DESARROLLOS DE NIVELES GUIA NACIONALES DE CALIDAD DE AGUA AMBIENTE CORRESPONDIENTES A MALATION Diciembre 2004 INDICE

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Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión

DESARROLLOS DE NIVELES GUIA NACIONALES DE CALIDAD DE AGUA AMBIENTE CORRESPONDIENTES A MALATION

Diciembre 2004

INDICE

pág.

I) Aspectos generales ... I.1 II) Niveles guía de calidad para fuentes de provision de agua para consumo humano

correspondientes a malatión ... II.1 II.1) Introducción ... II.1 II.2) Cálculo del nivel guía de calidad de agua para consumo humano ... II.2 II.3) Remoción esperable de las tecnologías de tratamiento ... II.2 II.4) Especificación de niveles guía de calidad para la fuente de provisión ... II.2 II.4.1) Fuente superficial ... II.2 II.4.2) Fuente subterránea sin tratamiento o cuando éste consiste en una cloración

(tratamiento convencional) u otra técnica de desinfección ... II.2 II.4.3) Fuente subterránea con tratamientos especiales ... II.3 II.5) Categorización de las aguas superficiales y subterráneas en cuanto a su uso como

fuente de provisión para consumo humano ... II.3 III) Nivel guía de calidad de agua ambiente para protección de la biota acuática

correspondiente a malatión (aplicable a agua dulce)... III.1 III.1) Introducción ... III.1 III.2) Derivación del nivel guía de calidad para protección de la biota acuática ... III.1 III.2.a) Selección de especies ... III.1 III.2.b) Cálculo del Valor Agudo Final ... III.4 III.2.c) Cálculo del Valor Crónico Final ... III.6 III.2.c) Establecimiento del nivel guía de calidad para malatión correspondiente a

protección de la biota acuática ... III.6 IV) Nivel guía de calidad de agua ambiente para protección de la biota acuática

correspondiente a malatión (aplicable a agua marina) ... IV.1 IV.1) Introducción ... IV.1 IV.2) Derivación del nivel guía de calidad para protección de la biota acuática ... IV.1 IV.2.a) Selección de especies ... IV.1 IV.2.b) Cálculo del Valor Agudo Final ... IV.2 IV.2.c) Cálculo del Valor Crónico Final ... IV.3 IV.3) Establecimiento del nivel guía de calidad para malatión correspondiente a

protección de la biota acuática ... IV.4

IX) Técnicas analíticas asociadas a la determinación de malatión ... IX.1

X) Referencias ... X.1

XI) Historial del documento ... XI.1

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I) ASPECTOS GENERALES

El malatión, O,O-dimetil S-[1,2-bis(etoxicarbonil)etil]ditiofosfato, cuya fórmula molecular es C

10

H

19

O

6

PS

2

, es un insecticida no sistémico de amplio espectro utilizado para el control de insectos en cultivos agrícolas, en aplicaciones concernientes a la salud pública, como puede ser el control de mosquitos, y en aplicaciones domésticas. También es usado para el control de ectoparásitos animales y de piojos en el ser humano.

La persistencia ambiental del malatión es relativamente baja. En la atmósfera, se degrada rápidamente por vía fotoquímica, con un tiempo de vida medio igual a 1,5 días (Howard, 1991). En el suelo, el principal proceso de degradación es biológico, teniendo tiempos de vida medios que varían entre 1 y 25 días (Wauchope, 1992). En agua cruda, Howard (1991) ha reportado un tiempo de vida medio menor a 1 semana.

En agua superficial, el malatión se degrada por hidrólisis química y por acción microbiana, siendo la primera el proceso predominante, con mayores velocidades a valores alcalinos de pH (Wolfe et al., 1975). El tiempo de vida medio hidrolítico varía entre 40 días, a pH = 6, y 1 día, a pH = 8 (Wolfe et al., 1977). La degradación biológica del malatión en agua de río ha sido reportada por Eichelberger y Lichtenberg (1971), con reducciones de concentración del 75 % en 1 semana y del 100 % en 4 semanas.

El ingreso del malatión a los ambientes acuáticos puede producirse en forma directa, como resultado de su utilización como larvicida en el control de mosquitos, o en forma indirecta, al ser transportado desde áreas agrícolas en las que fue aplicado para el tratamiento de cultivos.

Tal transporte es favorecido por su solubilidad en agua, que es del orden de 130 mg/l (Kidd and James, 1991).

La información disponible sobre ocurrencia de malatión en agua ambiente, tanto a nivel mundial como en lo concerniente al territorio argentino, es muy escasa.

Para aguas superficiales próximas a áreas agrícolas tratadas con malatión ubicadas en el sur de Ontario, Canadá, se detectaron concentraciones de dicho insecticida comprendidas entre 13 y 19 ng/l (Miles, 1976). Evaluaciones efectuadas entre 1980 y 1985 en las regiones Atlántica y Occidental de Canadá reportaron solamente un valor detectado de malatión (0,04 µg/l), que correspondió a la primera región mencionada, siendo todos los resultados restantes informados como menores a los límites de detección (0,01 µg/l, para la Región Atlántica y 0,05 µg/l, para la Región Occidental) (NAQUADAT, 1985).

La información disponible sobre ocurrencia de malatión en agua dulce superficial del territorio argentino es expuesta en el Cuadro I.1.

CUADRO I.1 – OCURRENCIA DE MALATION EN AGUA DULCE SUPERFICIAL DEL TERRITORIO ARGENTINO

Nº DE

DATOS RANGO

[ng/l] MEDIANA

[ng/l] PERCENTILO 10 – 90

[ng/l] OBSERVACIONES REFERENCIAS

43 < 10 - < 10 < 10 < 10 – < 10 Ríos Paraguay y Uruguay, Período

1992-95

Agua Superficial, 2001

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Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión II.1

II) NIVELES GUIA DE CALIDAD PARA FUENTES DE PROVISION DE AGUA PARA CONSUMO HUMANO CORRESPONDIENTES A MALATION

II.1) Introducción

La toxicidad del malatión, ya sea por vía oral, inhalación o absorción dérmica, es debida a la inhibición de la acetilcolinesterasa en los diversos sitios del sistema nervioso donde dicha enzima está presente. Ello trae como consecuencia la acumulación y acción continua del neurotransmisor acetilcolina en los sitios postsinápticos (alteración de la transmisión colinérgica sináptica) (ATSDR, 2001). Tal inhibición, que es ejercida por el malaoxón, metabolito del malatión, involucra la afectación de los sistemas respiratorio, cardiovascular, gastrointestinal y ocular.

La evidencia disponible sobre los efectos deletéreos del malatión proviene de experiencias con exposición oral al mismo por parte de animales de ensayo e inclusive del ser humano.

En un estudio de 2 años de duración, con ratas expuestas oralmente a malatión, pudieron determinarse el valor 5 mg/(kg masa corporal * d) como nivel de exposición para el cual no se observa efecto alguno (NOEL) y el valor 50 mg/(kg masa corporal * d) como el menor nivel al cual se observan efectos (LEL), ambos asociados a la disminución de actividad de la colinesterasa cerebral y a la reducción de masa corporal (American Cyanamid Co., 1980).

Un estudio de reproductividad en ratas expuestas por vía oral a malatión permitió determinar para el mismo un LEL igual a 240 mg/(kg masa corporal * d) en relación con la disminución de número de crías vivas y la reducción de su masa corporal (Kalow and Marton, 1961).

En un estudio de toxicidad subcrónica humana, desarrollado con voluntarios de sexo masculino, de edades comprendidas entre 23 y 63 años, a los que se administró malatión en cápsulas de gelatina, pudieron establecerse los valores 0,23 y 0,34 mg/(kg masa corporal * d) como nivel para el cual no se observan efectos adversos (NOAEL) y como LEL, respectivamente, en asociación con la depresión de la actividad de la colinesterasa de las células rojas de la sangre y del plasma (Moeller and Rider, 1962).

Aun cuando los estudios sobre carcinogenicidad animal no son concluyentes, la información disponible sugeriría que el malatión no es cancerígeno (Gallo and Lawryk, 1991;

U.S. Public Health Service, 1995; National Cancer Institute, 1979). La Agencia Internacional de Investigación sobre Cáncer (IARC) ha ubicado al malatión en el Grupo 3, que corresponde a las sustancias que no pueden ser clasificables sobre la base de su carcinogenicidad humana (ATSDR, 2001).

De acuerdo a lo expuesto precedentemente, la derivación del nivel guía de calidad de agua

para consumo humano correspondiente a malatión se asienta en el procedimiento definido

para parámetros tóxicos con umbral, tomando como información básica la elaborada a partir

del estudio de exposición humana anteriormente citado.

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II.2) Cálculo del nivel guía de calidad de agua para consumo humano

A partir del NOEL surgido del ya referenciado estudio de exposición subcrónica humana (Moeller and Rider, 1962) y aplicando un factor de incertidumbre igual a 10, la Agencia de Protección Ambiental de los E.E.U.U. estableció una ingesta diaria tolerable (IDT) para malatión igual a 0,02 mg/(kg masa corporal * d) (U.S. EPA, IRIS, 2002).

Sobre la base de la ingesta antedicha y asumiendo una masa corporal (MC) igual a 60 kg, un consumo diario de agua por persona (C) igual a 2 l/d y un factor de asignación de la ingesta diaria tolerable al agua de bebida (F) igual a 0,1, se establece el nivel guía de calidad para agua de bebida (NGAB) según la siguiente expresión:

NGAB ≤ IDT * MC * F/C

resultando:

NGAB (Malatión) ≤ 0,06 mg/l

II.3) Remoción esperable de las tecnologías de tratamiento

No se dispone de información sobre eficiencias esperables en la remoción de malatión por parte de las tecnologías de potabilización, tanto convencionales como especiales.

II.4) Especificación de niveles guía de calidad para la fuente de provisión

En razón de lo expuesto en II.3, se especifican los niveles guía de calidad para malatión en la fuente de provisión (NGFP) que se detallan a continuación.

II.4.1) Fuente superficial:

Independientemente de que el tratamiento aplicado sea convencional o especial, se especifica el siguiente nivel guía de calidad para malatión en la fuente de provisión, referido a la muestra de agua filtrada:

NGFP (Malatión) ≤ 0,06 mg/l

II.4.2) Fuente subterránea sin tratamiento o cuando éste consiste en una cloración (tratamiento convencional) u otra técnica de desinfección:

Para el caso de fuentes subterráneas con aptitud microbiológica para consumo directo o

que requieran un tratamiento de desinfección, se especifica el siguiente nivel guía de calidad

para malatión en la fuente de provisión, referido a la muestra de agua sin filtrar:

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Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión II.3

NGFP (Malatión) ≤ 0,06 mg/l

II.4.3) Fuente subterránea con tratamientos especiales:

Para el caso en que se apliquen tratamientos especiales, se especifica para malatión el siguiente nivel guía de calidad en la fuente de provisión, referido a la muestra de agua filtrada:

NGFP (Malatión) ≤ 0,06 mg/l

II.5) Categorización de las aguas superficiales y subterráneas en cuanto a su uso como fuente de provisión para consumo humano

En el Cuadro II.1 se establece una categorización de las fuentes de provisión de agua para consumo humano en función de las concentraciones de malatión.

CUADRO II.1 – CATEGORIZACION DE LAS FUENTES DE PROVISION DE AGUA PARA CONSUMO HUMANO EN FUNCION DE LAS CONCENTRACIONES

DE MALATION (C

Malatión

)

FUENTE CATEGORIA CONDICIONES DE CALIDAD

SUPERFICIAL Calidad apropiada (independientemente del tipo de

tratamiento) CMalatión ≤ 0,06 mg/l (1)

SUPERFICIAL Calidad inapropiada. Requerimiento de acciones de

restauración de calidad de la fuente CMalatión > 0,06 mg/l (1) SUBTERRANEA Calidad apropiada para consumo directo o para

cuando el uso esté condicionado a la aplicación de una técnica de desinfección

C_Malatión ≤ 0,06 mg/l (2)

SUBTERRANEA Calidad condicionada a la aplicación de

tratamientos especiales CMalatión ≤ 0,06 µg/l (1) SUBTERRANEA Calidad inapropiada. Requerimiento de acciones de

restauración de calidad de la fuente CMalatión > 0,06 µg/l (1) Notas:

(1): Referida a la muestra de agua filtrada (2): Referida a la muestra de agua sin filtrar

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III) NIVEL GUIA DE CALIDAD DE AGUA AMBIENTE PARA PROTECCION DE LA BIOTA ACUATICA CORRESPONDIENTE A MALATION (APLICABLE A AGUA DULCE)

III.1) Introducción

Existe una importante cantidad de trabajos que analizan los efectos tóxicos agudos del malatión sobre los animales, mientras que la información sobre toxicidad crónica es escasa.

En lo referente a toxicidad aguda, entre los invertebrados, la especie más sensible al malatión es Gammarus fasciatus, presentando una concentración letal para el 50 % de los individuos (CL

50

) igual a 0,76 µg/l (Johnson and Finley, 1980), mientras que la más resistente es Helisoma trivolvis, que presenta CL

50

que oscilan entre 228,8 y 468,6 mg/l (Tchounwou et al., 1991). En lo que respecta a los vertebrados, la especie más sensible a los efectos del malatión es Morone saxatilis, con una CL

50

igual a 64 µg/l (Fujimura et al., 1991), mientras que la más resistente es Pimephales promelas, para la que son observables CL

50

que llegan hasta 23 mg/l (Pickering et al., 1962).

En cuanto a toxicidad crónica, entre los invertebrados, Daphnia magna es la especie más sensible al malatión, con una concentración para la cual no se observan efectos adversos (NOEC) igual a 0,3 µg/l (Dortland, R.J., 1980), y la más resistente es Pteronarcys californicus, que presenta una CL

50

determinada a 30 días igual a 8,8 µg/l (Jensen and Gaufin, 1964), mientras que entre los vertebrados la especie más sensible es Jordanella floridae, con un registro de NOEC igual a 8,6 µg/l (Hermanutz, 1978), correspondiendo la concentración máxima aceptable (MATC) más elevada, 6 mg/l, a Rasbora daniconia (Singh and Sahai, 1984), convirtiéndola en la especie de vertebrado más resistente.

La bioconcentración del malatión es baja, habiéndose reportado factores de bioconcentración entre 1,3 y 38, correspondientes a Cyprinus carpio y Gnathopogon coerulescens, respectivamente (Tsuda et al., 1990, 1989).

III.2) Derivación del nivel guía de calidad para protección de la biota acuática

Dado que no se cuenta con suficientes datos de toxicidad crónica inherentes a malatión para calcular directamente el Valor Crónico Final, se efectúa este cálculo a partir de datos de toxicidad aguda y de relaciones toxicidad aguda/crónica (ACR) estimables.

III.2.a) Selección de especies

En la Tabla III.1 se exponen 90 datos asociados a manifestaciones de toxicidad aguda de

malatión sobre animales, que corresponden a CL

50

o a concentraciones para las que se

observan efectos adversos para el 50 % de los individuos (CE

50

). En la Tabla III.2 se exponen

los datos para la estimación de las relaciones toxicidad aguda/crónica (ACR). Si bien el

conjunto de datos seleccionados cubre un gran número de grupos taxonómicos, a saber: diez

familias de peces (Cyprinidae, Cichlidae, Salmonidae, Percidae, Moronidae, Centrarchidae,

Ictaluridae, Criprinodontidaen, Channidae y Poeciliidae), una de moluscos (Planorbacea),

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Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión III.2

cinco de insectos (Notonectidae, Trichoptera, Ephemeroptera, Plecoptera y Culicidae), cinco de crustáceos (Daphnidae, Cambaridae, Palaemonidae, Asellidae y Gammaridae) y una de rotíferos (Brachionidae), no se dispone de información apropiada para determinar el Valor Final para Plantas (FPV). Por tal motivo, el nivel guía de calidad para malatión se deriva con carácter interino.

TABLA III.1 – CONCENTRACIONES DE MALATION ASOCIADAS A EFECTOS TOXICOS AGUDOS SOBRE LAS ESPECIES DE ANIMALES ACUATICOS

SELECCIONADAS PARA EL ESTABLECIMIENTO DEL NIVEL GUIA CORRESPONDIENTE

Especie Familia Concentración asociada a toxicidad aguda

[µg/l]

Valor Agudo Medio para cada especie (SMAV)

[µg/l]

Referencia

Aedes albopictus Culicidae 379 379 Ali et al., 1995

Aedes cantans Culicidae 48,8 49 Rettich, 1977

Aedes communis Culicidae 38,2 38 Rettich, 1977

Aedes excrucians Culicidae 30,3 30 Rettich, 1977

Aedes punctor Culicidae 44,1 44 Rettich, 1977

Aedes sticticus Culicidae 15,5 16 Rettich, 1977

Aedes vexans Culicidae 26,1 26 Rettich, 1977

Anopheles

quadrimaculatus Culicidae 69 69 Holck and Meek, 1987

Anopheles stephensi Culicidae 4 Chitra and Pillai, 1984

Anopheles stephensi Culicidae 10 Chitra and Pillai, 1984

Anopheles stephensi Culicidae 180 (1) 6,3 Scott and Georghiou, 1986

Asellus brevicaudus Asellidae 3000 3000 Johnson and Finley, 1980

Biomphalaria havanensis Planorbacea 94780 Tchounwou et al., 1991

Biomphalaria havanensis Planorbacea 202930 137946 Tchounwou et al., 1991 Brachionus calyciflorus Brachionidae 33720 33720 Fernandez-Casalderrey et al., 1992

Carassius auratus Cyprinidae 7800 Nishiuchi and Hashimoto, 1969

Carassius auratus Cyprinidae 10700 Johnson and Finley, 1980

Carassius auratus Cyprinidae 10700 9629 Macek and McAllister, 1970

Ceriodaphnia dubia Daphnidae 2,12 2,1 Ankley et al., 1991

Culex pipiens molestus Culicidae 34,2 33 Rettich, 1977

Culex pipiens pipiens Culicidae 32,2 Rettich, 1977

Cyprinus carpio Cyprinidae 4500 Nishiuchi and Hashimoto, 1969

Cyprinus carpio Cyprinidae 6590 Johnson and Finley, 1980

Cyprinus carpio Cyprinidae 6590 5803 Macek and McAllister, 1970

Channa punctatus ^Channidae 3220 3220 Shukla et al., 1987

Daphnia magna Daphnidae 1,6 1,6 Maas,1982

Gambusia affinis Poeciliidae 2000 2000 Hansen et al., 1972

Gammarus fasciatus Gammaridae 0,76 0,8 Johnson and Finley, 1980

Helisoma trivolvis Planorbacea 187650 Tchounwou et al., 1991

Helisoma trivolvis Planorbacea 468650 271025 Tchounwou et al., 1991

Acroneuria pacifica Plecoptera 7,7 7,7 Jensen and Gaufin, 1964

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TABLA III.1 – CONCENTRACIONES DE MALATION ASOCIADAS A EFECTOS TOXICOS AGUDOS SOBRE LAS ESPECIES DE ANIMALES ACUATICOS

SELECCIONADAS PARA EL ESTABLECIMIENTO DEL NIVEL GUIA CORRESPONDIENTE (Cont.)

[µg/l]

Referencia

Hexagenia Ephemeroptera 631 631 Carlson, 1966

Hydropsyche Trichoptera 5 5 Johnson and Finley, 1980

Hydropsyche Trichoptera 12,3 5 Carlson, 1966

Ictalurus punctatus Ictaluridae 8970 Johnson and Finley, 1980

Ictalurus punctatus Ictaluridae 8970 8970 Macek and McAllister, 1970

Jordanella floridae Cyprinodontidae 349 349 Hermanutz, 1978

Lepomis cyanellus Centrarchidae 175 175 Johnson and Finley, 1980

Lepomis macrochirus Centrarchidae 90 Pickering et al., 1962

Lepomis macrochirus Centrarchidae 103 Johnson and Finley, 1980

Lepomis macrochirus Centrarchidae 120 104 Pickering et al., 1962

Lepomis microlophus Centrarchidae 62 Johnson and Finley, 1980

Lepomis microlophus Centrarchidae 170 103 Macek and McAllister, 1970

Micropterus salmoides Centrarchidae 285 Johnson and Finley, 1980

Micropterus salmoides Centrarchidae 285 285 Macek and McAllister, 1970

Morone saxatilis Moronidae 12 Fujimura et al., 1991

Morone saxatilis Moronidae 100 36 Fujimura et al., 1991

Notonecta undulata Notonectidae 80 80 Federle and Collins, 1976

Oncorhynchus clarki Salmonidae 150 Post and Schroeder, 1971

Oncorhynchus clarki Salmonidae 201 Post and Schroeder, 1971

Oncorhynchus clarki Salmonidae 280 204 Johnson and Finley, 1980

Oncorhynchus kisutch Salmonidae 101 Macek and McAllister, 1970

Oncorhynchus kisutch Salmonidae 170 Johnson and Finley, 1980

Oncorhynchus kisutch Salmonidae 265 166 Post and Schroeder, 1971

Oncorhynchus mykiss Salmonidae 122 Post and Schroeder, 1971

Oncorhynchus mykiss Salmonidae 160 Mckim et al., 1987

Oncorhynchus mykiss Salmonidae 170 Macek and McAllister, 1970

Oncorhynchus mykiss Salmonidae 200 160 Johnson and Finley, 1980

Orconectes nais Cambaridae 180 180 Johnson and Finley, 1980

Oryzias latipes Cichlidae 750 Nishiuchi and Hashimoto, 1969

Oryzias latipes Cichlidae 1800 1162 Tsuda et al., 1997

Palaemonetes kadiakensis Palaemonidae 90 90 Johnson and Finley, 1980

Perca flavescens Percidae 263 Johnson and Finley, 1980

Perca flavescens Percidae 263 263 Macek and McAllister, 1970

Pimephales promelas Cyprinidae 8650 Johnson and Finley, 1980

Pimephales promelas Cyprinidae 8650 Macek and McAllister, 1970

Pimephales promelas Cyprinidae 14100 Geiger et al., 1988

Pimephales promelas Cyprinidae 16000 Pickering et al., 1962

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TABLA III.1 – CONCENTRACIONES DE MALATION ASOCIADAS A EFECTOS TOXICOS AGUDOS SOBRE LAS ESPECIES DE ANIMALES ACUATICOS

SELECCIONADAS PARA EL ESTABLECIMIENTO DEL NIVEL GUIA CORRESPONDIENTE (Cont.)

[µg/l]

Referencia

Pimephales promelas Cyprinidae 23000 13117 Pickering et al., 1962

Poecilia reticulata Poeciliidae 840 Pickering et al., 1962

Poecilia reticulata Poeciliidae 3100 1614 Maas, 1982

Procambarus clarkii Cambaridae 49170 49170 Holck and Meek, 1987

Ptychocheilus lucius Cyprinidae 9140 9140 Beyers et al., 1994

Salmo trutta Salmonidae 101 Johnson and Finley, 1980

Salmo trutta Salmonidae 200 142 Macek and McAllister, 1970

Salvelinus fontinalis Salmonidae 120 Post and Schroeder, 1971

Salvelinus fontinalis Salmonidae 130 125 Post and Schroeder, 1971

Salvelinus namaycush Salmonidae 76 76 Johnson and Finley, 1980

Tilapia mossambica Cichlidae 5495 Sailatha et al., 1981

Tilapia mossambica Cichlidae 5600 Sahib and Rao, 1980

Tilapia mossambica Cichlidae 5620 5571 Rao et al., 1987

Nota:

(1): Dato no utilizado para el cálculo del Valor Agudo Medio para cada especie (SMAV) por diferir en el orden de magnitud con el menor de los datos seleccionados

TABLA III.2 - CONCENTRACIONES DE MALATION ASOCIADAS A EFECTOS TOXICOS AGUDOS Y CRONICOS SELECCIONADAS PARA EL CALCULO DE RELACIONES

TOXICIDAD AGUDA/CRONICA

Especie Concentración

asociada a toxicidad aguda

[µg/l]

Concentración asociada a

toxicidad crónica

[µg/l]

Relación Toxicidad Aguda/Crónica

para cada especie (SACR)

Referencia

Barbus ticto 4000 4000 1 Singh and Sahai, 1984

Gila elegans 15300 1420 11 Beyers et al., 1994

Acroneuria pacifica 7,7 0,78 9,9 Jensen and Gaufin, 1964

Jordanella floridae 349 8,6 41 Hermanutz, 1978

Pteronarcys californicus 50 8,8 5,7 Jensen and Gaufin, 1964

Ptychocheilus lucius 9140 455 20 Beyers et al., 1994

Rasbora daniconia 6000 6000 1 Singh and Sahai, 1984

Umbra pygmaea 240 140 1,7 Bender et al., 1976

III.2.b) Cálculo del Valor Agudo Final

El Valor Agudo Final (FAV) se calcula de acuerdo al procedimiento descripto en la

metodología cuando la toxicidad de una sustancia no está asociada con las características del

agua, dado que no existe evidencia en sentido contrario para el malatión.

(10)

A partir de los datos que se exhiben en la Tabla III.1, se determinan los valores agudos medios para cada especie (SMAV), que se exponen en la tabla antedicha, y género (GMAV), que se presentan ordenados crecientemente en la Tabla III.3, con sus correspondientes números de orden, R, y probabilidades acumulativas, P

R

, siendo P

R

= R/(N + 1).

TABLA III.3 – MALATION: PROBABILIDAD ACUMULATIVA (P

R

) y VALOR AGUDO MEDIO PARA CADA GENERO (GMAV)

Género GMAV [µg/l]

PR R

Gammarus 0,8 0,03 1

Daphnia 1,6 0,05 2

Ceriodaphnia 2,1 0,08 3

Hydropsyche 5,0 0,11 4

Anopheles 6,3 0,14 5

Hesperoperla 7,7 0,16 6

Culex 33 0,19 7

Morone 36 0,22 8

Aedes 45 0,24 9

Notonecta 80 0,27 10

Palaemonetes 90 0,30 11

Salvelinus 97 0,32 12

Lepomis 123 0,35 13

Salmo 142 0,38 14

Oncorhynchus 176 0,41 15

Orconectes 180 0,43 16

Perca 263 0,46 17

Micropterus 285 0,49 18

Jordanella 349 0,51 19

Hexagenia 631 0,54 20

Oryzias 1162 0,57 21

Poecilia 1614 0,59 22

Gambusia 2000 0,62 23

Asellus 3000 0,65 24

Channa 3220 0,68 25

Tilapia 5571 0,70 26

Cyprinus 5803 0,73 27

Ictalurus 8970 0,76 28

Ptychocheilus 9140 0,78 29

Carassius 9630 0,81 30

Pimephales 13117 0,84 31

Tubificidae 16700 0,86 32

Brachionus 33720 0,89 33

Procambarus 49170 0,92 34

Biomphalaria 137946 0,95 35

Helisoma 271026 0,97 36

(11)

De acuerdo al esquema metodológico establecido, el análisis de regresión de los GMAV correspondientes a los números de orden 1, 2, 3 y 4 arroja los siguientes resultados para la pendiente (b), la ordenada al origen (a) y la constante (k):

b = 10,8489 a = -2,1392 k = 0,2867 Calculando el Valor Agudo Final (FAV) según:

FAV = e

^k

resulta:

FAV = 1,3 µg/l

III.2.c) Cálculo del Valor Crónico Final

En base a los datos de toxicidad aguda y crónica que se exhiben en la Tabla III.2, se calculan las relaciones toxicidad aguda/crónica para las especies consideradas (SACR), que se exhiben en dicha tabla. Para el cálculo de la relación toxicidad aguda/crónica final (FACR) se utilizan las relaciones toxicidad aguda/crónica correspondientes a Gila elegans, Hesperoperla pacifica, Jordanella floridae, Pteronarcys californicus y Ptychocheilus lucius, descartándose las inherentes a Barbus ticto, Rasbora daniconia y Umbra pygmaea por diferir en un orden de magnitud con la mayor de las restantes. La media geométrica de las SMACR consideradas arroja una FACR igual a 14.

Dividiendo el FAV calculado (1,4 µg/l) por la FACR obtenida (14), resulta:

FCV = 0,1 µg/l.

III.3) Establecimiento del nivel guía de calidad para malatión correspondiente a protección de la biota acuática

Si bien el Valor Crónico Final (FCV) no supera a ninguno de los valores de toxicidad crónica para animales que se exhiben en la Tabla III.2, como no se puede determinar el Valor Final para Plantas (FPV), el siguiente nivel guía de calidad para malatión a los efectos de protección de la biota acuática (NGPBA), referido a la muestra de agua sin filtrar, es especificado con carácter interino:

NGPBA (Malatión) ≤ 0,1 µg/l

(12)

IV) NIVEL GUIA DE CALIDAD DE AGUA AMBIENTE PARA PROTECCION DE LA BIOTA ACUATICA CORRESPONDIENTE A MALATION (APLICABLE A AGUA MARINA)

IV.1) Introducción

Existe una cantidad aceptable de trabajos que analizan los efectos tóxicos agudos del malatión sobre los animales acuáticos, mientras que la cantidad de datos sobre su toxicidad crónica es nula. Tampoco se cuenta con información toxicológica referente a vegetales acuáticos.

Con respecto a la toxicidad aguda del malatión en los invertebrados, la especie más sensible es el crustáceo Cancer magister, con una concentración para la que se observan efectos adversos en el 50% de los individuos expuestos (CE

50

) igual a 0,4 µg/l (Caldwell, 1977). El más resistente es otro crustáceo, Artemia salina, con una concentración letal para el 50% de los individuos expuestos (CL

50

) igual a 100 mg/l (Crisinel et al., 1994). En cuanto a los vertebrados, la especie más sensible al malatión es el pez Morone saxatilis, para el que se reportó una CL

50

igual a 14 µg/l (Schoettger, 1970), siendo la especie más resistente otro pez, Aphanius fasciatus, con una CL

50

igual a 348 µg/l (Boumaiza et al., 1979).

No existen referencias sobre la bioconcentración del malatión en la biota acuática.

IV.2) Derivación del nivel guía para protección de la biota acuática

Dado que no se cuenta con datos de toxicidad crónica para calcular directamente el Valor Crónico Final para malatión, se efectúa este cálculo a partir de datos de toxicidad aguda y aplicando un factor de extrapolación. Se apela a dicho factor en razón de que no se dispone tampoco de la información sobre toxicidad crónica requerida para determinar la Relación Final Toxicidad Aguda/Crónica (FACR).

IV.2.a) Selección de especies

En la Tabla IV.1 se exponen 20 datos asociados a manifestaciones de toxicidad aguda del

malatión sobre animales, que corresponden a CL

50

o a CE

50

. Si bien el conjunto de datos

seleccionados cubre un amplio rango de grupos taxonómicos, a saber: cinco familias de peces

(Cyprinidae, Cyprinodontidae, Gasterosteidae, Moronidae y Salmonidae), seis de crustáceos

(Artemiidae, Cancridae, Harpacticidae, Mysidae, Penaidae y Palaemonidae), una de

moluscos (Mytilidae) y una de rotíferos (Brachionidae), como no se dispone de datos sobre

efectos tóxicos del malatión en plantas acuáticas y algas a los efectos de determinar el Valor

Final para Plantas (FPV), el nivel guía de calidad para malatión se deriva con carácter

interino.

(13)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión IV.2

TABLA IV .1 – CONCENTRACIONES DE MALATION ASOCIADAS A EFECTOS TOXICOS AGUDOS SOBRE LAS ESPECIES DE ANIMALES ACUATICOS

SELECCIONADAS PARA EL ESTABLECIMIENTO DEL NIVEL GUIA CORRESPONDIENTE

Especie Familia Concentración

asociada a toxicidad aguda

[µg/l]

Referencia

Americamysis bahia Mysidae 11 11 Cripe, 1994

Aphanius fasciatus Cyprinodontidae 314 Boumaiza et al., 1979

Aphanius fasciatus Cyprinodontidae 348 331 Boumaiza et al., 1979

Artemia salina Artemiidae 100000 100000 Crisinel et al., 1994

Barbus stigma Cyprinidae 19,5 20 Khillare and Wagh, 1988

Brachionus plicatilis Brachionidae 45500 45500 Snell and Persoone, 1989

Cancer magister Cancridae 0,4 Caldwell, 1977

Cancer magister Cancridae 1,2 0,69 Caldwell, 1977

Gasterosteus aculeatus Gasterosteidae 76,9 77 Katz, 1961

Morone saxatilis Moronidae 14 Schoettger, 1970

Morone saxatilis Moronidae 17,8 Korn and Earnest, 1974

Morone saxatilis Moronidae 89 28 Schoettger, 1970

Mytilus edulis Mytilidae 13400 13400 Liu and Lee, 1975

Oncorhynchus tshawytscha Salmonidae 34 34 Schoettger, 1970

Palaemon macrodactylus Palaemonidae 9 Schoettger, 1970

Palaemon macrodactylus Palaemonidae 81,5 27 Schoettger, 1970

Penaeus duorarum Penaidae 12 12 Cripe, 1994

Tigriopus brevicornis Harpacticidae 7,2 Forget et al., 1998

Tigriopus brevicornis Harpacticidae 20,5 Forget et al., 1998

Tigriopus brevicornis Harpacticidae 24,3 15 Forget et al., 1998

IV.2.b) Cálculo del Valor Agudo Final

El Valor Agudo Final se calcula de acuerdo al procedimiento descripto en la metodología

cuando la toxicidad de una sustancia no está asociada con las características del agua, dado

que no existe evidencia en contrario para el malatión. A partir de los datos que se exhiben en

la Tabla III.1 se determinan los valores agudos medios para cada especie (SMAV), que se

presentan en la tabla antedicha, y género (GMAV), que se exponen ordenados crecientemente

en la Tabla III.2, junto a sus números de orden, R, y las probabilidades acumulativas

correspondientes, P

R

, siendo P

R

= R/(N+1).

(14)

TABLA III.2 – MALATION: PROBABILIDAD ACUMULATIVA (P

R

) y VALOR AGUDO MEDIO PARA CADA GENERO (GMAV)

Género GMAV

[µg/l] P_R R

Cancer 0,69 0,07 1

Americamysis 11 0,14 2

Penaeus 12 0,21 3

Tigriopus 15 0,29 4

Barbus 20 0,36 5

Palaemon 27 0,43 6

Morone 28 0,50 7

Oncorhynchus 34 0,57 8

Gasterosteus 77 0,64 9

Aphanius 331 0,71 10

Mytilus 13400 0,79 11

Brachionus 45500 0,86 12

Artemia 100000 0,93 13

De acuerdo al esquema metodológico establecido, el análisis de regresión de los GMAV correspondientes a los números de orden 1, 2, 3 y 4 arroja los siguientes resultados para la pendiente (b), la ordenada al origen (a) y la constante (k):

b = 12,68 a = -3,40 k = -0,56 Calculando el Valor Agudo Final (FAV) según:

FAV = e

^k

resulta:

FAV = 0,57 µg/l

IV.2.c.) Cálculo del Valor Crónico Final

De acuerdo a la información toxicológica disponible correspondiente a animales acuáticos, se considera apropiado utilizar un factor de extrapolación igual a 10 para calcular el Valor Crónico Final (FCV) a partir del FAV.

Dividiendo el FAV calculado ( 0,57 µg/l) por el factor de extrapolación seleccionado (10 ), resulta:

FCV = 0,057 µg/l

(15)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión IV.4

IV.3) Establecimiento del nivel guía de calidad para malatión correspondiente a protección de la biota acuática

Según ya se expuso, como no se puede determinar el Valor Final para Plantas (FPV), el siguiente nivel guía de calidad para malatión a los efectos de la protección de la biota acuática (NGPBA), referido a la muestra de agua sin filtrar, se especifica con carácter interino:

NGPBA (Malatión) ≤ 57 ng/l

(16)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión IX.1

IX) TECNICAS ANALITICAS ASOCIADAS A LA DETERMINACION DE MALATION

En la Base de Datos “Técnicas Analíticas” pueden ser seleccionados métodos analíticos

validados para evaluar la cumplimentación de los niveles guía nacionales de calidad de agua

ambiente derivados para malatión.

(17)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión X.1

X) REFERENCIAS

Agua Superficial. 2001. Procesamiento de datos presentados en: Instituto Nacional del Agua y del Ambiente. 1999. Reporte detallado de datos de calidad de agua recolectados durante el período Abril 1987-Marzo 1998 por la Contraparte Técnica Argentina. Comité Intergubernamental Coordinador de los Países de la Cuenca del Plata. Control de la Calidad de las Aguas de la Cuenca del Plata.

Ali, A., J.K. Nayar and R.D. Xue. 1995. Comparative toxicity of selected larvicides and insect growth regulators to a florida laboratory population of Aedes albopictus. J. Am. Mosq. Control Assoc. 11(1): 72-76.

American Cyanamid Co. 1980. MRID Nº 00110562; HED Doc. No. 002504. Available from EPA. Write to FOI. EPA.

Washington, DC 20460. En: U.S. EPA (U.S. Environmental Protection Agency). IRIS (Integrated Risk Information System).

December 3, 2002. 0248. Malathion.

Ankley, G.T., J.R. Dierkes, D.A. Jensen and G.S. Peterson. 1991. Piperonyl butoxide as a tool in aquatic toxicological research with organophosphate insecticides. Ecotoxicol. Environ. Saf. 21(3): 266-274.

ATSDR (Agency for Toxic Substances and Disease Registry). September 2001. Toxicological Profile for Malathion. Draft.

U.S. Department of Health and Human Services. Public Health Service.

http://www.headlice.org/malathion/malathion_toxprof.pdf.

Bender, M.E. and J.R. Westman. 1976. The toxicity of malathion and its hydrolysis products to the eastern mudminnow, Umbra pygmaea (DeKay). Chesapeake Sci. 17(2): 125-128

Beyers, D.W., T.J. Keefe and C.A. Carlson. 1994. Toxicity of carbaryl and malathion to two federally endangered fishes, as estimated by regression and ANOVA. Environ. Toxicol. Chem. 13(1): 101-107.

Boumaiza, M., M.H. Ktari and P. Vitiello. 1979. Toxicity of several pesticides used in Tunisia, for Aphanius fasciatus Nardo, 1827 (Pisces, Cyprinodontidae). Arch. Inst. Pasteur Tunis 56(3): 307-342. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Caldwell, R.S. 1977. Biological effects of pesticides on the dungeness crab. EPA-600/3-77-131, U. S. EPA, Gulf Breeze, FL:

143 p. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Carlson, C.A. 1966. Effects of three organophosphorus insecticides on immature Hexagenia and Hydropsyche of the upper mississippi river. Trans. Am. Fish. Soc. 95(1): 1-5.

Chitra, S. and M.K.K. Pillai. 1984. Development of organophosphorus and carbamate-resistance in indian strains of Anopheles stephensi Liston. Proc. Indian Acad. Sci. Anim. Sci. 93(3): 159-170.

Cripe, G.M. 1994. Comparative acute toxicities of several pesticides and metals to Mysidopsis bahia and postlarval Penaeus duorarum. Environ. Toxicol. Chem. 13(11): 1867-1872. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database.

U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Crisinel, A., L. Delaunay, D. Rossel, J. Tarradellas, H. Meyer, H. Saiah, P. Vogel, C. Delisle and C, Blaise. 1994. Cyst-based ecotoxicological tests using anostracans: comparison of two species of Streptocephalus. Environ. Toxicol. Water Qual. 9(4):

317-326. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Dortland, R.J. 1980. Toxicological evaluation of parathion and azinphosmethyl in freshwater model ecosystems. Versl Landbouwkd Onderz 898: 1-112. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Eichelberger, J.W. and J.J. Lichtenberg. 1971. Persistence of pesticides in river water. Environ. Sci. Technol. 5: 541-544. En:

CCME (Canadian Council of Ministers of the Environment). December 1996. Canadian Water Quality Guidelines.

Federle, P.F. and W.J. Collins. 1976. Insecticide toxicity to three insects from ohio ponds. Ohio J. Sci. 76(1): 19-24. En:

AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

(18)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión X.2 Fernandez-Casalderrey, A., M.D. Ferrando and E. Andreu-Moliner. 1992. Acute toxicity of several pesticides to rotifer (Brachionus calyciflorus). Bull. Environ. Contam. Toxicol. 48(1): 14-17. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Forget, J., J.F. Pavillon, M. R. Menasria and G. Bocquene. 1998. Mortality and LC50 values for several stages of the marine copepod Tigriopus brevicornis (Muller) exposed to the metals arsenic and cadmium and the... Ecotoxicol. Environ. Saf.

40(3): 239-244. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Fujimura, R., B. Finlayson and G. Chapman.1991. Evaluation of acute and chronic toxicity tests with larval striped bass. In:

M. A. Mayes and M. G. Barron (Eds ), Aquatic Toxicology and Risk Assessment, ASTM STP 1124, Philadelphia, PA 14:193-211.

Gallo, M. A. and N.J. Lawryk. Organic phosphorus pesticides. In Handbook of Pesticide Toxicology. Hayes, W. J., Jr. and Laws, E. R., Jr., Eds. Academic Press, New York, NY, 1991.5-3. En: Extoxnet (Extension Toxicology Network). Pesticide Information Profiles, internet. Malathion. Revised June 1996. http://ace.orst.edu/info/extoxnet/pips/malathio.htm.

Geiger, D.L., D.J. Call and L.T. Brooke.1988. Acute toxicities of organic chemicals to fathead minnows (Pimephales promelas), Vol. 4. Center for Lake Superior Environmental Studies, University of Wisconsin, Superior, W I:355 En:

AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Hansen, D.J., E. Matthews, S.L. Nall and D.P. Dumas. 1972. Avoidance of pesticides by untrained mosquitofish, Gambusia affinis. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 8(1):46-51. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S.

Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Hermanutz, R.O.1978. Endrin and malathion toxicity to flagfish (Jordanella floridae). Arch. Environ. Contam. Toxicol.

7(2):159-168.

Holck, A.R. and C.L. Meek.1987. Dose-mortality responses of crawfish and mosquitoes to selected pesticides. J. Am. Mosq.

Control Assoc. 3(3): 407-411. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Jensen, L.D. and A.R. Gaufin. 1964. Effects of ten organic insecticides on two species of stonefly naiads. Trans. Am. Fish Soc. 93(1): 27-34.

Johnson, W.W. and M.T. Finley. 1980. Handbook of acute toxicity of chemicals to fish and aquatic invertebrates. Resour.

Publ. 137, Fish Wildl. Serv., U S D I , Washington, D C: 98. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database.

U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Kalow, W. and A. Marton. 1961. Second-generation toxicity of malathion in rats. Nature (London). 192: 464-465. En: U.S.

EPA (U.S. Environmental Protection Agency). IRIS (Integrated Risk Information System). December 3, 2002. 0248.

Malathion.

Katz, M. 1961. Acute toxicity of some organic insecticides to three species of salmonids and to the threespine stickleback.

Trans. Am. Fish. Soc. 90(3): 264-268. En: U. S. EPA. 1986. Quality Criteria for Water. EPA 440/5-86-001.

Khillare, Y.K. and S.B. Wagh. 1988. Acute toxicity of pesticides in the freshwater fish Barbus stigma: histopathology of the stomach. Uttar Pradesh J. Zool. 8(2): 176-179. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S.

Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Kidd, H. and D.R. James, Eds. The Agrochemicals Handbook, Third Edition. Royal Society of Chemistry Information Services, Cambridge, UK, 1991 (as updated)5-14. En: Extoxnet (Extension Toxicology Network). Pesticide Information Profiles, internet. Malathion. Revised June 1996. http://ace.orst.edu/info/extoxnet/pips/malathio.htm.

Korn, S. and R. Earnest. 1974. Acute toxicity of twenty insecticides to striped bass, Morone saxatilis. Calif. Fish Game 60(3): 128-131. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

(19)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión X.3 Liu, D. H. W. and J. M. Lee. 1975. Toxicity of selected pesticides to the bay mussel (Mytilus edulis). EPA-660/3-75-016, U.

S. EPA, Corvallis, OR: 102 p. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Maas, J.L. 1982. Toxicity of pesticides. Laboratory for Ecotoxicology, Institute for Inland Water Management and Waste Water Treatment, Report No 82-15:4 p (DUT). En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S.

Macek, K.J. and W.A. McAllister. 1970. Insecticide susceptibility of some common fish family representatives. Trans. Am.

Fish. Soc. 99(1): 20-27. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Mckim, J.M., P.K. Schmieder, G.J. Niemi, R.W. Carlson and T.R. Henry. 1987. Use of respiratory-cardiovascular responses of rainbow trout (Salmo gairdneri) in identifying acute toxicity syndromes in fish. Part 2. Malathion. Environ. Toxicol.

Chem. 6: 313-328. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Miles, J.R.W. 1976. Insecticide residues on stream sediments in Ontario, Canada. Pestic. Monit. J. 10: 87-91. (Cited in Mulla, M.S., L.S. Mian and J.A. Kawecki. 1981. Distribution, transport and fate of the insecticides malathion and parathion. Residue Rev. 81: 1-172). En: CCME (Canadian Council of Ministers of the Environment). December 1996. Canadian Water Quality Guidelines.

Moeller, H.C. and J.A. Rider. 1962. Plasma and red blood cell cholinesterase activity as indications of threshold of incipient toxicity of ethyl-p-nitrophenyl thionobenzenephosphorate (EDN) and malathion in human beings. Toxicol. Appl. Pharmacol.

4: 123-130. En: U.S. EPA (U.S. Environmental Protection Agency). IRIS (Integrated Risk Information System). December 3, 2002. 0248. Malathion.

NAQUADAT. 1985. National Water Quality Data Bank. Water Quality Branch, Inland Waters Directorate, Environment Canada, Ottawa. En: CCME (Canadian Council of Ministers of the Environment). December 1996. Canadian Water Quality Guidelines.

National Cancer Institute. Bioassay of Malathion for Possible Carcinogenicity. 1979. Technical Reports 192. National Institutes of Health, Bethesda, MD, 5-81. En: Extoxnet (Extension Toxicology Network). Pesticide Information Profiles, internet. Malathion. Revised June 1996. http://ace.orst.edu/info/extoxnet/pips/malathio.htm.

Nishiuchi, Y. and Y. Hashimoto. 1969. Toxicity of pesticides to some fresh water organisms. Rev. Plant. Protec. Res. 2: 137- 139. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Pickering, Q.H., C. Henderson and A.E. Lemke. 1962. The toxicity of organic phosphorus insecticides to different species of warmwater fishes. Trans. Am. Fish Soc. 91: 175-184. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S.

Post, G. and T.R. Schroeder. 1971. Toxicity of four insecticides to four salmonid species. Bull. Environ. Contam. Toxicol.

6(2): 144-155. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Rao, K.V.R., K.S. Rao, I.K.A. Sahib and S. Sivaiah. 1987. Differential toxicity of methyl parathion and malathion on some selected aquatic species. Proc. Nat. Acad. Sci. India Sect B (Biol. Sci. ) 57(4): 367-370. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Rettich, F. 1977. The susceptibility of mosquito larvae to eighteen insecticides in Czechoslovakia. Mosq. News 37(2): 252- 257.

Sahib, I.K.A. and K.V. Rao. 1980. Toxicity of malathion to the freshwater fish Tilapia mossambica. Bull. Environ. Contam.

Toxicol. 24(6): 870-874. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

(20)

Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión X.4 Sailatha, D., I.K.A. Sahib and K.V.R. Rao. 1981. Toxicity of technical and commercial grade malathion to the fish, Tilapia mossambica (Peters). Proc. Indian Acad. Sci. Anim. Sci. 90(1): 87-92. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid- Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Schoettger, R.A. 1970. Fish-pesticide research laboratory: progress in sport fishery research. U. S. Dep. Interior, Bur. Sport Fish Wildl. Res. Publ. 106: 2-40. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Scott, J.G. and G.P. Georghiou. 1986. Malathion-specific resistance in Anopheles stephensi from Pakistan. J. Am. Mosq.

Control Assoc. 2(1): 29-32. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Shukla, J.P., M. Banerjee and K. Pandey. 1987. Deleterious effects of malathion on survivality and growth of the fingerlings of Channa punctatus (Bloch), a Freshwater Murrel. Acta Hydrochim. Hydrobiol. 15(6): 653-657. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Singh, S. and S. Sahai. 1984. Effect of malathion on the mortality and behaviour of two fresh water teleosts. J. Environ. Biol.

5(1): 23-28.

Snell, T.W. and G. Persoone. 1989. Acute toxicity bioassays using rotifers. I. A test for brackish and marine environments with Brachionus plicatilis. Aquat. Toxicol. 14(1): 65-80. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database.

U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Tchounwou, P.B., A.J. Englande and E.A. Malek. 1991. Toxicity evaluation of bayluscide and malathion to three developmental stages of freshwater snails. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 21: 351-358. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Tsuda, T., M. Kojima, H. Harada, A. Nakajima and S. Aoki. 1997. Acute toxicity, accumulation and excretion of organophosphorous insecticides and their oxidation products in killifish. Chemosphere 35(5): 939-949. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid-Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Tsuda, T., S. Aoki, M. Kojima and H. Harada. 1989. Bioconcentration and excretion of diazinon, IBP, malathion and fenitrothion by willow shiner. Toxicol. Environ. Chem. 24: 185-190. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid- Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

Tsuda, T., S. Aoki, M. Kojima and H. Harada. 1990. Bioconcentration and excretion of diazinon, IBP, malathion and fentrothion by carp. Comp. Biochem. Physiol. 96 C(1): 23-26. En: AQUIRE (Aquatic toxicity Information Retrieval) database. U.S. Environmental Protection Agency, National Health and Environmental Effects Research Laboratory, Mid- Continent Ecology Division, Duluth, Minnesota.

U.S. EPA (U.S. Environmental Protection Agency). IRIS (Integrated Risk Information System). December 3, 2002. 0248.

Malathion.

U.S. Public Health Service. 1995. Hazardous Substance Data Bank. Washington, DC, 5-9. En: Extoxnet (Extension Toxicology Network). Pesticide Information Profiles, internet. Malathion. Revised June 1996.

http://ace.orst.edu/info/extoxnet/pips/malathio.htm.

Wauchope, R. D., T.M. Buttler, A.G. Hornsby, P.W.M. Augustijn-Beckers and J.P. Burt. 1992. SCS/ARS/CES Pesticide properties database for environmental decisionmaking. Rev. Environ. Contam. Toxicol. 123: 1-157, 5-20. En: Extoxnet (Extension Toxicology Network). Pesticide Information Profiles, internet. Malathion. Revised June 1996.

http://ace.orst.edu/info/extoxnet/pips/malathio.htm.

Wolfe N.L., R.G. Zepp, G.L. Baughman et al. 1975. Kinetic investigation of malathion degradation in water. Bull Environ Contam Toxicol 13(6):707-713. En: ATSDR (Agency for Toxic Substances and Disease Registry). September 2001.

Toxicological Profile for Malathion. Draft. U.S. Department of Health and Human Services. Public Health Service.

http://www.headlice.org/malathion/malathion_toxprof.pdf.

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Niveles Guía Nacionales de Calidad de Agua Ambiente Malatión XI.1