Anexo IV
INFORME DE LA SEGUNDA REUNIÓN DEL GRUPO AD HOC DE LA OIE DE ENFERMEDADES DE LOS CAMÉLIDOS
París, 3–5 de mayo de 2010 _______
ENFERMEDADES INFECCIOSAS DE INTERÉS PARA LOS CAMÉLIDOS Lista actualizada en la segunda reunión del Grupo ad hoc de la OIE
de enfermedades de los camélidos (mayo de 2010) A) Enfermedades virales
Grupo I = Enfermedades significativas
Grupo II = Enfermedades para las cuales los camélidos pueden ser portadores Grupo III = Enfermedades de menor importancia
Dromedarios
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico Recomendaciones para la prevención Grupo I
Viruela del
camello Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.2, TEM, aislamiento del virus,
IHC y PCR
ELISA
VNT* kit ELISA, pero aún Se ha preparado un está pendiente de
validación.
Vacunación.
Ectima contagioso
TEM, IHC y PCR No hay Es necesario aislar el virus.
Investigar el desarrollo de vacunas.
Papilomatosis TEM, PCR e IHC No hay Vacunación autógena.
Rabia Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.13, FAT e IHC VNT* Investigar pruebas serológicas
Vacunación con dosis para vacuno. Con todo, es
preciso investigar el protocolo de vacunación. FVR Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.14, cultivo, AGID, PCR e histopatología c-ELISA VNT* 1. Será necesario validar ELISA en más muestras. 2. Investigar la susceptibilidad y la duración de la viremia. Investigar la vacunación. Grupo II Peste equina Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.5.1., aislamiento del virus, PCR,
ELISA y VN No hay 1. Investigar la susceptibilidad a las cepas y serotipos virulentos. 2. Investigar la duración de la viremia.
LA Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.3, aislamiento del virus, métodos
inmunológicos y PCR
c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las
cepas y serotipos virulentos, así como
la situación de los portadores.
1. Investigar la vacunación. 2. Aplicar las medidas comerciales empleadas
para los bovinos. DVB Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.4.8, aislamiento del virus, PCR,
IHC y ELISA
c-ELISA VNT*
1. Validar las pruebas serológicas en la leche. 2. Es necesario aislar el virus. 3. Investigar la susceptibilidad. PPR Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.7.11, aislamiento del virus,
AGID y PCR
No hay 1. Validar c-ELISA. 2. Investigar la susceptibilidad a las cepas virulentas. Grupo III Fiebre hemorrágica de Crimea-Congo
Aislamiento del virus**
y PCR No hay 1. Validar c-ELISA rumiantes. 2. Encuesta
serológica. Infecciones
por herpesvirus
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.9 (HE), Capítulo 2.4.13 (RBI), PCR,
aislamiento del virus e inmunofluorescencia
VNT*
1. Validar las pruebas serológicas. 2. Investigar la susceptibilidad a HE
4 y HB 1.
Investigar la vacunación con protocolo equino.
Fiebre del Nilo Occidental
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.20, PCR y
aislamiento del virus
c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las
dos cepas.
*deberá trabajarse en un laboratorio de nivel de bioseguridad 3 (BSL-3); ** deberá trabajarse en un laboratorio de nivel de bioseguridad 4 (BSL-4)
Camellos bactrianos
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico Recomendaciones para la prevención Grupo I
Viruela del
camello Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.2, TEM, aislamiento del virus,
IHC y PCR
ELISA
VNT* kit ELISA, pero aún Se ha preparado un está pendiente de validación. Vacunación. Es necesario investigar un protocolo. Ectima
contagioso TEM e IHC No hay Aislar el virus.
Investigar el desarrollo de vacunas. FA Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.5., PCR y aislamiento del virus
NSP
c-ELISA comprobación con 1. Doble NSP ELISA 2. Se necesita mayor investigación. Vacunación. Es necesario investigar un protocolo. Infecciones por influenza A
Aislamiento del virus,
PCR y ELISA HI Seguir investigando la susceptibilidad a los diferentes
serotipos.
Investigar la vacunación con protocolo equino.
Rabia Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.13, FAT e IHC VNT* Investigación de pruebas serológicas.
Vacunación con dosis para vacuno. Con todo, es preciso investigar el protocolo de
vacunación. Grupo II
DVB Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.8, aislamiento del virus, PCR, IHC y ELISA
VNT* 1. Validar las pruebas serológicas. 2. Investigar la susceptibilidad. Grupo III
LA Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.3, aislamiento del virus, métodos
inmunológicos y PCR
c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las
cepas y serotipos virulentos, así como
la situación de los portadores.
1. Investigar la vacunación. 2. Aplicar las medidas comerciales empleadas
para los bovinos. Fiebre
hemorrágica de
Crimea-Congo
Aislamiento del virus**
y PCR No hay 1. Validar c-ELISA rumiantes. 2. Encuesta
serológica. Infecciones
por herpesvirus
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.9 (HE), Capítulo 2.4.13 (RBI), PCR,
aislamiento del virus e inmunofluorescencia
VNT* 1. Validar las pruebas serológicas. 2. Investigar la susceptibilidad HE 1, HE 4 y HB 1 Investigar la vacunación con protocolo equino.
Camélidos del Nuevo Mundo
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
DVB Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.8, aislamiento del virus, PCR, IHC y ELISA
c-ELISA
VNT* Validar las pruebas serológicas. vacunación con Investigar la protocolo bovino. LA Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.3, aislamiento del virus, métodos
inmunológicos y PCR c-ELISA Investigar la susceptibilidad a las cepas y serotipos virulentos. 1. Vacunación con protocolo ovino. 2. Aplicar las medidas comerciales empleadas
para los bovinos. Infecciones
por herpesvirus
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.9 (HE), Capítulo 2.4.13 (RBI), PCR,
aislamiento del virus e inmunofluorescencia VNT* 1. Validar las pruebas serológicas necesarias. 2. Investigar la susceptibilidad a HE 1 y HB 1. Investigar la vacunación.
Grupo II Ectima
contagioso TEM e IHC No hay Aislar el virus. Investigar el desarrollo de vacunas. Grupo III
Viruela del camello
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.2, TEM,
aislamiento del virus, IHC y PCR
ELISA VNT*
Se ha preparado un kit ELISA, pero aún
está pendiente de validación. Encefamolom.
equina Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.5., y Capítulo 2.5.14., PCR y
aislamiento del virus
No hay 1. Investigar la susceptibilidad.
2. Validar las pruebas serológicas
disponibles. Rabia Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.13, FAT e IHC VNT* Es necesario investigar el protocolo de vacunación. Fiebre del Nilo Occidental y otros flavivirus
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.20, PCR y
aislamiento del virus
c-ELISA
VNT* susceptibilidad. Investigar la
b) Enfermedades bacterianas Grupo I = Enfermedades significativas
Grupo II = Enfermedades para las cuales los camélidos pueden ser portadores Grupo III = Enfermedades de menor importancia
Dromedarios
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
Carbunco
bacteridiano Manual Terrestre de la OIE 2008 Capítulo 2.1.1., inmunofluorescencia, PCR,
cultivo e identificación de Bacillus anthracis
No hay No hay 1. Vacunación en
áreas endémicas. 2. Es necesario un ensayo de campo. Brucelosis
(B. melitensis) 2008, Capítulo 2.4.3., métodos Manual Terrestre de la OIE de tinción,
cultivo y PCR
CF, RBT,
SAT, c-ELISA Es necesario validar las pruebas CF, RBT, SAT y c-ELISA. 1. Vacunación. 2. Es necesario investigar los protocolos de vacunación. Clostridiosis Aislamiento y tipificación de
la bacteria, detección de toxinas Existen pruebas ELISA y PCR para tipificar la toxina (perfringens). Investigar PCR
Colibacilosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.11.,
cultivo, métodos inmunológicos y PCR
No hay 1. Identificar los biovares más
patógenos. 2. Preparar las pruebas serológicas necesarias.
Desarrollar vacunas.
Dermatofilosis (Dermatophilus
congolensis)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.10.,
cultivo, métodos inmunológicos y PCR
No hay Identificar las cepas
más patógenas. Desarrollar vacunas.
Septicemia hemorrágica (Pasteurella multocida o Mannheimia hemolytica)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.12., cultivo
y PCR
No hay Investigar los datos controvertidos sobre la susceptibilidad y la etiología. Es necesario investigar el protocolo de vacunación. Enfermedad
de Johne 2008, Capítulo 2.1.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR
No hay Validar las pruebas
serológicas. Eliminar los animales seropositivos tras validación de las pruebas. Enfermedades piogénicas (Caseous lymphadenitis) Aislamiento
y tipificación de la bacteria No hay Desarrollar pruebas serológicas para Corynebacterium pseudotuberculosis y Staphylococcus aureus
Desarrollar vacunas.
Salmonelosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.9., cultivo
y PCR
No hay 1. Identificar los biovares más prevalentes e investigar la susceptibilidad. 2. Desarrollar pruebas serológicas. Desarrollar vacunas. Grupo II Leptospirosis Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.9., PCR MAT 1. Identificar los biovares más prevalentes. 2. Investigar la susceptibilidad.
Desarrollar vacunas.
Fiebre Q Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.12.,
métodos de tinción, aislamiento del agente y PCR
CF 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Validar las pruebas
serológicas.
Desarrollar vacunas.
Tuberculosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.7., identificación directa,
cultivo y PCR
Prueba RT Investigar con prueba serológica. Seguir investigando la prueba
de piel.
Eliminar los animales positivos tras validación de las
pruebas. Grupo III
Clamidiosis Aislamiento
e identificación del agente c-ELISA Validar las pruebas serológicas. Muermo
(Melioidosis) 2008, Capítulo 2.5.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR
CF Validar las pruebas
serológicas. Eliminar los animales seropositivos. Yersiniosis Aislamiento de la bacteria No hay Preparar prueba
serológica.
Eliminar los animales infectados.
Camellos bactrianos
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
Carbunco
bacteridiano Manual Terrestre de la OIE 2008 Capítulo 2.1.1., inmunofluorescencia, PCR,
cultivo e identificación de Bacillus anthracis
No hay No hay 1. Vacunación en áreas endémicas. 2. Es necesario un ensayo de campo. Brucelosis (B. abortus y B. melitensis)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.3., métodos
de tinción, cultivo y PCR
CF, RBT,
SAT, c-ELISA Es necesario validar CF, RBT, SAT y c-ELISA para B. abortus
y B. melitensis. También es preciso validar las pruebas.
1. Vacunación en función de la especie (B. abortus o B. melitensis) 2. Es necesario investigar los protocolos de vacunación. Clostridiosis Aislamiento y tipificación de
la bacteria, detección de toxinas Existen pruebas ELISA y PCR para tipificar la toxina (perfringens). Investigar PCR
multiplex. Investigar la vacunación.
Colibacilosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.11., cultivo
y PCR
No hay 1. Investigar los biovares más
patógenos. 2. Preparar las pruebas serológicas necesarias.
Desarrollar vacunas.
Enfermedad
de Johne 2008, Capítulo 2.1.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR
No hay Validar las pruebas
serológicas. Eliminar los animales seropositivos tras validación de las
pruebas. Yersiniosis Aislamiento de la bacteria No hay Preparar prueba
serológica. animales infectados. 1. Eliminar los 2. Control de vectores. Enfermedades piogénicas (Caseous lymphadenitis) Aislamiento y tipificación de la bacteria
No hay Preparar prueba serológica para Corynebacterium pseudotuberculosis y Staphylococcus aureus
Desarrollar vacunas.
Salmonelosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.9., cultivo
y PCR
No hay 1. Identificar los biovares más prevalentes e investigar la susceptibilidad. 2. Desarrollar pruebas serológicas. Desarrollar vacunas.
Tuberculosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.7., identificación directa,
cultivo y PCR
Prueba RT 1. Investigar con prueba serológica. 2. Investigar la prueba
de piel.
Eliminar los animales positivos tras validación de las
Grupo II Leptospirosis Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.9., PCR MAT 1. Identificar los biovares más prevalentes. 2. Investigar la susceptibilidad.
Desarrollar vacunas.
Fiebre Q Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.12.,
métodos de tinción, aislar el agente y PCR
CF 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Validar las pruebas
serológicas.
Desarrollar vacunas.
Grupo III Muermo
(Melioidosis) Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.5.11 CF Validar las pruebas serológicas. Eliminar los animales seropositivos. Clamidiosis Aislamiento
e identificación del agente c-ELISA Validar las pruebas serológicas. Septicemia hemorrágica (Pasteurella multocida o Mannheimia hemolytica)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.12., cultivo
y PCR
No hay Investigar la susceptibilidad.
Camélidos del Nuevo Mundo
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
Carbunco bacteridiano
Manual Terrestre de la OIE 2008 Capítulo 2.1.1., inmunofluorescencia, PCR,
cultivo e identificación de Bacillus anthracis
No hay No hay 1. Vacunación en áreas endémicas. 2. Es necesario un ensayo de campo. Brucelosis
(B. melitensis)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.3., métodos de tinción, cultivo y PCR CF, RBT, SAT, c-ELISA Es necesario validar CF, RBT, SAT y c-ELISA. 1. Vacunación 2. Es necesario investigar los protocolos de vacunación. Colibacilosis Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.9.11., cultivo y PCR
No hay 1. Investigar los biovares más
patógenos. 2. Preparar las pruebas serológicas necesarias. Desarrollar vacunas. Enterotoxemia Aislamiento y tipificación de la bacteria Existen pruebas ELISA y PCR para tipificar la toxina. Investigar PCR multiplex. Es necesario investigar el protocolo de vacunación con las
vacunas toxoides disponibles. Leptospirosis Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.1.9., PCR
MAT Identificar los biovares más prevalentes e
investigar la susceptibilidad.
Desarrollar vacunas.
Salmonelosis Manual Terrestre de la OIE
Tuberculosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.7., identificación directa, cultivo y PCR Prueba RT La prueba de la tuberculina no funciona. Prepara pruebas serológicas.
Eliminar los animales positivos tras validación de las
pruebas. Grupo II
Enfermedad
de Johne 2008, Capítulo 2.1.11., cultivo Manual Terrestre de la OIE y PCR
No hay Validar las pruebas
serológicas. Eliminar los animales seropositivos tras validación de las pruebas. Enfermedades piogénicas (abscesos internos) Aislamiento
y tipificación de la bacteria No hay Preparar prueba serológica para Corynebacterium y
Staphylococcus
Desarrollar vacunas.
Fiebre Q Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.12.,
métodos de tinción, aislamiento del agente y PCR
CF 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Validar las pruebas
serológicas.
Desarrollar vacunas.
Grupo III Actinobacilosis Aislamiento
e identificación del agente No hay Validar las pruebas serológicas. Pasteurelosis
(Septicemia hemorrágica)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.4.12., cultivo
y PCR
No hay Investigar la susceptibilidad.
c) Enfermedades parasitarias y fúngicas Grupo I = Enfermedades significativas
Grupo III = Enfermedades de menor importancia Dromedarios
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
Cefalopinosis Identificación directa
del agente No hay Identificar el parásito. Investigar nuevos tratamientos. Coccidiosis Identificación directa
del agente: Eimeria, Isospora y Cryptosporidium en jóvenes camellos No hay 1. Identificar el parásito. 2. Convendría desarrollar PCR. Investigar nuevos tratamientos y desarrollar vacunas. Parasitosis gastrointestinal Identificación directa del agente: Trichostrongylosis,
Haemonchus, Taenia, etc.
No hay Identificar el parásito. Investigar el protocolo de tratamiento y la
resistencia a los medicamentos. Hidatidosis
Equinococosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.4, identificación directa del agente, pruebas de detección de coproantígenos
y PCR
ELISA Puede usarse ELISA con conjugados
anticamélidos.
1. Tratamiento de los perros. 2. Desarrollar vacuna.
Sarna (Sarcoptes
scabiei)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.8, identificación directa
del agente
c-ELISA Identificar el parásito a fines de diagnóstico
diferencial de otras enfermedades cutáneas
(psoroptes, tiña, etc.).
1. Cuarentena y medicamento apropiado para el tratamiento. 2. Desarrollar vacuna. Tiña (Dermatofitosis) Identificación directa
del agente No hay Identificar el agente.
Vacunas disponibles (en principio, para
bovinos), pero es necesario investigar el
protocolo de vacunación. Infestación
de garrapatas Identificación directa del agente No hay Identificar el parásito. Desarrollar protocolos de tratamiento y vacuna. Tripanosomosis Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.4.8, PCR Indirect ELISA CATT e (no hay prueba
ELISA a la venta)
1. Puede usarse Indirect ELISA con
conjugados anticamélidos. 2. PCR 1. Control sistemático del comercio. 2. Tratamiento de los animales positivos. 3. Necesidad de investigar la resistencia a los medicamentos. Grupo III Miasis diferentes de cefalopinosis Identificación directa
del agente No hay Identificar el parásito. Avermectines Neosporosis Identificación directa
del agente ELISA 1. Investigar la susceptibilidad. 2. Prueba serológica mediante ELISA. Convendría desarrollar PCR. Desarrollar vacuna.
Toxoplasmosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.10,
aislamiento, secciones de tejidos, PCR,
detección de oocitos
SAT
ELISA susceptibilidad. Investigar la
Camellos bactrianos
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
Cefalopinosis Identificación directa del agente
No hay Identificar el parásito. Investigar nuevos tratamientos Coccidiosis Identificación directa
del agente: Eimeria, Isospora y Cryptosporidium en jóvenes camellos No hay 1. Identificar el parásito. 2. Convendría desarrollar PCR. Investigar nuevos tratamientos y desarrollar vacunas. Parasitosis gastrointestinal Identificación directa del agente: Trichostrongylosis,
Haemonchus, Taenia, etc.
No hay Identificar el parásito. Investigar el protocolo de tratamiento y la
resistencia a los medicamentos.
Hidatidosis
Equinococosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.4, identificación directa del agente, pruebas de detección de coproantígenos
y PCR
ELISA Puede usarse ELISA con conjugados
anticamélidos
1. Tratar a los perros. 2. Desarrollar vacuna.
Sarna (Sarcoptes
scabiei)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.8, identificación directa
del agente
c-ELISA Identificar el parásito a fines de diagnóstico
diferencial de otras enfermedades cutáneas
(psoroptes, tiña, etc.).
1. Cuarentena y medicamento apropiado para tratamiento. 2. Desarrollar vacuna. Tiña
(Dermatofitosis) Identificación directa del agente No hay Identificar el agente. Vacunas disponibles (en principio, para bovinos), pero es necesario validar el
protocolo de vacunación. Infestación
de garrapatas Identificación directa del agente No hay Identificar el parásito. Desarrollar protocolos de tratamiento y vacuna. Tripanosomosis Manual Terrestre de la OIE
2008, Capítulo 2.4.8, PCR
CATT e Indirect ELISA (no hay prueba
ELISA a la venta)
1. Puede usarse Indirect ELISA con
conjugados anticamélidos. 2. PCR 1. Control sistemático del comercio. 2. Tratamiento de los animales positivos. 3. Necesidad de investigar la resistencia a los medicamentos. Grupo III Miasis diferentes de cefalopinosis Identificación directa
del agente No hay Identificar el parásito. Avermectines
Neosporosis ELISA Prueba serológica
mediante ELISA. Convendría desarrollar
PCR.
Investigar la susceptibilidad.
Toxoplasmosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.10, aislamiento, secciones de tejidos, PCR, detección de oocitos SAT ELISA Investigar la susceptibilidad.
Camélidos del Nuevo Mundo
Enfermedad Identificación del agente serológicas Pruebas Recomendaciones de diagnóstico para la prevención Recomendaciones Grupo I
Coccidiosis Identificación directa del agente: Eimeria, Isospora
y Cryptosporidium en animales jóvenes No hay 1. Identificar el parásito. 2. Convendría desarrollar PCR. Investigar nuevos tratamientos y desarrollar vacunas. Hidatidosis
Equinococosis Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.1.4, identificación directa del agente, pruebas de
ELISA Puede usarse ELISA con conjugados
específicos.
Tratar a los perros. Desarrollar vacuna.
Sarna (Sarcoptes
scabiei)
Manual Terrestre de la OIE 2008, Capítulo 2.9.8,
página 1255: identificación directa
del agente
c-ELISA Identificar el parásito a fines de diagnóstico
diferencial de otras enfermedades cutáneas
(psoroptes, tiña, etc.).
Cuarentena y medicamento apropiado para el tratamiento. Desarrollar vacuna. Neosporosis PCR
IF ELISA susceptibilidad. Investigar la Evaluar la vacuna disponible. Sarcocistosis Identificación del agente ELISA Validar ELISA. Desarrollar vacuna. Trematodosis Identificación directa
del agente
ELISA sólo para Fasciola hepatica Identificar los tremátodos grandes y pequeños en prueba post mortem. Es necesario validar los protocolos de tratamiento. Grupo III Coccidioidomi
cosis del agente (post mortem) Identificación directa CF y AGID Tratamientos disponibles. Tiña
(Dermatofitosis)
Identificación directa del agente
No hay Identificar el agente. Vacunas disponibles (en principio, para
bovinos), pero es necesario validar el
protocolo de vacunación.
Lista de acrónimos y abreviaturas:
AGID Agar-gel immunodiffusion– inmunodifusión en gel de agar
CATT: Card-agglutination trypanosoma test - prueba de aglutinación en placa
c-ELISA: Competitive enzyme-like immunoabsorbent assay - enzimoinmunoensayo competitivo CF: Complement fixation – fijación del complemento
CIRAD: Centre de Coopération Internationale pour la Recherche Agronomique en Développement CVRL: Central Veterinary Research Laboratory (Dubai, EAU)
DVB: Diarrea vírica bovina
FA: Fiebre aftosa
FAT Fluorescent antibody test – prueba de anticuerpo fluorescente FVR: Fiebre del valle del Rift
HB: Herpesvirus bovino
HE: Herpesvirus equino
HI: Heamaglutination inhibition – inhibición de la hemaglutinación IHC: Immunohistochemistry – inmunohistoquímica
IF: Immunofluorescence - prueba de inmunofluorescencia
LA: Lengua azul
MAT: Microscopic agglutination test – prueba de aglutinación microscópica
NSP ELISA: Nonstructural protein enzyme-linked immunosorbent assay – enzimoinmunoensayo con proteína no estructural
OIE: Organización Mundial de Sanidad Animal
Manual Terrestre de la OIE: Manual de las Pruebas de Diagnóstico y las Vacunas para los Animales Terrestres de la OIE
PCR: Polymerase chain reaction – reacción en cadena de la polimerasa PPR: Peste de los pequeños rumiantes
RBI: Rinotraqueitis bovina infecciosa
RBT: Rose-Bengal test – prueba de rosa de Bengala
RT: Rapid test – prueba rápida
SAT: Sero-agglutination test – prueba de aglutinación sérica
TEM: Transmission electron microscopy – microscopía electrónica de transmisión VNT: Virus neutralisation test – prueba de neutralización viral