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Anexo IV. INFORME DE LA SEGUNDA REUNIÓN DEL GRUPO AD HOC DE LA OIE DE ENFERMEDADES DE LOS CAMÉLIDOS París, 3 5 de mayo de 2010

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Anexo IV

INFORME DE LA SEGUNDA REUNIÓN DEL GRUPO AD HOC DE LA OIE DE ENFERMEDADES DE LOS CAMÉLIDOS

París, 3–5 de mayo de 2010 _______

ENFERMEDADES INFECCIOSAS DE INTERÉS PARA LOS CAMÉLIDOS Lista actualizada en la segunda reunión del Grupo ad hoc de la OIE

de enfermedades de los camélidos (mayo de 2010) A) Enfermedades virales

Grupo I = Enfermedades significativas

Grupo II = Enfermedades para las cuales los camélidos pueden ser portadores Grupo III = Enfermedades de menor importancia

Dromedarios

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico Recomendaciones para la prevención Grupo I

Viruela del

camello Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.2, TEM, aislamiento del virus,

IHC y PCR

ELISA

VNT* kit ELISA, pero aún Se ha preparado un está pendiente de

validación.

Vacunación.

Ectima contagioso

TEM, IHC y PCR No hay Es necesario aislar el virus.

Investigar el desarrollo de vacunas.

Papilomatosis TEM, PCR e IHC No hay Vacunación autógena.

Rabia Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.13, FAT e IHC VNT* Investigar pruebas serológicas

Vacunación con dosis para vacuno. Con todo, es

preciso investigar el protocolo de vacunación. FVR Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.14, cultivo, AGID, PCR e histopatología c-ELISA VNT* 1. Será necesario validar ELISA en más muestras. 2. Investigar la susceptibilidad y la duración de la viremia. Investigar la vacunación. Grupo II Peste equina Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.5.1., aislamiento del virus, PCR,

ELISA y VN No hay 1. Investigar la susceptibilidad a las cepas y serotipos virulentos. 2. Investigar la duración de la viremia.

(2)

LA Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.3, aislamiento del virus, métodos

inmunológicos y PCR

c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las

cepas y serotipos virulentos, así como

la situación de los portadores.

1. Investigar la vacunación. 2. Aplicar las medidas comerciales empleadas

para los bovinos. DVB Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.4.8, aislamiento del virus, PCR,

IHC y ELISA

c-ELISA VNT*

1. Validar las pruebas serológicas en la leche. 2. Es necesario aislar el virus. 3. Investigar la susceptibilidad. PPR Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.7.11, aislamiento del virus,

AGID y PCR

No hay 1. Validar c-ELISA. 2. Investigar la susceptibilidad a las cepas virulentas. Grupo III Fiebre hemorrágica de Crimea-Congo

Aislamiento del virus**

y PCR No hay 1. Validar c-ELISA rumiantes. 2. Encuesta

serológica. Infecciones

por herpesvirus

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.9 (HE), Capítulo 2.4.13 (RBI), PCR,

aislamiento del virus e inmunofluorescencia

VNT*

1. Validar las pruebas serológicas. 2. Investigar la susceptibilidad a HE

4 y HB 1.

Investigar la vacunación con protocolo equino.

Fiebre del Nilo Occidental

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.20, PCR y

aislamiento del virus

c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las

dos cepas.

*deberá trabajarse en un laboratorio de nivel de bioseguridad 3 (BSL-3); ** deberá trabajarse en un laboratorio de nivel de bioseguridad 4 (BSL-4)

Camellos bactrianos

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico Recomendaciones para la prevención Grupo I

Viruela del

camello Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.2, TEM, aislamiento del virus,

IHC y PCR

ELISA

VNT* kit ELISA, pero aún Se ha preparado un está pendiente de validación. Vacunación. Es necesario investigar un protocolo. Ectima

contagioso TEM e IHC No hay Aislar el virus.

Investigar el desarrollo de vacunas. FA Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.5., PCR y aislamiento del virus

NSP

c-ELISA comprobación con 1. Doble NSP ELISA 2. Se necesita mayor investigación. Vacunación. Es necesario investigar un protocolo. Infecciones por influenza A

Aislamiento del virus,

PCR y ELISA HI Seguir investigando la susceptibilidad a los diferentes

serotipos.

Investigar la vacunación con protocolo equino.

(3)

Rabia Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.13, FAT e IHC VNT* Investigación de pruebas serológicas.

Vacunación con dosis para vacuno. Con todo, es preciso investigar el protocolo de

vacunación. Grupo II

DVB Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.8, aislamiento del virus, PCR, IHC y ELISA

VNT* 1. Validar las pruebas serológicas. 2. Investigar la susceptibilidad. Grupo III

LA Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.3, aislamiento del virus, métodos

inmunológicos y PCR

c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las

cepas y serotipos virulentos, así como

la situación de los portadores.

1. Investigar la vacunación. 2. Aplicar las medidas comerciales empleadas

para los bovinos. Fiebre

hemorrágica de

Crimea-Congo

Aislamiento del virus**

y PCR No hay 1. Validar c-ELISA rumiantes. 2. Encuesta

serológica. Infecciones

por herpesvirus

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.9 (HE), Capítulo 2.4.13 (RBI), PCR,

aislamiento del virus e inmunofluorescencia

VNT* 1. Validar las pruebas serológicas. 2. Investigar la susceptibilidad HE 1, HE 4 y HB 1 Investigar la vacunación con protocolo equino.

Camélidos del Nuevo Mundo

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

DVB Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.8, aislamiento del virus, PCR, IHC y ELISA

c-ELISA

VNT* Validar las pruebas serológicas. vacunación con Investigar la protocolo bovino. LA Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.3, aislamiento del virus, métodos

inmunológicos y PCR c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las cepas y serotipos virulentos. 1. Vacunación con protocolo ovino. 2. Aplicar las medidas comerciales empleadas

para los bovinos. Infecciones

por herpesvirus

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.9 (HE), Capítulo 2.4.13 (RBI), PCR,

aislamiento del virus e inmunofluorescencia VNT* 1. Validar las pruebas serológicas necesarias. 2. Investigar la susceptibilidad a HE 1 y HB 1. Investigar la vacunación.

(4)

Grupo II Ectima

contagioso TEM e IHC No hay Aislar el virus. Investigar el desarrollo de vacunas. Grupo III

Viruela del camello

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.2, TEM,

aislamiento del virus, IHC y PCR

ELISA VNT*

Se ha preparado un kit ELISA, pero aún

está pendiente de validación. Encefamolom.

equina Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.5., y Capítulo 2.5.14., PCR y

aislamiento del virus

No hay 1. Investigar la susceptibilidad.

2. Validar las pruebas serológicas

disponibles. Rabia Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.13, FAT e IHC VNT* Es necesario investigar el protocolo de vacunación. Fiebre del Nilo Occidental y otros flavivirus

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.20, PCR y

aislamiento del virus

c-ELISA

VNT* susceptibilidad. Investigar la

b) Enfermedades bacterianas Grupo I = Enfermedades significativas

Grupo II = Enfermedades para las cuales los camélidos pueden ser portadores Grupo III = Enfermedades de menor importancia

Dromedarios

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

Carbunco

bacteridiano Manual Terrestre de la OIE 2008 Capítulo 2.1.1., inmunofluorescencia, PCR,

cultivo e identificación de Bacillus anthracis

No hay No hay 1. Vacunación en

áreas endémicas. 2. Es necesario un ensayo de campo. Brucelosis

(B. melitensis) 2008, Capítulo 2.4.3., métodos Manual Terrestre de la OIE de tinción,

cultivo y PCR

CF, RBT,

SAT, c-ELISA Es necesario validar las pruebas CF, RBT, SAT y c-ELISA. 1. Vacunación. 2. Es necesario investigar los protocolos de vacunación. Clostridiosis Aislamiento y tipificación de

la bacteria, detección de toxinas Existen pruebas ELISA y PCR para tipificar la toxina (perfringens). Investigar PCR

(5)

Colibacilosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.11.,

cultivo, métodos inmunológicos y PCR

No hay 1. Identificar los biovares más

patógenos. 2. Preparar las pruebas serológicas necesarias.

Desarrollar vacunas.

Dermatofilosis (Dermatophilus

congolensis)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.10.,

cultivo, métodos inmunológicos y PCR

No hay Identificar las cepas

más patógenas. Desarrollar vacunas.

Septicemia hemorrágica (Pasteurella multocida o Mannheimia hemolytica)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.12., cultivo

y PCR

No hay Investigar los datos controvertidos sobre la susceptibilidad y la etiología. Es necesario investigar el protocolo de vacunación. Enfermedad

de Johne 2008, Capítulo 2.1.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR

No hay Validar las pruebas

serológicas. Eliminar los animales seropositivos tras validación de las pruebas. Enfermedades piogénicas (Caseous lymphadenitis) Aislamiento

y tipificación de la bacteria No hay Desarrollar pruebas serológicas para Corynebacterium pseudotuberculosis y Staphylococcus aureus

Desarrollar vacunas.

Salmonelosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.9., cultivo

y PCR

No hay 1. Identificar los biovares más prevalentes e investigar la susceptibilidad. 2. Desarrollar pruebas serológicas. Desarrollar vacunas. Grupo II Leptospirosis Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.9., PCR MAT 1. Identificar los biovares más prevalentes. 2. Investigar la susceptibilidad.

Desarrollar vacunas.

Fiebre Q Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.12.,

métodos de tinción, aislamiento del agente y PCR

CF 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Validar las pruebas

serológicas.

Desarrollar vacunas.

Tuberculosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.7., identificación directa,

cultivo y PCR

Prueba RT Investigar con prueba serológica. Seguir investigando la prueba

de piel.

Eliminar los animales positivos tras validación de las

pruebas. Grupo III

Clamidiosis Aislamiento

e identificación del agente c-ELISA Validar las pruebas serológicas. Muermo

(Melioidosis) 2008, Capítulo 2.5.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR

CF Validar las pruebas

serológicas. Eliminar los animales seropositivos. Yersiniosis Aislamiento de la bacteria No hay Preparar prueba

serológica.

Eliminar los animales infectados.

(6)

Camellos bactrianos

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

Carbunco

bacteridiano Manual Terrestre de la OIE 2008 Capítulo 2.1.1., inmunofluorescencia, PCR,

cultivo e identificación de Bacillus anthracis

No hay No hay 1. Vacunación en áreas endémicas. 2. Es necesario un ensayo de campo. Brucelosis (B. abortus y B. melitensis)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.3., métodos

de tinción, cultivo y PCR

CF, RBT,

SAT, c-ELISA Es necesario validar CF, RBT, SAT y c-ELISA para B. abortus

y B. melitensis. También es preciso validar las pruebas.

1. Vacunación en función de la especie (B. abortus o B. melitensis) 2. Es necesario investigar los protocolos de vacunación. Clostridiosis Aislamiento y tipificación de

la bacteria, detección de toxinas Existen pruebas ELISA y PCR para tipificar la toxina (perfringens). Investigar PCR

multiplex. Investigar la vacunación.

Colibacilosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.11., cultivo

y PCR

No hay 1. Investigar los biovares más

patógenos. 2. Preparar las pruebas serológicas necesarias.

Desarrollar vacunas.

Enfermedad

de Johne 2008, Capítulo 2.1.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR

No hay Validar las pruebas

serológicas. Eliminar los animales seropositivos tras validación de las

pruebas. Yersiniosis Aislamiento de la bacteria No hay Preparar prueba

serológica. animales infectados. 1. Eliminar los 2. Control de vectores. Enfermedades piogénicas (Caseous lymphadenitis) Aislamiento y tipificación de la bacteria

No hay Preparar prueba serológica para Corynebacterium pseudotuberculosis y Staphylococcus aureus

Desarrollar vacunas.

Salmonelosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.9., cultivo

y PCR

No hay 1. Identificar los biovares más prevalentes e investigar la susceptibilidad. 2. Desarrollar pruebas serológicas. Desarrollar vacunas.

Tuberculosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.7., identificación directa,

cultivo y PCR

Prueba RT 1. Investigar con prueba serológica. 2. Investigar la prueba

de piel.

Eliminar los animales positivos tras validación de las

(7)

Grupo II Leptospirosis Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.9., PCR MAT 1. Identificar los biovares más prevalentes. 2. Investigar la susceptibilidad.

Desarrollar vacunas.

Fiebre Q Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.12.,

métodos de tinción, aislar el agente y PCR

CF 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Validar las pruebas

serológicas.

Desarrollar vacunas.

Grupo III Muermo

(Melioidosis) Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.11 CF Validar las pruebas serológicas. Eliminar los animales seropositivos. Clamidiosis Aislamiento

e identificación del agente c-ELISA Validar las pruebas serológicas. Septicemia hemorrágica (Pasteurella multocida o Mannheimia hemolytica)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.12., cultivo

y PCR

No hay Investigar la susceptibilidad.

Camélidos del Nuevo Mundo

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

Carbunco bacteridiano

Manual Terrestre de la OIE 2008 Capítulo 2.1.1., inmunofluorescencia, PCR,

cultivo e identificación de Bacillus anthracis

No hay No hay 1. Vacunación en áreas endémicas. 2. Es necesario un ensayo de campo. Brucelosis

(B. melitensis)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.3., métodos de tinción, cultivo y PCR CF, RBT, SAT, c-ELISA Es necesario validar CF, RBT, SAT y c-ELISA. 1. Vacunación 2. Es necesario investigar los protocolos de vacunación. Colibacilosis Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.9.11., cultivo y PCR

No hay 1. Investigar los biovares más

patógenos. 2. Preparar las pruebas serológicas necesarias. Desarrollar vacunas. Enterotoxemia Aislamiento y tipificación de la bacteria Existen pruebas ELISA y PCR para tipificar la toxina. Investigar PCR multiplex. Es necesario investigar el protocolo de vacunación con las

vacunas toxoides disponibles. Leptospirosis Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.1.9., PCR

MAT Identificar los biovares más prevalentes e

investigar la susceptibilidad.

Desarrollar vacunas.

Salmonelosis Manual Terrestre de la OIE

(8)

Tuberculosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.7., identificación directa, cultivo y PCR Prueba RT La prueba de la tuberculina no funciona. Prepara pruebas serológicas.

Eliminar los animales positivos tras validación de las

pruebas. Grupo II

Enfermedad

de Johne 2008, Capítulo 2.1.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR

No hay Validar las pruebas

serológicas. Eliminar los animales seropositivos tras validación de las pruebas. Enfermedades piogénicas (abscesos internos) Aislamiento

y tipificación de la bacteria No hay Preparar prueba serológica para Corynebacterium y

Staphylococcus

Desarrollar vacunas.

Fiebre Q Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.12.,

métodos de tinción, aislamiento del agente y PCR

CF 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Validar las pruebas

serológicas.

Desarrollar vacunas.

Grupo III Actinobacilosis Aislamiento

e identificación del agente No hay Validar las pruebas serológicas. Pasteurelosis

(Septicemia hemorrágica)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.12., cultivo

y PCR

No hay Investigar la susceptibilidad.

c) Enfermedades parasitarias y fúngicas Grupo I = Enfermedades significativas

Grupo III = Enfermedades de menor importancia Dromedarios

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

Cefalopinosis Identificación directa

del agente No hay Identificar el parásito. Investigar nuevos tratamientos. Coccidiosis Identificación directa

del agente: Eimeria, Isospora y Cryptosporidium en jóvenes camellos No hay 1. Identificar el parásito. 2. Convendría desarrollar PCR. Investigar nuevos tratamientos y desarrollar vacunas. Parasitosis gastrointestinal Identificación directa del agente: Trichostrongylosis,

Haemonchus, Taenia, etc.

No hay Identificar el parásito. Investigar el protocolo de tratamiento y la

resistencia a los medicamentos. Hidatidosis

Equinococosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.4, identificación directa del agente, pruebas de detección de coproantígenos

y PCR

ELISA Puede usarse ELISA con conjugados

anticamélidos.

1. Tratamiento de los perros. 2. Desarrollar vacuna.

(9)

Sarna (Sarcoptes

scabiei)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.8, identificación directa

del agente

c-ELISA Identificar el parásito a fines de diagnóstico

diferencial de otras enfermedades cutáneas

(psoroptes, tiña, etc.).

1. Cuarentena y medicamento apropiado para el tratamiento. 2. Desarrollar vacuna. Tiña (Dermatofitosis) Identificación directa

del agente No hay Identificar el agente.

Vacunas disponibles (en principio, para

bovinos), pero es necesario investigar el

protocolo de vacunación. Infestación

de garrapatas Identificación directa del agente No hay Identificar el parásito. Desarrollar protocolos de tratamiento y vacuna. Tripanosomosis Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.4.8, PCR Indirect ELISA CATT e (no hay prueba

ELISA a la venta)

1. Puede usarse Indirect ELISA con

conjugados anticamélidos. 2. PCR 1. Control sistemático del comercio. 2. Tratamiento de los animales positivos. 3. Necesidad de investigar la resistencia a los medicamentos. Grupo III Miasis diferentes de cefalopinosis Identificación directa

del agente No hay Identificar el parásito. Avermectines Neosporosis Identificación directa

del agente ELISA 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Prueba serológica mediante ELISA. Convendría desarrollar PCR. Desarrollar vacuna.

Toxoplasmosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.10,

aislamiento, secciones de tejidos, PCR,

detección de oocitos

SAT

ELISA susceptibilidad. Investigar la

Camellos bactrianos

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

Cefalopinosis Identificación directa del agente

No hay Identificar el parásito. Investigar nuevos tratamientos Coccidiosis Identificación directa

del agente: Eimeria, Isospora y Cryptosporidium en jóvenes camellos No hay 1. Identificar el parásito. 2. Convendría desarrollar PCR. Investigar nuevos tratamientos y desarrollar vacunas. Parasitosis gastrointestinal Identificación directa del agente: Trichostrongylosis,

Haemonchus, Taenia, etc.

No hay Identificar el parásito. Investigar el protocolo de tratamiento y la

resistencia a los medicamentos.

(10)

Hidatidosis

Equinococosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.4, identificación directa del agente, pruebas de detección de coproantígenos

y PCR

ELISA Puede usarse ELISA con conjugados

anticamélidos

1. Tratar a los perros. 2. Desarrollar vacuna.

Sarna (Sarcoptes

scabiei)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.8, identificación directa

del agente

c-ELISA Identificar el parásito a fines de diagnóstico

diferencial de otras enfermedades cutáneas

(psoroptes, tiña, etc.).

1. Cuarentena y medicamento apropiado para tratamiento. 2. Desarrollar vacuna. Tiña

(Dermatofitosis) Identificación directa del agente No hay Identificar el agente. Vacunas disponibles (en principio, para bovinos), pero es necesario validar el

protocolo de vacunación. Infestación

de garrapatas Identificación directa del agente No hay Identificar el parásito. Desarrollar protocolos de tratamiento y vacuna. Tripanosomosis Manual Terrestre de la OIE

2008, Capítulo 2.4.8, PCR

CATT e Indirect ELISA (no hay prueba

ELISA a la venta)

1. Puede usarse Indirect ELISA con

conjugados anticamélidos. 2. PCR 1. Control sistemático del comercio. 2. Tratamiento de los animales positivos. 3. Necesidad de investigar la resistencia a los medicamentos. Grupo III Miasis diferentes de cefalopinosis Identificación directa

del agente No hay Identificar el parásito. Avermectines

Neosporosis ELISA Prueba serológica

mediante ELISA. Convendría desarrollar

PCR.

Investigar la susceptibilidad.

Toxoplasmosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.10, aislamiento, secciones de tejidos, PCR, detección de oocitos SAT ELISA Investigar la susceptibilidad.

Camélidos del Nuevo Mundo

Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I

Coccidiosis Identificación directa del agente: Eimeria, Isospora

y Cryptosporidium en animales jóvenes No hay 1. Identificar el parásito. 2. Convendría desarrollar PCR. Investigar nuevos tratamientos y desarrollar vacunas. Hidatidosis

Equinococosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.4, identificación directa del agente, pruebas de

ELISA Puede usarse ELISA con conjugados

específicos.

Tratar a los perros. Desarrollar vacuna.

(11)

Sarna (Sarcoptes

scabiei)

Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.8,

página 1255: identificación directa

del agente

c-ELISA Identificar el parásito a fines de diagnóstico

diferencial de otras enfermedades cutáneas

(psoroptes, tiña, etc.).

Cuarentena y medicamento apropiado para el tratamiento. Desarrollar vacuna. Neosporosis PCR

IF ELISA susceptibilidad. Investigar la Evaluar la vacuna disponible. Sarcocistosis Identificación del agente ELISA Validar ELISA. Desarrollar vacuna. Trematodosis Identificación directa

del agente

ELISA sólo para Fasciola hepatica Identificar los tremátodos grandes y pequeños en prueba post mortem. Es necesario validar los protocolos de tratamiento. Grupo III Coccidioidomi

cosis del agente (post mortem) Identificación directa CF y AGID Tratamientos disponibles. Tiña

(Dermatofitosis)

Identificación directa del agente

No hay Identificar el agente. Vacunas disponibles (en principio, para

bovinos), pero es necesario validar el

protocolo de vacunación.

Lista de acrónimos y abreviaturas:

AGID Agar-gel immunodiffusion– inmunodifusión en gel de agar

CATT: Card-agglutination trypanosoma test - prueba de aglutinación en placa

c-ELISA: Competitive enzyme-like immunoabsorbent assay - enzimoinmunoensayo competitivo CF: Complement fixation – fijación del complemento

CIRAD: Centre de Coopération Internationale pour la Recherche Agronomique en Développement CVRL: Central Veterinary Research Laboratory (Dubai, EAU)

DVB: Diarrea vírica bovina

FA: Fiebre aftosa

FAT Fluorescent antibody test – prueba de anticuerpo fluorescente FVR: Fiebre del valle del Rift

HB: Herpesvirus bovino

HE: Herpesvirus equino

HI: Heamaglutination inhibition – inhibición de la hemaglutinación IHC: Immunohistochemistry – inmunohistoquímica

IF: Immunofluorescence - prueba de inmunofluorescencia

LA: Lengua azul

MAT: Microscopic agglutination test – prueba de aglutinación microscópica

NSP ELISA: Nonstructural protein enzyme-linked immunosorbent assay – enzimoinmunoensayo con proteína no estructural

OIE: Organización Mundial de Sanidad Animal

Manual Terrestre de la OIE: Manual de las Pruebas de Diagnóstico y las Vacunas para los Animales Terrestres de la OIE

PCR: Polymerase chain reaction – reacción en cadena de la polimerasa PPR: Peste de los pequeños rumiantes

RBI: Rinotraqueitis bovina infecciosa

RBT: Rose-Bengal test – prueba de rosa de Bengala

RT: Rapid test – prueba rápida

SAT: Sero-agglutination test – prueba de aglutinación sérica

TEM: Transmission electron microscopy – microscopía electrónica de transmisión VNT: Virus neutralisation test – prueba de neutralización viral

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