Universidad Nacional Del Altiplano Parasitologia II

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Universidad Nacional del Altiplano

–

Puno

FACULTAD DE VETERINARIA Y

ZOOTECNIA

INFORME DE LAS PRACTICAS

DOCTORa:

DOCTORa: m.v.z.

m.v.z. feliciana

feliciana

PRESENTADO POR: RICHARD CURO CALSIN:

codigo: 094137

SEMESTRE:

SEMESTRE: IV

IV

“2012”

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FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

LABORATORIO DE PARASITOLOGIA

GUIA DE PRACTICAS

PRACTICA Nº 1

INTRODUCCION AL ESTUDIO DE PROTOZOARIOS

1. OBTENCION Y REMISION DE MUESTRAS DE HECES AL LABORATORIO

2. PROCEDIMIENTO PARA LA OBTENCIÓN Y REMISION DE MUESTRA DE

HECES AL LABORATORIO

MATERIALES:

 Mandiles o mamelucos  Botas de jebe

 Caja refrigerante (acero, madera)

 Materiales de sujeción (sogas, mochetas)  Balde de plástico.

 Jabón carbólico

 Guantes de polietileno  Espátula de plástico.

 Recipientes adecuados, como :

- Bolsas de polietileno

- Embase de plástico o de vidrio de boca ancha con tapa o rosca - Rotulo que debe llevar el frasco en el que debe constar:

. Nombre del Propietario o fundo . Identificación del animal

 . Fecha y hora en que se obtuvo la muestra

ALGUNOS CRITERIOS QUE DEBE TOMARSE:

1. Número de Muestra:

 Cuando la cantidades son mayores a 100 = 10% (5%B, 5%M).

 Cuando las cantidades son menores a 100 = Mínimo de 10 animales por rebaño o

manada (por grupo de edad).

2. Las muestras tomadas deberán ser analizadas inmediatamente:

 Costa: Dentro de 18 horas como máximo  Sierra: Dentro de 48 horas máximo

En caso de no poder realizar el análisis dentro de este tiempo, es necesario utilizar Sistemas fijadores como :

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COMPOSICION



FORMOL AL 10%

.:

- Formol comercial 4%

1

parte

-

Agua destilada

3

parte

---4 partes



F0RMOL SALINO

- Formol comercial 4% 50 c.c. - Agua Destilada 50 c.c. - Na Cl 10 gr.



ALCOHOL POLIVINILICO (PVA), (PARA PRESERVAR)

- PVA em polvo 254 gr.

- Solución saturada de bicloruro de mercúrio 312 ml.

- Glicerina 7.5 ml.

- Alcohol etílico (95%) 176 ml. - Alcohol acético glacial 25 ml

METODO DIRECTO

EXTENSION FECAL DIRECTA

MATERIALES.

 Muestra de heces  Varilla de vidrio

 Laminas portaobjetos  Laminillas cubre objetos  Microscopio óptico.

 Agua desmineralizada y/o suero fisiológico o lugol débil.

PROCEDIMIENTO Y/O MÉTODOS

1.

Tomar una pequeñísima cantidad de heces y depositar al centro de un portaobjeto limpio.

2.

Poner 1-2 gotas más de agua desmineralizada o suero fisiológico y/o lugol débil, sobre las heces y luego mezclarlo completamente empleando la varilla de vidrio o palillo de madera.

(4)

3.

Con la varilla o el palillo de madera apartar la suspensión o estructuras duras no disueltas anteriormente.

4.

Cuidadosamente aplicar las laminillas cubreobjetos sobre la muestra evitando que se forme burbujas de aire.

5.

finalmente examinara el área bajo el microscopio óptico (10x,40x,100x),

RESULTADOS Y DISCUSIONES

PROTOCOLO

UNIVERSIDAD NACIONAL DEL ALTIPLANO

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

CIP LA RAYA

PROTOCOLO Nº ……….………… NOMBRE DEL PROPIETARIO………..…… PROFESIONAL TRATANTE……….. LUGAR………..FECHA……… ZONA GEOFRAFICA Y TOPOGRAFICA… ……….

CARACTERISTICAS GENERALES DE LOS ANIMALES

ESPECIE………..RAZA………..SEXO………..ESTADO NUTRICIONAL………...

TIPO DE CRIANZA………..

RESUMEN DE LA HISTORIA CLINICA

SINTOMAS……… ……….

DIAGNOSTICO PRESUNTIVO O APARENTE………...…… -……… DESPARASITACIONES PREVIAS: PRODUCTO UTILIZADO………... DOSIS………..FECHA DE TRATAMIENTO……… ENFERMEDADES CONCOMITANTES……… MORBILIDAD (%)………MORTALIDAD (%)……… EXAMEN DESEADO………

OTROS DATOS

TIPO DE CONSERVADOR………. MEDIO DE TRANSPORTE………. SISTEMA DE REFRIGERACION………..

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LABORATORIO DE PARASITOLOGIA

GUIA DE PRACTICAS

PRACTICA Nº 2

IDENTIFICACIÓN DE EIMERIAS

FUNDAMENTO.-La parasitología veterinaria estudia a los parásitos de los animale4s domésticos de importancia como: vacunos, ovinos, caprinos, porcinos, camélidos sudamericanos, cuyes y aves respectivamente, pero también existe otro tipo de animales considerados como mascotas como el perro y el gato que son de importancia porque transmiten enfermedades zoonoticas al hombre y es necesario conocer a los parásitos que afectan a estas especies.

.

METODO DE CONCENTRACION

METODO DE FLOTACION

Se basa en la flotación de quistes, ooquistes y huevos de parásitos en una solución de azúcar, que posee mayor densidad que ellos. Esta técnica es útil para la concentración de quistes y ooquistes de protozoos y huevos de helmintos y se utiliza como método preferencial en el diagnostico de los coccidios.

Materiales:

 Solución flotante

 Embudo (40-60 hilos por pulgada cuadrada)  Mortero y su respectivo mango

 Laminas porta-objeto  Laminas cubre objetos  Tubos de prueba de 10 ml

 Vasos de precipitados.

 varilla de vidrio

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Procedimiento:

1 Extraer con una espátula aproximadamente de 2 a 3 gr. de material fecal de cualquier especie y depositar en el mortero

2 Agregar 10 a 15 ml de solución flotadora y homogenizar con el uso del mango del mortero

3 Filtrar a través de una malla (embudo) a un vaso de precipitados

4 El filtrado se transfiere a los tubos de prueba o frasquitos de penicilina, hasta que forme un menisco convexo

5 Colocar la laminilla cubre – objetos sobre el menisco y espere unos 15 a 20 min.

Interpretación

1 Ningún huevo en la muestra completa Negativa (-)

2 Pocos huevos (1-5) Infección moderada (+) 3 Pocos huevos (6-10) Infección mediana (++)

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Identificación de Eimerias

Nombre común de la enfermedad entérica en aves, causada por protozoarios de la familia Eimeriidae: E tenella - E mivati - E brunetti - E maxima - E acervulina

Eimeria tenella: la infección se presenta habitualmente en el intestino de las aves. Ocurre principalmente en animales jóvenes.

El intestino ciego se presenta inflamado por la acumulación de sangre

Intestino inflamado Intestino inflamado Erosión en la mucosa

Oocitos de tres gallinas infectadas por esporas de Eimerias

Eimeria acervulina 17-22 x 13-18 µ Eimeria maxima 22-44 x 17-32 µ Eimeria tenella 19-28 x 16-25 µ

Las especies del género

Eimeria

, se desarrollan en las células epiteliales del intestino delgado .Algunas especies, como E. polita, porci, scabra y spinosa se mutliplican en las partes finales del intestino delgado, mientras que E. debliecki se localiza en yeyuno. Los ooquistes (11-35x11-26 um) son eliptícos, u ovoides, piriforme, ovales, o esféricos, con una membrana externa incolora, o ligeramente colorada de color amarillo que rodea a cuatro esporocistos que tienen 2 esporozoítos cada uno cuando han esporulado.

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Los ooquistes, de

Isospora suis

, son subesféricos o elipsoides (17-25x16-21 um), la pared es incolora, no tienen cuerpo de Stieda ni cuerpo residual ooquístico, y forman dos esporoquistes con cuatro esporozoítos cada uno. Esta especie invade el epitelio apical de las vellosidades de todo el intestino delgado, preferentemente del primer tercio y también la zona media del yeyuno, aunque también pueden encontrarse en el fondo de las criptas , en la mitad posterior del intestino delgado y en el duodeno, ciego y colon.

Ooquistes de Eimeria,

En el medio ambiente natural tal y como se excretan por el animal a través de la materia fecal.

Los animales contaminan el agua, el pasto, las camas, con la excreción de ooquistes, en el medio ambiente y bajo la influencia de la temperatura y la humedad, el ooquiste

se esporula, aproximadamente en 7 días y se convierte en un ooquiste infectivo y si el ooquiste esporulado es ingerido por el animal se reinicia de nuevo el ciclo biológico

del parasito. El ooquiste esporulado contiene cuatro esporozoitos y dos merozoitos, que infectan las células epiteliales del intestino.

Oquiste esporulado de Eimeria

. Cuatro esporoquistes cada uno con dos Esporozoitos

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Eimeria brunetti, una de las especies que causan coccidiosis en aves

domésticas.

Eimerias notificadas en Camélidos Sudamericanos:

Especie

Alpacas

LLamas

Guanacos

Vicuñas

E. alpacae

+

-

+

E. lamae

+

-

+

E.macusaniensis

+

E. peruviana

-

+

-

-E. punoensis

+

-

+

E. ivitaensis

+

-

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-Eimeria lamae

eimeria punoensis

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LABORATORIO DE PARASITOLOGIA

GUIA DE PRACTICAS

PRACTICA Nº 5

ENTEROPARASITOS EN PERROS Y GATOS

FUNDAMENTO.-

La parasitología veterinaria estudia a los parásitos de los animales domésticos de importancia como: vacunos, ovinos, caprinos, porcinos, camélidos sudamericanos, cuyes y aves respectivamente, pero también existe otro tipo de animales considerados como mascotas como el perro y el gato que son de importancia porque transmiten enfermedades zoonoticas al hombre y es necesario conocer a los parásitos que afectan a estas especies.

OBJETIVOS.-Reconocer e identificar los tipos de parásitos que se encuentran en las heces del perro y gato

METODO DE FLOTACION

Materiales:

 Solución flotante

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 Mortero y su respectivo mango  Laminas porta-objeto

 Laminas cubre objetos  Tubos de prueba de 10 ml  Vasos de precipitados.  varilla de vidrio  Frascos de penicilina

PROCEDIMIENTO

1

Extraer con una espátula aproximadamente de 2 a 3 gr. de material fecal de cualquier especie y depositar en el mortero

2 Agregar 10 a 15 ml de solución azucarada y homogenizar con el uso del mango del mortero

3 Filtrar a través de una malla (embudo) a un vaso de precipitados

4 El filtrado se transfiere a los tubos de prueba o frasquitos de penicilina, hasta que forme un menisco convexo

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5 Colocar la laminilla cubre – objetos sobre el menisco y espere unos 15 a 20 min.

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RESULTADOS

Aelurostrongylus abstrusus Larva L1 (larva 1) 360-400 µm × 15-20 µm

»

Gato Ancylostoma spp 55-76 µm × 34-45 µm

»

Gato Ancylostoma caninum 55-76 µm × 34-45 µm

»

Perro

Capillaria aerophila (superior) 60-74 µm × 35-40 µm

»

Perro y gato

Trichuris vulpis (inferior) 70-90 µm × 32-41 µm

»

Perro

Cestodes pseudophylideos

67-71 µm × 40-51 µm

»

Perro y gato

Cryptosporidium spp (coloración Kinyoun) 4-6 µm

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Dioctophyma renale

64-68 µm × 40-44 µm

»

Perro (orina)

Dipylidium caninum (cápsulas ovígeras) 120 µm × 200 µm

»

Perro y gato Giardia spp (quistes) 8-10 µm × 7-10 µm

»

Perro y gato Giardia spp (trofozoíto) 10-17 µm × 7-10 µm

»

Perro y gato Isospora canis : 34-40 µm × 28-32 µm Isospora ohioensis : 20-27 µm × 15-24 µm

»

Perro Isospora felis : 38-51 µm × 27-29 µm Isospora rivolta : 21-28 µm × 18-23 µm

»

Gato

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Sarcocystis (ooquiste) 12-16 µm × 8-18 µm

»

Perro y gato Taenia spp 27 µm × 38 µm

»

Perro y gato Toxascaris leonina 75 µm × 85 µm

»

Perro y gato Toxocara canis 75 µm × 90 µm

»

Perro