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Proyecto:

AISLAMIENTO Y EVALUACIÓN DE LA

CAPACIDAD ANTAGÓNICA DE ENEMIGOS

NATURALES NATIVOS DE COSTA RICA

CONTRA NEMATODOS FITOPARÁSITOS,

BACTERIAS Y HONGOS FITOPATÓGENOS

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Personal Responsable

Coordinador general: PhD Víctor Cartín Leiva.

Escuela de Ciencias Agrarias.

Co-coordinadora: MSc Martha Orozco Aceves.

Escuela de Ciencias Agrarias.

Co-coordinador: MSc Fabio Chaverri. Escuela

de Ciencias Ambientales.

Nematólogo: MSc Alejandro Esquivel. Escuela

de Ciencias Agrarias.

Fitopatólogo: MSc German Rivera. Escuela de

Ciencias Agrarias.

Micorrizólogo: MSc Eduardo Salas. Escuela de

Ciencias Agrarias.

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Lugar donde se llevará a cabo

Laboratorio de Biología y Ecología de

los organismos del suelo y control

biológico. ECA.

Laboratorio de Nematología. ECA.

Laboratorio de Fitopatología. ECA.

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Control de Poblaciones

CONTROL

NATURAL ANTAGONISMO

CONTROL BIOLÓGICO

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ANTAGONISMO

Acciones contraproducentes entre organismos o

grupos de organismos. Puede ser de 4 tipos:

Competencia

Antibiosis

Micoparasitismo

Estimulación de defensas de la planta

Principio Ecológico: Todo organismo tiene un

enemigo natural que lo antagoniza.

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OBJETIVOS

General

Establecer una colección de enemigos

naturales nativos de Costa Rica que

presenten potencial para ser utilizados

como

controladores

biológicos

de

nematodos fitoparásitos, bacterias y

hongos fitopatógenos en arroz.

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Continuación Objetivos

Específicos

• 1. Aislar enemigos naturales de nematodos fitoparásitos, enemigos naturales de bacterias y hongos fitopatógenos y cepas de hongos micorrizógenos mediante diversas técnicas a partir de suelo de campos arroceros.

• 2. Evaluar la patogenicidad

in vitro

de los enemigos naturales aislados contra

Meloidogyne

spp. contra

Sarocladium

oryzae

,

Pyricularia

grisea,

Thanatephorus cucumeris

,

Helminthosporium oryzae

y

Pseudomonas fuscovaginae

para seleccionar los más eficientes.

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Continuación Objetivos

• 3.

Evaluar la efectividad en plantas de arroz

de los enemigos naturales seleccionados

contra

Meloidogyne

spp. y contra algunas

bacterias y hongos fitopatógenos a nivel de

invernadero.

4. Evaluar el efecto protector contra

Meloidogyne

spp. de las cepas de hongos

micorrizógenos aislados de plantas de arroz.

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Proceso de Escalamiento

AISLAMIENTO

PATOGENICIDAD in vitro

PATOGENICIDAD EN INVERNADERO

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Metodología

Muestreo: zonas arroceras del país.

Muestras: suelo y plantas que

presenten síntomas de afección por

nematodos y plantas sanas.

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Aislamiento de Enemigos Naturales

de Nematodos

Metodologías:

EN de huevos

EN de estadíos vermiformes

EN de hembras expuestas

Parásitos misceláneos:

Pasteuria penetrans,

Paecilomyces lilacinus, Nematophtora

gynophila Pochonia chlamydosporia

y

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Aislamiento de Enemigos Naturales

de Bacterias y Hongos Fitopatógenos

Metodología:

Diluciones y vaciado en placa de suelo y

hojas sanas.

Observación directa de microorganismos:

Trichoderma

spp.,

Gliocladium

spp.,

Paecilomyes

spp.,

Bacillus

spp.,

Pseudomonas

spp., actinomicetes, cianobacterias.

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Aislamiento de Hongos

Micorrizógenos

Metodología:

Flotación en solución de azúcar y

cribado.

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Pruebas de Antagonismo

in vitro

Enfrentamiento entre los patógenos y

los “posibles” antagonistas en platos

petri.

Selección de los más efectivos para

probarlos en la siguiente etapa en

invernadero.

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Pruebas de Antagonismo en Invernadero

Nematodos:

• Inoculación de suelo previamente esterilizado con larvas (J2) de

Meloidogyne

spp.

• Inoculación de semillas de arroz con los enemigos naturales aislados utilizando CMC.

• Diseño de bloques al azar con los siguientes

tratamientos: antagonistas de a) huevos, b) estadíos vermiformes, c) hembras, d) mezclas de

antagonistas, e) CMC, f) nematicida químico y g) plantas no tratadas.

• Cosecha de plantas y medición de: peso de plantas, peso de raíces, no. de nódulos por planta, nódulos por g de raíz, no. de agallas por planta, agallas por g de raíz y no. de J2 por g de suelo.

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Pruebas de Antagonismo en

Invernadero

Bacterias y hongos fitopatógenos

• Plantas de arroz en potes.

• Diseño de bloques al azar con 10 repeticiones con los tratamientos: a) enemigos naturales seleccionados

en la prueba

in vitro

individualmente y en mezclas, b) fungicida químico, c) plantas no tratadas.

• Aspersión vía foliar de los enemigos naturales y

posteriormente aplicación vía foliar de los patógenos

• Variables a medir: llenado de vainas, número de espigas y tamaño de espigas.

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Productos Esperados

Colección de antagonistas de nematodos fitoparásitos, bacterias y hongos fitopatógenos con potencial para ser utilizados como controladores biológicos en arroz.

Al menos tres trabajos de tesis desarrollados por estudiantes de licenciatura o posgrado.

Al menos tres artículos científicos publicados en revistas nacionales.

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Mecanismos de Difusión

Dos encuentros con productores para

exponer resultados.

Publicación de artículos científicos.

Presentación a CONARROZ de tres

avances del proyecto.

Trabajos de tesis.

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Control biológico de patógenos en arroz

International Rice Research Institute.

Filipinas.

Patógenos

: Rhizoctonia solani, Sclerotium

oryzae, Pyricularia grisea, Sarocladium oryzae

y

Fusarium fuijkuroi

.

Antagonistas bacterianos:

Pseudomonas

spp.,

Bacillus

spp.,

Serratia

spp. y

Erwinia

spp.

Antagonistas fúngicos:

Trichoderma

spp.,

Penicillium

spp.,

Myrothecium verrucaria,

Chaetomium globosum

y

Laerisaria arvalis

.

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Continuación

Pyricularia oryzae

con

Trichoderma

harzanium

y

Chaetomium globosum

.

Otros controladores:

Micromonospora

spp.,

Trichotecium roseum, Gliocladium roseum

.

Grecia.

Rhizoctonia solani

con

Trichoderma

harzianum

. Venezuela.

Rynchosporum oryzae, Helmintosporium

oryzae

y

Cercospora oryzae

con

Trichoderma

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Fortalezas

• Personal con gran experiencia y trayectoria en la UNA.

• Laboratorio de Fitopatología: experiencia en

aislamiento y pruebas de patogenicidad

in vitro

de antagonistas vs hongos y bacterias fitopatógenas. • Laboratorio de BEMS: aislamiento de hongos

nematófagos (

Candelabrella musiformis, Arthrobotrys

oligospora, Dactylella

spp.)

• Pruebas

in vitro

vs nematodos gastrointestinales de rumiantes.

• Varias cepas de

Trichoderma

spp. que actúan vs nematodos fitoparásitos.

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