestino se rompe la cápsula del huevo y, las larvas liberadas penetran la pared y migran por la corriente sanguínea hasta el hígado, luego pasan a los pulmones, rompen los capilares alveolares para llegar a los bronquiolos, continuan por la traquea y faringe hasta el intestino dondese establecen; en este sitio alcanzan la madurez sexual.

(24) /. y se continua el ciclo con la eliminación de huevos en las heces, aproximadamente 60-62 días después de la infección' (13,14,21,22).. Losparsitos adultos causan esencialmente una enteritis catarral crónica, ocasionalmente puede presentarse oclusión de los conductos biliares, perforación del intestino y peritonitis mortal; en infecciones severas se producen transtornos respiratorios poli r las larvas migratorias, cólicos por obstrucción intestinal con necrosis. del tejido (11,22).. El diagnóstico de este parásito debe hacerse asociando los signos clí nicos con la demostración de los huevos en las heces. Los signos clínicos más manifiestosson transtornos intestinales, cólicos, flatulencia y en ciertos casos manifestaciones nerviosas; los signos clínicos pueden aparecer por invasión de formas inmadura lo que dificultaría el diagnóstico por la ausencia de huevos en la rnáte,ria fecal (8,14,21,22).. La mayoría de los potros se infectan después del nacimiento o también es frecuente la infección prenatal debido al poder migratorio de las larvas A21,22)./. El tratamiento de este parásito debe hacerse utilizando productos tales como la Piperazina, el Thiabendazol y el Tric1,or f 6n ( antihelmíntico fósforo orgánico ) (16,23).. 2.4. Strongyloides westeri.. Es/un parásito pequeño que se localiza en el intestino delgado, tiene una generación devida parasitaria y otra vida libre (14,21).. En. la. generación de vida parasitaria, solo existen las hembras las cua-.

(25) /. '9. les son partenogenéticas y viven dentro de la mucosa intestinal en donde depositan los huevos embrionados que salen al exterior con las deyecciones (1,21). Los huevos evolucionan en el medio y en 2 a 3 días se forman las larvas infectivas (L3) o también se pueden formar larvas de vida libre las cuales alcanzan su estado adulto (machos . y hembras) y pueden dar origen a larvas infectivas (L3) (14,21). Las larvas infectivas pueden ser ingeridas por los equinos o penetrar a través de la piel en cuyo caso, van por vía sanguínea a los pulmones, pasan posteriormente a la tráquea y faringe de donde son deglutidas y buscan su localización intestinal (14,21).. Las fases migratórias pueden ser responsables de algunos cambios patológicos, aunque la infección intestinal es la causante de 'la enfermedad clínica, especialmente en animales jóvenes en los cuales la principal manifestacTón es una diarrea severa. Debido al ciclo migratorio de este parásito es muy frecuente la infección prnatal o transcalostra (14,22).. Los animales jóvenes pueden ser tratados periódicamente con thiabendazol y en ánimales adultos no.es muy necesario el tratamiento, ya que ellos adquieren fácilmente resistencia contra este parásito (14).. -. El 'intestino grueso .de lps equinos es afectado también por muchos métodos,, los cuales usualmentfr son agrupados como pequeños y grandes Strongylus, Oxyuris equi y Probstnjayriavfvfpara (22).. Los Strongylus de mayor importancia en el intestino grueso de los e-. -.

(26) VV; -. / '10. quinos son:. 2.5. Strongylus vulgaris.. -. Este parásito se localiza en el ciego . y colon; los equinos se infes-. •. tan por vía oral al ingerir las larvas por medio de los pastos o aguas contaminadas. Las larvas penetran la mucosa del ciego y colon y por vía sanguínea llegan al hígado, corazón, pulmones y luego migran hasta las arterias mesentéricas en donde se forman las larvas (L-3 y L4); esta última se desprende de lacapa interna de la arteria para localizarse en la submucosa del • ciego y colon, luego entran 'a la luz intestinal donde completan su maduración para continuar el ciclo (6,14,21).. En su estado adulto estos parásitos atacan la mucosa del intestino grueso yse al irnentan de sangre; producen nódulos hemorrágicos y úlceras en -- el sitio de ataque y en los estados larvarios producen lesiones en el sistema arterial desde las vélvulas aórticas hasta lás arterias mesentéricas (7,14,22).. La lesión principal producida por los' estados larvarfos es una endoarteritis con formación de trombos y aneurismas que pueden ocluir completamente los vasós arteriales, esto trae como consecuencia cólicos muy severos que pueden ocasionar la muerte (8,14,21,22).. El Strongylus vulgaris es el más patógeno de todos los Strongylus debido principalmente a su localización en arterias ilíacas y mesentéricas; no se ha logrado establecer ningún grado de inmunidad contra este parásito (25)..

(27) / .11. 2.6. Strongylus equfnus.. Este parés,ito se localiza en el ' ciego y colon de los equinos, los cua-. les-se contaminan al ingerir larvas (L3) con el pasto o agua de bebida; las larvas penetran la mucosa del ciego y' colon y llegan hasta la'subserosa para producir nódulos donde se forma la larva L4; estas migran a la cavidad peritoneal, penetran en el hígado y permanecen en este órgano por un tiempo arpoximado de 4 meses hasta formarse la.larva (L5), la cual sale de él posiblemente por vía del páncreas, llega al colon y ciego donde alcanza su estadQ adulto para continuar su ciclo con la postura de huevos que son expulsados con las heces (14,21,22).. - Las formas inmaduras de este parásito producen nódulos hemorrgicos en el hígado, páncreas, pulmones o en el peritoneo y los signos clínicos, consisten en cólicos,,anorexia y mal estado general (1421,22).. - 2.7. Strongylus edentatus. Se localiza de preferencia en el ciego de los equinos; la larva (L3). penetra la pared del -intestino y llega al hígado por el sistema de la vena -- porta; en el hígado se forma la larva L4, la cual puede migrar en él por varias semanas, luego pasa por los ligamentos hepáticos hasta la región peritoneal en el flanco abdominal derecho donde producen nódulos hemorrágicos de diferente diámetro; posteriormente migran por las capas del meso-colon hasta las paredes del ciego y colon donde también producen nódulos hemorrágicos de diferentes tamaños; estos nódulos aparecen 3-5 semanas después de la infección (20,21).. -. Eventualmente las larvas pasan a la luz intestinal donde alcanzan su.

(28) 12. madurez para continuar el ciclo y en infecciones agudas se produce marcada peritonitis, toxemia aguda, ictericia y fiebre (8,21,22)... Los Strongylus pequeños se encuentran localizados en ciego y colon y la mayoría son apreciablemente más pequeños que los descritos anteriormente; algunos no parecen ser hémat6fagos, aunque el Triodontophorus tenuicollis produce úlceras bastante grandes en la pared del colon (16,21).. No hay al parecer migraci6n extensiva de las larvas en el huésped y el desarrollo lrvario tiene lugar en las dilataciones nodulares de la pared del intestino grueso; tanto las formas larva, ias como los adultos son importantes en la producci6n de síntomas clínicos como en el caso de Trichonema .ay Triodontophorus sp (16,21).. 2 8 Trichonema. Este género comprende cerca de 34 especies de las cuales las más frecuentes en el país son: Longibursatum, Cylicocércus, Cylycocylicus, Cyl fcostomus (14). Estos parásitos se localizan de preferencia en el ciego y colon aunque pueden parasitar también el intestino delgado; tienen un ciclo en el cual los huevos salen al exterior con las heces y en el medio se convierten en larvas L3 las cuales al ser ingeridas por los equinos penetran la mucosa W intestino en donde crecen determinando la forrnaci6n de n6dulos los cuales se rompen y la larva sale al intestino para transformarse en adulto. E.l período prepatente puede durar 3 meses o más dependiendo del tiempo que permanezcan las larvas enquistadas (,21,22).. ..

(29) 13. Las formas larvarias se alimentan de sangre y producen enteritis catarral con una inflamación difusa del ciego y colon. Los signos clínicos se manifiestan generalmente por transtornos digestivos, anemia, enflaquecimiento • (14,21). 2.9. Triodontophorus sp.. Los miembros de este género son esencialmente hematófagos y generalmente se encuentran adheridos a la mucosa del ciego y colon. El ciclo evolutivo no ha sido bien estudiado (21,22).. El diagnóstico de los Strongylus se hace mediante recuento global de huevos por gramos de heces pero no es posible por este método determinar el género y especie ya qúe las características de los huevos son similares. Para identificar los parásitos se requieren cultivos de heces a fin de obtener larvas L3 y compararlas con claves establecidas (22). Ver Fig 19 y Anexo 1.. El diagnóstico también puede hacerse identificando los parásitos adultos y las lesiones producidas mediante la necropsia de los animales (21,22).. 2.10 Oxyuris equi.. Es otro parásito (mportante en los equinos. Los machos y hembras se encuentran en-el colon y ciego pero después de la fertilización las hembras • migran al recto y luego al esfínter anal donde depositan los huevos envueltos en una sustancia pegajosa que les permite adherirse fuertemente a la piel (21!,22).. 1. •. Ls equinos generalmente se contaminan al ingerir huevos embrionados o embriones libres y en el intestino grueso adquieren su desarrollo comple-.

(30) /. to para continuar el ciclo; el período prepatente es de. •. 4-5 meses. (111,16).. Las migraciones de las hembras y la postura de los huevos alrededor .el ano causan fuérte prurito siendo este el síntoma más corriente; el diag• nóstico debe hacerse por los síntomas o buscando formas adultas o inmaduras en la región perianal (16,21,22).. .. =. Los compuestos a base de Piperazina son altamente efectivos contra los • parásitos adultos y el •Thiabendazol es Ja droga selectiva tanto para los parásitos adultos como para las formas inmaduras (16,21,22).'. 2.11 Céstodos.. •. Otros parásitos de mucha importancia en los equinos son los céstodos pertenecientes a la familia Anoplocephalidae. Las especies más importantes son: Anoplocephala magna, Anoplocephala perfoliata y Paranoplocephala mami llana; se localizan desde la parte posterior del intestino delgado. hasta el colon y ciego (21).. .En el ciclo de estos parásitos intervienen ácaros de la familia Qnbatidae como huéspedes intermediarios, éstos ingieren los huevos que salen con las heces y en 2-4 meses se forman los cisticercoides que se localizan en la cavidad corporal, los equinos adquieren los parásitos al ingerir los ácaros con el alimento y en 6-10 semanas de la infección alcanzan su estado adulto (16,21,22).. •. •. • • En invasjones muy. severas los céstodos pueden producir oclusión de la válvula iliocecal, ulceración de la mucosay ocasionalmente un severo aumento de tejido de granulación. Posiblemente la más patógena sea Anoplocephala. 1 -.

(31) /. 15. magna que puede producir enteritis catarral o hemorrágica. El diagnóstico de estos parásitos se hace por identificación de los huevos en las heces o los adultos en la necropsia (7,149161,21,22).. 2.12 Control de parásitos en equinos.. En los esquemas de control de parásitos internos utilizando antihelmínticos se requiere un conocimientogeneral acerca del ciclo evolutivo de los parásitos y realizar exámánes periódicos de materia fecal para poder evaluar la efectividad de los tratamientos (11,23).. Muchos compuestos han sido utilizados en el control de los parásitos internos de equinos tales como Tetracloruro de Carbono, Trementina, Aceite de quenópodio, pero en la actualidad los productos comerciales de mayor uso están preparados a base de Piperazina, Fenotiazina, Dichiorvos (5,8,12,13, 1,16,21,22,23). •. - Recientemente Hass etal (12) encontraron que el Dichlorvos en gel (órgano fsforado) a la dosis de 20 miligramos por kilo de peso era suficiente.para eliminar el 95% o más larvas de Gasterophilus intestinalis y Gasterophilus nasalis y. dosis de 10-miligramos por kilo de peso eliminaba. •. el •. 95%. o más de los Parscaris equorum.. •. • Walker y Knight ( 2 14) midieron la eficacia antihelmíntica del Mebendazole en equinos por cambios en el número de huevos liberados con las heces. y encontraron que una sola dsis d la droga-(8-13 miligramos por kilo) reduce en 100% los. huevos de sjtrongyius en las heces hasta 28 días más tarde de la aplicación..

(32) / 16 La actividad antihelmíntica de una mezcla de levamisole-piperazinafue estudiada por Drudge etal (9), ellos encontraron que al aplicar la muestra por sonda gástrica en la proporci6n levamisole 8 mgr por kilo de peso y piperazlna 88 mgr por kilo de peso era efectiva en un 100 para las formas maduras e inmaduras de Parascaris equorum; 76 para estados inmaduros de Oxyuris equl; 33 para formas maduras del mismo parásito; 632 para Strongylus edentatus; . 972 para Probsmayria vivípara; 97? para Strongylus vulgaris y 87 para Rabronema mu;cae adulta. La droga no fue efectiva, contra Anoplocephala Gasterophilui intestinales y Gasterophilus ,asalis y formas inmaduras de Habronema muscae.. Un derivado del Thfabendazole 2-(4.Thiazolil)-5-isopropoxy carbonylaminobenzimidazole (CBZ) se ha utilizado con mucha eficacia contra parásitos pulmonares y.gastrointestfnales de bovinos en dosis de 20 y 40 m/K (1,13,6,. - 10,20). Bello etal (3) utilizaron el mismo producto (CBZ) contra parásitos gastrointestinales de equinos y encontraron que en dosis de 15,20 y. 25 mgr/K. era efectivo en un 100 contra formas adultas e inmaduras de Parascaris eguorum; en un 100 contra Strongylus vulgaris; 70,6°' y. 99.5% contra formas. inmaduras y adultas de pequeños Strongylus respectivamente; 69.8% de formas inmaduras de Oxyuris eguf y en un 100% contra los adultos. No determinaron la eficacia del producto contra otros parásitos gastrointestinales debido a que los equinos no estaban infestados.. En este trabajo se utiliz6 el producto CBZ en' dosis de 20 y 40 mgr/K para determinar su efecto contra parásitos internos de'los equinos.. I&IOTEC.

(33) /. '3. MATERIALES Y METODOS. El presente estudio se real izó en el Laboratorio de Investigaciones Médicas Veterinarias (LIMV) utilizando para ello. 25. equinos que presentaban. una infestación natural de parásitos gastrointestinales. El trabajo se dividió en tres fases:. 3.1. Fase 1: Prevalencia de parésitós internos.. Se utilizaron cinco equinos de diferentes edadesy se determinó la población natural de parásitos mediante las técnicas Sloss, Dennis, Baerman y cultivo de materia fecal; estas técnicas aparecen en el anexo 2 y han sido descritas por Parra etal (18). 1. En el cultivo de materia fecal solo se utilizó un gramo de muestra por cada animaly los períodos de incubación se fueron variando de acuerdo con •. el desarrollo de las larvas. Inicialmente los cultivos permanecieron en in-. cubación a 22°C durante 15 días, pero este lapso de tiempo no fue suficiente para la/evolución de las - larvas hasta su estado infectivo y fue necesario prolongar el tiempo de incubación durante 15 dtas mas.. Durante. te tiempo se realizaron exámenes periódicos pará determinar. él tiempo óptimo de desarrollo larvario; la identificación de las larvas aisladas de los cultivos se hizo de acuerdo a las claves descritas en el anexo 1 (22).. Todos los' animales se acrificaron utilizando el sistema de electrocutación y se hizo un estudio minucioso 'del tracto gastrointestinal para el hallazgo de parásitos y las lesiones por ellos producidas en diferentes ór-.

(34) 18. -. -. *. ganos y tejidos.. Para el estudio del contenido gastrointestinal se separaron por liga-. dura antes de ser removidos el estómago, intestino delgado, colon mayor, colon menor, ciego y recto.. Para evitar el moco presente en el estómago y el intestino delgado se adicionó Bicarbonato de Sodio al 10%, 3 litros para el estómago y para el intestino delgado de acuerdo a la cantidad del material obtenido.. El contenido del estómago y del intestino delgado se pasó a través de un tamiz N 2 100, el material-recolectado se fijó en formol al 10°/y en el laboratorio se observó todo el contenido al Steroscopio.. Una cantidad aproximada del 10°' de lamucosa del estómago y del intestino delgado se removi ' eron por raspado y fueron digeridas en un medio artificial ' con el fin de dejar en libertad los parásitos en ellas contenidos.. - El contenido del colon mayor y ciego se lavaron por separado 3 veces -•. en 50 litros de solución salina fisiológica pasando cada vez el contenido por'tamices N 2 80 y 100. Después del tercer lavado se tomaron. 5. litros del. total agitanto vigorosamente cada dilución.. *. -. Solución para digestión de-tejidos. Pepsina HCL • H 2 0 destilada. 10 grs 30m1 100 ml. -. - • Por cada 20 gr de tejido se utilizaron 100 ml de la solución y se llevó a la estufa a 37°C por 12 horas..

(35) 19. Del colon mayor se examinó 1 litro en forma macroscópica y 500 ml al Steroscopio. Los. 5. litros obtenidos del ciego se examinaron en su totalidad. al Steroscopio para el hallazgo de parásitos.. El contenido del colon menor se lavó cuidadosamente pasándolo a través de tamices Na 60 y 80, se tomaron 5 litros de un total de 50 para examen Steroscópico.. El contenido del recto fue lavado a través de un tamiz N 2 60_y se examinó todo el contenido en forma macroscópica.. Se utilizó solución salina fisiológica para lavado de pulmones y en un tamiz N 2 100 se recogió el contenido y se examinó para Dictyocaulus arnfieldi. Los parásitos adultos recolectados en cada una.de las secciones gastrointestinales .se fijar'onen una solución de formol al 10% y para su identif icación se clarificarón con una solución de fenol al 10% y se le adicionó gli cerina pura en una proporción del 50?.. -. Para estudiar las lesiones producidas por los parásitos se inspeccionaron todos los órganos especialmente el estómago, intestino, pulmones, hígado, bazo, arter;ias iliacas y mesentéricas; se tomaron cortes de estos órganos y se fijaron en formol al 10. Posteriormente fueron procesados en autotechnicon. *. y cortados en un micrótomo. a 4 micras de espesor.. Autotecnicón, Model 2A)The Technicon Company, Chauncy, N.Y. .. Microtomemodel 280, A3erican Optical Company, Buffalo, N.Y..

(36) /. 20. y luego montados con Permount. (H.E.). y eosina. Los cortes fueron coloreados con 1-lematoxilina. para el estudiomicroscópico.. Antes del sacrificio se tom6 a cada uno de los animales 5 ml de sangre con anticoagulante (EDTA)* y se verificaron !os siguientes . análisis: Hematocrito, Hemoglobina, Numero absoluto y relativo de916bulos blancos.. 3.2. Fase 2: Efecto del compuesto 2-( 14-thiazoly1)-5-isoprOpoXY carbonylami 'no benzimidazole sobre parsitçs internos de equinos.. Se utilizaron 15 equinos de diferentes. edades con un peso promedio de 237 kilos y se distribuyeron al azar en 3 grupos de 5 animales cada uno.. Los 5 animales de cada grupo se colocaron en columnas para constituir. 5 bloques de 3 animales cada uno. La droga se utilizó en dosis de 20 y mgr por kilo de peso: Tabla 1.. Tabla 1. Bloques. Total. Distribucióftde los animales para el tratamiento.. -. Grupo. 2 3 i 5. 1 1 1. 1. 5. 5. III 1+0 mgr/K. II 20 mgr/K. 1 Control ,.. 1. 1 1 1 .. 5. . .. 1 1 1 1. 5. Hmatoxilin, Matheson Cdleman Be]] Division of the Matheson Company Inc., NorthWood Cincinati, Ohio, U.S'.A. Ethyl Eosin, Harleco, Hartmant LeddonCo. Philadelphia, Pa., U.S.A. Permount Fisher Scientific Company, New Jersey, U.S.A. EDTA (Ethylendiamine) Tetraacetic AcidDisodium Salt..

(37) .21. Para, el diseño experimentá.l se hicieron 2 exámenes de materia fecal a cada uno de los animales con. horas de intervalo y en la formaci6n de los. grupós se tuvo en cuenta los promedios de grandes y pequeños Strongylus.. Los promedios de pequeños y grandes Strongylus en los 15 equinos se colocaron en una columna en orden descendente y luego se fueran ordenando en 5. bloques de. animales cada uno. En esta forma los 3 animales del . bloque 1. tienen un mayor número de huevos .de prsitos; este número va disminuyendo con cada bloque,-de tal manera que el' bloque 5 tiene el menor número de parsitos.. Una ' vez formados los grupos se eligi6 al azar los tratamientos, esto se hizo tomando los' tres animales del primer bloque ' y ' con tres papeletas marcadas 'con lal dosis a utilizar se fueron'seleccfonando los tratamientos. Se hizo lo mismo para elsegundo bloque y así sucesivamente hasta el último.. La efectividad de la droga en diferentes dosis se midió mediante el recuento de huevos de 'parásitos, larvas infectantes y parásitos adultos obtenidos median. las técnicas: Sioss, Baermann, Dennis y cultivo de materia fecal. antes del.'ratamiento y 7 días-después ;'el estudio de los parásitos adultos se hizo mediante la necropsia de los equinos. 7. días después del tratamiento. En la necropsia se siguió la misma técnica utilizada en la fase 1.. Los tratamientos se hicieron durante 5 días-consecutivos; el primer día se trató el Bloque 1, el segundo día el número 2 y así sucesivamente hasta el' número 5, El sacrificio de. loL equinos. se hizo. 7.. días después de cada trata-. miento.. Durante el período experimental todos'los equinos se dejaron en un mis-.

(38) - / 22. • mo corral y se les suministró agua limpia y ensilaje a voluntad; 20 horas antes del sacrificio, se dejó cada animal en celdas individuales y durante este tiempo no se suministró ningún tipo de alimento.. - A cada uno de los animales se tomó 5 ml desangre con EDTA al 10? el día del tratamiento y 7 días después; estas muestras se sometieron a diferentes pruebas como se indica en el dísño experimental (Tabla 2).. Tabla 2.. Esquema del trabajo . real izado. DIAS PRUEBA. •. •.. .•._3. 1. Materia fecal Sloss • • Dennis. Baerman Cultilvot •. •. • 4.. :. X • '.. 2. Sangre . Ilematocrito Hemogl9bina GlóbulÓs blancos Sedimeñtación Recuento diferencial 3.. Peso. 0. • X, X X •. Tratariento Sacrificio. •. 0. X X X X X. •X X X X X. • X X X X X. X. -. X. X. -. X. X. -. X. X. -. X. X. -. X. X. -. X. -. X. -. -. -. x• -. X. . . • - •. •••.. +7. -. . ,• •. .. -.

(39) /. 3.3. 23. Fase 3. Control de ' parásitos internos en equinos.. En esta fase se uti11z6el mismo producto de la Fase 2 en dosis de 20 y 40 mgr/K y se determinó su efecto por el estudio de población de huevos de parásitos en las heces, cultivo ' de materia fecal y por los parásitos adultos eliminados con las deyecciones.. Se utilizaron 5 equinos procedéntes de la Estación Experimental "Carimagua" y se distribuyeron en 3 grupos corno se indica en la Tabla 3.. Tabla 3. Control de parásitos internos en equinos con el producto 2-(4-thiazoiil)-5-isopropoxy carbonylamíno benzimidazole. Grupo. Nz animales. 1. 2. 2Í. 2... 3. •1. Vía. Dosis. .20 mgr/.K 40 mgr/K. .. Oral Oral. Ant s del tratamiento se hizo examen de parásitos por medio de las técnicas Sloss, Dennis, Baerman y cultivo de materia fecal (7,18) y. se continuó examinando lasde''ecciones diarias en forma macroscópica hasta cuando no se observaron parásitos adultos en las heces. Todos los animales se tuvieron en corrales individuales y se les suministró ensilaje y agua corriente.. .. •. ••. .. •. '. Antes del tratamiento e tomó a cada uno de los equinos 5 ml de sangre 'con anticoagulante y se determinó el Hematocrito, Hemoglobina, Número absoluto y relativo de glóbulos blancos..

(40) /. 4. RESULTADOS. • 4.1. Fase 1. Prevalencia de parásitos internos en equinos.. El . propósito de esta fase 'fue conocer la población natural de parsL' tos gastrointestinales en equinos, indicando su localización y lesiones producidas en órganos y tejidos; además la influencia de los parásitos en los valores sanguíneos.. El estudio de prevalencia de parásitos se hizo mediante la identificación de huevos de parásitos, larvas infectivás y parásitos adultos. Los resultados obtenidos,en esta fase se, describen en la , forma siguiente. 4.1.1 Parásitos adultos.. .. Los parásitos adultos aislados del tracto gastointestinal de los equi.nos estudiados, revelan una alta prevalencia de nemtodos (Tabla. 4),. predo-. minando 'los de local ización en el colon 'mayor (Tabla 5). La distribución por géneros y especies en todo el tracto digestivo está de acuerdo con la citada por'varios'autores (56,8,13,14,21,22).. La población de parásitos de equinos expresada en términos de porcentaje de animales infectados reveló la presencia del Trichonema sp , (Fig 1 y 2) • en el 100? de los casos con un promedio de parsito.s por animal de 70.629. Siguieron en orden de importancia Oxyuris egui en el 80 con un promedio por animal de 7.805; Strongylus vulgaris en el 60 con un promedio de 2.120; Anoplocephala perfoliata en el 60? con un promedio por animal de 208 parásitos; Strongylus edentatus en el 609 con un promedio de 100 parásitos por animal; Trichostrongylus ¿xei en el 40 con un promedio de 4.274 parásitos; Triodon-.

(41) / 25. tophorus sp en el 40% ,con un promedio de parásitos por animal de 2.913; Strongylus equinus . en el 1i0°/ con un promedio de 708; Probstmayria 2p en el 20% con un promedio de 1.280; Gyalocephalus 2p en el 20% con un promedio de 60 parásitos; Poteriostomun sp en el 20% con un promedio de 8 . por animal; Parscaris equorum en el 20 0/0 de los animales y un promedio de 3 parásitos y Dictyocaulus arnfieldi en el 20% de los casos con un promedio de parásitos por animal de 10. En la m.yoría de los parásitos aislados se encontr6 un predominio de hembras que de machos y solo en el caso de Oxyuris equl se encontró una mayor población de estados inmaduros (Tabla 6).. 4.1.2 Población de larvas infectantes.. Los resultados obtenidos en lbs cultivos de materia fecal se incluyen (Fig. en la tabla 7, se observa un predominio de Trichonema. con un por-. centaje de 47.7%. Las otras larvas infectantes aisladas fueron: Trichostrongylus axei 39.9%; StrongyIus vulgaris (Fig k) con un porcentaje-de 11.9% y Strongylus edentatus 0.5%.. .. .. .. El tiempo óptimo de incubación para todos los cultivos fue de 25 días y las larvas aisladas presentaron células intestinales bien definidas faci litndose así la identificación.. .. 4.1.3 Huevos de parásitos en la materia fecal.. La poblaoión parasitaria expresada en términos de porcentaje de huevos por gramo de heces en los equinos estudiados es la siguiente: Pequeños Strongylus 100%; grandes Strongylus 80%; AnoplocephaIa perfol iata 60%;.

(42) /. 26. Trichostrongylus 14 0°/; Parscaris 20°; Dictyoca.uluS 20°. Estos resultados. concuerdan con la identificación de los parásitos adultos;. sin embargo, por el examen de materia fecal solo es posible relacionar los parásitos en grupos y en muy pocos casos se puede identifiár el género y especie.. 1 .1 1i Patología Macroscópica.. .. .. Los cambios macroscópicos rns sobresalientes se observaron en estómago intestino grueso, hígado, arterias ilíacas y mesentéricas.. Los cambios macroscópicos variaron grandemente en intensidad, y estas variaciones coincidieron con el grado de parasitismo.. En el estómago se observaron cambios leves desde ligera congestión hasta una severa inflamación (Fig. 5)' Y. úlceras sangrantes en las regiones fúndi-. -- ca y cardial. El intestino delgado no ofreció cambios morfológicos apreciables pero el intestino grueso en la totalidad de los animales examinados presentaba severa congestión de la mucosa y múltiples nodulaciones pequeñas en las , cuales se alojaban uno o más paraitos especialmente pequeños Strongylus.. En el hígado solo fueron manifiestos algunos cambios en su coloración notándose especialmente áreas de color amarillento y pequeños focos necróticos calcificados debido al paso de larvas de parásitos.. En arterias ilíacas y mesentéricas se observó trombos y aneurismas con presencia de larvas de Strongylus en el 80°/ de los casos estudiados y en el. 60 de los mimos la lesión fue muy severa; solo se observó larvas de Stronylus vulgaris localizadas en estos sitios (Ffg 6)...

(43) / 2?. 14.1.5 Patología Microscópica.. 5:. Las lesiones microscópicas variaron notoriamente en el grado depresentación; las principales lesiones se observaron en estómago, intestino grueso, hígado, arterias ilíacas y mesentéricas (Tabla 8) y en algunos casos se apreciaron lesiones en otros órganos como bazo y riñón.. 14.1.5.1 Estómago.. -Las le5iones se caracterizaron por hiperpiasia y acantosis epitelial, edema de la submucosa y de las capas musculares. En la región ftndicase observó la presencia de nemtodos en la mucosa, calcificaciones en la íntima de arterias de la serosa con hiperpiasia medial (Fig7).. 14.1.5.2. Intestino grueso.. Las lesiones más características fueron: enteritis crónica ulcerativa; gramuloma parasitario, necrosis caseosa y lesiones degenerativas en todos -. los vasos arteriales de la submucosa; en la mucosa se observó hiperplasia de células cal ¡ciformes e inclúídos en la lámina propia se encontraron segmentos de nemtodos en cortes transversal y longitudinal (Fig 8).. 14.1.5.3 Hígado. En este órgano las principales lesiones se caracterizaron por una marcada congestión sinusoidal, infiltración grasa difusa, hiperplasia de células de Kupffer y de conductos biliares, engrosamiento de la cápsula de Gilsson (2-3 veces),y en ocasiones congestión pasiva centrolobulillar difusa..

(44) / 28. 4.1.5,11 Arterias ilíacas y mesentéricas.. La lesión principal observada fue una arteritis crónica trombótica; en la capa media se encontraron zonas de necrosis .y calcificaciones mltipies con reacción inflamatoria periférica e infiltración de linfocitos, células plasméticás y eosinófilos. Se observaron en algunos focos de necrosis cortes transversales de nemétodos rodeados por intensa infiltración de leucocitos especialmente neutrófilos y eosinófilos (Fi . g 9).. En otros órganos como el bazo se observó una marcada deplesión linfoide de la pulpa blanca, hiperplasia reticular en pulpa roja y exceso de hemos iderina.. En ningún caso se observó lesión en ganglios linfáticos, glándulas adrenales y miocardio.. 4.1.6 Patología clínica. •. - Los valores hemáticos obtenidos de los animales estudiados, solo reve-. lan un aumento de formas inmaduras de polimorfos nucleares neutrófilos (Bandas) (Tabla 9) debido a una neumonía aguda. Los demás valores no muestran cambios aparentes por la acción parasitaria.. 4.2. Fase 2:- Efecto del compuesto 2-(4-thiazolil)-5-isopropoxy carbonylamino benzimidazole sobre parásitos gastrointestinales en equinos.. El objetivo de esta fase fue conocer la actividad antihelmíntica de un derivado del Thiabendazole en equinos utilizando dosis de 20 y L+O mgr de dro-' ga pura por kilo de peso. La efectividad se midió mediante el estudio de huevos de parásitos, larvas infectantes,- antes y después del tratamiento y por.

(45) / 29. el hallazgo de parásitos.adultos aja . necropsia de los animales. Se estudi6. además los cambios histol6gicos y hemáticos producidos por los parásitos. El esquema seguido en esta fase fue el siguiente.. 4.2.1 Examen coproparasítario.. -. Los parásitos se cias ificdron en 6 grupos mediante el reconocimiento de los huevos en las heces (Tabla 10) y se pudo apreciar un predominio de pequeños Strongylus en los 3 grupos experimentales. En el grupo 1 (Control) se observ6 un total de 4.163 huevos de pequeños Strongylus por gramo de materia fecal mientras que en los grupos 1 (Tratado con 20 mgr/K) y III (Tratado con-40 mgr/K) los recuentos obtenidos fueron de2.791. y 3.502 huevos por gramo respectivamente antes del tratamiento. En orden de importancia siguí6 el Trichostróngylus del cual se encontr6 1.027 huevos por , gramo en el grupo 1, 401 huevos pdr gramo en el grupo II y 474 huevos por gramo en el grupoili; sin embargo en la formac-ión delos grupos solo se tuvo en cuenta el promedio por animal de pequeños y grandes Strongylus (Tab:l(a 11); el promedio de estos ltinios fue de 166, 91 y. 112 huevos por gramo de heces para los grupos 1, II y III resp1ctivamente antes del tratamiento. Los resultados obtenidos a la necropsia revelan una disminuci6n en el nimero de huevos de parásitos para los grupos II y III (Tabla 12), aunque en el grupo III se contabiliza los resultados de un equino muerto un día después del tratamiento.. 4.2.2 Parásitos adultos. Los parásitos adultos. elcontrados a la necropsia de los 3 grupos expe-. rimentales aparcén en la tabla 13; el mayor número de: parásitos encontrados corresponde al grupo control el cual no recibió tratamiento (Fig lo). Se observó una mayor poblaci6n de pequeños Strongylus en todos los grupos; el nú-.

(46) 1. 3Q. mero elevado de parásitos en el grupo tratado con una dosis de 40 mgr/K e debido a que un animal murió un día después del tratamiento a consecuencia de neumonía aguda (no debida a la droga) y es de suponer que en ese lapso de tiempo tan corto la droga no había tenido efecto contra los ' parásitos.. Se identificaron 4 géneros de parsitós pertenecientes al grupo de pequeños Strongylus y 3 especies de grandes Strongylus y se midió la efectividad de los tratamientos contra cada uno de ellos (Tabla 14), notándose una gran disminución parasitaria en 'los dos grupos tratados.. Los parásitos se encontraron distribuidos en todo el tracto gastrointestinal, conservando cada uno su locálizaci6n preferencial (Tablas 15, 16, 17), observándose una mayor prevalencia de nemétodos en el colon mayor para los tres grupos experimentales. Solo sé observó la presencia de parásitos - pulmonares en un animal - del grupo control.. -. En términos generales se encontró una mayor población de hembras qjie de machos, aunque en algunos casos como Triodontophorus sp, Strongylus equinus, Poteriostomun sp y Probstrnayria sp,hubo una mayor prevalencia de machos • que de hembras (Tabla 18).. 4.2.3 Parásitosadultos encontrados en materia fecal.. Después del tratamiento los animales se observaron diariamente y se examinó la materia fecal eliminada, se aislaron parásitos dR las heces 3 días después del tratamiento hasta el día Ten los grupos tratados (Fig 11)..

(47) /. 31. Se ¡dentific.aron 6 especies de parásitos 'adultos en la materia fecal y el mayor número correspondió a Trichonema , sp encontrándose un total de 132 parásitos de los cuales 109 fueronhembras (Tabla 19). « lj.. .1'. j+ Población de larvas infectantes. Los resultados obtenidos de los cultivos de materia fecal indican una. mayor población de los géneros Trichonema y Trichostrongylus antes del tratamiento (Tabla 20); se observa una notoria disminución en el número de larvas 7 días después del tratamiento pero no se aprecian diferencias significativas entrelos dos grupos tratados con distintas dosis.. L. .2.5. Efectividad de los tratamientos.. 'El efecto del producto utilizado en dosis de 20 yLO mgr/K sobre parásitos gastrointestinales de equinos se midió teniendo en cuenta los 6 grupos de parásitos descritos en la Tabla 9.. - Para el análisis estadístico se tuvo en cuenta los recuentos de hue-. vos de parásitos pór gramo de materia fecal antes del tratamiento y 7 días después del él; igualmente se tuvo en cuenta los parásitos adultos encontrados a la necropsia. Para este análisis no se tuvo en cuenta un animal tratado con una dosis de. LO. mgr/K de drcga el cual murió un día después del. tratamierto. En el análisis de covarianza fue necesario utilizar la transformación • YVT para los grupos Paráscaris eguorum, pequeños Strongylus y Trichostrongylus axei.. -. De acuerdo con las figuras 12 y 13 se puede observar que la droga fue altamente efectiva contra Trichostrongylusaxei, grandes y pequeños Strongylus,.

(48) / 32. sin embargo no se encontró diferencias significativas para las dosis de 20 y 40 mgr/K a los niveles. 5. y 1?.. La droga fue efectiva contra Oxyuris equí adultos pero no se apreciaron diferencias entre los dos tratamientos.. No hubo ninguna efectividad contra Anoplocephala perfoliata y contra Par'ascaris eguorum solo se présentó significancia a la dosis de 40 mgr/K.. 4.2.6 Hematología.. -. En la tabla 21 se incluyen los resultados de los exámenes-sanguíneos promediados para los 3 grupos antes y después del tratamiento; todos los valores obtenidos están dentro de los límites descritos por algunos autores (16).y noseobservan variaciones significativas entre los resultados antes y después del tratamiento en ninguno de los grupos.. -. 4.2.7 Patología macroscópica.. Se oservaron cambios macroscópicos especialmente en estómago, intestino grueso, hígado, • arterias ilíacas y mesentéricas. Los cambios variaron en intensidad, desde simples lesiones congestivas hasta úlceras sangrantes y laceraciones generaliiadas por la presencia de abundantes tenías especial•. mente a nivel de la válvula iliocecal donde se presentaron verdaderos taponamientos por el gran ntmero de ellas ( Fig 14 ). En la mucosa del intestino grueso se observaron nodulaciones múltiples por la presencia de larvas de Stror)gyl'i:dos y ademés abundantes tenias ( Fig 15 ). En el hígado solo se observaron quecinos.. cambios en la col!ración y la presencia de pequeños focos blan-. •.

(49) / 33. Los cambios fueron muy manifiestosa nivel de arterias ilíacas y mesentéricas las cuales presentaron trombos y aneurismas de diferente tamaño con la presencia de formas inmaduras de Strongylus vulgaris en número variable.. De los. 15 animales examinados el '73% presentó lesiones en arterias ilíacas y mesentéricas y en el 63% de estos las lesiones fueron muy severas, mientras que en el 37% restante las esionés fueron consideradas como leves.. 4.2.8 Patología microscópica.. .Los cambios microscópicos observados tuvieron una intensidad variable en todos los animales observados; los principales órganos afectados fueron: Estómago, intestino grueso, hígado, bazo, arterias ilíacas y mesentéricas (Tabla 22); además se presentaron lesiones en otros órganos como en los pulmones y en e riñón.. :.. Los principales cambios observados fueron:. Estómago.. .. .. . .. En l región cardial se presentó edema de la submucosa y de las capas musculares, hiperplasia y aantosis epitelial con hipertrofia de las capas •. musculares; úlceras en la mucosa con reacción inflamatoria en los bordes especialmente constituída por infiltraciones de polimorfos nucleares neutrofi•. lón (Fig 16).. .. .. .. En la región fúndica se presentó necrosis de coagulación del epitelio y del extremo distal de las g éndulas de la lámina propia. Marcada hiperpiasia de la mucosa con presencia de variosnemátodos (Fig 17)..

(50) •1 34. 4.2.8.2 Intestino grueso.. El intestino grueso presentó enteritis crónica necrótica, ulcerativa, .hemorrégíca, parasitaria; hiperplasia de las glndulas caliciformes de las criptas de l.ieberkum; en la lámina propia, marcada infiltración celular principalmente linfocitos, macrófagos, células plasméticas y eosinófilos. En la submucosa se presentó congestión de vasos sanguíneos y dilatación de linfáticos, además de la prol iferación de tej ido conjuntivo fibroso (Ng 8).. En la mucosa se observó úlceras con necrosis e infiltración muy marcada de eosfnófilos en el foco necrótico. También hipertrofia muy marcada de las capas musculares, edema generalizado y degeneración de algunas fibras musculares y presencia de estructuras parasitarias con la característica de nemátodosl En el interior de la masa muscular se observó la presencia de múltiples gránulos de'color pardo amarillento que correspondería a hemosiderina; el cuadro represénta un "Hemomelasma" parasitario.. 42.8.3 Hígado.. La cpsula de Giisson se encontró aumentada de tamaño, hasta unas 2030 veces su grosor normal, fuertemente infiltrada de eosinófilos, marcada proliferación dé tejido conjuntivo a nivel de triadas portales y perilobulillar, infiltrado a su vez de linfocitos.,. macrófagos, células plasméticas y principalmente eosinófil, os. El cuadro general del hígado corresponde a una cirrosis portal, hepatitis necr6ticip multifocal, grariulomas eosfnoftl icos,. hi.perpla.siabiliar y endoart iritis eosinofílica (Ng 18).. 4.2.8.4;Arterias ilíacas y mesentéricas. Se observó una destrucción total de las estructuras histológicas,.

(51) /. 3 5.. necrosis externa y proliferación de tejidoconectivo fibroso infiltrado por poliformos nucleares neutrófilos, células plasmáticas, macrófagos y eosinófilos; además se observaron cortes ' transversales de nemátodos en trombos organizados rodeados por intensa reacción inflamatoria especialmente de neutrófilos y eosinófilos (Fig 9).. .2.8.5. Bazo.. En algunos casos se observó en este órgano deplesión linfoidea, hiperplasia reticuloendotel ial y exceso de hemosid erina enla pulpa roja... 4.2.8.6 .. Riñón.. En este órgano los principales cambios observados fueron una ligera congestión y nefritis crónica intersticial. A partir de la cápsula se ob- serv6 proliferación de grandes cantidades de tejido fibroso constituído principalmente por fibras colágenas y algunas elásticas; además se observó intensa infiltración de polimorfos nucleares neutrófilos, macrófagos y eosinófilos]en el interior de-esta capa fibrosa. No se encontraron lesiones en otros organos. Fase 3. - Cdrtrol de parásitos gastrointestinales de equinos.. En esta fase se utilizó la misma droga de la Fase. 40 mgr/K/y. 2. en dosis de 20 y. el principal objetivo fue valorar su efectividad por la elimina-. ción de parásitos adultos con las deyecciones y de acuerdo al numero de huevos y larvas de parásitos en(la materia fecal antes y después del tratamien-. to. Se obtuvieron los siguientes resultados:. '.

(52) /. 36 1+3.1 Parásitos adultos eliminados con' las heces. En la materia fecal de los equinos tratados en la Fase. 3 se aislaron. tres epecies de parásitos: Trichonema sp, Strongylus vulgaris y Oxyuris e-. 23), desde el día 2 hasta el día. qui. 5. después del tratamiento.. El principal parés.ito aislado fue Tríchonema sp con un total de 116 parásitos de los cuales 99 fueron hembras y se hallaron en un equino tratado con una dosis de 20. mgrlK. 2 días aespues, del tratamiento.. 4.3.2 Examen de materia fecal. Lbs resultados indicaron una disminución progresiva en el número de huevos de Strongylus por gramo de materia fecal hasta el día 7 después del tratamiento,1 pero no se observó diferencias significativas en los equinos tratados con distintas. dosis de la droga (20 y 40 mgr/K) (Tabla 24).. 4.3.3 Población de larvas infectantes. En. cultivo de materia fecal se aislaron larvas infectantes de los. siguientel parásitos: Trichonema p; Strongylus vulgaris; Strongylus edentatus y Trichostróngylus axei.El géneró Trichonema se encontró en mayor número yse observó —una marcada reducción de este , parásito en losdos grupos de animales tratados (Tabla 25).. 0•,./. 1•..

(53) /. 5. DISCUSION. En los últimos años las explotaciones equinas del país se han venido incrementando notoriamente debido a las múltiples modal idades de especial 1zación. No obstante, se ha tenido serias limitaciones debido a factores adversos tales como las enfermedades infecciosas y parasitarias.. Se han descrito unas 75 especies de parásitos internos que pueden afectar los ecuinos, pero en nuestro país solo se conocen algunas de ellas debido a que los trabajos se han hecho únicamente en forma fragmentaria, pero a pesar de esto, los resultados indican que se encuentran extraordinariamente difundidos afectando la casi totalidad de la poblaci6n equina del país (2,15). En el presente trabajo todos los animales estudiados presentaron a la necropsia una alta prevalencia de parásitos gastrointestinales y en todos ellos se observó.un predominio de pequeños Strongylus sobre los , demás parésitos. Los mismos resultados se obtuvieron al identificar formas inmaduras aisladas de cultivos-de materia fecal y por recuento de huevos de parásitos mediante la técnica de Sloss descrita por Parra etal (18).. Sin embargo, estos resultados no concuerdan con los obtenidos por Mateus(15), quien en estudios parciales, por, medio de exámenes fecales y utilizando 100 equinos determinó una mayor incidencia de grandes Strongylus. Esta disparidad de criterios se debe probablemente a las técnicas de identificación empleadas ya que la identíficaci6n de los parásitos gastrotntestinales de equinos por el examen de materia fecal solo permite relacionarlos por grupos y no es posible hacer la identificaci6n de géneros y especies.

(54) / 3. en la mayoría de ellos (7);. pór esta razón, los resultados obtenidos en el. presente estudio permiten indicar quela identificación de los parásitos es más precisa cuando se combinan diferentes técnicas como el examen de materia fecal, cultivde heces y aislamiento de parásitos adultos a la necropsia de los animales En el cultivo de materia fecal.se obtuvieron larvas' infectantes en un tiempo óptimo de desarrollo de. 25. días a una temperatura aproximada de 18°c. y alta humedad; estos resultados están de acuerdo con Soulsby (22), quien establece tiempo - de 15 a 20 días o más para el desarrollo de las larvas hasta el estado infectivo con temperatura por debajo de 26°C. Por este método fue posible diferenciar los parásitos hasta género ' especie por el número y forma de las células irÇtestinales (22) (Fig 19).. Los párásitos se' encontraron distribuídos a través de todo el tracto gastrointestinal y la localización de cada'uno de ellos coincidió con la descrita por los autores citados (5,7,8,13,21,22), apreciándose un mayor. 1 número.de. ellos en el colon mayor.. En Colombia se han estudiado 23 parásitos gastrointestinales en equinos (15). En este estudio se aislaron 13 especies de parásitos de los cuales 2 géneros (Poteriostomun yGyalocephalus) de la familia Trichonematidae se describen 'por primera vez en Colombia' , además se confirma la existencia de otro parásito (Probstmayria vivipara) reportado por Parra y.Betancourt (17) y el cual fue descrito como un nernátódo perteneciente a la superfamilia. Oxyuroidea sn ninuna acción patógena; se localiza preferencialmente en colon 'mayor, colon menor y ciego. La identificación de los ,parásitos estudiados se hito de acuerdo con los métodos de Dum (7), Georgi (11), Popova (19) y Souls-.

(55) /. by (22).. Los cambios macroscópicos y microscópic9s observados en los diferentes rganos y tejidos muestran claramente la patogenicidad de los parásitos y esta patogenfcidad está dada por la capacidad migratoria de ellos o por su' localización dentro de . los tejidos (13,22).. Se destacan las lesiones histoatól6gicas observadas en el estómago como hiperplasia y acantosis epitelial con hipertrofia de las capas musculares, úlceras en la mucosa con reacción inflamatoria y además hiperplasia de la mucosa gástrica; estos cambios fueron producidos posiblemente por el Trichostrongylus axei, ya que las lesiones coinciden con las descritas por los autores citados (5,11,16,21,22).. ... .. .. No se-apreciaron cambios morfológ fcos notorios en el intestino delgado y ésto se debió tal vez a que en ningúnanfrnal experimental se observó un número suficiente de nemtodos o céstodos pará producir lesiones.. Los segmentos intestinales más afectados fueron el colon mayor y el ciego; las lesiones mas apreciables fueron hiperplasia de las glándulas caliciformes de las criptas de Lierberkum, pérdida por descamación del epitelio de revest,imiento;en la lámina propia, marcada infiltración celular princi palmente linfocitos, macrófagos, células plasmfticas y eosinófilos; se observó la presencia de úlceras con necrosis de la mucosa e infiltración muy marcada de células eosinofílicas en los focos necróticos además cortes transversales y longitudinales de nemftodos.. .. 1 cuadro, en general representa una enteritis crónica ulcerativa y pudo ser ocasionada por grandes Strongylus, céstodos y pequeños Strongylus ya...

(56) /. 40. quede acuerdo con algunos autores (8,11,14,21,22), 'estos parásitos se ad'hieren fuertemente a la mucosa para succionar sangre (grandes Strongylus) o en sus estados inmaduros se localizan dentro de la mucosa formando granulomas (pequeños Strongylus) o como en el caso de los céstodos producen úlceras sangrantes en el sitio de adhesión, tal como se observó en este estudio.. El parásito más patógeno encontrado posiblemente fué el Strongylus vulgaris ya qué de acuerdo con Soulsby (22) y otros autores (8 14,21), su capacidad migratoria le permite alterar el funcionamiento de órganos como el hígado y principalmente las arterias ilíacas y mesentéricas en donde produce una endoarteritis trombótica y aneurismas que pueden ocluir totalmente las arterias. Las lesiones encontradas en estas arterias (arteritis necrótica y trombosis parasitarias) coinciden con las citadas anteriormente y solo se encontró en estos sitios, Larvas L4 y L5 de Strongylus vulgaris.. En el hígado se presentó más notoriamente una hepatits necrótica mul-' tifocal y cirrosis portal debida posiblemente al paso de larvas de las 3 especies de grandes Strongylus.. De acuerdo a los resultados obtenidos, la droga utilizada fue altamente efectiva endosis de 20 y 40 mgr/K bontra formas adultas e inmaduras de Trichostrongylus axei, pequeños y grandes Strongylus y contra adultos de Oxyuris equi. El producto solo fue efectivo contra Paráscaris equorum en dosis de 40 mgr/K y no tuvo ninguna acción en las dosis utilizadas contra Anoplocephala perfoliata. Estos resultados no están de acuerdo con Bello etal. (3) quienes encontraron una efectividad del 100°i contra formas adultas e inmaduras de Paráscaris eguorum en dosis de 15,20 y 25 mgr/Ky además encontraron una efectividad relativamente baja contra grandes Strongylus (70.0) y pequeños Strongylus (69.8?).. hI07cM. '. '.