PRACTICA N° 03 y 04
PRACTICA N° 03 y 04
PREPARACION DE MEDIOS DE CULTIVOS, CONTEO DE BACTERIAS
PREPARACION DE MEDIOS DE CULTIVOS, CONTEO DE BACTERIAS
VIABLES Y TINCION GRAM
VIABLES Y TINCION GRAM
II..
O
OB
BJJE
ET
TIIV
VO
OSS
I.1. Obje!"# $e%e&'(
I.1. Obje!"# $e%e&'(
•
• PrepPreparacaración de ión de medmedios de ios de culcultivtivo o a a partpartir deir de Mac Conkey Agar y aMac Conkey Agar y a
partir de leche de tigre “ceviche”. partir de leche de tigre “ceviche”.
I.). Obje!"#* e*+e-!#*
I.). Obje!"#* e*+e-!#*
•
• ReaRealizalizar r el el conconteo de teo de bacbacteriterias as viaviablebles s en en una muestuna muestra ra comcomo o unun
mtodo para evaluar el crecimiento microbiano. mtodo para evaluar el crecimiento microbiano.
•
• CoCononocer cer el el !u!undndamamenento to de de cocololoracracióión n de de lalas s babactecteriarias s papara ra ser ser
observadas a travs del microscopio. observadas a travs del microscopio.
IIII..
M
MA
AR
RC
CO
O T
TE
EO
OR
RIIC
CO
O
II
II.1
.1. .
Me
Me/!
/!#*
#* /e
/e C
C(
(!"
!"#*
#*
"n"no o de de lolos s sisiststememas as m#m#s s imimpoportrtanantetes s papara ra la la ididenentiti!i!icacacición ón dede microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias arti!iciales preparadas en el laboratorio. $l material alimenticio en el %ue arti!iciales preparadas en el laboratorio. $l material alimenticio en el %ue crecen los microorg
crecen los microorganismoanismos es s es elel
Me/!#
Me/!# /e C(!"#
/e C(!"#
y el y el crecimicrecimiento deento de lolos s mimicrcroooorgrgananisismomos s es es elel
C(!"#
C(!"#
. . PaPara ra %u%ue e lalas s babactecteririas as crecrezcazcann adecuadamente en un medio de cultivo arti!icial& ste debe reunir una adecuadamente en un medio de cultivo arti!icial& ste debe reunir una seriserie e de de concondicdicioniones es taletales s comcomo' o' temtemperperaturatura& a& gragrado do de de huhumedmedad ad yy presión
presión de de o()geno o()geno adecuado& adecuado& as) as) como como un un grado grado correcto correcto de de acidez acidez oo alcalinidad. "n medio de cultivo debe contener los nutrientes y !actores alcalinidad. "n medio de cultivo debe contener los nutrientes y !actores de crecimiento necesarios y debe estar e(ento de todo microorganismo de crecimiento necesarios y debe estar e(ento de todo microorganismo contaminante.
contaminante.
Me&2, )00)
Me&2, )00)
II.1
II.1.1.
.1. C('*!
C('*!!'
!'!% De Me
!% De Me/!#* De C
/!#* De C(!"
(!"#5
#5
Página 1 Página 1
*eg+n su estado !)sico'
L-6!/#*5
"sualmente se denominan caldos ya %ue contienen los nutrientes disueltos en agua. Permiten obtener suspensiones con un elevado n+mero de microorganismos. $,. Caldo nutritivo.
S(!/#*5
*e pueden preparar a partir de medios l)%uidos a los cuales se les a-aden agentes solidi!icantes como agar& gelatina o s)lica gel. *e utilizan con !recuencia en el aislamiento y mantenimiento de los microorganismos en el laboratorio. $,. Agar nutritivo.
C('"e((, L., 177).
II.).
C#%e# B'e&!'%#
$l crecimiento de una población bacteriana puede ser entendido desde di!erentes perspectivas y de acuerdo a stas se puede llegar a determinar la medida del crecimiento mediante diversas metodolog)as.
$l conteo bacteriano se-ala la magnitud de la población total bacteriana. $n ese sentido se puede determinar por diversas tcnicas %ue se basan en algunos de los siguientes tipos de medida' cuenta celular directamente al microscopio o mediante un contador electrónico de part)culas o indirectamente con la cuenta de colonias/& masa celular en !orma directa pesando el contenido celular del nitrógeno o indirectamente por
turbidimetr)a& proporcional al n+mero de clulas/ y actividad celular indirectamente relacionando el grado de actividad bio%u)mica al tama-o de la población bacteriana/.
O&e$', Y8 9e"e/# :, 1771.
II.).1. C#%e# E% P(''* Pe&!
$s el mtodo m#s usado para el conteo de bacterias. 0as muestras del cultivo de bacterias son distribuidas en Placas Petri %ue son contenedoras de agar alimento de las bacterias/. $s de suponerse %ue cada clula se dividir# en sus m+ltiples alrededores para producir colonias separadas en el agar. Cada clula es llamada unidad !ormadora de colonias "1C/. 2espus de la incubación& el n+mero de colonias se re!le,ar# en el n+mero de clulas "1C originalmente presentes. $s importante considerar un n+mero limitado de colonias pues de no ser as)& stas pueden sobre poblarse y di!icultar el conteo de las mismas. $l conteo se !acilita utilizando un contador de colonias. $ste mtodo es deseable por%ue arro,a el total de clulas viables sólo clulas vivas/3 en contraste con el conteo microscópico y el conteo de peso seco. "na desventa,a radica en el tiempo %ue re%uiere para producir las colonias& ya %ue se necesitan como m)nimo veinticuatro horas o m#s. Por otra parte& no es cien por ciento !iable por%ue generalmente las colonias crecen unidas en cadenas o en
grupos.
D!# y BBL, )003.
II.3.
T!%!% /e G&';
*eg+n
Pe/&# :. M'e#* )##<.
$s la tcnica de tinción di!erencial m#s importante %ue se utiliza en bacterias. $l primero en describirla !ue el dans Christian 4ram. Consiste b#sicamente en a-adir lo siguiente' Cristal violeta colorante azul/
0ugol mordiente& sustancia no colorante %ue re!uerza la acción de un colorante/
$tanol 567 decolorante %ue remueve el colorante de ciertas bacterias/
*a!ranina colorante de contraste& ro,o/
$sta tinción distingue entre dos amplios grupos de bacterias seg+n la composición de la pared celular3 las 4ram 8/ %ue no retienen el comple,o cristal violeta8lugol despus de la decoloración con alcohol y aparecen te-idas de ro,o& y las 4ram 9/ %ue s) lo retienen y aparecen te-idas de azul oscuro.
II.4.
T!+#* /e ;e/!#* /e (!"#*
*eg+n se mencionó& los medios de cultivo en distintas !unciones y& con base en ellas es posible clasi!icarlos en'
II.4.1. Me/!#* *e(e!"#*
Cuando de una mezcla bacteriana interesa aislar espec)!icamente un solo tipo de bacteria %ue est# en escasa cantidad& es recomendable utilizar medios selectivos.
2ichos medios permiten el crecimiento de esa bacteria& inhibiendo al resto de las e(istentes en la muestra. Cada producto inhibe a un grupo de bacterias sin a!ectar a otras. Prats& :;;</
II.4.). Me/!#* /!e&e%!'(e*
Permiten distinguir con mayor !acilidad las colonias del microorganismo deseado de otras colonias %ue crecen en la misma placa. 2e manera similar& los cultivos puros de microorganismos
tienen reacciones identi!icables con los medios di!erenciales& sea en tubos o en placas. =ortora et al.& :;;>/.
II.4.3. Me/!#* *e(e!"#=/!e&e%!'(e*
$n los medios selectivos siempre crecen algunas bacterias di!erentes a la buscada& por ello& para di!erenciar las distintas colonias& se a-ade a los medios selectivos sustancias %ue con!ieren un color di!erente a las colonias seg+n la distinta actividad metabólica de las bacterias %ue las !orman& convirtindolos en medios selectivo8di!erenciales. Para ese propósito se utilizan az+cares como el manitol& la lactosa& el sorbitol y otros& ,unto con un indicador de p? ro,o neutro& azul de bromotimol& etc./. Prats& :;;</
II.4.4. I%b'!%
Cada tipo de bacteria re%uiere para su multiplicación una temperatura y atmós!era adecuada. Por ello& una vez sombrados los medios de cultivo& deben llevarse a la estu!a& en cuyo interior e(iste la temperatura óptima para el crecimiento de las bacterias& %ue es de @< a @> 7C. Prats& :;;</
III.
MATERIALES
III.1. M'e&!'(e*
III.1.1.M'e&!' P&!;'=I%*;#*
Mac Conkey Agar .< g/. 0eche de tigre BmlAgua destilada 5;ml
=
III.1.).M'e&!'(e*
• Placa Petri (9cm de diámetro, material de vidrio )
• Pipeta (35cm x 0.6cm de 10ml, material de vidrio pirec) • Tubos de ensao (10cm x 1.!5cm, material de vidrio pirec)
• "atra# (15cm x $cm de !50ml, de material vidrios pire%) • Papel cra&t (material de una pulpa celulosa suspendidas en
a'ua) Papel aluminio
III.1.3.E6!+#*
• Autoclave. (.5cm x 9$cm *+ %essel .-) • alanza anal)tica. • Agitador. • Calculadora.• Microscopio. primo estar D$B8:D P5<8C / Primo B;;(EB.:<oil
FE;.B>/
• Conta colonias. colony meter =GM*8"*A *CH$IC$8=$C?
CJGGP. 0A CM8B/
=
IV.
PROCEDIMIENTO
=
=
0a pr#ctica de laboratorio se realizar# en tres etapas& tal como se detalla continuación.=
4.1.
P&!;e&' e'+'.=
Preparar para la esterilización los materiales %ue se usaran en la pr#ctica de laboratorio& matraz& pipeta& placas Petri& tubos de ensayo/ tapando los ori!icios con algodón y envolvindolos con papel cra!.=
=
4.).
Se$%/' e'+'.=
0a segunda etapa consistir# en preparar la cantidad de deshidratado& %ue servir#n de alimento para las bacterias.=
=
Pesar la cantidad e(acta del medio deshidratado. Cerrar inmediatamente el !rasco de medio de cultivo.=
=
2isolver las porciones pesadas en 5; ml de agua destilada en vaso precipitado.=
T'b(' 15 +#&!#%e* /e $&';#* /e %&!e%e* +#&
;!(!(!&#*.
=
De*>!/&''/#*
=
$?
1
L
=
$?
7
0
;
=
$?
1
0
0
(
;
(
=
M' C#%2ey
A$'&
=
< ;=
. <=
8=
:e%e5
$laboración propia :;B6/.=
=
=
=
Colocar la me mezcla obtenida en un respectivo matraz y taponear la entrada con algodón y sobre este con papel cra!& hacer un nudo simple con un pabilo.=
=
0levar muestras de los deshidratados ,unto con los materiales a esterilizar a la autoclave& de,#ndolo por un periodo de B< minutos a una temperatura de B:B 7C& de,#ndolo por < min.=
=
4.3.
Te&e&' e'+'.=
$n la tercera etapa se proceder# a realizar los cultivos de bacterias de,#ndolas solidi!icando& durante K horas& para posteriormente realizar el conteo de bacterias.=
Aguitar bien cada dilución y con la pipeta trans!iere B ml de dicha dilución al tubo de Agar correspondiente.=
=
=omar con la pipeta e(actamente B ml de Muestra previamente acondicionada de la muestra a un tubo con 5 ml de agua destilada y agita bien la muestra obtendr#s una dilución de B;8B LB'B;.=
=
=rans!erir e(actamente B ml de esta dilución a un segundo tubo con 5 ml de agua destilada& mzclala bien.
Gbtendr#s una disolución de B;8:LB'B;;.
=
=
Repite la operación usando un tercer tubo con 5 ml de agua estril,
Gbtendr#s una disolución de B;8@ L B'B;;;.=
=
ierte la mezcla en una placa Petri previamente preparada con el agar nutritivo rotulada y ag)tela con cuidado.=
=
"na vez %ue haya solidi!icado& invierte las ca,as e inc+balas a @>NC durante K horas.=
=
Al !inal del periodo de incubación& cuenta las colonias en cada placa Petri& con el mtodo previamente e(plicado en clases.=
=
=
Anota los resultados de cada dilución y calcula el n+mero promedio de clulas por mililitro de muestra en la muestra original. $l n+mero de colonias obtenidas se multiplica por el rec)proco del !actor de dilución determinando as) el n+mero original de bacterias. Por e,emplo si se contaron >: colonias en la dilución B;8@ B'B;;;/ semultiplica >: O B;;;. B;;; es el rec)proco de B;8@/.
=
=
P&#e/!;!e%# +'&' (' /e !%!% $&';
$(traer de una colonia las bacterias y sumergir en una gota de agua sobre la porta ob,etos.
*e de,a secar cerca al mechero para luego pintar. *e pinta con cristal violeta azul/ por B< min. *e lava con abundante agua.
*e agrega lugol como un !i,ador *obre eso se lava con el alcohol 5<7 0avar con abundante agua.
*ecar cerca del mechero
*e de,a secar cerca a al mechero para luego llevar al microscopio& pero antes de llevar al microscopio se le agrega una gota de aceite inmerso& solo para mirar en el microscopio. Anotar los resultados.
=
=
C@((#*5
=
M' C#%2ey A$'&
=
<; g. B;;; ml=
O g. 5; ml=
=
O L <; g. 5; ml/ B;;; ml=
(
L .< g.=
=
&e' /e (' P('' Pe&!
=
A L
R :=
A L
.< cm/: A L 6:.6@ cm:=
V.
RESULTADOS
=
C'/&# 1 #%e# /e b'e&!'* "!'b(e*
=
C#%e# /e B'e&!'*
=
M
e
*
&
'
=
=
=
=
=
P&#;e/!#
/e
Me*&'*
=
L
e
>
=
=
=
=
=
@K.<e
/
e
!
$
&
e
=
:e%e5
$laboración Propia :;B</.=
@K.<( 6@.6: L :@6.66 "1CEB;8B :@66.6 "1CE ml=
L :( B;86 "1CE ml noaceptable
;
L 0)mite microbiológico %ue separa la calidad aceptable de la rechazable. $n general& un valor igual o menor a “m”& representa un producto aceptable y los valores superiores a Qm” indican lotes aceptables inaceptables.=
M
L 0os valores de recuentos microbianos superiores a QMQ son inaceptables& el alimento representa un riesgo para la salud.=
• 0a coloración de las bacterias es para ser observadas a travs del
microscopio y determinar si son bacterias de gram 8/ o gram 9/.
=
2e a la !oto n7 B %ue se tomó en el laboratorio de microbiolog)a en la "niversidad Iacional de Mo%uegua.=
VI.
CONCLUSIONES
=
• *e logró preparar los medios de cultivos adecuadamente con los nutrientes
deshidratados y las muestras %ue se ten)an %ue traba,ar& a su vez tambin se indicó el mtodo de esterilización adecuado para el presente traba,o.
=
• *e realizó con (ito el conteo de bacterias viables& tomando cuatro
cuadrantes de placa Petri& evalu#ndose el promedio del crecimiento microbiano !inal respecto a cada placa con su muestra& %ue se pueden ver en los cuadros de resultados.
• *e determinó %ue la leche de tigre no es apto para el consumo por%ue se
encuentra en el rango de M : ( B;86. /. las bacterias encontradas en el
alimento son de gran negativo.
=
=
VII.
BIBLIOGRA:IA
=
Grtega& S3 Tuevedo 1. B55B. 4arant)a de la Calidad de los 0aboratorios de Microbiolog)a Alimentaria.. ?arla *.A. M(ico 2.1. Uconsulta ;:8,ul8:;B<V.
=
2i!co y 0. :;;@. Manual de Medios de Cultivo Microbiológicos. Uconsulta ;:8,ul8:;B<V.
=
Merck. :;;:. Microbiolog)a Manual. P21. U$n l)neaV
=
WWW.Xmicro in!o WebXM$2HG* C"0=HG*XPreparación de Medios de Cultivo 8 Pr#cticas de Microbiolog)a.html Uconsulta ;:8,ul8:;B<V.=
M$2H2A 2$0 2$0 CR$CHMH$I=G AC=$RHAIG. U$n l)neaV
http'EEWWW.microbiologia.com.arEbacteriologiaE!isiologia.phpY MostrarLmedida. Uconsulta ;8,ul8:;B<V.