Plagas del Arroz.
Les solicitamos nos envíen sus comentarios, sugerencias y aportes para
seguir mejorando este instrumento de capacitación de manera que se
conviertan en una Guía que responda cada vez más a las necesidades de los
usuarios.
Instituto de Investigaciones del Arroz.
Estación Territorial de Investigaciones del Arroz.
“Sur del Jíbaro” Sancti Spiritus, Cuba.
Tel. (5241)434283.
E-mail: [email protected]
Primera edición, Marzo de 1995
Primera reimpresión, Octubre de 1995
Segunda edición revisada y ampliada, Noviembre de 1996
Tercera edición revisada y ampliada, Noviembre de 1999
Cuarta edición revisada y ampliada, Septiembre de 2001
Quinta edición revisada y ampliada, mayo de 2008
Guía
para el Trabajo de Campo en el
Manejo Integrado de Plagas del
Arroz
Rafael Meneses Carbonell
Alfredo Gutiérrez Yanis
Álvaro García Rubial
Guillermo Antigua Pereiro
Jorge Gómez Sousa
Fernando Correa Victoria
Lee A. Calvert
Jorge Hernández Concepción
Quinta edición revisada y ampliada
Contenido
Página
Presentación
i
Introducción
ii
Primera Sección
Principales Insectos Plagas del Arroz
Tagosodes orizicolus
(Muir) (Homoptera:Delphacidae)
2
Biología
2
Ecología
3
Daños
3
Monitoreo o muestreo de
T. orizicolus
4
Medidas
de
control
4
Control
cultural
4
Control
biológico
5
Control
químico
5
Lissorhoptrus
spp. (Coleoptera:Curculionidae)
6
Introducción
6
Biología
6
Principales aspectos de los hábitos de
L. brevirostris
que se
deben considerar en el manejo integrado de la plaga:
6
Adultos
7
Larvas
7
Ecología
7
Daños
8
Muestreo del Picudo acuático o Gorgojito de agua
8
Medidas
de
control
8
Control
cultural
8
Control
biológico
9
Control
químico
9
Oebalus
spp.
(Heteroptera:Pentatomidae)
10
Introducción
10
Biología
10
Ecología
10
Daños
11
Muestreo
de
la
“Chinche”
11
Medidas
de
control
12
Control
cultural
12
Control
biológico
12
Control
químico
12
Spodoptera frugiperda
(J. E. Smith) (Lepidoptera:Noctuidae)
13
Biología
13
Ecología
13
Daños
14
Muestreo de la “Palomilla o Gusano soldado”
14
Medidas
de
control
15
Control
cultural
15
Control
biológico
15
Control
químico
16
Umbrales económicos de los Principales Insectos Plagas
16
del Arroz.
Recomendaciones para el Manejo Integrado de
Tagosodes orizicolus
17
Recomendaciones para el Manejo Integrado de
Lissorhoptrus
spp.
18
Recomendaciones para el Manejo Integrado de
Oebalus
spp.
19
Recomendaciones para el Manejo Integrado de
Spodoptera frugiperda
20
Página
Segunda Sección
Ácaro Plaga del Arroz
Steneotarsonemus spinki
Smiley. (Acari:Tarsonemidae)
22
Introducción
22
Biología
22
Ecología
23
Daños
23
Muestreo
de
S.
spinki
24
Medidas
de
control
25
Control
cultural
25
Control
biológico
26
Control
químico
26
Tercera Sección
Principales Malezas del Arroz
Aspectos generales de las malezas
27
Arroz
Maleza
(Arroz
rojo)
28
Daños
29
Muestreo
de
Arroz
rojo
30
Medidas
de
control
30
Manejo Integrado de malezas.
32
Cuarta Sección
Principales Enfermedades del Cultivo del Arroz
Principales enfermedades del cultivo del arroz
37
Virus de la Hoja Blanca del Arroz (VHB)
37
Epidemiología
38
Sintomatología de la enfermedad
39
Manejo
Integrado
del
VHB
40
Métodos para calcular el porcentaje de insectos vectores 42
Muestreo
del
VHB
42
por el Virus Hoja Blanca.
45
Piricularia grisea
(Sacc.)
46
Sintomatología 46
Factores que favorecen la enfermedad
47
Manejo Integrado de la
Piricularia
48
Rhizoctonia solani
(Khun)
49
Sintomatología 49
Factores que favorecen la enfermedad
50
Agente causal del Añublo de la Vaina
51
Manejo Integrado del Añublo de la Vaina
51
Sarocladium oryzae
(Savada) Gams y Hawks
53
Sintomatología 54
Epidemiología y ciclo de la enfermedad
54
Control 54
Componentes generales del Manejo Integrado de enfermedades
55
Quinta Sección
Recomendaciones Generales para el
Manejo Integrado del Cultivo del Arroz
Recomendaciones
generales
57
Preparación de suelo y siembra
59
Etapa A: Germinación a Ahijamiento
60
Etapa B: Ahijamiento a Cambio de Primordio
61
Etapa C: Cambio de Primordio a Floración
62
PRESENTACIÓN
En momentos que el sector productivo arrocero latinoamericano está enfrentando el reto de continuar incrementando la producción de este cereal, para dar respuesta al aumento de la población mundial, cuando disminuye la disponibilidad de agua para el riego y se incrementa los riegos de todo tipo, se reproduce nuevamente la “Guía para el Trabajo de Campo en el Manejo Integrado de Plagas del Arroz”.
Esta edición, actualizada y ampliada presenta como novedad la inclusión del ácaro del arroz Steneotarsonemus spinki que se ha hecho sentir en toda la región en los últimos 10 años, constituyendo actualmente una importante plaga, que unida al hongo Sarocladium oryzae ocasionan el síndrome del manchado del grano de arroz.
El empleo de esta guía constituye por tanto una herramienta de carácter práctico para su consulta permanente para agricultores y productores tanto en las actividades de capacitación como en el trabajo diario que los técnicos, especialistas y extensionistas realizan en aras de contrarrestar el efecto nocivo de las plagas enemigas de esta noble e importante cultivo que contribuye a la producción sostenible de arroz.
Esta guía forma parte inseparable del conjunto de actividades generadoras de tecnologías y conocimientos que realiza el Instituto de Investigaciones del Arroz del MINAG de Cuba, como institución rectora de la actividad científico-técnica, con vista a mejorar de forma permanente todas las formas de producción de arroz, ya sea desde la escala familiar con bajos recursos e insumos hasta la gran producción tecnificada e industrializada.
Dr. Miguel Socorro Quesada
Académico Titular
Subdirector Científico
Manejo Integrado de Plagas (MIP) es el sistema que en el contexto del medio ambiente y la dinámica poblacional de las especies plagas, utiliza todas las técnicas y métodos de lucha de una manera compatible, para mantener las poblaciones tan bajas que no ocasionen daños económicos.
El MIP no es una tecnología, sino fundamentalmente una cultura, para realizar un mejor manejo del cultivo, con el objetivo de minimizar los daños, incrementar los rendimientos, la protección del medio ambiente, la biodiversidad y la salud de los trabajadores. (Meneses, 1995)
El MIP es un enfoque ecológico por que toma en cuenta las relaciones que existen entre los diferentes componentes del ecosistema; en particular la relación de la plaga con la planta cultivada (susceptibilidad, resistencia), con sus enemigos naturales (control biológico), con las condiciones físicas, mecánicas y agronómicas del medio (prácticas culturales); y maneja los estímulos que determinan el comportamiento de los insectos (feromonas, atrayentes, repelentes). En el caso de tener que recurrir a los insecticidas, éstos deben ser lo más selectivos posible para reducir sus efectos nocivos sobre otros componentes del ecosistema (que provocan contaminación, residuos, intoxicaciones y destrucción del control biológico)
El objetivo básico es elaborar un programa de ordenación de las actividades en el cultivo del arroz, que proporcionen la mayor cantidad posible de producción con los mínimos insumos necesarios y la menor cantidad de perturbación y contaminación ambiental. El criterio es ecológico, en que no hay que escatimar esfuerzos en mantener las poblaciones por debajo de un nivel económico de daños, empleando para ellos todos los recursos disponibles de forma compatible.
El arroz en América Latina y El Caribe es afectado por diferentes insectos plagas: (Tagosodes orizicolus, Oebalus spp., Lissorhoptrus spp. y Spodoptera frugiperda diversas especies de malezas (Brachiaria mutica, Diplachne fascicularis, Echinochloa spp. y Vigna vexillata) y las enfermedades Virus de la Hoja Blanca, Pyricularia grisea, Rhizoctonia solani y Sarocladium oryzae. Recientemente se ha reportado en diversos países de América Latina al ácaro Steneotarsonemus spinki. Todas estas plagas en determinadas épocas del año ocasionan daños económicos al cultivo del arroz.
Estas especies también han sido reportadas como las causantes de grandes pérdidas en el rendimiento arrocero en diversos países de América Latina, fundamentalmente T. orizicolus, el Virus de la Hoja Blanca y las enfermedades
competencia suficiente para adaptarse a los cambios que sean necesarios para disminuir los efectos nocivos de las plagas, con la protección de medio ambiente y la salud de los trabajadores.
En esta nueva edición de la Guía, se incluye mayor información sobre el complejo Tagosodes orizicolus – Virus Hoja Blanca del Arroz, el ácaro Steneotarsonemus spinki, manejo de la principales malezas y Arroz Rojo, con el objetivo de poner en manos de los Asistentes técnicos, Ingenieros agrónomos, y agricultores en general, nuevas herramientas para ejercer un manejo más racional de las principales plagas del arroz.
Ésta se encuentra organizada en cinco secciones; la primera describe los principales insectos plagas, la segunda a S. spinki; la tercera refiere las más importante malezas que afectan al cultivo, la cuarta sección trata sobre las principales enfermedades del arroz y en la última se encuentran las recomendaciones generales para el Manejo Integrado del Cultivo del Arroz
Esta “Guía para el trabajo de campo en el Manejo Integrado de Plagas del Arroz”, resume los principales resultados científico-técnicos de los últimos 35 años, pretende brindar herramientas, que contribuyan a elevar la producción, disminuir los costos, proteger el medio ambiente y la salud de los arroceros y sus comunidades.
Para mayor información científico-técnica sobre las principales plagas del arroz y el ácaro Steneotarsonemus spinki, puede consultar el libro “Manejo Integrado de los principales insectos y ácaros plagas del cultivo del arroz” del Dr. Rafael Meneses.
Primera Sección
PRINCIPALES INSECTOS PLAGA DEL ARROZ
Tagosodes orizicolus (Muir)
(Homoptera: Delphacidae)
BiologíaEste insecto es conocido vulgarmente como “Sogata”. Los machos tienen una longitud aproximada de 2.0 mm, son más pequeños que las hembras y de color pardo oscuro a negro. Las hembras miden de 3.33 a 3.35 mm, de color ámbar y más claras que los machos, el dorso del tórax hasta la quilla lateral es pálido y esta coloración se extiende hasta el ápice de la cabeza. (Fig. 1)
La ninfa pasa por cinco instares para alcanzar el estado adulto. En su primer instar es de color blanquecino y de pequeño tamaño (0.65 a 0.90 mm de largo y de 0.20 a 0.30 mm de ancho) pero a medida que crece, se va incrementando la nitidez de las listas paralelas de color pardo que poseen en el dorso. El tamaño del último instar es de 2.8 a 3.0 mm de largo y 1.2 mm de ancho. (Fig. 1)
La duración de los estados está influida por las temperaturas que inciden en los diferentes meses, siendo el período de incubación de los huevos de 7.14 a 19.20 días; para las ninfas de 14.00 a 21.30 días y para los adultos de 14.60 a 31.10 días, en función de la época del año.
Es importante destacar la diferencia entre T. orizicolus y T. cubanus. En esta última especie se encuentra en la unión de las alas un punto negro bien definido que lo diferencia de los machos de T. orizicolus, además las alas posteriores de T. cubanus son traslúcidas. (Fig. 2 y 3)
Ecología
Esta plaga, a pesar de que puede encontrarse sobre plantas de arroz en diferentes estados de desarrollo, especialmente durante las épocas donde se registran los mayores niveles de población, se ha observado que se alimenta preferentemente sobre plantas de arroz jóvenes (desde germinación a ahijamiento activo) posible-mente, entre otras causas, por ser los tejidos de éstas más tiernos y por lo tanto adecuados para su alimentación.
Los machos de T. orizicolus son esencialmente más activos respecto al vuelo que las hembras, éstas y las ninfas se caracterizan por una mayor actividad en la alimentación y son más sedentarias.
En los campos de arroz se colecta mayor proporción de hembras que de machos, mientras que en las trampas de luz esta relación es inversa. Esto es motivado que las hembras de T. orizicolus tienen su abdomen engrosado por los huevos, lo cual las incapacita para volar largas distancias. Al mismo tiempo en las colonias de esta plaga abundan hembras braquípteras o ápteras que no pueden volar.
En temperatura promedio entre 25 a 27°C, se encuentran las condiciones más favorables para el incremento de la densidad de población de T. orizicolus. Las temperaturas inferiores a 25°C, así como las grandes oscilaciones térmicas, tienen influencia negativa sobre el crecimiento y desarrollo de este insecto.
Los máximos valores en la densidad de población de la plaga se presentan entre los meses de abril a noviembre. Este período abarca los meses que se caracterizan por temperaturas más cálidas. De junio a septiembre cuando predominan temperaturas más elevadas, así como precipitaciones superiores a los 100 mm, se observa un notable descenso en la población de T. orizicolus, en este período manifiestan los enemigos naturales una notable actividad. Destacándose dentro de éstos: Paranagrus perforator, Anagrus sp., parasitoides de huevos y Tytthus parviceps, predador del mismo estado de desarrollo de la plaga.
Daños
El insecto comienza a alimentarse de las plantas desde que éstas tienen pocos días de germinadas; pero el daño principal es la inoculación del agente causal de la enfermedad Virus Hoja Blanca del Arroz (VHB). Se observan los primeros síntomas en las plantas afectadas, en función de la edad de las mismas. Estos son apreciados en las hojas que emergen después de la inoculación del virus y consisten en áreas cloróticas o en lesiones típicas en dependencia de la variedad. Las afectaciones severas traen como consecuencia un bien definido amarillamiento en las hojas, que progresivamente van tomando color chocolate claro; otro síntoma que indica el daño directos de T. orizicolus es la formación de fumagina en las hojas. Estos se observan en los campos en forma de manchas, que si no son los insectos controlados, se van extendiendo a todo el campo de arroz. (Fig. 4)
Existen diversos factores que son requeridos para la aparición de epidemias T. orizicolus y de VHB:
El abuso de insecticidas, es el principal factor.
La siembra de variedades susceptibles, puede aumentar significativamente la posibilidad de transmisión del VHB
Incremento en la cantidad de insectos vectores en las poblaciones de T. orizicolus
Presencia de períodos anormales de baja precipitaciones. (Fenómeno del Niño)
Pero también existen factores que inciden negativamente en la aparición de epidemias de T. orizicolus y del VHB:
Control biológico efectivo sobre T. orizicolus
No existen muchas fuentes de VHB en la naturaleza o estas fuentes no son visitadas por T. orizicolus.
Muy baja proporción de T. orizicolus con capacidad de transmitir el virus.
Las condiciones climáticas en las cuales se realiza el cultivo, no favorecen al insecto.
Monitoreo o muestreo de la “Sogata”
El muestreo recomendado para la señalización de la plaga es mediante el Jamo Entomológico. En el muestreo se tomará el primer punto a 20 metros del canal de riego y en el mismo se efectuarán 10 pases de jamo, en los restantes 9 puntos se realizarán también 10 pases de jamo, éstos siguiendo las diagonales del campo y tratando de abarcar toda la longitud y área del mismo (aprox. 30 ha).
También se ha utilizado tomar la muestra sólo en cinco (5) puntos del lote, realizando 20 pases de jama en cada unos de ellos.
Adicional a este muestreo se toma en cada campo, 100 hojas de arroz, distribuidas estas plantas al azar, con el objetivo de determinar las puestas de T. orizicolus y T. parviceps y el parasitismo por P. perforator, para poder tomar las medidas precisas desde el primer momento de la incidencia de la plaga.
El Umbral económico es de 9 Sogatas/pase de jamo en la etapa de Germinación a Ahijamiento activo y de 28 Sogatas/pase de jamo para la etapa de Ahijamiento activo a Cambio de primordio. Estos valores para “Sogatas” no virulentas.
En Colombia se recomienda realizar una aplicación de insecticida cuando se colectan 200sogatas por 10 pases dobles de jama con menos del 3% de plantas infestadas; 50 insectos entre el 3 y 10% y 10 sogatas con más del 10% de plantas infestadas.
Medidas de control de T. orizicolus Control cultural
1. Eliminación de restos de cosecha y malezas.
Control biológico
Eficacia de los enemigos naturales fundamentalmente: Paranagrus perforator, Anagrus sp.
y Tytthus parviceps. La protecciónde estos dos controles biológicos son de los aspectos de
mayor importancia en el Manejo Integrado de T. orizicolus, pues la misma resulta muy
económica para el agricultor, que fundamentalmente debe hacer un uso muy racional del Umbral Económico y de los plaguicidas químicos. El parasitismo ocasionado por P. perforator en el estado fenológico de la germinación al ahijamiento activo de las plantas de arroz es aproximadamente del 50 %, disminuyen éste con la edad del cultivo, al igual que las oviposiciones de T. orizicolus.
En investigaciones en condiciones semicontroladas se terminó que la cepa Empoasca de Beauveria bassiana controló el 88 % de las hembras de T. orizicolus y el 83 % de los machos; la cepa Niña Bonita de Metarhizium anisopliae obtuvo el 78 % de mortalidad de las hembras del insecto y el 66 % de los machos.
Este aspecto es fundamental si se tiene en cuenta que la capacidad de las hembras de T. orizicolus de trasmitir la enfermedad Hoja Blanca a través del huevo, lo que de obtener un insecticida microbiológico con estas condiciones es factor priorizante en el manejo de la plaga.
Control químico
Se debe utilizar fundamentalmente, si la utilización de variedades resistentes, no logra disminuir la población de la plaga, por debajo del Umbral económico, aplicando los insecticidas más selectivos para esta plaga.
♦ Insecticidas recomendados para el control de la “Sogata”: Nombre Técnico Dosis
(g ia/ha) Etophenprox 70 Imidacloprid 35 Acetamiprid 30 Cipermetrina 100 Metamidophos 600 Lambda cyhalothrina 10 Thiametoxan 25
Lissorhoptrus spp.
(Coleoptera:Curculionidae)
IntroducciónEste insecto se conoce comúnmente como: “Picudo acuático del arroz o Gorgojito de Agua”, es la plaga de más difícil control, debido a los hábitos de adultos y larvas. Ataca a las plantas durante el estado adulto y larval y cuando su población es numerosa provoca considerables pérdidas al cultivo, siendo el daño principal producido por las larvas, las cuales se alimentan de las raíces de las plantas hospedantes.
L. brevirostris sólo ha sido reportada para Cuba (especie que se analizará con mayor exactitud). Recientemente se han reportado varias especies de Lissorhoptrus en Venezuela y Colombia: L. kuschel O’Brien, L. persimilis O’Brien, L. isthmicus Kuschel, L. panamensis Kuschel, L. venezolanus Kuschel.
Lissorhoptrus brevirostris (Suffr.)
BiologíaLos adultos de ambos sexos son de color grisáceo oscuro con una sombra más oscura marcando el centro del dorso, presentan los élitros fuertemente unidos en la zona de la sutura central por 1 + 1 pequeñas láminas que se superponen al entrar en contacto los élitros, al cerrarse (Fig. 5). La longitud promedio corporal de los machos de L. brevirostris es de 2.91 mm y de las hembras de 3.28 mm. (Fig. 6) Las larvas son de color blanco amarillento, ápodas, con la cabeza de color carmelita, pequeña en relación con el cuerpo, acentuándose este carácter en los últimos instares. La longitud en el primer instar es de 2.3 mm. y el último 8.4 mm.(Fig. 7)
La pupa recién formada es de color blanco, similar al adulto en tamaño y forma, con la cabeza dirigida hacia el orificio de conexión con la raíz de la planta hospedante.
La duración promedio desde la oviposición hasta la emergencia de los adultos fue 50 días, viviendo éstos alrededor de 714 días.
PRINCIPALES ASPECTOS DE LOS HÁBITOS DE Lissorhoptrus brevirostris QUE SE DEBEN CONSIDERAR EN EL MANEJO INTEGRADO DE LA PLAGA.
Adultos
• Pueden permanecer hasta 52 horas sumergidos en el agua sin morir, debido a que pueden aprovechar el aire retenido entre los pliegues de las alas, por los espiráculos abdominales.
• Poseen hábitos sedentarios, abandonando las plantas solamente al ser molestados, por escasez de alimento, o en los vuelos nocturnos hacia los campos con arroz joven.
• Cuando las condiciones climáticas son desfavorables (temperatura media menor de 25°C) permanecen inmóviles en los lugares más bajos de los arrozales, pudiendo estar sin ingerir alimentos hasta 205 días, como promedio.
• Los adultos viven como promedio 714.5 días, sólo se alimentan entre el 8 al 10 % de estos días y en el 97 % lo realizan en horas de la noche.
Larvas
• Poco tiempo después de la eclosión la larva se traslada por el parénquima lagunar de la vaina foliar de la planta, donde comienza a comer de los tabiques transversales, saliendo del interior de ésta por uno de los orificios donde estaba insertado el huevo o uno hecho por ella, moviéndose por gravedad dentro del agua hacia el suelo y las raíces, en uno o dos minutos.
• Las larvas extraen de las raíces de las plantas hospedantes el oxígeno necesario para su respiración con sus espiráculos abdominales.
• Viven generalmente hasta una profundidad de 5 a 7 cm., en suelo inundado, prefiriendo para su alimentación raíces de 0.600 a 1.375 mm de grosor.
• Son capaces de trasladarse horizontalmente hasta una distancia de 20 cm. bajo suelo inundado.
• Pueden permanecer vivas en suelo inundado carente de raíces entre 24 a 52 horas en dependencia del instar larval.
Ecología
Las gramíneas (=poaceas) son las principales hospedantes para los diferentes estados de desarrollo de L. brevirostris, destacándose por su abundancia en los campos: Brachearia mutica, Paspalum distichum, Echinochloa colona y E. crus-galli.
Las mayores densidades de población de L. brevirostris en todos sus estados de desarrollo se producen en la época del año en que se combinan temperaturas
Daños
El adulto se alimenta de las plantas de arroz y de otras especies que le sirven de hospedante secundario, dejando una cicatriz horizontal donde fue separada la superficie de la hoja, con una longitud promedio de 6.00 mm y ancho de 0.45 mm. (Fig. 5)
El daño principal es ocasionado por las larvas, se alimentan de las raíces de las plantas hospedantes, impiden el desarrollo de éstas, y la absorción de nutrientes. Estas pueden podar intensamente las raíces, destruyendo hasta el 82 % del volumen radical de las plantas de arroz, de ahí que éstas son más pequeñas, cloróticas, presentando mayor susceptibilidad al acame que las plantas sanas. (Fig.8)
En otros estudios efectuado en Cuba por los autores, se han obtenido una afectación en el rendimiento entre 37.3 al 61.1 % al comparar plantas con diferentes disminuciones del sistema radical y plantas de arroz sin afectación. Muestreo del “Picudo acuático”
Para la señalización de L. brevirostris se recomienda efectuar 6 a 8 muestreos, comenzando en las siembras de abril a julio a los 15 días de germinadas las plantas, con el objetivo de determinar la presencia de adultos en esta etapa fenológica del arroz, antes del aniego permanente.
En los campos se seleccionan 10 puntos y en cada uno de ellos 20 plantas. Los puntos se escogerán aproximadamente a 20 metros del borde del campo, próximo al canal de riego y con una separación entre ellos de 80 a 100 metros, aunque debe ser proporcional a la longitud del campo. Del total de puntos se evaluarán tres en los lugares más bajos del campo.
Se evaluará el total de adultos en las 20 plantas en cada uno de los puntos seleccionados del campo y las hojas con síntomas del daño de los adultos (3 últimas hojas de cada tallo). Si el promedio de todo el campo es de 3 a 4 adultos/20 plantas y/o si el 50 % del total de plantas evaluadas tienen cicatrices en las hojas nuevas, en el campo debe realizarse una medida o táctica de control.
Medidas de control Control cultural
1. No drenar los campos de arroz.
El drenaje de los campos fue utilizado durante antes de la década 70’s, pero se ha determinado que éste ocasiona más desventajas, que los pocos beneficios que puede aportan con el control de las larvas de , además
la incidencia del insecto ocurre en la etapa fenológica del cultivo de amplia demanda de nutrientes y si el campo es drenado, puede afectar el estado nutricional de las plantas de arroz. Cuando se realiza un drenaje prolongado para el control de las larvas, el campo se puede infestar con malezas, las que resulta difícil eliminar en esta etapa del cultivo. Por lo tanto es preferible no drenar los campos de arroz con el objetivo de controlar las larvas de L. brevirostris.
2. Época de siembra del cultivo
3. Eliminación de restos de cosecha y malezas Control biológico
Hasta el presente en Cuba no se ha observado en los campos de arroz acción de enemigos naturales, en ninguno de los estados de desarrollo de L. brevirostris. Todas las cepas de Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae han manifestado acción depresiva sobre la población adulta de L. brevirostris.
En condiciones semicontroladas estos hongos han alcanzado más del 95 % de control de los adultos de la plaga y en campos de arroz hasta el 84 % (valoración de más de 20 000 ha)
Las aplicaciones de M. anisopliae, se realizarán fundamentalmente en dos etapas, la primera antes de la preparación del suelo en los diques y canales, principalmente durante los meses de febrero y marzo y la segunda aplicación cuando las plantas de arroz presenten de 10 a 17 D.D.G. La primera aplicación durante los meses posteriores se realizará después de la aplicación del herbicida Propanil. En todas las aplicaciones se utilizará una dosis de 1 X 1012 conidias/ha.
Control químico
El Fipronil es un insecticida Pyrazol que actúa por contacto e ingestión, aunque sin ser sistémico, en observaciones de campo, después de la aplicación se ha determinado cierto efecto sistémico sobre algunas plagas. Presenta baja acción de control contra los insectos benéficos. Las dosis de Fipronil de 75 a 100 g ia/ha han obtenido un control de las larvas del picudo acuático entre el 91,0 al 94,5 % Este insecticida resulta una buena alternativa en el control de las larvas de
Oebalus spp.
(Heteroptera:Pentatomidae)
IntroducciónEste insecto es conocido vulgarmente como "Chinche del arroz o Chinche hedionda", es considerado como plaga de importancia en el cultivo en varios países de América Latina y El Caribe. En un país se pueden presentar varias especies de chinche, aparentemente esta variación está relacionadas con la presencia de determinadas malezas y plantas hospedantes.
Dentro de las principales especies de Oebalus se encuentran: O. insularis, O.
ornatos, O. pugnas-torridus, O. ypsilon-griseus
.
Oebalus insularis (Stal)
BiologíaLos adultos son de color carmelita claro o pajizo, observándose unas depresiones amarillentas en el tórax, que semejan dos medias lunas.
El macho es ligeramente menor que la hembra, con longitud del cuerpo de 8.38 y 9.22 mm, como promedio, respectivamente. (Fig. 9)
Las ninfas pasan por cinco instares, siendo en los dos primeros de color verde, éstas se tornan más oscuras con el tiempo. La longitud corporal es de 1.11 a 6.11 mm, como promedio de los diferentes instares. (Fig. 9)
Ecología
Existe una estrecha relación entre la incidencia de la plaga y la paniculación del arroz y de otras poaceas que crecen y se desarrollan en los arrozales. En los campos de arroz con infestación de gramíneas son generalmente más atacados por la chinche que los campos libres de malezas, ya que el insecto prefiere ovipositar y desarrollar el estado ninfal en las gramíneas, fundamentalmente del género Echinochloa.
Las mayores densidades de población de la “Chinche” generalmente se registran entre los meses de mayo a octubre en los cuales se presentan temperaturas promedio entre 26 a 28°C, así como alta humedad relativa (por lo general entre 75 a 85 %) e intensas precipitaciones.
Daños
Este insecto afecta al arroz tanto en estado ninfal como adulto, el daño lo ocasionan al chupar los granos lechosos o yesoso por medio de su estilete, aunque en los estudios de dinámica poblacional sólo se colectó del total de O. insularis, el 4,6 % de ninfas, lo que significa que el daño causado por esta plaga al arroz, lo produce fundamentalmente el adulto. (Fig. 10)
El insecto al alimentarse del grano realiza frecuentes picaduras lo que permite la entrada de microorganismos patógenos, como por ejemplo Bipolaris oryzae (Helminthosporium)
La afectación en el rendimiento agrícola es entre el 27 al 65 % con poblaciones entre 0.3 a 1.1 O. insularis por panícula de arroz, al ser comparados con el testigo libre de insectos.
Si el arroz es destinado a la producción de semilla ocurre una disminución de la germinación entre 6 y 14 % cuando es afectado por densidades poblacionales entre 0.3 y 1.1 chinches por panículas.
El rendimiento industrial también es afectado por la alimentación de O. insularis llegando ésta hasta el 9 % cuando incidieron 0.3 insectos por panícula.
En las fases de floración del arroz y cerosa del grano se presentan afectaciones en el rendimiento, aunque más tolerante que en el estado lechoso del grano, etapa donde se debe extremar las precauciones en muestreo y el control de esta importante plaga del arroz.
Muestreo de la “Chinche”
Tomando en consideración que la distribución de O. insularis en el campo es agregada, se determinó que para la evaluación del insecto deberá tomarse las muestras preferentemente en los lados correspondientes al frente y fondo del campo, paralelo a los canales de riego y de drenaje secundario, respectivamente. Cada muestra constará de 10 pases sencillos del jamo entomológico, estando el número total de muestras en dependencia de las densidades de población de O. insularis: de 6 a 8 muestras para densidades menores de 1 insecto por 10 pases de jamo; de 3 a 5 para densidades de 1 a 4 por 10 pases de jamo; y de 1 a 2 para 4 o más O. insularis por 10 pases de jamo.
En el muestreo se deberá incluir muestras cercanas a los canales de riego y de drenaje. También se puede realizar de forma similar al de T. orizicolus.
El Umbral Económico es 2.20 chinches/pase de jamo en la Floración; de 0.67 chinches/pase de jamo en el estado lechoso del grano y para el grano yesoso de 4.34 chinches/pase de jamo.
Medidas de control Control cultural
1. Eliminación de restos de cosecha y malezas
Esta práctica es de suma importancia para incrementar el control de las plagas, pero en la “Chinche” aún es más importante, pues este insecto vive en sus etapas juveniles en estas malezas, fundamentalmente de Echinochloa colona y posteriormente invadirán y afectarán a las plantas de arroz. La destrucción de las malezas cuando ayuda al control de estas plagas, constituye una práctica cultural de doble propósito.
2. Época de siembra del cultivo
En el período de mayo a noviembre deberá estrecharse la vigilancia sobre esta plaga, en especial los campos cuyo estado de desarrollo coincida desde la floración al llenado del grano.
3. Variedades resistentes
Estudios realizados en Cuba demuestran que en las variedades comerciales no han encontrado diferencias en la resistencia a la Chinche, por lo que deberán tener similares medidas de protección contra los daños de este insecto.
Control biológico
Estudios recientes en el Instituto de Investigaciones del Arroz, han demostrado que la cepa Niña Bonita de M. anisopliae logra un control sobre O. insularis del 96 % a los 10 días posteriores a la aplicación del hongo entomopatógeno, otras cepas del mismo hongo han obtenido resultados similares.
Control químico
El control químico sólo será empleado cuando los índices poblacionales de la plaga alcancen o sobrepasen los Umbrales Económicos establecidos para las diferentes fenofases de la paniculación.
El control químico de esta plaga no ha sido muy investigado, han resultado efectivos, los mismos insecticidas aplicados para T. orizicolus.
Spodoptera frugiperda (J. Smith)
(Lepidoptera:Noctuidae)
Biología
En los últimos años ha incrementado sus afectaciones en el arroz donde se conoce vulgarmente como “Palomilla o Gusano soldado”.
El estado más difícil de observar dada las características de los hábitos nocturnos es el adulto. Estos tienen unos 25 mm de largo, la hembra es generalmente mayor que el macho. El color del cuerpo es grisáceo, en el ángulo apical de las alas anteriores se aprecia una mancha cenicienta y en la parte media, otra mancha parecida a un signo de admiración de color pardo. Comienzan a copular entre el segundo y tercer día de arribo a ese estado. El total de huevos por hembra se encuentra entre 1 241 y 1 993 durante todo su ciclo.
Los huevos de S. frugiperda son redondos con dimensiones de 0.45 a 0.50 mm de diámetro, son puestos por la noche, presentan variados colores, entre ellos gris oscuro y diversas tonalidades de verde. Las oviposiciones son en grupos o camadas (dos o tres) lo que la faculta para mostrar mayor resistencia a los parasitoides. Cuando las larvas emergen son oscuras con el casquete cefálico más ancho que el cuerpo, durante todo su desarrollo su color varía desde el verde claro hasta casi el negro, con tres rayas longitudinales más claras por el dorso hasta el último segmento.
La longitud del cuerpo de las larvas varía desde 1.50 mm en el primer instar hasta 35 a 40 mm en el último instar. La pupa es de color rojizo cuando tiene poco tiempo de transformada y de color caoba, cuando el adulto está próximo a eclosio-nar. (Fig. 11)
El ciclo desde la oviposición hasta la emergencia del adulto es aproximadamente de 23 a 25 días, con una duración promedio de los adultos de 14 a 15 días.
Ecología
Contrario a L. brevirostris existe una relación negativa entre la incidencia de la “Palomilla” y el establecimiento de la lámina de agua en los campos de arroz, afectando ésta fundamentalmente, entre los 5.52 a 8.50 días de germinadas las plantas (D.D.G.) etapa fenológica donde no hay agua en los campos, a partir del aniego permanente de los mismos, disminuye considerablemente esta plaga. Las mayores poblaciones de las larvas de S. frugiperda se colectaron entre los meses de
abril a septiembre, influido entre otras causas fundamentales, por la temperatura, encontrándose el óptimo para esta especie entre 25 y 27°C.
Daños
Las larvas de S. frugiperda pueden ocasionar daño durante todo el período vegetativo del cultivo, fundamentalmente hasta el establecimiento del aniego permanente en los campos de arroz. El mayor riesgo es durante la etapa de plántula, fundamentalmente cuando ésta se encuentra en los últimos instares, motivado por el alto porcentaje de área foliar que consume.La larva hasta el tercer instar sólo consume el 3.41 % (5.226 cm2) del total que ingiere durante todo el estado larval; en el sexto instar destruye el 80.73 % (123.631 cm2),durante todo el estado larval consume 153,157 cm2, y si este daño ocurre a los pocos días posteriores a la germinación puede hasta matar a las plantas. (Fig. 12)
El coeficiente de nocividad como expresión de la reducción del rendimiento, es influenciado por la abundancia de las larvas y la edad del cultivo, oscilando este valor para la variedad J-104 entre 5.6 al 100 %; para la IACuba-14 es del 7.6 al 97.35 % y para la PERLA del 7.3 al 78.2 %, cuando el insecto ataca a las plantas de arroz entre los 7 a 11 días de germinados (D.D.G.)
Muestreo de la “Palomilla”
Para el muestreo de S. frugiperda en el cultivo del arroz se ha desarrollado el método de pases del jamo entomológico y el conteo de insectos por metro cuadrado. El muestreo del campo se realizará en 10 puntos seleccionados de forma similar al realizado para la Sogata, efectuando el conteo de los insectos en cada punto seleccionado mediante un marco de 0,5 X 0,5 m.
El método del muestreo mediante el jamo entomológico desarrollado por Murguido et al (s.f.) es recomendable utilizarlo a intervalos no mayores de 7 a 10 días en el período crítico al ataque de la plaga. Para la toma de la muestra se seleccionarán de forma similar los 10 puntos y se realizarán 10 pases de jamo en cada uno de ellos. La señal para la ejecución de una medida de control será emitida cuando se detecte 2 larvas por pase de jamo, durante el período crítico del cultivo.
En ambos métodos de muestreos se comenzará su realización a partir de los 5 D.D.G. las plantas de arroz hasta el establecimiento permanente de la lámina de agua en el campo, con un intervalo semanal. Además, para la determinación de la actividad de vuelo se han utilizado las trampas de luz, similares para todos los insectos del arroz.
El Umbral Económico de las diferentes variedades de arroz fluctúa entre 1.03 y 13.84 larvas/m².
Medidas de control
Control cultural1. Eliminación de restos de cosecha y malezas. (Similar para todas las plagas) 2. Época de siembra. (Fundamentalmente en aquellas zonas con dos siembras) 3. Manejo del agua.
Motivado que la mayor incidencia de S. frugiperda ocurre cuando las plantas tienen entre los 5 y 8 días de germinadas y en esta misma fecha se realiza fundamentalmente la aplicación de herbicidas es por la utilización del manejo del agua es el método más recomendado para el control de la “Palomilla”. Inundar el campo por 20 horas es lo correcto para el control de todos los estados del insecto. Con este tiempo se controla el 95 % de las larvas y pupas de la plaga presentes en los campos de arroz.
Control biológico
El depredador más colectado es Coleomegilla cubensis cuya acción más depresiva la ejerce en el período de abril a junio. Chelonus texanus presentó un nivel de parasitismo hasta el 80.7 % en las parcelas experimentales y hasta un 78 % en muestras del CAI Arrocero “Sur del Jíbaro”.
Otro parasitoide importante es Telenomus, colectándose puestas de la plaga con un 58 a 93 % de huevos parasitados.
En condiciones semicontroladas el hongo M. anisopliae (Cepas Belice y Niña Bonita) ocasionaron una mortalidad entre el 69.3 al 88.5 % de las larvas de S. frugiperda. La cepa Niña Bonita de M. anisopliae alcanzó mejor control que la cepa Belice, lo que facilita que la aplicación de este hongo entomopatógeno pueda controlar más de una especie de insectos plagas en el cultivo del arroz.
Con el objetivo de buscar nuevas alternativas para el control de S. frugiperda se han evaluados diferentes cepas de hongos entomopatógenos y de Bacillus thuringiensis con el objetivo de incluirlos en el Manejo Integrado de esta importante plaga del arroz.
Con B. thuringiensis se ha alcanzado en condiciones semicontroladas hasta 95 % de mortalidad de las larvas de S. frugiperda y en condiciones de los arrozales entre el 65 y 95 %, ésta en dependencia de la calidad del biopreparado.
comer, aspecto este muy importante, fundamentalmente cuando inciden entre los 5 y 9 días de germinadas las plantas de arroz.
Control químico
Los insecticidas que mejor control han mostrado son: Lambda cyhalothrina. (0.1 Kg. ia/ha) aplicado sólo o mezclado con el Propanil y el Methyl Parathion (0.50 Kg. ia/ha). También se aplica Cypermetrina a dosis de 0.5 Kg ia/ha.
Umbrales Económicos para las Principales Plagas del Arroz
El control de los insectos se realizará cuando se alcancen los diferentes umbrales económicos, obtenidos en las etapas de muestreos (Cuadro 1.)
CUADRO 1. Umbrales Económicos para las Principales Plagas del
Arroz
PLAGA ETAPA DEL MUESTREO UMBRAL
Sogata Germinación a Ahijamiento 9 Sogata/Jama (No virulenta) Ahijamiento a Cambio Primordio 28 Sogata/Jama Picudo acuático A partir del aniego permanente 3 a 4 adultos/20 plantas
4 a 5 larvas por plantón
Chinche Floración 2.20 Insectos/Jama
Grano lechoso 0.67 “ “ Grano ceroso 4.34 “ “ Palomilla
Variedad Edad de las plantas (días) 7 a 11 14 a 18 21 a 25
J-104 (ciclo medio) 1.03* 8.21 10.39 IACuba-14 (ciclo medio) 1.61 8.05 11.31 PERLA (ciclo corto) 2.60 7.90 13.84 * = Larvas/m²
RECOMENDACIONES PARA EL MANEJO INTEGRADO DE
Tagosodes orizicolus
Para la implementación del Manejo Integrado de esta importante plaga del arroz en Cuba es necesario además de todos los aspectos sociales, económicos y relacionados con el adiestramiento de los especialistas y técnicos, ejecutar los aspectos siguientes:
1. Realizar todas las siembras con semilla certificada de las variedades resistentes a la plaga, utilizando las dosis recomendadas para cada tecnología de siembra, efectuarla preferentemente desde diciembre a febrero.
2. Destruir todos los restos de cosecha y malezas que resultan hospedantes de las plagas, en la preparación de suelo, también mantener limpios diques y canales de riego y drenaje.
3. Nivelar bien las terrazas, para la realización rápida del manejo del agua y control de las malezas e insectos.
4. Proteger los enemigos naturales del ecosistema arrocero mediante la utilización mínima de los plaguicidas químicos.
5. Efectuar el muestreo mediante pases de jamo, desde los cinco días de germinadas las plantas de arroz, con una frecuencia semanal, fundamentalmente de marzo a septiembre.
6. Ordenar una medida de control cuando se alcance el Umbral Económico para las diferentes edades del arroz.
7. En el control del insecto se tendrá en consideración:
a. Aplicar un insecticida sólo en el caso que en el muestreo del campo se obtenga valores similares o superiores al Umbral Económico de T. orizicolus.
b. Utilizar los insecticidas más selectivos y menos tóxicos para los enemigos naturales y el ecosistema arrocero.
RECOMENDACIONES PARA EL MANEJO INTEGRADO DE
Lissorhoptrus brevirostris
En el Manejo Integrado de esta importante plaga es de suma importancia la observancia de los siguientes aspectos:
A. Ejecutar las orientaciones de la 1 a la 4 recomendada para el Manejo Integrado de T. orizicolus.
5. Mantener limpios diques y canales, principalmente donde crece P. muticum pues debajo de estas plantas se protege el insecto a partir de septiembre hasta finales de marzo, de donde vuelan hacia los campos de arroz.
6. Incrementar los muestreos en todos los campos en aniego permanente a partir de marzo por ser este mes crítico para la señalización de L. brevirostris y continuarse hasta septiembre debido a que este período resulta de máxima actividad de la plaga.
7. Orientar una medida de control cuando se alcance el Umbral Económico de L. brevirostris de acuerdo a la edad de las plantas y el ataque de adultos o larvas del insecto.
8. En el control del insecto se deberá tener en cuenta:
a. No efectuar el drenaje de los campos, con el objetivo del control de las larvas de L. brevirostris, por resultar generalmente esta práctica más perjudicial para el cultivo.
b. Aplicar para el control de los adultos de la plaga los hongos (M. anisopliae o B. bassiana) a las dosis de 1 x 1012 conidias/ha.
c. Aplicar el control microbiológico en dique y canales de aquellas áreas endémicas de picudo acuático del arroz, si es factible durante el mes de febrero o principio de marzo, En aquellos campos con ataque de adultos de la plaga y no sea posible la aplicación de hongos entomopatógenos y coincida con los meses de marzo y abril es recomendable la utilización de Carbaryl (2,21 Kg ia/ha).
d. Efectuar el control de las larvas o altas incidencia de adultos mediante la aplicación de Fipronil a dosis de (75 a 100 g ia/ha).
e. Realizar las aplicaciones de insecticidas (microbiológicos o químicos) por avión en horas tempranas de la mañana o finales de la tarde, dado los hábitos del insecto.
RECOMENDACIONES PARA EL MANEJO INTEGRADO DE
Oebalus insularis
A. Realizar las orientaciones de la 1 a la 4 del MANEJO INTEGRADO de los anteriores insectos.
5. Efectuar los muestreos mediante pases de jamo, según la metodología descripta en el presente trabajo, desde la etapa de la floración hasta el estado yesoso del grano de arroz, con una frecuencia semanal, desde marzo hasta noviembre. 6. Proteger los enemigos naturales, principalmente Telenomus mediante la
utilización mínima de los plaguicidas químicos.
7. Ordenar una medida de control cuando en los muestreos de campo se alcance o sobrepase el Umbral Económico de las diferentes fases del arroz.
8. En el control de la plaga se deberá tener en consideración:
Aplicar un insecticida químico, similares a los utilizados para el control de T. orizicolus
RECOMENDACIONES PARA EL MANEJO INTEGRADO DE
Spodoptera frugiperda
Dentro de las principales consideraciones para la implantación del Manejo Integrado de la plaga se encuentran, ejecutar los puntos del 1 al 4 de los insectos anteriores.
5. Realizar los muestreos semanales de la plaga a partir de los cinco días de germinadas las plantas de arroz hasta el aniego permanente. 6. Efectuar quincenalmente, durante diciembre y enero los muestreos, a partir de
marzo y hasta septiembre, motivado por el aumento de la temperatura, se debe incrementar la vigilancia de todos los campos, principalmente en aquellos de pocos días de germinados, etapa más susceptible al insecto.
7. Orientar una medida de control cuando se alcance el Umbral Económico de S. frugiperda, en las diferentes edades:
8. En el control del insecto se deberá tener en cuenta:
a. Realizar éste cuando las larvas sean pequeñas, debido a que su alimentación es baja y mayor su susceptibilidad a las medidas que se adopten.
b. Utilizar la inundación de los campos por 20 horas, con el objetivo de controlar todos los estados del insecto.
c. Aplicar preferentemente Lambda-cyhalothrina a dosis de 6,25 a 10,00 g ia/ha, mezclado con el Propanil dentro de las necesidades del control de las malezas en los campos.
d. Como alternativas se puede aplicar B. thuringiensis a dosis de 0.4 ℓ/ha o 1 Kg./ha.
e. Efectuar las aplicaciones por avión realizarse preferentemente en horas tempranas de la mañana, dado los hábitos del insecto.
Segunda Sección
Steneotarsonemus spinki Smiley.
(Acari:Tarsonemidae)
Introducción
Este ácaro fue colectado por primera vez en 1965, en Baton Rouge, Luisiana, Estados Unidos, sobre T. orizicolus y descrito por R. Smiley en 1967 como Steneotarsonemus spinki. Conocido comúnmente como el “ácaro del vaneado del arroz y ácaro spinki”.
Es considerado como una plaga del arroz en Asia Tropical, fundamentalmente en Taiwán, donde ocasionó severos daños en 1977, con porcentajes de granos vanos, entre el 20 y 60 %, equivalente a 20 000 toneladas de arroz.
Los primeros reportes en América datan de 1997, cuando fueron colectados por primera vez en La Habana, Cuba. Al siguiente año se señala la presencia del ácaro en República Dominicana y Haití, con pérdidas en más del 40% en algunas zonas. Recientemente en el 2004 se informa que el ácaro se encuentra en; Costa Rica, Panamá y Nicaragua. En el primer país, fue afectado ente el 15 y 20% de la cosecha y en Panamá el 30 % de pérdidas. En marzo de 2005, fue reportado en Colombia.
Biología
Tanto la hembra como el macho de S. spinki tienen el cuerpo alongado, más anchos en la región del histerosoma. El largo y ancho promedio de la hembra es de 272 x 209 μm., presenta órganos pseudoestigmáticos ovoidales, con el primer par de apodemas en forma de “y”. El macho con 217 x 120 μm. de largo y ancho, respectivamente. La característica distintiva de la especie es la presencia de un par de setas en forma de cuchillo sobre el fémur y la gema IV. (Fig. 13)
El huevo es redondo, blanco, su superficie pegajosa, con un largo y ancho aproximado de 110 y 74 μm. La larva de coloración similar a los huevos, tres pares de patas, tiene el cuerpo alargado, con longitud entre 147 y 186 μm., ancho de 73 a 110 μm. El macho adulto levanta las patas traseras y aprisiona la larva inactiva cargándola sobre sí durante 6 horas, durante ese tiempo la hembra se ha convertido en adulta y concluida la cópula se separa del macho. La fecundidad de la hembra es de 30 a 80 huevos durante todo su ciclo, repartidos éstos en 2 a 6 posturas. En el mes de junio esta plaga puede tener hasta 8 generaciones, influenciado entre otras causas por la temperatura, ocurriendo en Enero solamente 2.
Ecología
El principal hospedero del acaro es el arroz, reportándose que es estrictamente fitófago. Algunas malezas también se han reportado como hospederas. En Costa Rica y Panamá se ha señalado que el acaro también completa su ciclo biológico sobre la especie silvestre Oryza latifolia.
Las altas temperaturas, disminución de las lluvias, alta aplicación de fertilizante nitrogenado o un mal manejo de la fertilización en general, son factores que favorecen la incidencia de S. spinki.
Generalmente las poblaciones comienzan con el incremento de la temperatura, alcanzando los niveles máximos entre agosto a octubre, en estos meses ocurren temperaturas entre 25.5 y 27.5 °C y humedad relativa entre 80 y 90%. Durante los meses de diciembre a finales de febrero, sobreviven en los restos de la cosecha anterior. Se considera que máxima población de S. spinki concurre en el estado lechoso del grano de arroz, coincidiendo durante la translocación de nutrientes sintetizados
Daños
Los diferentes daños que ocasionan los ácaros:
• Mecánicos o directos: Lesiones o raspaduras que surgen por la alimentación de los ácaros, que se producen en las hojas y en las vainas de las hojas, en las flores y los frutos.
• Producen decoloración y posteriormente necrosamiento de las zonas afectadas.
• Causan deformaciones diversas en los tejidos y órganos atacados.
• Tienen impacto negativos sobre el crecimiento, la floración y la producción.
• Facilitan penetración de hongos, bacterias y microplasma al interior de las plantas.
• Pueden ser trasmisores de virus.
Las afectaciones provocadas por S. spinki son conocidas como “síndrome de la esterilidad del grano” y ocasionan:
• Pérdida y bronceado de la vaina de la hoja bandera.
• Torcedura del cuello de la panícula.
• Desarrollo irregular del grano, resultando granos vanos o parcialmente llenos, con manchas oscuras y panículas que permanecen erectas.
Cuando el número de S. spinki es alto, se mueven a las panículas, se alimentan de las espiguillas en formación y provocan la aparición de granos vanos y deformados en forma de “Pico de Loro”. Además de los daños directos, este ácaro transporta las esporas del hongo Sarocladium oryzae, el cual ocasiona el manchado de la vaina y el grano. Las pérdidas pueden llegar hasta el 35%. (Fig. 14)
Muestreo de S. spinki
Por el tamaño y los hábitos del insecto el muestreo para la señalización (para la toma de decisión) resulta difícil; debe realizarse semanalmente, tomando 30 tallos distribuidos en el lote arrocero. En cada tallo se observará la base, el centro y el collar de las vainas, éstas en dependencia del estado fenológico de la planta de arroz, ya que el ácaro varía su localización en base de la edad de la planta.
Los monitoreos se realizarán decenalmente desde octubre a marzo y semanalmente de abril a septiembre, en dos etapas fenológicas:
• Desde que la plantación esté en inicio de ahijamiento hasta la diferenciación del primordio.
• Inicio del embuchamiento de la espiga hasta que la plantación alcance la fase de grano almidonoso
• Se evaluará 30 tallos al azar por campo. La observación de la vaina puede realizarse con lupa 10X o al estereoscopio, en tres puntos (base, centro y ápice) por vaina de las dos primeras hojas viables desde que las plantas estén en inicio de ahijamiento hasta la diferenciación del primordio, e incluir la de la hoja bandera, desde el inicio del embuchamiento de la espiga hasta que las plantas alcancen la fase de grano almidonoso. Siempre se observarán las vainas de las hojas indicadas hasta tanto aparezca la primera infestada por al menos un adulto ( no es necesario observar todas las vainas)
La información obtenida en los muestreos permitirá establecer un índice de infestación del campo, el cual dará una idea de la población de ácaro. Para calcular el porcentaje de infestación o índice de campo se aplica la siguiente fórmula: % de infestación = Nº de plantas infestadas (n) / Nº de plantas muestreadas (N) x 100 (%)
Se considerará la siguiente escala para expresar la intensidad de infestación: •Libre Sin plantas infestadas.
•Presencia Hasta 15% de plantas infestadas (equivale a 5 plantas infestadas de 30 muestreadas)
•Ligero Entre 15% y 25 % de plantas infestadas (entre 5 y 8 plantas infestadas de 30 evaluadas)
•Medio Entre 25% y 50% de plantas infestadas (entre de 8 y 15 plantas infestadas de 30 muestreadas)
•Intenso Más de 50% de plantas infestadas (más de 15 plantas infestadas de 30evaluadas).
Medidas de control
Medidas de control cultural.
• Calidad en la preparación del suelo.
• Eliminar restos de cosecha, y malezas, dentro del lote y canales de riego, para que no sean focos de ingestación del ácaro y otros patógenos, fundamentalmente las primeras para S. spinki
• Establecer épocas de siembra, por zonas con el objetivo de tener el cultivo con diferentes edades, para romper de ese modo el ciclo de la plaga.
• Realizar las siembras contrarias a la dirección de los vientos y la circulación del agua de riego.
• Siembra de variedades resistentes o tolerantes.
• Utilizar bajas densidades de siembra.
• Fertilización adecuada, relacionada con el momento de aplicación, dosis y fraccionamiento.
• Siembras con semilla certificada.
• Rotación de cultivo, con el objetivo de romper el ciclo de S. spinki
Control biológico
Los ácaros predadores pertenecientes a las familias Phytoseiidae y Ascidae están presentes todo el año y sus poblaciones se incrementan con un patrón similar al de S. spinki
Han sido colectados ejemplares de S. spinki con presencia de hongos de los géneros Beauveria y Hirsutella nodulosa.
Control químico
El control químico debe efectuarse entre los 60 a 90 días después de la germinación, pero debe tenerse en cuenta el ciclo de la variedad y el monitoreo de las poblaciones del acaro.
Se ha encontrado que la mayor dispersión de los ácaros ocurre de 12:00 a las 15:00 horas, por lo tanto las aplicaciones deben ser realizadas antes de las 12:00 horas para tener un mejor control. En general, los ácaros desarrollan rápidamente resistencia a los acaricidas, por lo que se recomienda utilizar diferentes productos y de forma alterna.
Dentro de las actividades relacionadas con el control químico de la plaga se encuentran:
• Desinfección de la semilla; puede ser químico o biológico (Trichoderma) • Desinfección de posturas en las siembras de trasplante (Solución acaricida al
2%)
.
Tercera Sección
ASPECTOS GENERALES DE LAS MALEZAS
Las malezas son todas las plantas que crecen fuera del lugar, donde no se quieren, que obstaculizan los objetivos y las prácticas diarias del hombre. En el cultivo del arroz en Cuba se han reportado 351 especies pertenecientes a 161 géneros y 49 familias.
Las malezas son elementos importantes y dinámicos en un ambiente agrícola y actualmente comienza a existir una mayor conciencia en el sentido que es necesario entender la relación de las malezas con el cultivo, las prácticas agrotécnicas y el medio ambiente para tratar de manejar eficientemente las malezas.
Las malezas en un cultivo de arroz causan daños directos e indirectos.
• Los directos son los que resultan de la interferencia de la maleza con el desarrollo del arroz. La interferencia comprende las distintas interacciones negativas que surgen entre las plantas, tales como competencia, alelopatía o parasitismo. Esta reduce el crecimiento del arroz y su rendimiento en granos.
• Los daños indirectos son ocasionados por las malezas son: cuando sirven de hospederos a plagas, afectan la cosecha y reducen la calidad del grano, por lo tanto elevan los costos de producción.
Las afectaciones por malezas en las áreas agrícolas de la zona templada son del 15 al 20 %, mientras que en las tropicales es del 25 al 50 %. Las pérdidas en los cultivos sin control de maleza, oscilan entre el 49 al 95 %. Las poaceas son importantes malezas que afectan al cultivo, dentro de éstas se destacan, en las terrazas Echinochloa colona (Fig. 15) y en los diques y canales Panicun muticun (Fig. 16)
Existen varios factores que inciden en la diseminación de las semillas de las malezas. Dentro de éstos se encuentran: El viento, el agua, los animales y el hombre.
Dentro de los factores que establecen la capacidad de competencia entre el arroz y las malezas se encuentran:
• La altura de las variedades comerciales.
• Las variedades de ciclo más largo, presentan mayor competencia con las malezas, aunque la diferencia esta dada con las especies con que compiten.
• Características de las especies de malezas.
• Intensidad de las malezas en el arrozal.
Para establecer un programa eficiente de malezas es necesario identificar con exactitud las mismas y conocer completamente su comportamiento en los diferentes ecosistemas arroceros.
Dentro de los factores principales que inciden en el manejo de las malezas en el sistema de arroz de riego y que deben tenerse en cuenta son la nivelación del campo y el manejo del agua. Si el terreno está bien nivelado es posible establecer desde los primeros momentos una lámina de agua de inundación permanente que impida el crecimiento de gran parte de las malezas.
En muchas ocasiones los productores no están conscientes del problema de las malezas. Esto se debe a que el daño ocasionado por las mismas es menos visible, o no tan obvio como el causado por los insectos, por ejemplo el daño de la “Palomilla” (Spodoptera frugiperda) en el arroz o por la enfermedad “Piricularia” (Pyricularia grisea).
ARROZ MALEZA (Arroz Rojo)
Durante los últimos años se ha venido utilizando un nuevo término para la descripción del Arroz Rojo: Arroz Maleza, que es toda planta de arroz presente en el área de cultivo ajena a la variedad cultivada e indeseable porque afectan directa o indirectamente a la variedad comercial.
Las mismas prácticas culturales que implementa el hombre son las responsables de tener que lidiar con un determinado tipo de comunidad de malezas, este el caso del Arroz Rojo que durante muchos años ha constituido una plaga de gran envergadura en el cultivo, especie reportada como una de las principales causas de los bajos rendimientos en los países de siembra directa del arroz, por lo que requiere de recomendaciones especiales.
En esta especie hay varios tipos de arroz, diferente del cultivado, que se encuentran en el trópico y en las zonas templadas. En Cuba, García et. al. (1998), determinaron la presencia de 39 biotipos de Arroz Rojo de acuerdo a sus características morfofisiológicas en la zona arrocera de Sur del Jíbaro, de ellos 16 con glumelas pajizas, 10 con glumelas jaspeadas y 13 con negras, en la zona arrocera de Pinar del Río se han determinado 27 biotipos.. (Fig. 17)
Son plantas de hábitos semiacuáticos, de morfología variable, generalmente más altas que el arroz cultivado y de hojas más claras que éste.
Los granos del Arroz Rojo pueden presentar diferentes tonalidades, desde amarillo pajizo, amarillo dorado, rojo cobrizo, púrpura y negro. También se han encontrado granos de color similar al de las variedades comerciales. La coloración del grano es
hereditaria, pero factores ambientales como la luz y la temperatura, así como la acumulación de azúcares, también tienen influencia en la misma.
Se propaga por semillas que se desgranan precozmente de la panícula. La latencia prolongada de estas semillas, el empleo de semilla comercial sin certificar y el pastoreo de los rebrotes o socas por los animales asegura la reinfestación de los campos.
La identificación del Arroz rojo en las etapas iniciales del cultivo se puede realizar porque generalmente germina primero que el arroz comercial, presenta las hojas más largas, claras y estrecha que la variedad, algunos tipos presentan coloración púrpura en las vainas, hojas, aurículas, lígula y la unión de la vaina con la hoja. En las etapas más avanzadas (floración) presenta más altura que el arroz comercial, generalmente panicular primero, coloración negra o jaspeada en la cáscara, aristas, color rojo del grano.
Daños
La interferencia ejercida por el Arroz Rojo provoca reducción en los rendimientos agrícolas e industriales del arroz comercial. Se ha determinado que las afectaciones al rendimiento agrícola de la variedad J 104, podrían alcanzar hasta un 91.5 % en la campaña de primavera y 94.8 % en la de frío, con poblaciones de 200 plantas/m2 de Arroz Rojo. Los rendimientos agrícolas del arroz comercial decrecieron con el aumento del número de plantas/m2 de esta maleza.
Estudios posteriores sobre competencia, demostraron que en la campaña de frío una (1) planta/m2 de Arroz Rojo es suficiente para causar una reducción significativa en el rendimiento agrícola del arroz comercial con relación al testigo limpio en la densidad de población de 50 plantas /m2 de arroz comercial, mientras que en las densidades de 100; 200 y 300 plantas/m2 se necesitan 3 plantas/m2
de esta maleza. En la de primavera los rendimientos agrícolas de la variedad J 104 con poblaciones de 50, 100 y 200 plantas /m2 fueron afectados significativamente con sólo 1 planta/m2 de Arroz Rojo y en la mayor densidad de población con infestaciones de 3 plantas /m2.
El porcentaje de granos enteros disminuye entre el 6 y 7 % al compararlo con el arroz libre de Rojos.
Además la presencia de Arroz Maleza, dificulta la cosecha, y la producción de semilla, así como, disminuye el valor comercial de la finca.
Muestreo de Arroz Maleza (Arroz Rojo)
La estrategia de lucha con el Arroz Rojo se realiza de acuerdo al grado de infestación con que esta maleza incide en las áreas de cultivo.
A los efectos de evaluar bajo un mismo criterio el grado de intensidad del Arroz Rojo en las diferentes áreas arroceras del País y a la vez que ello permita recomendar las tácticas de control más adecuadas, se estableció una escala para su evaluación. (Cuadro 2.)
CUADRO 2. Metodología para evaluar la intensidad del Arroz Maleza (= Arroz rojo; = Mezclas varietales)
Número de Arroz Rojo Cubrimiento Categoría Por 100m² Por 1 ha (%) Limpio 0 0 0
Ligero Hasta 5 Hasta 500 Hasta 0,06
Medio Hasta 1000 Hasta 106 0.07 a 15
Intenso + 1000 + 106 + 15
La determinación de la intensidad de Arroz Rojo en los campos arroceros debe efectuarse visualmente, realizando un recorrido minucioso por toda el área del campo, alrededor de los 30 a 60 días de germinado el arroz para las campañas de primavera y frío, respectivamente. Es importante realizar la evaluación en esta etapa, para detectar en el momento óptimo la presencia del Arroz Rojo, antes de que éste comience la paniculación y poder disminuir las afectaciones en la variedad comercial.
Medidas de Control
Dentro de las medidas generales del Arroz Rojo se encuentran:
• Semilla certificada y libre de Arroz Rojo.
• Limpieza de la maquinaria e implementos agrícolas.
• Los canales, caballones o diques libres de malezas.
• No reutilizar el agua de riego procedente de campos infestados.
