Caracterización y selección de bacterias promotoras de crecimiento en el cultivo orgánico de maca(Lepidium meyenii Walpers) como herramienta
Biotecnológica para mejorar su calidad productiva Proyecto Perú Biodiverso – GTZ - CONCYTEC
Dra. Doris Zúñiga Dávila
Universidad Nacional Agraria La Molina Mayo 2010
Email: dzuniga@lamolina.edu.pe
Web: www.lamolina.edu.pe/lmt
LUGAR DE EJECUCIÓN:
Campesina San Pedro de Cajas
Provincia de Tarma – Departamento de Junín
Ensayos de laboratorio: Laboratorio de Ecología Microbiana y
EQUIPO DE INVESTIGACIÓN Biol. Katty Ogata
Bach. Minoru Matsubara Bach. Mitsuyo García Bach. Jessica Tolentino Wendy Pérez
Bach. Luder Ramos Colaboradores
Dr. Carlos Samaniego, Ecoandino S.A.C
Dr. David Campos, Instituto de Biotecnología, UNALM
Institución Internacional
Lugares de muestreo y condición del campo
Lugar Suelo Condición de campo muestras
Galpón Condorín
(MC1) Rizosférico
1er año de siembra
M1 M2 M3 M4
Blanco (C1) Sin cultivo M1M2
Agomachay (MC2) Rizosférico
2do año de cosecha
M1 M2 M3 M4
Blanco (C2) Sin cultivo M1M2
Análisis Microbiológicos
• Recuento de bacterias aerobias mesófilas viables (ICMSF,
1998)
• Recuento de bacterias aerobias psicrófilas (ICMSF, 1998)
• Recuento de esporogénicos mesófilos aerobios (APHA,
1992)
• Recuento de mohos y levaduras (ICMSF, 1998)
• Recuento de actinomicetos (APHA AWWA WEF – 1998)
• Enumeración de Pseudomonas (APHA AWWA WEF – 1998)
• Enumeración de bacterias fijadoras de nitrógeno de vida
Bioquímica: glucosinolatos
Contenido macronutrientes
Contenido micronutrientes
Contenido de metales pesados
Plantas
Parámetros de crecimiento, tamaño, P
Fresco, P Seco, tasa de crecimiento
Suelo
Caracterización fisico quimica de suelos:
pH, M.O, CE, Textura.
Contenido de macronutrientes
Contenido de micronutrientes
Preparación de muestras y diluciones
10-1 10-2 10-3 90 mL AP 0.1%Muestra
1 mL 9 mL AP 0.1% AP 0.1%9 mL 10 mL/g 1 mLAnálisis Diluciones Medio de cultivo Temperatura y tiempo de incubación Aerobias
mesófilas -4, -5, -6 Agar Plate Count
28°C por 48 horas
Hongos
totales -2, -3, -4
OGY*
22°C por 3 - 5 días. Actinomicetos -1, -2, -3, -4 Agar Almidón caseína** 28°C por 6 - 7 días.
Bacillus
(80°C) -4, -5 y -6
AgarTriptona glucosa
28°C por 48 horas Diazótrofos de
vida libre -2, -3, -4, -5, -6, -7, -8 Caldo mineral sin nitrógeno 28°C por 7 - 10 días
Pseudomonas -2, -3, -4, -5, -6, -7 Caldo Asparagina 28°C por 7 - 10 días
Medios de cultivo y condiciones de incubación para la determinación de la microflora analizada
*Suplementado con Oxitetraciclina al 0.1% **Suplementado con Fluconazol al 0.25%
Medición de la actividad microbiana
Pesar 25g de suelo tamizado Adicionar 0.5mL de sol. glucosa 25% Vial con 3.5mL NaOH 1NIncubar a 28°C por 24 horas
Trasvasar el contenido del vial a un matraz
Adicionar 3.5mL de BaCl2+ fenoftaleína HCl
0.25N
Titular el NaOH no combinado (hasta el viraje de rosa grosella a transparente)
Calcular la tasa de CO2 producido: mg CO2/g*h
Lugar : San Pedro de Cajas (4100 msnm)
Temperatura registrada durante el muestreo : 9 y 10°C
Temperatura y Humedad relativa del ambiente
Campo muestreado Característica LOCALIZACIÓN T (ºC) % H
Galpón Condorín
(C1) Primer año de siembra
18L0401914
9.42 60.8
UTM8755920
Agomachay (C2) Segundo año de cosecha 18L0401914 10 53.4
UTM8755942
Condorín (D1) 10 años de descanso 18L0399212 9.04 65.4
UTM8754983
Pampa Cima (D2) 4 años de descanso 18L0398260 10.64 50.4
UTM8754213
Pampa Cima (D3) 1 año de descanso 18L0398288 10.88 39.2
Características fisicoquímicas de los suelos y rizósfera
Parámetros MC1 C1 MC2 C2 D3 D2 D1 pH 4.25 4.27 5.08 5.08 5.26 4.59 4.48 C.E. 0.57 0.26 0.5 1.44 0.48 0.38 0.6 CaCO3 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 M.O. 4.84 4.4 6.4 11.94 8.1 5.5 4.7 P 67.9 60.6 61.6 64.1 61.3 65.2 65.9 K 215 176 158 554.4 210 161 231Clase Textural Fr.A. Fr. A. Fr.A. Fr.A. Fr.A. Fr.A. Fr.A.
CIC 14.9 15.04 27.52 23.68 8.43 8.43 8.43
Parámetros 1 año C1 Siem. C2 2 año cosecha pH 5.2 5.21 C.E. 0.51 0.24 CaCO3 0.00 0.00 M.O. 7.8 8.0 P 36.7 56.1 K 162 196
Clase Textural Fr. A. Fr.A.
CIC 18.72 24.00
Características fisicoquímicas de los suelos, San Pedro de Cajas
PRIMER MUESTREO
Bacterias m esófilas Psicrófilos
Suelos aerobios* Bacillus* Mohos* Actinomicetos* Diazótrofos** Pseudomonas** mg CO2/
(gss * h) aerobios C1 6.18 4.74 5.08 5.08 5.30 3.95 0.026 4.903 C2 7.18 4.49 5.46 4.91 6.06 4.93 0.046 7.490 MC1 5.69 4.49 4.11 4.32 4.95 6.04 0.030 6.591 MC2 6.99 4.84 4.88 5.04 6.20 6.25 0.055 7.157 D1 6.41 4.52 5.26 5.78 4.95 5.38 0.034 5.903 D2 5.41 4.81 5.28 4.93 5.18 4.38 0.020 6.121 D3 5.90 4.81 5.32 5.30 5.30 3.38 0.032 6.182
Poblaciones microbianas del suelo y de la rizósfera de maca
– Junín
* Log ufc/g** NMP/g
Mohos y levaduras
Esporulados mesófilos aerobios
Poblaciones microbianas del suelo y rizósfera del cultivo de maca 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 C1 MC1 C2 MC2 D1 D2 D3 Suelos muestreados log ( uf c /g) aerobios mohos y levaduras bacillus psicrófilos actinomicetos
Poblaciones microbianas de Pseudomonas y diazótrofos en el suelo y rizófera del cultivo de maca
0 1 2 3 4 5 6 7 8 C1 MC1 C2 MC2 D1 D2 D3 Suelos muestreados log ( N M P /g) pseudomonas Azotobacter
SEGUNDO MUESTREO
Bacterias mesófilas Bacterias psicrófilas
Suelos aerobios Bacillus Actinomicetos Mohos Diazótrofos Pseudomona aerobios Bacillus Mohos mg CO2 resp/ (g suelo* h) C1 6.76 5.04 4.13 5.48 5.64 2.89 4.66 4.75 5.20 0.0302 C2 6.43 4.67 3.52 5.64 6.06 4.38 6.22 4.60 5.93 0.0447 MC1 6.42 4.86 4.77 5.00 7.12 5.03 6.84 5.01 5.20 0.0354 MC2 6.30 4.69 4.28 5.40 5.94 5.44 6.44 4.97 5.49 0.0446 D3 6.68 4.89 4.29 3.89 6.33 6.03 6.30 5.17 4.88 0.0383 Act. Microbiana
Poblaciones microbianas del suelo y rizósfera del cultivo de "maca" 0 1 2 3 4 5 6 7 8 C1 MC1 C2 MC2 D3 Suelos muestreados lo g (u fc /g ) Bacillus Psf M y L Psf. Aerobios Psf M y L Bacillus Aerobios Actinomicetos
Poblaciones Pseudomonas y diazótrofos del cultivo de "maca"
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 C1 MC1 C2 MC2 D3 suelos muestreados lo g (N M P/ g ) Pseudomonas Diazotrofos
Población microbiana de suelos de Junín del segundo muestreo
Mc1 y Mc2, rizósferas maca
Variación de las Poblaciones microbianas en Galpón Condorín
0 1 2 3 4 5 6 7 8 0 20 40 60 80 100 120 140 lo g ( u fc /g ) tiempo (días)log (ufc/g) vs tiempo (días) Galpón Condorín (C1) aerobios Bacillus mohos actinomicetos aerobios psf 0 1 2 3 4 5 6 0 20 40 60 80 100 120 140 lo g ( N M P /g ) tiempo (días)
log (NMP/g) vs tiempo (días) Galpón Condorín (C1)
diazótrofos Pseudomonas
0 1 2 3 4 5 6 7 8 0 20 40 60 80 100 120 140 lo g (u fc /g ) tiempo (días)
log (ufc/g) vs tiempo (días) Agomachay (C2)
aerobios Bacillus mohos actinomicetos aerobios psf
Variación de las Poblaciones microbianas en Agomachay
0 1 2 3 4 5 6 0 20 40 60 80 100 120 140 lo g (p o b la c N M P/ g ) tiempo (días)
log (NMP/g) vs tiempo (días) Galpón Condorín (C1)
diazótrofos Pseudomonas
Reacción oxidativa con el reactivo de Salkowsky
Producción de Ácido Indolacéticos
•Bacterias diazótrofas
mostraron altos niveles de AIA y de solubilización de fosfatos en comparación a los otros grupos bacterianos
a
b
0 cm
0.05 a 0.45 cm 0.5 a 1.8 cm
0 cm
0.05 a 0.45 cm 0.5 a 1.8 cm
421
241 (57.24%) 102 (24.23%) 78 (18.53%) 204 (48.46%) 160 (38%) 57 (13.54%)
Solubilización de fosfato bicálcico
Solubilización de fosfato tricálcico
Total de Bacterias
< 20 a 70 µg/ml
0 µg/ml
20 a 70 µg/ml
421
246 (58.43%)
43 (10.21%)
132 (31.36%)
Producción AIA
Total de bacterias
Bacteria
Cultivos
Pantoea agglomerans
trigo
Rahnella aquatilis
trigo, maíz
Stenetrophomonas rhizophila papa, colza
Total de bacterias que solubilizaron fosfato bi y tricálcico Total de bacterias que produjeron Ácido indolacético Bacterias relacionadas a la rizósfera de diferentes cultivos
Producción de AIA Solubilizción de fosfatos 20 a 70 µg/ml Bicálcico (0.5 a 1.8 cm) Tricálcico (0.5 a 2 cm) Cepas Bacillus 19 (4.51%) 0 (0%) 0 (0%) Actinomicetos 23 (5.46%) 1 (0.24%) 1 (0.24%) Pseudomonas 54 (12.83%) 32 (7.6%) 29 (6.89%) diazótrofos 36 (8.55%) 35 (8.31%) 29 (6.89%)
5Aa 53Aa 66Aa B29a Ps 31a
Ø Crec Halo Ø Crec Halo Ø Crec Halo Ø Crec Halo Ø Crec Halo
5Ab 0.85 ++ - 0.8 + - 0,75 + - 0.8 + - 0.8 + -53Ab 0.8 + - 0.8 + - 0,85 + - 0.9 ++ - 0.85 ++ -66Ab 0.9 ++ - 0.8 + - 0,75 + - 0.95 ++ - 0.85 ++ -B29b 0.95 ++ - 1.1 +++ 1.1 1 +++ - 0.95 ++ - 0.95 +++ -Ps 31b 0.8 + - 0.9 ++ 0.9 1 +++ 1 0.85 + 0.85 0.9 ++ 0.9 Ps 42b 1.55 +++ - 1.05 +++ 1.05 1,6 +++ - 1.05 +++ 1.05 1 +++ 1 Ps 88b 0.95 ++ 0.95 1.1 +++ 1.1 0,9 ++ 0.9 0.8 + 0.8 0.95 +++ 0.95 12 Actc 0.9 ++ - 0.9 ++ - 0,85 + - 0.75 + 1.4 0.8 + -5 Actc 0.9 ++ - 0.95 +++ - 0,85 + - 0.9 ++ 1.5 0.85 ++
Ps 42a Ps 88a 12 Acta 5 Acta
Ø Crec. Halo Ø Crec. Halo Ø Crec. Halo Ø Crec. Halo
5Ab 0.75 + - 0.85 ++ - 0.8 + - 1.05 +++ -53Ab 0.75 + - 0.8 + - 0.8 + - 0.85 + -66Ab 0.8 + - 0.9 ++ - 0.7 + - 0.8 + -B29b 0.8 + - 0.9 ++ - 0.75 + - 0.85 + -Ps 31b 0.85 ++ - 0.8 + - 0.7 + 0.7 0.9 ++ 0.9 Ps 42b 0.8 + 0.8 0.8 + - 0.7 + - 0.9 ++ 0.9 Ps 88b 0.9 ++ 0.9 0.9 ++ 0.9 0.75 + 1.3 0.9 ++ 0.9 12 Actc 0.7 + - 0.8 + - 0.8 + - 0.9 ++ 2 5 Actc 0.65 + - 0.8 + - 0.75 + 0.75 0.9 ++
Porcentaje de germinación in vitro a los 8 días 0 20 40 60 80 100 120 Tratamientos P o rc e n ta je d e g e rm in a c ió n 46 56 48 44 66 45 58 87 40
A3M2 pf pp A16M2 B4 B15 st5 P2N3 H2O
B15 Ps42 Control 14A B11 6A B2 P2N3 Ps31 5A Act. M2/-4 40 72 29 33 22 43 50 62 59 71 70 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 Po r c e n ta je d e g e rm in a c ió n Tratamiento
Porcentaje de germinación in vitro a los 2 días
Pruebas de germinación en maca
Germinación usando bacterias aisladas de otros cultivos
altoandinos (8 a 10°C)
Germinación usando bacterias aisladas del
ActM2/-4 Control
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 P o rc e n ta je d e g e rm in ac ió n Cepas probadas
Porcentaje de germinación in vitro a los 2 dias
N+ A3M2 pf pp A16M2 B4 B15 st5 N- P2N3 H2O 25.00 20.00 25.00 16.67 22.50 25.00 23.33 30.00 27.50 67.50 12.50 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 P o rc e n ta je d e e m e rg e n c ia Tratamientos
Porcentaje de emergencia de "maca" a los 15 días
Emergencia de maca usando bacterias aisladas de otros
cultivos altoandinos (8 a 10°C)
Peso seco aéreo de plantas de maca de 3 meses Condiciones de laboratorio (15 a 18°C) 0 0.005 0.01 0.015 0.02 0.025 0.03 0.035 0.04 0.045 0.05
a b
c
Sistemas a. Jarras leonard modificadas b. bandejas c. tapers
Plántulas de maca al mes de sembradas 19°C
Perfiles BOX - PCR de las cepas probadas como PGPRs
M. Marcador de ADN 1 Kb (Axygen), B. Blanco, 1. B2, 2. B11, 3. B15, 4. Ps31, 5. Ps42, 6. Ps 46, 7. 5A, 8: 6A, 9. 14A
M. Marcador de ADN 1 Kb (Axygen), B. Blanco, 1. Ps31, 2. Ps61, 3 Ps80, 4. Ps87, 5. Ps88, 6. 13Bac, 7. 4Bac, 8. 29Bac, 9. 25Bac, 10. 50A, 11. 53A, 12. 66A, 13. 64A
Árbol filogenético de secuencias del gen 16S rDNA. El método de reconstrucción filogenética fue
Neighbour-joining (NJ) y las distancias fueron calculadas de acuerdo al método de Kimura-2
parámetros. Los valores en los puntos de ramificación indican un soporte de bootstrap mayor al 60% (1000 pseudo-replicas). Los aislados de rizósfera de maca se muestran en negrita.
Ps88 Ps61 Ps87 Pseudomonas costantinii CFBP 5705T P. azotoformans IAM1603T P. poae LMG 21465T P. extremorientalis KMM 3447T P. salomonii CFBP 2022T P. proteolytica CMS 64T P. fluorescens IAM 12022T P. Antarctica CMS 35T P. putida IAM 1236T P. rhizosphaerae IH5T P. reinekei MT1T P. vancouverensis DhA-51T Ps42 Ps46 P. aeruginosa DSM 50071T. Stenotrophomonas maltophilia LMG 981T S. acidaminiphila AMX 19T S. maltophilia IAM 12423T Ps31 S. rhizophila e-p10T
Rhizobium tropici CIAT 899T
97 88 67 62 98 100 100 88 100 0.01 Ps0
Árbol filogenético de secuencias del gen 16S rDNA. El método de reconstrucción filogenética fue
Neighbour-joining (NJ) y las distancias fueron calculadas de acuerdo al método de Kimura-2
parámetros. Los valores en los puntos de ramificación indican un soporte de bootstrap mayor al 60% (1000 pseudo-replicas). Los aislados de pseudomonaceae de rizósfera de maca se muestran en negrita.
Bacillus drentensis (T) type strain: ... Bacillus b ataviensis (T) type strain:... Bacillus soli (T) type strain: LMG 21...
Bacillus vireti (T) LMG 21834. Bacillus novalis (T) type strain: LMG... Bacillus niacini (T) IFO15566.
Bacillus pocheonensis (T) Gsoil 420. Bacillus foraminis (T) type strain: C...
Bacillus siralis (T) 171544. Bacillus circulans (T). Bacillus asahii (T) MA001.
Bacillus psychrosaccharolyticus (T) A... Bacillus sp. LMG 20238 (T).
Brevib acterium frigoritolerans (T) ty... Bacillus simplex (T) DSM 1321T. Bacillus b utanolivorans (T) K9. Bac29 Bac25 B.megaterium IAM1341I8 D16273 Bacillus litoralis (T) SW-211. Bacillus halmapalus (T) DSM 8723. Bacillus horikoshii (T) DSM8719. Bacillus luciferensis (T) LMG 18422. Bacillus cereus ATCC 14579 (T).
Bacillus sub tilis sub sp. sub tilis (T)... Bacillus marisflavi (T) TF-11.
Bacillus aquimaris (T) TF-12. Bacillus vietnamensis (T) 15-1.
Paenib acillus polymyxa IAM13419(t)
97 99 93 90 87 76 89 73 95 61 68 77 98 79 78 98 0.01 Árbol filogenético de secuencias del gen 16S rDNA. El método de reconstrucción filogenética fue Neighbour-joining (NJ) y las distancias fueron calculadas de acuerdo al método de Kimura-2 parámetros. Los valores en los puntos de ramificación indican un soporte de
bootstrap mayor al 60%
(1000 pseudo-replicas). Los aislados de Bacillus de rizósfera de maca se muestran en negrita.
Muestra N P K Ca Mg S Na Zn Cu Mn Fe B Mo Pb Cd Cr
C1 P9 3.7 0.2 1.5 1.79 0.165 0.33 0.2 77 6.5 102 582 239 3.05 17 0.5 0
C1 P12 4.5 0.2 1.8 1.85 0.17 0.39 0.1 97 10.5 119 861 149 4.88 42 0 0
C2 P2-P14 4.3 0.3 1.8 2.35 0.245 0.46 0.2 92 13 130 1133 177 2.35 21 0.8 0
C2 P15-P16 4.4 0.3 2 2.39 0.25 0.45 0.2 63 10 129 797 197 1.9 20 0 0
Muestra N P K Ca Mg S Na Zn Cu Mn Fe B Mo Pb Cd Cr C1 P9 2.44 0.21 1.23 0.64 0.08 0.33 0.17 45 7 62 2338 126 1.90 5.25 0.50 0.50 C1 P12 2.17 0.24 1.29 0.59 0.08 0.40 0.16 53 7 35 1395 137 2.28 2.00 0.00 0.00 C2 P2-P14 2.52 0.28 1.28 0.65 0.10 0.42 0.16 48 10 52 1470 165 2.10 6.25 0.00 0.25 C2 P15-P16 2.50 0.30 1.49 0.51 0.09 0.35 0.18 29 6 27 708 146 1.05 2.00 0.00 0.00
Cuantificación glucosinolatos siete meses después de la siembra
Muestra Ecotipo Concentración de glucosinolatos
µmol equi. de sinigrin/g ms
RC1P3 amarilla 9.89 ± 0.43 RC1P13 amarilla 16.99 ± 0.51 RC1P10 blanca 35.17 ± 3.39 RC2P1 morada 43.07 ± 0.51 RC2P9 morada 39.49 ± 3.81 RC2P13 RC2P10 Morada blanca 25.49 ± 4.10 38.69 5.49
Morfotipos de plantas de maca muestreados
Determinación taxonómica de la planta: Lepidium meyenii
Walpers
Flores de maca semillas de maca
CAPACITACIÓN Y DIFUSIÓN
1.- Taller biofertilizantes para la agricultura de Iberoamérica en el siglo XXI
Zúñiga, D. 2009. Presente y futuro de los biofertilizantes en Iberoamérica:
Perú. Taller de Biofertilizantes para la Agricultura de Iberoamérica en el sigo XXI. Red Biofag-CYTED. 4 mayo. La Habana, Cuba.
2.- Presentación de resúmenes y pósters
Katty Ogata*, Carlos García, Wendy Pérez, Mitsuyo García, Jessica Tolentino, Carlos Soto & Doris
Zúñiga. 2009. MICROFLORA Y ACTIVIDAD MICROBIANA DE LA RIZÓSFERA DEL CULTIVO DE
“MACA”
(Lepidium meyenii Walpers) EN LA MESETA DEL BOMBÓN – JUNÍN. XXIV RELAR IIBEMPA. La
Habana, Cuba. 4-8 Mayo.
Katty Ogata, César La Torre, Wendy Pérez & Doris Zúñiga. 2009. EFECTO
DE DIFERENTES BACTERIAS PROMOTORAS DE CRECIMIENTO (PGPR) EN LA GERMINACIÓN Y EMERGENCIA DE PLANTULAS DE “MACA” (Lepidium
Capacitación de asistentes de investigación de LEMYB en la XXIV
RELAR y I IBEMPA, La Habana Cuba.
Taller: Importancia de las PGPR en los cultivos orgánicos nativos
Katty Ogata y Carlos García con los agricultores
CONCLUSIONES
Los contenidos de Cd, Cr están por debajo de los valores permitidos mientras que si presenta problemas de contaminación por Pb.
Conforme la temperatura del ambiente baja, las poblaciones de pseudomonas, actinomicetos y psicrófilos se incrementaron.
Los suelos de Junín son franco arenosos, con alto contenido de materia orgánica, pH ácidos, con disponibilidad de P y K, sin problemas de
carbonatos y CIC variable.
Las poblaciones de bacterias psicrófilas fueron mayores en la rizósfera de maca que en los suelos sin cultivo.
Los valores mínimos de las poblaciones aerobias estuvieron en el orden 106, diazótrofos 106, hongos 104, Bacillus 104, actinomicetos
103 y los psicrófilos aerobio104.
De 120 de cepas bacterianas (diazótrofos, pseudomonas,
actinomicetos y bacillus), todas produjeron AIA en diferentes niveles. Sin embargo, 6 cepas de diazótrofos destacaron por sus niveles de mayor producción.
Cinco cepas aisladas de rizósfera de maca (bacillus, pseudomona, actinomicetos y diazótrofos) (de 11 seleccionadas) incrementaron significativamente el % G semillas de maca.
Dos cepas de rizobios y un Bacillus (aisladas de tara, haba y papa) incrementaron significativamente los porcentajes de germinación de semillas de maca. Cuando se probó la emergencia sólo la cepa de rizobio P2N3 incrementó significativamente la emergencia de este cultivo.
De un total de 421 cepas aisladas se encontró que 132 (31%) produjeron de 20 a 70 µg/ml de AIA.
En la prueba de solubilización de fosfatos 68 cepas de las 421 cepas aisladas presentaron halos de 0.5 a 1.8 cm cuando se utilizó el medio NBRIP – bicálcico y 59 cepas presentaron halos de solubilización entre 0.5 y 2 cm el NBRIP – tricálcico
Las cepas de pseudomona Ps42, actinomiceto 5Act y las interacciones actino-diazótrofo: 5Act+5A, diazótrofo-pseudomona 5A+Ps42 presentaron diferencias significativas respecto al control.
El contenido de nitrógeno, potasio, calcio y magnesio en la parte aérea fue mayor que en la parte radicular. En cuanto al contenido de metales
pesados, la parte aérea tiene casi cinco veces más de contenido de plomo
que la parte radicular; mientras que el contenido de cromo fue mayor en la parte radicular.
No se observó ninguna influencia del tipo de suelo en la concentración de glucosinolatos obtenidos. Por otro lado, se encontró que las macas moradas presentaron una mayor cantidad de este principio activo en comparación con las macas amarillas.
Se encontró que una de las cepas (Ps31) corresponde a una
Stenotrophomonas rhizophila. Las demás pseudomonas caracterizadas
pertenecen al grupo de P. fluorescens y P. putida
Se encontraron también bacterias relacionadas con Rahnella aquatilis y
Pantoea agglomerans; y dos cepas de Bacillus emparentadas con B. butanolivorans
De los glucosinolatos analizados se encontró un mayor contenido de
Glucotropaeolin (benzylglucosinolato) lo que corresponde a lo encontrado en la bibliografía tanto en hipocotilo como en hojas.
•Se presentaron 3 resúmenes y 2 pósters a la XXIV RELAR - I IBEMPA. La
Habana Cuba. 2009.
•Una ponencia en Conference 16 of the FAO Biotechnoloogy Forum,
Entitled “Learning from the past: Successes and failures with agricultural biotechnologies in developing countries over the last 20 years”. 8 junio-8 Julio 2009.
•Existe un gran interés por parte de los agricultores y de la empresa de
adquirir los conocimientos en lo que es agricultura orgánica, Utilizar las bacterias promotoras de Crecimiento vegetal y poner en práctica la
inoculación con estos microorganismos en los cultivos nativos
Altoandinos.
De todos los sistemas probados, substratos y temperaturas ambientales,
las jarras leonard, el suelo de Junín y condiciones de temperaturas frías
resultaron mejor en la emergencia, crecimiento y desarrollo de plántulas de maca.