DETERMINACIÓN DE CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HUEVOS POR GRAMO EN MATERIA FECAL, DE PARÁSITOS GASTROINTESTINALES A
LO LARGO DE 6 MESES EN EQUINOS DE LA SABANA DE BOGOTA.
GONZALO DURAN MACHADO DIEGO MAURICIO CASTRO MARTINEZ
UNIVERSIDAD DE LA SALLE Facultad de Medicina Veterinaria
Febrero
DETERMINACIÓN DE CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HUEVOS POR GRAMO EN MATERIA FECAL, DE PARÁSITOS GASTROINTESTINALES A
LO LARGO DE 6 MESES EN EQUINOS DE LA SABANA DE BOGOTA.
GONZALO DURAN MACHADO Código: 14001032
DIEGO MAURICIO CASTRO MARTINEZ Código: 14002503
Trabajo de grado para optar al título de Médico Veterinario
Director
GERMAN ALONSO PRADA
MV. Universidad Nacional de Colombia M. Sc. Universidad Austral de Chile
UNIVERSIDAD DE LA SALLE Facultad de Medicina Veterinaria
Febrero
DIRECTIVOS
RECTOR Hno. Fabio Gallego Arias
VICERRECTOR ACADÉMICO Hno. Carlos Gabriel Gómez
VICERRECTOR DE PROMOCIÓN Y Hno . Edgar Figueroa Abrajím DESARROLLO HUMANO
VICERRECTOR ADMINISTRATIVO Dr. Mauricio Fernández Fernández
DECANO DE LA FACULTAD Dr. Pedro Pablo Martínez Méndez
SECRETARIO ACADÉMICO Dra. Maria Teresa Uribe Mallarino
DIRECTOR CLÍNICA VETERINARIA Dr. Humberto Vásquez Romero
ACEPTACIÓN
DIRECTOR ______________________
Dr. Germán Prada.
JURADO _______________________
Dr. Dildo Márquez.
JURADO _________________________
Dr. German Ramírez.
SECRETARIA ACADEMICA ________________________
Dra. Maria Uribe.
COMPROMISO
El presente trabajo de investigación no contiene ideas que de una u otra forma, sean contrarias a la Iglesia Católica, en cuanto a su doctrina, dogma y moral.
Las ideas aquí expuestas por Los graduandos no son responsabilidad ni de director del proyecto de investigación, ni de los jurados y siquiera de la Universidad de La Salle, son simples opiniones de libre expresión de los presentes y directos responsables de este escrito.
DEDICATORIA
A nuestros padres; Dabeiba, Gustavo, Blanca y Pedro Pablo. Por su constante apoyo no solo económico sino durante nuestras vidas para la culminación de este proyecto de vida, a nuestros hermanos; Andrés, patricia y Juan Carlos, a nuestros compañeros de universidad que de una u otra forma colaboraron y participaron en la realización de este trabajo de investigación. Gracias por el apoyo incondicional que siempre sostuvieron con el desarrollo de este proyecto, también al resto de nuestras familias quienes nos han apoyado siempre y por supuesto a la universidad y docentes que estuvieron en un continuo seguimiento Y a dios por darnos las fuerzas necesarias para terminar esta investigación.
AGRADECIMENTOS
A las fincas de la Sabana de Bogotá, en cabeza de sus directivos y trabajadores, puesto que gracias a ellos fue posible la realización de este trabajo de investigación, en especial a aquellos trabajadores de campo quienes mes a mes demostraron un gran compromiso con nosotros. A la Universidad de La Salle por su apoyo, así como el permitirnos utilizar sus instalaciones y equipos para el desarrollo del proyecto. A don Aquilino por los servicios prestados. Al doctor Germán Prada por la vinculación al proyecto y su orientación en el mismo. A los doctores Cesar Díaz y Fausto Camilo, por su amistad, compañía, paciencia y colaboración durante el desarrollo del proyecto.
A los jurados por su compañía y colaboración durante los días de trabajo en la universidad, por la orientación y guía hacia la calidad y excelencia de esta investigación. Y a todas las personas que de una u otra manera interfirieron en el desarrollo y culminación de nuestra investigación.
CONTENIDO
Pág
INTRODUCCION 1
1. OBJETIVOS. 3
1.1. OBJETIVO GENERAL. 3
1.2. OBJETIVOS ESPECIFICOS. 3
2. MARCO TEORICO. 4
2.1. MANEJO SANITARIO 4
2.2. GENERALIDADES DE LOS PARASITOS. 5
2.2.1. Parasitismo en equinos. 6
2.2.1.1. Importancia de los parasitismos. 6
2.3. GENERALIDADES. 7
2.3.1. Generalidades de los nematodos. 9
2.3.1.1. Orden Strongylida. 9
2.3.1.1.1. Grandes Strongylus. 9
2.3.1.1.2. Pequeños Strongylus. 15
2.3.1.2. Orden Ascaridia. 16
2.3.1.2.1. Parascaris Equorum. 17
2.3.1.3. Orden Rhabditidia. 19
2.3.1.3.1 Dictyocaulus Arnfieldi. 19 2.3.2. Generalidades de los Cestodos. 19 2.3.2.1. Principales Cestodos del Equino. 20
2.4. DIAGNOSTICO PARASITOLOGICO. 24
2.4.1. Técnicas de laboratorio. 24
2.4.1.1. Método de Mc Master. 24 2.4.1.2. Método de sedimentación flotación. 25
2.4.1.3. Método de baerman. 25
3. METODOLOGIA DE LA PROPUESTA. 25
3.1. LOCALIZACIÓN. 25
3.2. POBLACION Y MUESTRA. 26
3.3 VARIABLES. 29
3.3.1 Precipitación. 29
3.3.2 Biotemperatura. 29
3.3.3 Brillo solar. 29
3.4 ANALISIS ESTADÍSTICO. 31
3.5 METODOS Y PROCEDIMIENTOS. 31
3.5.1 Materiales. 31
3.5.2 Procedimiento del método. 32
4. RESULTADOS 37
5. ANALISIS Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS 45
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES. 54
BIBLIOGRAFIA. 57
ANEXOS. 63
LISTA DE TABLAS
Pág.
Tabla 1. Programa de vacunación recomendado para equinos 5
Tabla 2. Principales Parásitos Internos de los Equinos. 8
Tabla 3. Fincas de Zipaquira y Cajica. 26
Tabla 4. Fincas de Tabio y Tenjo. 26
Tabla 5. Fincas de Sibate y Pasca 27
Tabla6. Fincas de Sopo y la Calera 27
Tabla 7. Promedios mensuales de Variables ambientales, precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el
municipio de Zipaquira. 29
Tabla 8. Promedios mensuales de Variables ambientales,
precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el
municipio de Tabio. 30
Tabla 9. Promedios mensuales de Variables ambientales, precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el
municipio de la Calera. 30
Tabla 10. Promedios mensuales de Variables ambientales, Precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el
municipio de Sibate. 30
Tabla 11. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados
en el municipio de Zipaquira. 37
Tabla 12. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados
en el municipio de Tabio. 38
Tabla 13. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados
en el municipio de la Calera. 39
Tabla 14. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados
en el municipio de Sibate. 40
Tabla 15. Promedio de eliminación de hpg durante 6 meses en
municipios de la Sabana de Bogota. 41
LISTA DE FIGURAS
Pág.
Figura 1. Equino parasitado. 7
Figura 2. Equinos en pastoreo. 7
Figura 3. Huevo de Strongylus. 9
Figura 4. Ciclo de vida de los Strongylus. 13
Figura 5. Huevo de Parascaris. 16
Figura 6. Ciclo de vida de Parascaris. 18
Figura 7. Ciclo de vida de Cestodos. 23
Figura 8. Ubicación general en Colombia. 28
Figura 9. Ubicación especifica dentro de Cundinamarca. 28
Figura 10. Materia fecal distribuida en el potrero. 32
Figura 11. Materia fecal fresca y recolección de la misma, distribuida 33 en el potrero.
Figura 12. Bolsa plástica con 400 a 500 gramos de materia fecal. 33
Figura 13. Nevera de hicopor. 34
Figura 14. Congelamiento de muestras. 34
Figura 15. Recipiente marcado para la mezcla de una solución 35 saturada de cloruro de sodio al 36% con 3 g de materia fecal.
Figura 16. Mezcla de una solución saturada de cloruro de sodio 35 al 36% con3 gr. de materia fecal.
Figura 17. Cámara de Mc- Master para el recuento de huevos de 36 parásitos Gastrointestinales.
Figura 18. Huevos de parásitos gastrointestinales. 36
LISTA DE GRAFICAS
Pág
Gráfica 1. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio
de Zipaquirá. 37
Gráfica 2. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio
de Tabio. 38
Gráfica 3. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio
de la Calera. 39
Gráfica 4. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio
de Sibate. 40
Gráfica 5. Promedio de eliminación de hpg durante 6 meses en
municipios de la sabana de Bogota. 41
Gráfica 6. Curvas de eliminación de hpg en el municipio de Zipaquira durante los meses muestreados y su relación con la precipitación (Pp mms), brillo solar (BS Hrs) y Temperatura (T ºC). 42
Gráfica 7. Curvas de eliminación de hpg en el municipio de Tabio durante los meses muestreados y su relación con la precipitación
(Pp mms), brillo solar (BS Hrs) y Temperatura (T ºC). 43
Gráfica 8. Curvas de eliminación de hpg en el municipio de la Calera durante los meses muestreados y su relación con la precipitación
(Pp mms), brillo solar (BS Hrs) y Temperatura (T ºC). 43
Gráfica 9. Curvas de eliminación de hpg en el municipio de Sibate durante los meses muestreados y su relación con la precipitación (Pp mms), brillo solar (BS Hrs) y Temperatura (T ºC). 44
Gráfica 10. Curva de eliminación de hpg en equinos de la Sabana de Bogota y su relación con la precipitación (Pp mms), brillo solar
(BS Hrs) y Temperatura (T ºC). 44
RESUMEN DEL PROYECTO
El presente estudio fue realizado en 4 zonas de la Sabana de Bogotá. El objetivo del estudio fue determinar las variaciones de eliminación de huevos por gramo (HPG) durante los meses de abril a septiembre de 2006. Se analizaron un total de 180 animales, pertenecientes a 4 zonas, (45 animales por zona). A los cuales se les tomó una muestra de materia fecal, una vez al mes, esta muestra se tomo directamente del potrero donde se encuentren los animales pastoreando en el momento. La materia fecal se recolectó directamente del potrero mes a mes durante un periodo de 6 meses, luego fue procesada mediante la técnica de Mc- Master modificada por Scmidht para el respectivo conteo de huevos. Se utilizó el programa Statitix para calcular la estadística descriptiva, la correlación entre las variables climáticas (Temperatura, Brillo Solar y Precipitación), y cada grupo de parásito; el análisis de varianza fue calculado en Microsoft Excel. Se establecieron las curvas de eliminación de huevos por gramo de materia fecal del orden Strongylida y los géneros Strongylus, parascaris y oxiuros.
ABSTRACT
The present study was made in 4 zones of the sabana of Bogotá. The objective of the study was to determine the variations of eggs elimination by gram (HPG) during the months from April to September of 2006. A total of 180 animals was analyzed, pertaining to 4 zones, (45 animals by zone). To which them volume a sample of fecal matter, once a month, this sample volume directly of the pasture where are the animals shepherding at the moment. The fecal matter was collected directly of the pasture month to month during a period of 6 months, then was processed by means of the technique of Mc- Master modified by Scmidht for the respective count of eggs. The program was utilized Statitix to calculate the descriptive statistics, the correlation among the climatic variables (Temperature, Solar Shine and Haste), and each group of parasite; the analysis of varianza was calculated in Microsoft Excel. The eggs elimination curves by gram of fecal matter of the order were established Strongylida and the kinds Strongylus, parascaris and oxiuris
INTRODUCCIÓN
El presente trabajo de investigación busca aportar nuevos conocimientos en el ámbito de la parasitología de la especie equina, ayudando con esto al estudio de una nueva franja productiva del sector agropecuario colombiano; basado en la recuperación, fortalecimiento y comunicación de conocimientos mediante la recopilación, organización y análisis de la información expresada en la determinación de poblaciones de parásitos gastrointestinales, presentes en equinos de la Sabana de Bogotá.
La especie equina vive en simbiosis con una gran cantidad de parásitos gastrointestinales y pulmonares, pero este equilibrio puede verse afectado por factores de manejo, nutricionales y condiciones medio ambientales entre otras, pudiendo favorecer el desarrollo excesivo de los parásitos. Por tal motivo es de vital importancia conocer que parásitos están afectando a una población dada y como varia la presentación de estos con el correr del tiempo, para de esta forma poder determinar si se justifica o no un tratamiento dado.
La especie equina en Colombia ha crecido en forma importante, pero este crecimiento no se ha producido en forma paralela con las investigaciones sobre la especie, por lo cual en la actualidad no existen gran variedad de reportes enfocados a la salud animal en cuanto a parasitismo gastrointestinal especificando incidencia poblacional determinada en meses específicos del año, que afectan económicamente las explotaciones equinas.
Es por eso que el presente estudio mostrará un conocimiento más específico
de cuales son las poblaciones y en que meses del año se presentan con más frecuencia estos parásitos gástricos descritos a continuación, para de esta manera poder hacer un manejo más preventivo en las explotaciones equinas de la Sabana de Bogotá.
1. OBJETIVOS
1.1. OBJETIVO GENERAL
Determinar la influencia de las variables ubicación geográfica, animales en pastoreo, precipitación fluvial y temperatura, sobre los niveles de excreción de huevos de parásitos gastrointestinales en equinos de cuatro zonas de la Sabana de Bogotá en un periodo de 6 meses.
1.2. OBJETIVOS ESPECIFICOS
1. Determinar el número de huevos por gramo de materia fecal de parásitos gastrointestinales mediante recuentos mensuales.
2. determinar las diferencias poblacionales entre los 4 municipios muestreados.
3. Determinar la dinámica de eliminación de huevos por gramo de materia fecal durante los 6 meses del 2006 (de Abril a Septiembre) teniendo en cuenta las variables propuestas en el proyecto. ubicación geográfica y Animales en pastoreo aleatoriamente escogidos, precipitación fluvial y temperatura.
4. Correlacionar la dinámica de excreción de huevos de parásitos gastrointestinales con las variables establecidas.
5. determinar los niveles de fluctuación de huevos de parásitos gastrointestinales durante los 6 meses del estudio.
2. MARCO TEORICO 2.1. MANEJO SANITARIO
Programas para controlar las enfermedades infecciosas, son un componente importante dentro de los esquemas de manejo dirigidos a maximizar la salud, productividad y rendimiento de los caballos en las diferentes actividades ecuestres.
Las enfermedades infecciosas en un caballo o brotes de la enfermedad en un grupo de equinos, resultan cuando los agentes infecciosos sobrepasan los niveles de resistencia que los caballos han adquirido a través de la previa exposición natural a la enfermedad o por la vacunación.
Los programas de control de enfermedades deberán ser dirigidos a reducir la cantidad de agentes infecciosos en el ambiente, minimizar factores que disminuyen la resistencia de los caballos, e incrementar su resistencia por medio de la vacunación.
La incidencia de las enfermedades infecciosas en las poblaciones equinas tiende a incrementarse con el número y concentración de animales, así como el movimiento constante de caballos, condiciones ambientales, influencias de manejo y mala alimentación, entre otras causas, que también influyen en la presentación de cuadros infecciosos. (Madison, 2002)
Las principales vacunas disponibles y que se deben emplear son: Tétanos, influenza, encéfalomielitis equina, rinoneumonitis equina y recientemente vacuna contra la fiebre del Nilo, existen otras como rabia, gurma, botulismo, etc.
Tabla 1.Calendario de vacunación recomendado para un buen manejo sanitario.
© 2004 Cargill, PURINA®.
2.2. GENERALIDADES DE LOS PARASITOS
En parasitología se habla de portadores sanos y eliminadores mudos, refiriéndose a individuos que albergan parásitos sin mostrar signos clínicos de padecimiento. También deben considerarse algunas circunstancias que afectan a determinadas poblaciones, pues las situaciones de equilibrio en la convivencia parásito/hospedador en una determinada zona, pueden dar la apariencia de salud, en ausencia de comparación con grupos testigos exentos de parásitos.
Dado que las enfermedades parasitarias son el resultado de la intervención de agentes vivos, es claro que las parasitosis implican el reconocimiento de una ENFERMEDAD
VACUNACIÓN POTROS AÑALES ADULTOS YEGUAS
DE CRÍA DEPORTIVOS 3 a 4
meses de edad Aplicar Toxoide
tetánico
refuerzo
Anual Anual
1 mes antes del
parto
Anual
4 a 5 meses de
edad Aplicar Encéfalo
mielitis equina
refuerzo
Anual Previo a las lluvias
Anual Previo a
Anual y 6 semanas las lluvias preparto
Anual
Influenza 3 a 6 meses
3 a 6 meses de
edad.
Aplicar refuerzo
Cada 6 meses
Bianual, un refuerzo 4
a 6 semanas Anual con
refuerzos previo a
Cada 3 exposición
preparto
meses
Rinoneumonitis 2 a 3 meses
Cada 6
meses Bianual
5, 7 y 9
meses de Cada 3 gestación meses
concepción etiológica de las mismas. Cuando los parásitos son netamente patógenos para una especie se habla de parasitosis primarias. Pero si se entiende el parasitismo como fenómeno de convivencia de poblaciones de parásitos y hospedadores en un ecosistema del que forman parte y también influyen se habla de parasitosis secundarias. También entran numerosos factores como: la patogenicidad de algunos parásitos guarda relación con la dosis que recibe el hospedador y el ritmo con el que llegan. (Quiroz, H, 1994.) El papel de los sistemas de manejo de los animales en la regulación de las dosis infectantes. El papel de los sistemas de explotación en la manifestación de las enfermedades de origen biótico. Factores ambientales y Factores abióticos y bióticos del medio. (Foreyt, 2001)
2.2.1. Parasitismo en Equinos
2.2.1.1. Importancia de los parasitismos.
Los parásitos, especialmente los que afectan el tracto digestivo, es una de las limitantes para la productividad y mantenimiento de la especie equina; esto trae como consecuencia la mortalidad de animales, mermas en las capacidades de producción y además, altos costos de profilaxis y/o tratamiento. (Sievers, P, 1998).
Aunque la mortalidad de esta especia es baja y esta ligada, a la mala alimentación y descuidos sanitarios, una de las principales causas de muerte en los equinos jóvenes es el mal manejo en neonatos, la mortalidad en equinos esta situada en 2% para el primer año de vida, reduciendo al 1% en animales entre 1 y 2 años y en la etapa adulta puede ser considerada
accidental. Las parasitosis internas representan uno de los problemas más serios a los que se enfrenta la producción pecuaria. Existen miles de especies que parasitan a los animales domésticos. Los helmintos (gusanos) son los de mayor importancia en la cría de los animales, estos afectan al hospedador de diversas maneras, dependiendo de la forma en que obtienen sus alimentos. En general, los animales jóvenes son más susceptibles al ataque de los parásitos, pudiendo incluso ocasionarles la muerte. Sin embargo, las parasitosis dramáticas no son la regla, y ocasionan más daño (económico) aquellas que pasan desapercibidas, que día a día están mermando el crecimiento o la producción de los animales. Es por ello que se debe detectar, el problema parasitario en una explotación pecuaria y la dinámica de la población parasitaria para poder tomar medidas de control.
Figura 1. Equino Parasitado. Figura 2. Equinos en Pastoreo
2.3. GENERALIDADES
Los equinos son una especie muy susceptible a una gran variedad de parásitos internos los cuales se relacionan en la tabla2.
Tabla 2. Principales Parásitos Internos de los Equinos.
Filum Clase Orden Familia Genero Especie
Vulgaris
Edentatus Strongylus
Equinus
Minutus
Calicatus Cylicostephanus
Radiatus
Leptsotomus Nassatus Cylicocyclus
Catinatum Goldi Cyathostomun
Labiatum
Cylicodontophorus Bicoronatus
Poteriostomum Imparidentatum Strongylida strongylidae
Gyalocephalus y
otros Capitales
Ascaridida Ascarida Parascaris Equorum
Oxyuris Equi
Oxyuridae
Probsmayra Vivipara Oxyurida
Habronematidae Habronema Muscae
Strongyloididae Strongyloides Westeri
metastrongylidae Dictyocaulus Arnfieldi Nemathelminthos Nematoda
Rhabditida
Trichostrongylidae Trichostrongylus Axei
Magna
Plathelminthos Cestoda Cyclophillida Anoplocephalidae Anoplocephala Perfoliata
(Prada, 2002)
2.3.1. Generalidades de los Nematodos
Los nematodos son gusanos redondos, no segmentados, especies libres y parásitas, cuya morfología es básicamente semejante, aunque las ultimas presentan adaptaciones a la forma de vida parasitaria. El cuerpo es filiforme con simetría bilateral, paro las hembras de algunas especies desarrollan dilataciones corporales mas o menos globulosas. El tamaño de los nematodos varía desde pocos milímetros (algunos Ooxiuros), hasta más de un metro de longitud (hembras de dracunculus). Poseen aparato digestivo, sexo separado y ciclos vitales directos o indirectos. (Campillo, 2002).
Los principales parásitos que afectan de una forma directamente importante al equino, pertenecen al orden strongylida (grandes y pequeños strongylus), ascarida (parascaris equorum) y Rhabditida (Dyctiocaulus arnfieldi).
(Basso, N. 1992), (Tarazona, J. 1995).
2.3.1.1. Orden strongylida 2.3.1.1.1. Grandes Strongylus Figura 3. Huevo de Strongylus.
(au.merial.com)
Strongylus Vulgaris
Su cápsula bucal es de forma oval con dos dientes de forma de raqueta en el lado dorsal de la base. El macho mide 14 a 16 mm y la hembra 20 a 24 mm de largo. Se encuentra en el intestino grueso del equino. (Borchert, A. 1981)
Es el más común de los grandes strongylus y es considerado como el más patógeno de los parásitos internos del equino. La patogénesis es el resultado de una arteritis trombo embolica de la arteria mesentérica craneal o de sus ramas principales. Dentro de las dos primeras semanas de infección las larvas infectivas penetran la mucosa intestinal, causando hemorragias de las paredes del intestino, arteritis de la mucosa y submucosa y una marcada reacción inflamatoria. (Burger, H. 1968)
Posteriormente hay una migración vía sanguínea donde la larva se moviliza hacia las arterias que irrigan al intestino (mesentérica craneal). La larva continúa su desarrollo dentro de la arteria, penetrando la intima causando arteritis con formación de trombos. (Urquhart, 1990)
El desarrollo del parásito adulto ocurre en los 3 a 4 meses siguientes con retorno sanguíneo del parásito al siego e intestino grueso. Allí forman quistes que contienen parásito rodeados de tejido necrotico y neutrofilos muy cerca de la terminación arterial trombotica. El quiste puede ocluir la luz intestinal y ocasionar daño de las paredes. (Blood. D. 1998)
La producción de huevos se inicia aproximadamente 6 meses después de la infección. Las hembras son hematófagas y causan erosión en la mucosa del colon, debilitando al caballo. Migraciones aberrantes pueden ocurrir hacia el
cerebro, corazón, aorta, arterias coronarias, arterias renales, riñones, medula espinal y arterias iliacas. (Urquhart, 1990)
La migración de las larvas ocasiona daño de las paredes de las arterias, afectando el riego sanguíneo a los órganos más importantes, principalmente intestino. Las reacciones del hospedador por daño de las larvas generan alargamiento de la pared arterial, acompañado de fibrosis y trombosis, que pueden llegar ha generar un bloqueo vascular e hipoxia en el tejido intestinal.
La extensión del daño depende del número de larvas migratorias, del tamaño de las arterias afectadas y del estado inmune del paciente. (Moor, J; 1991)
Las patologías ocasionadas por strongylus son más severas en animales jóvenes ya que estos no han tenido una previa exposición a los parásitos. Los grados de inmunidad, varían después de una exposición lenta, pero la inmunidad no puede ser absoluta. (Benavides, E. 2001)
Las reacciones en el hospedador pueden ser rápidas y severas en caballos no inmunizados. En tales caballos un pequeño número de parásitos puede ser letal dentro de las 2 a 3 primeras semanas de la infección. Este genero afecta animales desde los 2 meses de edad y durante toda la vida. (Campillo, 2002) Como se dijo es el más importante de los strongylus por el daño que produce en la arteria mesentérica craneal y sus ramas. Se presenta fiebre, perdida de apetito, disminución de peso, depresión, letargia, diarrea, pelo sin brillo, cólico de varios grados, enteritis gangrenosa, éxtasis intestinal. Posibles rupturas y otros efectos dependiendo de la localización del infarto. (Fischer, A.T, 1997)
Es clásico de este la producción de aneurisma verminosa que son causados por la formación de coágulos de sangre ocasionando muerte súbita, la formación de coágulos permite observar rengeras, sobre todo en las patas de los equinos parasitados, endoarteritis. (Campillo, 2002)
Existen dentro de los grandes strongylus otros dos parasititos no tan patógenos ni frecuentes en el equino pero no menos importantes que el strongylus vulgaris por tal razón vale la pena nombrarlos. (Johnstone, C, 1998)
Strongylus Edentatus
Es el segundo patógeno más importante y relativamente común en poblaciones de equinos, se encuentran como larvas infectivas, al eclosionar los huevos en los pastos, deben poseer buenas condiciones de humedad y calor para desarrollarse.
La larva penetra la mucosa del ciego migrando a lo larga del ciego, de las venas sécales hacia la circulación porta del hígado, causando peritonitis e inflamación de las superficies serosas de los órganos abdominales. En infecciones crónicas el hígado se puede volver fibrotico. (Soulsby, 1999)
Strongylus Equinus
Es el menos común de los grandes strongylus y presenta una distribución esporádica en Norteamérica.
Figura 4. Ciclo De Vida De Los Strongylus
Strongylus equinus, Strongylus vulgaris, Strongylus edentatus
Ciclos endógenos de los strongylus
Pared abdominal Nódulos bubperitoneales Muda a L-V (3 – 5 meses)
Hígado, muda a L-IV luz intestinal, adulto fértil (6 – 8 semanas) (10 – 12 meses)
HUEVO
L-I
L-II
Luz intestinal, adulto fértil luz intestinal, adulto fértil
(6 – 7 meses) (8 – 9 meses) L-III
Forma infectante
Nódulos en la nódulos submucosa subserosa de la pared páncreas y riñón p. intestinal intestinal (1-3 días) intestinal peripancreatica Muda a L-IV (7 días) muda a L-IV muda a L-5 (5 – 7 días) (22 semanas)
Capilares, arteriolas cavidad Y arteria cecal y cólica peritoneal (14 días) (19 días)
Tronco, arterias mesentéricas hígado
Y otras arterias (21 días) (6 – 8 semanas) Muda a L-V (5 – 6 meses)
(Lombardero, 1990)
Los nematodos que afectan a los equinos se encuentran distribuidos en siete subórdenes, doce familias, 28 géneros y 75 especies. (Rommel, M.J, Eckert, E.
Kutzer, W. Korting, T. Schnieder. 2000.)
Dentro de los Strongylus encontramos una subclasificacion; los grandes Strongylus y los pequeños strongylus. Los nematodos o vermes redondos son,
en su mayoría, parásitos alargados con cuerpo cilíndrico y afilado en ambas extremidades y con tamaño variable, en los adultos entre 5 y 50 cm. Durante su desarrollo, los nematodos sufren cambios a determinados intervalos. El ciclo evolutivo completo presenta cuatro cambios, con los estadios larvarios sucesivos siendo designados L1, L2, L3, L4, Y L5, que es el adulto inmaduro.
Los estadios L1, L2, y L3, son formas de vida libre o externa, siendo la L3 la forma infectante que es ingerida por el animal. Las formas L4 y L5 (el parásito adulto) son internas y se desarrollan solamente en el hospedador definitivo.
El ciclo de estos parásitos se inicia cuando las hembras maduran, ponen millares de huevos que son eliminados en las heces de los animales infectados. (Foreyt, 2001)
Los nematodos con ciclo evolutivo directo, ponen huevos, que bajo condiciones apropiadas de temperatura y humedad, rápidamente eclosionan, liberando larvas de vida libre, las cuales sufren dos mudas, transformándose en larva L3 (L3). Excepcionalmente, algunas especies de nematodos pueden presentar como forma infectante el huevo contenido a la larva L2 (parascaris equórum).
(Hubert, 1997)
2.3.1.1.2. Pequeños Strongylus
Los pequeños strongylus es el otro grupo de los strongyloides, en los cuales podemos encontrar un buen grupo de 13 géneros y 51 especies que pueden generar algunas alteraciones en el equino. Dentro de este gran grupo, para la especie equina encontramos que los más frecuentes e importantes pequeños strongylus son los siguientes: (Soulsby, 1999)
Cylicocylus spp
Las estructuras de la corona radiada interna son pequeñas y con forma de varilla, la cápsula bucal es corta y de paredes finas. Generalmente no existe túnel dorsal, las especies miden de 10 a 25 mm de longitud (C. nassatus, C.
Leptostomun, C. nsigne, C. ultrajectinus)
Cylicodontophorus spp
Son nematodos de tamaño pequeño o mediano, de 7 a 14 mm de longitud.
Presentan un collar bucal alto, los elementos de la corona radiada interna son largos y anchos, y la cápsula bucal corta y de pared fina (C. bicoronatus, C.
euproctus, C. mettami) ciego y colon
Cylicostephanus spp
Estos miden de 4 a 10 mm de longitud, el collar bucal esta aplanado, y los elementos de la corona radiada interna son finos y con forma de varilla
(C. Goldi, C. calicatus, C. barbatus, C. hybridus, C. longibarsatus) ciego y colon
Cyatostomum Spp
Tiene un tamaño de 1 a 1.5 mm de longitud, posee una cavidad bucal amplia que varia de acuerdo a las especies pero presenta corona radiada y puede o no presentar dientes. La extremidad posterior termina en punta aunque presenta bolsa caudal (C. Tetracanthum, C. Coronatunm, C. Labiatum, C.
Labratum, C. Ornatum, C. Sagittatum).
Estos parásitos por su presencia en el colon y ciego producen pérdida de la condición anemia, diarrea aguda y crónica, enteritis catarral con formación de nódulos de tejido fibroso, cólico, y ocasionalmente, la muerte.
2.3.1.2. Orden Ascarida.
Figura 5. Huevo de Parascaris equorum
.
(www.cvm.okstate.edu)
2.3.1.2.1. Parascaris Equorum
(Parásito Redondo de los equinos), se localiza en el intestino Delgado, generalmente afecta caballos jóvenes mas que adultos. Nematodo de típico ciclo de vida directo. Necesita de 10 semanas para la producción de huevos hasta el desarrollo del parásito adulto, dentro del huevo se desarrolla el 2 estado larvario para infectar las pasturas en 6 semanas. Cuando se ingieren, la larva sale del huevo y penetra la pared intestinal y son transportadas a través de la sangre hacia los pulmones y migran hacia la traquea. Después, son eliminados por la tos y son deglutidas nuevamente ubicándose finalmente en el intestino delgado donde maduran. (Vélez, 1999)
El parásito alcanza a medir hasta 30 cm. de longitud con tres prominentes labios, separados por tres pequeños intermedios y divididos en una porción anterior y una posterior por surcos horizontales existentes en su superficie media.
Es un gusano rígido, corpulento, con una gran cabeza. Los potros de 3 a 9 meses de edad son los que presentan con mayor frecuencia la parasitosis, su principal fuente de infección es la contaminación de los pastos y una infestación grave puede pasar de 50 millones de huevos por día. A partir de los 6 meses de edad se desarrolla una inmunidad significativa.
Figura 6. Ciclo de Vida de Parascaris Equorum.
Adultos en la Cavidad intestinal
Cavidad intestinal huevos mudas a L-II y L-III Muda a L-V (4 semana) en medio ambiente
L-IV en faringe L-II en (Deglución) luz intestinal
L-IV en sistema bronquial sistema Y traquea (expectoración) porta
Hígado (48 horas)
L-I alvéolos y bronquios pulmón, mudas a Pulmonares L-III y L-IV (7 a 14 días)
(Cordero y Vasquez, 2001)
HOSPEDADOR DEFINITIVO
EQUINOS
2.3.1.3. Orden Rhabditida
2.3.1.3.1 Dictyocaulus Arnfieldi
A nivel respiratorio el parásito pulmonar de mayor importancia es el Dictyocaulus arnfieldi, verme pulmonar que se encuentra en los bronquios y
bronquiolos de caballo, mulas y asnos. Sus huevos son elípticos, están embrionados y miden, aproximadamente, 80-100 por 50-60 um. Estos huevos pueden obtenerse a partir del procedimiento de flotación fecal de heces recientes (de menos de 24 horas), las larvas eclosionan de los huevos pocas horas después de que las heces hayan alcanzado el medio exterior. Las larvas de los vermes pulmonares se vuelven infecciosas en el medio exterior y los caballos se infectan al ingerirlas. Estas larvas migran hacia los bronquios por medio de los vasos linfáticos, el periodo prepatente del verme pulmonar equino es de 42 a 56 días.
2.3.2. Generalidades de los Cestodos
Los cestodos son helmintos que en estado adulto tienen un cuerpo aplanado dorsoventralmente, en forma de cinta, sin cavidad corporal ni tubo digestivo, y se localizan en el intestino y conductos biliares de sus hospedadores definitivos. Su tamaño oscila de unos pocos milímetros a varios metros de longitud.
Los estados larvarios tienen una forma esferoide u oblonga y se localizan en diferentes tejidos u órganos de los hospedadores intermediarios. Miden de algunos milímetros a varios centímetros de diámetro. Durante el desarrollo de los ciclos evolutivos, se requiere uno a más hospedadores intermediarios, sean vertebrados o invertebrados. Representan un importante grupo de parásitos internos en los animales domésticos y los útiles al hombre. (Dwight, D. 2004)
Los estadios larvarios de algunos cestodos tienen un importante papel en su carácter de zoonosis, a demás del importante impacto económico por el decomiso de órganos y canales de animales en los mataderos (Campillo, 2002).
El orden Cyclophillida alberga a los parásitos de mayor importancia clínica en los equinos, como son Anaplocephala perfoliata y Anaplocephala magna.
Ambas poseen un ciclo de vida similar.
2.3.2.1 Principales Cestodos del Equino
Las dos especies de cestodos adultos se encuentran en el intestino de los caballos. Anaplocephala perfoliata y magna. A pesar de que siempre han sido consideradas como componentes no patógenos de la flora intestinal del caballo, existen evidencias recientes que la anaplocephala perfoliata, el más común de estos cestodos, parece estar asociado con cólico, causado por anormalidades que involucran la unión ileocecal. (Charles M. H. 1998)
Dentro de las características morfológicas de esta familia se incluye la ausencia de rostelo y ganchos en el escolex, proglotides con aparato genital simple o doble con poros marginales y la presencia de útero transverso persistente, huevos encapsulados y uno o más órganos parauterinos. (Soulsby, 1999).
De las tres especies que infectan al equino, todas se diferencian entre si por la morfología del escolex, tamaño y localización dentro del tracto gastrointestinal.
Las lesiones causadas por estos cestodos no han sido determinadas claramente, sin embargo se han reportado inflamación y ulceración en el área donde están fijadas las larvas, igualmente existen reportes de cólico debido a intususcepción, impactacion o ruptura ileocecal. Estudios epidemiológicos han relacionado la Anaplocephala perfoliata, como un factor de riesgo en la presentación de cólico causado por anormalidades en la unión ileocecal.
(Little, S.E. 1999)
Las lesiones patológicas principales incluyen congestión y edema en la mucosa, engrosamiento, ulceración y formación de membranas difterias.
Histológicamente se observa infiltración de eosinofilos, concomitante con fibroplastia y engrosamiento de la mucosa. La severidad de las lesiones se incrementa con el número de parásitos y se hace mas pronunciada cuando los adultos se adhieren a la pequeña área de la mucosa de la unión ileocecal.
(Hubert, 1997).
Anaplocephala Magna (taenia equina)
Se encuentra en el intestino delgado y rara vez en el estomago; pueden medir entre 9 y 80 cm. de longitud y hasta 2 cm. de diámetro. El escolex tiene de 4 a 6 mm de ancho y tienen ventosas que se abren cranealmente.
El parásito esta caracterizado por la ausencia de cuello y marcada segmentación. El aparato genital es impar con poros unilaterales en la mitad caudal lateral de cada segmento. Los huevos son de forma irregular y pueden medir de 50 a 60 micras. Puede causar enteritis catarral a hemorrágica, cuando se presenta en alto numero. (Soulsby, 1999)
Anaplocephala Perfoliata (taenia de la válvula ileocecal)
Es relativamente corta, los adultos pueden tener una longitud de 3 a 8 cm., lo cual facilita su diferenciación a la magna, la identificación puede confirmarse por la presencia de diferentes lóbulos debajo de cada una de las 4 ventosas.
Se encuentra normalmente en la porción distal del intestino delgado, ciego y porción proximal del intestino grueso. Es necesario recordar que un considerable número de parásitos se acumula en el orificio ileocecal. Los escolex pueden medir 0.5 a a1 mm indicando que usualmente son más pequeños que las otras. El aparato genital en impar y unilateral y se encuentra en la mitad craneal hacia el margen lateral.
Los huevos son de forma irregular y pueden medir de 60 a 80 micras, los huevos pueden ser distinguidos de la magna por la oncosfera que es mas grande que la de la perfoliata, sin embarga es un método de difícil aplicación en la practica. Causa pocos efectos clínicos pero frecuentemente produce
inflamación y ulceras en el sitio de ataque. La obstrucción producida en la válvula ileocecal puede llegar a generar cólico. (Wiiliamson, 1998)
El ciclo de vida de los cestodos es siempre indirecto, los parásitos adultos se sitúan en el intestino delgado del equino, crecen y generan proglotidos a partir del escolex.
Figura 7. Ciclo de Vida de Cestodos.
Adultos el la Luz intestinal
Huevos y proglotides En heces
Ingestión
Cisteicercoide en
Luz intestinal Oncosfera libre En intestino
Cavidad celomica
Cisticercoide (2 – 6 meses)
(Cordero del Campillo y rojo, 2001)
ACARO ORIBATIDO
HOSPEDADOR INTERMEDIARIO HOSPEDADOR DEFINITIVO
EQUIDO
Los proglotidos maduros, después de la fertilización se tornan grávidos y son liberados de las extremidades inferiores del parásito y excretados en las heces de los animales infectados. A la desintegración de los proglotidos, los huevos conteniendo un embrión infectante se tornan disponibles en el ambiente y son ingeridos por un acaro oribatideo común en los pastizales.
En el acaro, el embrión se desarrolla hasta una forma larvaria cisticercoide. La infección del caballo ocurre cuando ingiere el acaro oribatideo. Cuando este acaro es digerido, las larvas cisticercoides son liberadas en el tracto digestivo del equino y se desarrollan en parásitos adultos en el intestino. El periodo necesario para el reinicio de un nuevo ciclo es de dos meses. (Colin, 2001)
2.4. DIAGNOSTICO PARASITOLOGICO
2.4.1. Técnicas de Laboratorio
2.4.1.1. Método de Mc Master:
Este es un método cuantitativo utilizado para determinar el número de huevos por gramo de heces. También se emplea para las larvas de nematodos o los Ooquistes en las coccideas.
Esta técnica permite diagnosticar la mayor parte de parásitos que eliminan huevos por materia fecal a excepción de cestodos y trematodos, pudiendo
diagnosticarse Grandes Strongylus y Pequeños Strongylus, Parascaris Equorum, Trichostrongylus Axei, Dyctiocaulus Arnfieldi, y Oxyuris Equi.
(Roberts, F, 1950)
2.4.1.2. Método de sedimentación y flotación.
Este método se realiza también con el fin de observar los huevos de los parásitos, esta técnica permite diagnosticar o identificar los huevos de cestodos que afectan al equino, lo cual no es posible con ninguna de las demás técnicas de diagnostico parasitològico. (Hemdrix. C, 1999)
2.4.1.3. Método de Baerman
Este es en método cualitativo que se utiliza para la identificación de parásitos pulmonares tales como el Dictyocaulus Arnfieldi. (Velez, 1999)
3. METODOLOGIA DE LA PROPUESTA 3.1 LOCALIZACIÓN
El estudio se realizo en cuatro predios ubicados dentro de la sabana de bogota
• Zona 1: Zipaquira - Cajica.
• Zona 2: Tabio – Tenjo
• Zona 3: Sopo – Calera.
• Zona 4: Sibate - Pasca.
3.2 POBLACION Y MUESTRA
Se tomaron muestras de 180 animales, pertenecientes a cuatro municipios es decir 45 animales por zona. Los animales a los que se les tomo la muestra eran animales con las mismas condiciones de manejo y alimentación. Eran animales que se encontraban en pastoreo, y estarán distribuidos de la siguiente manera:
Tabla 3. Fincas de Zipaquira y Cajica.
FINCA ANIMALES
• El Gavilán 5
• La Fraguita 5
• Manata 5
• Manga de cobos 5
• El Mercadillo 5
• Vecino 5
• Rió 5
• San Fernando 5
• Vecino Lado 5
Tabla 4. Fincas de Tabio y Tenjo.
FINCA ANIMALES
• El olivo 5
• La colina 5
• Rancho Texas 5
• La Suerte 5
• Las Jotas 5
• Texas 5
• Maria Juana 5
• Villa Natalia 5
• Las campanas 5
Tabla 5. Fincas de Sibate y Pasca.
FINCA ANIMALES
• Los Alpes 5
• El Cairo 5
• Contadero 5
• HG 5
• San Francisco 5
• Primavera 5
• Los Arrieros 5
• El Rosal 5
• La cantera 5
Tabla 6. Fincas de Sopo y la Calera.
FINCA ANIMALES
• Santa ana 5
• Romeral 5
• La pradera 5
• La Victoria 5
• La Lomita 5
• El Refugio 5
• Carros Viejos 5
• Kbalgar 5
• Los potrillos 5
Figura 8. Ubicación generan en Colombia.
(www.geocities.com)
Figura 9. Ubicación especifica dentro de Cundinamarca.
(www.javeriana.edu.co)
3.3 VARIABLES
Las variables a relacionar con el número de HPG de cada mes fueron:
Precipitación, Biotemperatura y Brillo Solar, de las cuales se calculo la media de cada mes durante el año 2006 de datos obtenidos del IDEAM. (Tabla 7).
3.3.1 Precipitación.
La media de Abril a Septiembre del 2006, de Precipitación reportada, es de 8.89 mms., con máxima en Abril (469.2) y mínima en el mes seco (12.2mm) correspondiente a agosto (IDEAM, 2006).
3.3.2 Biotemperatura.
Para la zona de vida la cual involucra la especie equina estudiada “La sabana de Bogotá” que es el de zona húmeda tropical la Temperatura media fue de 27ºC.
3.3.3 Brillo solar.
La media durante el muestreo fue de 6.13 horas y un total 2037.6 horas (IDEAM, 2006).
Tabla 7. Promedios mensuales de Variables ambientales, precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el municipio de Zipaquira.
MES Pp (mms) T ºC BS horas
ABRIL 1,21 18,2 4,33
MAYO 0,98 12,3 3,12
JUNIO 0,95 17,4 3,88
JULIO 6,23 15,4 6,12
AGOSTO 1,33 13,3 2,45
SEPTIEMBRE 5,49 12,9 3,46
(IDEAM 2006)
Tabla 8. Promedios mensuales de Variables ambientales, precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el municipio de Tabio.
MES Pp(mms) T ºC BS horas
ABRIL 2,38 15,4 3,36
MAYO 0,85 14,3 2,39
JUNIO 5,37 16,42 3,28
JULIO 0,78 12,5 1,97
AGOSTO 11,82 15 2,89
SEPTIEMBRE 14,11 13,6 2,23
(IDEAM 2006)
Tabla 9. Promedios mensuales de Variables ambientales, precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el municipio de la Calera.
MES Pp(mms) T ºC BS horas
ABRIL 3,26 15,4 3,11
MAYO 4,38 12,48 5,41
JUNIO 4,31 11,98 4,01
JULIO 6,86 12,98 2,86
AGOSTO 8,16 14,46 4,38
SEPTIEMBRE 3,09 12,79 4,04
(IDEAM 2006)
Tabla 10. Promedios mensuales de Variables ambientales, precipitación (Pp), temperatura (T ºC) y brillo solar (BS). En el municipio de Sibate.
MES Pp(mms) T ºC BS horas
ABRIL 0,86 8,03 4,21
MAYO 5,04 9,23 2,05
JUNIO 1,36 5,45 3,78
JULIO 14,04 9,16 3,24
AGOSTO 13,89 10,11 4,32
SEPTIEMBRE 2,15 12,36 3,06
3.4 ANALISIS ESTADÍSTICO
En el análisis del estudio se utilizo el programa Statitix para calcular: un diseño completamente al azar con arreglo factorial, la correlación de Pearson y P Valúe donde se considero que una correlación estadísticamente significativa seria P< 0.05 entre el clima (T ºC, Bs. y Pp.) y cada parásito. Con el fin de mirar las diferencias entre los 4 municipios, entre los meses de muestreo y observar si hay alguna relación para cada una de las zonas
3.5 METODOS Y PROCEDIMIENTOS
Básicamente se recolectaron muestras de materia fecal, directamente del potrero, desde el mes de Abril hasta el mes de Septiembre de 2006. Con el fin de determinar las variaciones en la eliminación de huevos por gramo de materia fecal a lo largo de los 6 meses.
El examen parasitològico empleado para las 180 muestras mensuales, fue el de conteo de huevos por gramo de materia fecal de paraitos gastrointestinales, llevado a cavo mediante la técnica de Mc Master modificado (Schmidt, 1971).
3.5.1 Materiales:
180 Equinos (45 animales por municipio de un total de 4 Zonas).
Materiales para las técnicas a utilizar:
MC MASTER:
Cámaras de Mc Master (3 unids).
Frascos de 50 ml (10 unds).
Baja lenguas (200 unds).
Goteros de vidrio (10 unds).
Microscopio (2 unds).
Mangas de palpación ( 300 unds = 6 paquetes)
Bolsas de 1 kilo ( 1000 unds)
Nevera de icopor (1 unds)
Gel refrigerante (4 bolsas)
Marcadores indelebles (4 unds)
Transporte
3.5.2 Procedimiento del método.
Se seleccionaron 45 animales por cada zona en estudio, de un total de 4 zonas. Todos los animales fueron equinos de trabajo de campo, es decir que vivían o habitaban en potrero todo el tiempo y que no tenían programas de desparasitacion establecidos, estos debían estar en condiciones climáticas similares es decir una, TEMPERATURA, BRILLO SOLAR y PRECIPITACION.
Los animales debían estar distribuidos lo más uniformemente posible a lo largo del municipio en estudio.
Figura 10. Materia fecal distribuida en el potrero.
Todos los animales fueron muestreados 1 vez por mes, por lapso de 6 meses tomando la muestra fecal directamente del potrero. Las muestras fueron
recogidas en 5 puntos distribuidos en todo el potrero teniendo en cuenta que la muestra recogida hubiera sido fresca.
Figura 11. Materia fecal fresca y recolección de la misma, distribuida en el potrero.
Esta fue recogida en bolsas plásticas o mangas de palpación (+/- 150 gramos), luego se le extrajo la mayor parte del aire y se anudo marcándola o identificándola con el numero del animal muestreado.
Figura 12. Bolsa plástica con 400 a 500 gramos de materia fecal.
Luego fue guardara en una nevera de hicopor con hielo, para evitar la eclosión de los huevos. Las muestras fueron transportadas al laboratorio de
parasitología de la universalidad de la salle, sede la floresta, Bogotá. Mediante una nevera hicopor respectivamente refrigerada
Figura 13. Nevera de hicopor. Figura 14. Congelamiento de muestras.
Las muestras fueron trabajadas y procesadas de la siguiente manera:
METODO DE MC MASTER:
Este método modificado por Schmidt, se basa en la mezcla de 42 ml. de una solución saturada de cloruro de sodio (360 gr. / litro de agua) con 3 gr. de materia fecal, para lo cual se utilizaron varios recipientes que se llenaban con 45 ml. de la solución saturada donde se marcaban con una línea, luego eran sustraídos 3 ml. para también ser marcado con otra línea, quedando 42 ml. de solución.
Figura 15. Recipiente marcado para la mezcla de una solución saturada de cloruro de sodio al 36% con 3 g de materia fecal.
Al procesar las muestras se llenan con la solución saturada de cloruro de sodio al 36% hasta la primera línea es decir 42 ml. para luego completar los 45 ml.
con los 3 gramos de materia fecal. Homogenizando luego la muestra por medio de una paleta de madera de manera cuidadosa para no romper los huevos, para acto seguido llenar con la solución la cámara de recuento de huevos (Cámara de Mc- Master), mediante la utilización de un gotero, esta debe dejarse en reposo 2 minutos para luego hacer un conteo de huevos en ambas secciones (cuadrículas) con 100 o con 250 aumentos
Figura16. Mezcla de una solución saturada de cloruro de sodio al 36% con 3 gr. de materia fecal.
El número de huevos encontrados se multiplica por 50 para obtener el número de huevos por gramo de materia fecal (hpg).
Esta técnica permite diagnosticar la mayor parte de parásitos que eliminan huevos por materia fecal a excepción de cestodos y trematodos.
Figura 17. Cámara de Mc- Master para el recuento de huevos de parásitos Gastrointestinales.
Figura 18. Huevos de Parásitos Gastrointestinales.
PARASCARIS STRONGYLUS OXIURIS
4. RESULTADOS
RESULTADOS ZIPAQUIRA
El comportamiento de eliminación de huevos por gramo (hpg), en cada predio del municipio de Zipaquira, se observa en la tabla 11.
Tabla 11. Promedio de eliminación de HPG, en predios muestreados en el municipio de Zipaquirá.
FINCA OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
Gavilán 8,3333 20 4296,7
La fraguita 6,6667 11,667 3058,3
Manata 5 15 2106,7
Manga de Cobos 11,667 8,3333 1883,3
Mercadillo 8,3333 21,667 4115,6
Vecino 10 8,3333 2515
Rió 5 28,667 2686,7
San Fernando 6,6667 8,3333 3000
Vecino Lado 6,6667 10 2763,3
En la gráfica1 se observa que en la finca de el Gavilán existió mayor eliminación de hpg de Strongylus durante los meses muestreados.
Gráfica 1. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de Zipaquirá.
Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de Zipaquira
-200 800 1800 2800 3800 4800
Gavilan La fraguita Manata Manga de Cobos
Mercadillo Vecino Rio San
Fernando
Vecino Lado Fincas Muestreadas
hpg
OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
RESULTADOS TABIO
El comportamiento de eliminación de hpg en el municipio de Tabio se observa en la tabla 12.
Tabla 12. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados en el municipio de Tabio.
FINCA OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
Olivos 11,667 10 3060
La Colina 10 10 2308,3
Rancho Texas 6,6667 10 2873,3
La Suerte 6,6667 11,667 2196,7
Las Jotas 10 13,333 4893,3
Texas 6,6667 10 2450
Maria Juana 8,3333 5 2555
Villa Natalia 6,6667 10 2210
Las Campanas 10 8,3333 2275
En la gráfica 2 se observa que en la finca las jotas hay una mayor eliminación de hpg de Strongylus durantes los meses muestreados.
Gráfica 2. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de Tabio.
Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de Tabio
-200 800 1800 2800 3800 4800
Olivos La Colina Rancho Texas
La Suerte Las Jotas Texas Maria Juana Villa Natalia Las Campanas Fincas Muestreadas
hpg
OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
RESULTADOS CALERA
El comportamiento de eliminación de hpg en el municipio de La Calera se observa en la tabla 13.
Tabla 13. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados en el municipio de la Calera.
FINCA OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
Santa Ana 6,6667 10 3951,7
Romeral 6,6667 6,6667 2693,3
La pradera 6,6667 13,333 3638,3
La victoria 8,3333 3,3333 2475
Lomita 11,667 11,667 3585
Refugio 5 8,3333 2931,7
Carros Viejos 11,667 11,667 3835
Kbalgar 10 10 2653,3
Los Potrillos 8,3333 5 3335
En la gráfica 3 se observa que en la finca Santa Ana hay una mayor eliminación de hpg de Strongylus durantes los meses muestreados.
Gráfica 3. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de la calera.
Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de la calera
-200 300 800 1300 1800 2300 2800 3300 3800 4300
Santa Ana Romeral La pradera La victoria Lomita Refugio Carros Viejos
Kbalgar Los Potrillos Fincas Muestreadas
hpg
OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
RESULTADOS SIBATE
El comportamiento de eliminación de hpg en el municipio de Sibate se observa en la tabla 14.
Tabla 14. Promedio de eliminación de hpg, en predios muestreados en el municipio de Sibate.
FINCA OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS
Los Alpes 5 11,667 4258,3
El Cairo 8,3333 16,667 4290
El Contadero 13,333 16,667 3316,7
HG 8,3333 10 2951,7
San Francisco 6,6667 8,3333 4613,3
La Primavera 10 11,667 3086,7
los Arrieros 10 10 3846,7
El Rosal 6,6667 11,667 5313,3
La Cantera 13,333 8,3333 3835
En la gráfica 4 se observa que en la finca el Rosal hay una mayor eliminación de hpg de Strongylus durantes los meses muestreados.
Gráfica 4. Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de Sibate.
Promedio de HPG en predios muestreados del municipio de Sibate
-200 800 1800 2800 3800 4800
Los Alpes El Cairo El Contadero
HG San
Francisco La Primavera
los Arrieros
El Rosal La Cantera
Fincas Muestreadas
hpg
OXYURIS PARASCARIS STRONGYLUS