www.elsevier.es/ram
R
E
V
I
S
T
A
A
R
G
E
N
T
I
N
A
D
E
MICROBIOLOGÍA
ORIGINAL
Detección
y
caracterización
de
Escherichia
coli
productor
de
toxina
Shiga
en
ni˜
nos
atendidos
en
un
hospital
pediátrico
interzonal
de
la
ciudad
de
La
Plata
Sebastián
Oderiz
a,∗,
Gerardo
A.
Leotta
by
Lucía
Galli
baSaladeMicrobiología,HospitalInterzonaldeAgudosEspecializadoenPediatríaSuperioraSorMaríaLudovica,LaPlata,Buenos
Aires,Argentina
bInstitutodeGenéticaVeterinariaIng.FernandoN.Dulout(IGEVET)(UNLP-CONICET,LaPlata),FacultaddeCienciasVeterinarias,
LaPlata,BuenosAires,Argentina
Recibidoel28demarzode2017;aceptadoel3deagostode2017
PALABRASCLAVE EscherichiacoliO157; Diarrea;
SUH;
Caracterización molecular
Resumen EscherichiacoliproductordetoxinaShiga(STEC)esunpatógenotransmitido por alimentos quepuede causardiarreaacuosa,diarrea sanguinolenta(DS)y síndromeurémico hemolítico(SUH).Elobjetivodeesteestudiofuedeterminarlascaracterísticasfenotípicasy genotípicasdecepasSTECaisladasdeni˜nosconDSySUHatendidosenunhospitalpediátricode laciudaddeLaPlataenelperíodo2006-2012yestablecerlarelaciónclonaldelos aislamien-tosO157:H7medianteelectroforesisdecampopulsado.Elporcentajedemuestraspositivas fuede4,9y39,2%enlospacientesquepresentaronDSySUH, respectivamente.Seaislaron 77cepasSTECde10serotiposdistintos,conel100%derecuperacióndecolonias.Elserotipo másfrecuentefueO157:H7(71,4%),seguidoporO145:NM(15,6%).El98,2%delosaislamientos O157:H7correspondióalbiotipoCyfuesensiblealosantibióticosensayados.Todosesos ais-lamientospresentaronelgenotipostx2,eae,fliCH7,ehxA,iha,efa, toxB,lpfA1-3ylpfA2-2. Alestudiar larelaciónclonaldelascepasO157:H7,seidentificaronuntotalde42patrones conalmenosun88%desimilitudyseestablecieron6clústeresqueagruparoncepascon perfi-lesidénticos.LosaislamientoseaenegativospertenecieronalosserotiposO59:H19,O102:H6, O174:NMyO174:H21.LascepasO59:H19yO174:H21fueronpositivasparaelgen aggR.Este estudiomuestraqueenlaciudaddeLaPlatayalrededorescirculanSTECdediferentes seroti-posygenotipos.ApesardeladiversidadgenéticaobservadaentrelosaislamientosO157:H7, algunosfueronindistinguiblesporlastécnicasdesubtipificaciónutilizadas.
©2017Asociaci´onArgentinadeMicrobiolog´ıa.PublicadoporElsevierEspa˜na,S.L.U.Esteesun art´ıculoOpenAccessbajolalicenciaCCBY-NC-ND( http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/).
∗Autorparacorrespondencia.
Correoelectrónico:sebastianoderiz@yahoo.com.ar(S.Oderiz).
https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.08.008
0325-7541/©2017Asociaci´onArgentinadeMicrobiolog´ıa.PublicadoporElsevierEspa˜na,S.L.U.Esteesunart´ıculoOpenAccessbajola
Cómocitar este artículo:Oderiz S, etal. Detección y caracterización deEscherichia coli productor de toxina Shiga en ni˜nos atendidos en un hospital pediátrico interzonal de la ciudad de La Plata. Rev Argent Microbiol. 2018. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.08.008
ARTICLE IN PRESS
+ModelRAM-247; No.ofPages10
2 S.Oderizetal.
KEYWORDS
EscherichiacoliO157; Diarrhea;
HUS; Molecular characterization
DetectionandcharacterizationofShigatoxin-producingEscherichiacoliinchildren treatedataninter-zonalpediatrichospitalinthecityofLaPlata
Abstract Shigatoxin-producingEscherichiacoli(STEC)isafoodbornepathogenthatcancause waterydiarrhea,bloodydiarrhea(BD),andhemolyticuremicsyndrome(HUS).Theobjective ofthisstudywastodeterminethephenotypicandgenotypicprofilesofSTECstrainsisolated fromchildrenwith BDandHUStreatedatapediatrichospitalinthecityofLaPlata inthe period2006-2012,andtoestablishtheclonalrelationshipofO157:H7isolatesbypulsedfield electrophoresis.Thepercentageofpositivesampleswas4.9%and39.2%inpatientswithBDand HUS,respectively.Seventy-sevenSTECstrainsfrom10differentserotypeswereisolated,with 100%colonyrecovery,O157:H7beingthemostfrequent(71.4%)serotype,followedbyO145:NM (15.6%).Anaverageof98.2%ofO157:H7isolatesbelongedtobiotypeCandweresensitiveto alltheantibioticstested.Allofthem(100%)carriedgenotypestx2,eae,fliCH7,ehxA,iha,efa,
toxB,lpfA1-3andlpfA2-2.WhentheclonalrelationshipoftheO157:H7strainswasstudied,a totalof42patternswithatleast88%similaritywereidentified,and6clusterswithidentical profileswereestablished.Theeae-negativeisolatesbelongedtoserotypesO59:H19,O102:H6, O174:NMandO174:H21.ThestrainsO59:H19andO174:H21werepositiveforthe aggRgene. ThisstudyshowsthatSTECofdifferentserotypesandgenotypescirculateinthecityofLaPlata andsurroundings.DespitethegeneticdiversityobservedbetweentheO157:H7isolates,some wereindistinguishablebythesubtypingtechniquesused.
©2017Asociaci´onArgentinadeMicrobiolog´ıa.PublishedbyElsevierEspa˜na,S.L.U.Thisisan openaccessarticleundertheCCBY-NC-NDlicense( http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/).
Introducción
Lasenfermedadesdiarreicasagudasconstituyenunodelos problemasdesaludpúblicamásseriosenlospaísesenvías dedesarrollo,conaltastasasdemorbimortalidad,ysonla segundacausademortalidadenmenoresde5a˜nos37.
Losagentesenteropatógenosresponsablesdelasdiarreas agudasson múltiplesypueden ser deorigenviral, bacte-rianooparasitario; sonfrecuentes las asociacionesde 2o másdeellos.Losvirus,principalmentelosdelgénero
Rota-virus,causandel70al80%delasdiarreasinfecciosasylas
bacteriasocasionanel10-20%deloscasos.Entrelosagentes bacterianoshabitualesseencuentranCampylobacterspp.,
Shigellaspp., Salmonella notyphi, Clostridiumdifficile y
Escherichiacolidiarreigénicos,ytambiénotros40.
E. coli productor de toxina Shiga (STEC) es un pató-genozoonótico principalmentetransmitido por alimentos. Puede causar una variedad de manifestaciones clínicas, desde infecciones asintomáticas o diarrea leve a mode-radahasta enfermedadgrave, comocolitis hemorrágica y síndromeurémicohemolítico(SUH)35.LascepasSTEC
per-tenecen a un amplio rango de serotipos2, aunque E. coli
O157:H7eselserotipomásfrecuentementeasociadoa gran-desbrotesycasosesporádicosdecolitishemorrágicaySUH entodo elmundo. Sinembargo, otrosserogruposdeSTEC tambiénhansidoreconocidosporsupotencialpatogénico, yaquesonaisladosfrecuentementedecasosdeenfermedad humana24.
El principalfactor de virulencia delas cepas STECson las denominadas toxinas Shiga, codificadas por los genes
stx38.Laadhesinaintimina,codificadaporelgeneae,está
involucradaenlaadherenciaíntimadelas bacteriasa los enterocitos33.Sinembargo,lascepasSTECquecarecende
este gentambién puedenocasionar enfermedadenel ser
humano.Sibiennosehaestablecidoaúnquécombinación demarcadoresdefinenqueunacepaSTECresultepatógena, lapresenciadelosgenesstx/eaeseasociaconunriesgode enfermedadmásgrave14.
EnArgentina, elSUHposentérico esendémicoy repre-senta la principal causa de insuficiencia renal aguda e hipertensiónarterialenlactantesyni˜nosylasegundacausa de insuficiencia renal crónicay detrasplante renal25.Las
cepas STECfueron identificadascomo el principal agente etiológico;sinembargo,nosonrutinariamente diagnostica-dasentodosloslaboratoriosdemicrobiología34.
Elobjetivodelpresentetrabajofuedeterminarmediante unanálisisretrospectivolafrecuenciadeaparicióndeSTEC en muestras fecales de ni˜nos con diagnóstico clínico de diarreaagudasanguinolentaySUHatendidosenelHospital EspecializadoenPediatríaSorMaríaLudovicadelaciudad deLaPlata.Asimismo,sebuscódeterminarelperfil fenotí-picoygenotípicodelascepasSTECrecuperadasyestablecer larelaciónclonaldelascepasdeE.coliO157:H7mediante electroforesisengeldecampopulsado(PFGE).
Materiales
y
métodos
MuestrasestudiadasDesdeel 1demarzode2006hasta el30dediciembre de 2012 se estudiaron 1.051 muestras de materia fecal (MF) obtenidas porevacuación espontánea (una por paciente). Estas comprendieron107 muestras depacientescon diag-nóstico de SUH y 944 muestras de pacientes con diarrea aguda,deloscuales 731(77,4%) presentarondiarrea san-guinolenta(DS)y213(22,6%)diarreanosanguinolenta,por observaciónmicroscópicaalmomentodelarecolección.
Paralaseleccióndeloscasosseestipularonlas siguien-tescondiciones:personapreviamentesanamenorde14a˜nos condiagnósticopresuntivodeDSocaso clínicamente con-firmado de SUH posentérico, con no más de 14 días de evoluciónalmomentodelatomademuestra.Loscriterios deexclusiónfueronlossiguientes:a)ni˜noscon diarreade másde14díasdeevolución;b)antecedentesdeenfermedad intestinal inflamatoria crónica; c) inmunocomprometidos; d) pacientes con infección nosocomial; e) SUH familiar, recurrente,secundario,noinfecciosooasociadocon
infec-ción por Streptococcuspneumoniae. Lademora promedio
enlatomademuestras paraeldiagnósticomicrobiológico enaquellospacientesquedesarrollaronSUHfuede7días (intervalo:1-15días)desdeelcomienzodelossíntomas. Cultivomicrobiológicoprimarioyaislamiento deSTEC
LasmuestrasdeMFfueronprocesadasportécnicas micro-biológicas estandarizadas antesde las 2h de recogidas o conservadasenmediodetransporteCary-Blairy refrigera-dasa 4◦C hastasuprocesamiento22.A partirdelas zonas
de crecimiento confluente,se realizó la detección de los genesstx1,stx2yrfbO157porPCRmúltiple30.Decada
mues-trapositivaseanalizaron10coloniastípicasdeE.coli,hasta lograr identificarla colonia stxpositiva. Las cepasfueron conservadasa−70◦Cparasuposteriorcaracterización. Caracterizaciónfenotípicadelosaislamientos deSTEC
Los aislamientos fueron identificados por pruebas bioquí-micasconvencionalesyutilizandoelsistemaautomatizado Vitek-2 Compact (bioMérieux, Mercy l´ıEtoile, Francia). La identificación de los antígenos somáticos y flagelares fue realizada por aglutinación con antisueros específi-cos provistos por el Instituto Nacional de Producción deBiológicos-ANLISDr.CarlosG.Malbrán.Losaislamientos deE.coliO157:H7fueron clasificadosen4biotipos,según la capacidad de fermentar los azúcaresrafinosa, dulcitol yramnosa29.Laproducción deStxsedeterminó mediante
ELISA (PremierTM EHEC, Meridian Diagnostics, Cincinnati,
Ohio, EE. UU.) y la de enterohemolisina (EHEC-HlyA) fue determinadaenplacasdeagarsangreovina3.
La sensibilidad antimicrobiana se determinó según el
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI )10.
Se ensayaron los siguientes antimicrobianos: ampicilina (10mg), amoxicilina/ácido clavulánico (20/10mg), cefa-lotina (30mg), cefoxitina (30mg), ceftazidima (30mg), cefotaxima (10mg), piperacilina/tazobactama, imipenem (10mg), meropenem (10mg), gentamicina (10mg), amica-cina(30mg),ácidonalidíxico(30mg),ciprofloxacina(5mg), trimetoprima-sulfametoxazol (1,25/23,75mg), nitrofuran-toína(300mg),fosfomicina(200mg),tetraciclina(30mg)y colistina(10mg).
Caracterizacióngenotípicadelosaislamientos deSTEC
Todoslosaislamientosde STECfueron analizadosporPCR paraladeteccióndelosgeneseae,fliCH7,ehxA,saa,iha,
efa/lifA, toxB, lpfA1,lpfA2, cdt-V, subABy astA19,20. Los
genes aggR y aaiC fueron detectadosporPCR entiempo real16.
Subtipificaciónmoleculardelosaislamientos deSTEC
Elanálisisdelossubtiposdestx1serealizóporPCR,según
metodologíapreviamentepublicada44.Laidentificaciónde
lossubtiposdestx2fuerealizadaporPCR-RFLP49yporPCR
múltiple, según metodologíapreviamente publicada44. La
técnicadePFGE sedesarrollóutilizando elprotocolo Pul-seNet de 24-48h para E. coli7 O157:H7. El ADN de cada
cepa contenido en bloques de agarosa fue digerido con 30U dela enzima derestricción XbaI (ThermoScientific) a37◦Cdurante3h.Losperfilesmolecularesobtenidospor
XbaI-PFGE fueron documentados utilizando el sistema de adquisicióndeimágenesMaestroGenslider® imager
(Maes-trogen Inc., Nevada, EE. UU.). Las imágenes en formato TIFF fueron analizadas con el software BioNumerics ver-sión6.6 (Applied Maths,Sint-Martens-Latem, Bélgica). La relaciónentre los perfilesfue estimada mediante la pro-porcióndebandascompartidasaplicandoelcoeficientede similitud de Dice y generando dendrogramas basados en el método unweighted pair group method with arithme-ticmean(UPGMA).Lascepasfueronagrupadasenclústeres cuandomostraronidénticopatrónXbaI-PFGE(100%de simi-litud).
Resultados
Seencontraron77(7,33%)muestraspositivasparaalmenos unodelossiguientesgenes:stx1,stx2yrfbO157.Apartirde
esasmuestrasfueronaisladas77cepasSTEC.Serecuperaron 35cepasdelospacientescondiagnósticodeDS(4,8%)y42 delospacientesconSUH(39,2%).
Entrelospacientesinfectados,elgrupoetarioconmayor proporción de casos fue el de ni˜nos menores de 5 a˜nos (75,3%);la edadpromediodentrodeesegrupode afecta-dosfuede23,5meses.Elgrupode5a9a˜nosrepresentóel 16,9%,mientrasqueel2,6%fuerondelgrupode10a14a˜nos. El5,2%restantefueron casosnotificadossinespecificarla edad.Paratodoslosgrupos,elserotipoO157:H7fueelde mayorprevalencia.
La media de edad del grupo de pacientes con DS fue 45,3 meses (intervalo: 7-152 meses) y la del grupo con SUHfue29,1meses(intervalo:6-142meses).El62%delos pacientesconSUHteníanmenosde2a˜nosylamayor inci-denciaseobservóenlosni˜nosdeuna˜no.Encambio,el63% delospacientesconDSeranmayoresde2a˜nos;lamayor incidenciaseobservóenelgrupode5a9a˜nos.
Caracterizaciónfenotípicadelosaislamientos Seserotipificaron76cepasSTEC(98,7%).Deellas,55(71,4%) fueronO157:H7biotipoC,solounacepapertenecióal bio-tipoDy22cepas(28,6%)fueronnoO157.Dentrodelgrupo noO157, el serotipo O145:NM fue el demayor prevalen-cia, seguido por O121:H19.La frecuenciade serotiposde lascepassegúneldiagnósticosedetallaenlatabla1.
Cómocitar este artículo:Oderiz S, etal. Detección y caracterización deEscherichia coli productor de toxina Shiga en ni˜nos atendidos en un hospital pediátrico interzonal de la ciudad de La Plata. Rev Argent Microbiol. 2018. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.08.008
ARTICLE IN PRESS
+ModelRAM-247; No.ofPages10
4 S.Oderizetal.
Tabla1 Frecuenciadeserotipossegúndiagnóstico
Serotipo Diagnósticoclínico Totaln(%)
Diarreasanguinolenta Síndromeurémicohemolítico
n(%)decepas n(%)decepas O157:H7 25(69,4) 30(73,2) 55(71,4) O145:NM 6(16,7) 6(14,6) 12(15,6) O121:H19 - 3(7,3) 3(3,9) O26:H11 1 - 1(1,3) O59:H19 1 - 1(1,3) O102:H6 1 - 1(1,3) O103:NM 1 - 1(1,3) O174:NM - 1 1(1,3) O174:H21 - 1 1(1,3) Ont:NM - 1 1(1,3) Total 35(45) 42(55) 77(100)
Ont:antígenoOnotipable;NM:nomóvil.
La producción de toxina Shiga determinada mediante ELISA se demostró en 76 de las 77 cepas estudiadas. La únicaexcepción fuela cepaO102:H6,asociada a uncaso dediarrealeve.Laactividadhemolítica,compatibleconla presenciadeEHEC-Hly,fuedetectadaen73cepas(94,8%). Elfenotipoa-hemolíticonofuedetectadoenningunadelas cepasestudiadas.Fueronsensiblesatodoslosantibióticos ensayados74cepas(96%).Tresaislamientosfueron resisten-tesaunsoloantibiótico:O157:H7(AMPr),O145:NM(TETr)y Ont:NM(TMSr).
Caracterizacióngenotípicadelosaislamientos Los perfiles genotípicos de las cepas aisladas de pacien-tesconDSfueron lossiguientes:stx2/rfbO157 (68,6%),stx2 (25,8%), stx1/stx2 (2,8%) y stx1/stx2/rfbO157 (2,8%). Los de las cepas aisladas de pacientes con SUH fueron el stx2/rfbO157(71,5%)yelstx2(28,5%).
Fueroneaepositivas73cepas(95%).Lascepaseae nega-tivas pertenecieron a los serotipos O59:H19, O102:H6, O174:NMyO174:H21.Enestas4cepasseensayóla presen-ciadelosgenesaggRyaaiC,lascepasO59:H19yO174:H21 fueronaggRpositivas.
TodoslosaislamientosO157:H7fueronpositivosparalos genesrfbO157,fliCH7iha,efa1ytoxB.Entrelosaislamientos noO157,sedetectóelgendelaadhesinaihaen18deellos (81,8%),elefa1en17(77,2%)yeltoxBen16(72,7%).Solo lacepaO59:H19fuenegativa paralos3genes simultánea-mente.
Utilizando la clasificación experimental de las distin-tasvariantes delosgeneslpfA1 ylpfA248,todaslascepas
O157:H7portaronlasvarianteslpfA1-3ylpfA2-2.Lascepas O145:NMportaronlasvarianteslpfA1-5ylpfA2-3.Entrelos aislamientos distintos a O157:H7 y O145:NM, lpfA2-1 fue lavariante másprevalente (100%), 5de esos aislamientos fueron,además,positivosalpfA1-2.Nosepudoestablecer ningunaasociaciónentrelapresenciadealgunavarianteen particulardelpfA yla gravedaddelaenfermedad(SUHo DS).Sinembargo,seobservóquelosaislamientosO157:H7 yO145:NMmantuvieronlamismacombinacióndevariantes
lpfA,independientementedelaenfermedadasociada.
Nosedetectólapresenciadelosgenessaa,subAB,cdt-V
ni astA en ninguna de las cepas estudiadas. La caracte-rización genotípica de los aislamientos se muestra en la tabla2.
Subtipificaciónmoleculardelosaislamientos Alestudiarelgenotipodestxdelas 55cepasO157:H7,se halló que 42 de ellas (76,4%) fueron stx2a/stx2c(vh-a), este
fueel subtipopredominante, independientementede que setrataradecepasaisladasdepacientesconDSoconSUH. En las cepas noO157, el subtipo más frecuentefue stx2a
(77%)(tabla3).
Al analizar los productos de restricción obtenidos tras digerir el genoma de 51 cepas de E. coli O157:H7 con la enzima de restricción XbaI, se encontró que se genera-ron42patronesdebandasdiferentes,conalmenosun88% de similitud entreellos.Cuatro cepas quedaronexcluidas delanálisisporquesuADNsedegradórepetidasveces.Los patrones presentaron entre16 y22 bandas, con tama˜nos aproximados de 40 a 600 kpb.El porcentaje de similitud entrelascepasserepresentóenundendrogramade homolo-gíautilizandoelalgoritmoUPGMA(fig.1).Delos42patrones de bandasobtenidos, 36 resultaronser únicos y15 cepas fueronagrupadasen6clústeres:clústerI(SML72,73y74), clústerII(SML8,9,y10),clústerIII(SML39,40y77),clúster IV(SML22y26),clústerV(SML6y19)yclústerVI(SML32y 43).
Las 3cepas agrupadas en el clúster I se aislaron de 3pacientes con DS que no requirieron internación. Estos3pacientesvivíanenlaciudaddeLaPlata,enunradio de500myelcomienzodelossíntomasdifirióen32días. Aunquenofueposibleestablecerlafuentedeinfecciónen ningunodeloscasos,mediantelainformación epidemioló-gicadisponibleseidentificócomolaúnicavariableencomún elconsumodecremasheladascompradasenelmismolocal comercial.
Lascepas agrupadasen elclúster II fueron aisladas de 3casosdeSUHocurridosenenerode2007,enunperíodode 15díasyen2ciudadesdistintas,LaPlatayOlavarría, distan-tes330kmentresí.Sinembargo,losdatosepidemiológicos
este artículo: Oderiz S, et al. Detección y caracterización de Escherichia coli productor de toxina Shiga atendidos en un hospital pediátrico interzonal de la ciudad de La Plata. Re v Argent Microbiol. 2018.
AR
TICLE IN PRESS
of P ages 10 caracterización de STEC en La Plata 5Tabla2 CaracterizaciónmoleculardelosaislamientosSTECrecuperadosdepacientesconDSySUHatendidosenelHospitaldeNi˜nosdeLaPlata(n=77) Serotipo Enfermedad
asociada
N.de cepas
Númerodecepaspositivas
stx1 stx2 ehxA eae iha efa1 toxB lpfA1-1lpfA1-2lpfA1-3lpfA1-4lpfA1-5lpfA2-1lpfA2-2lpfA2-3saa subABcdt-V ast1
O157:H7 SUH 30 0 30 30 30 30 30 30 0 0 30 0 0 0 30 0 0 0 0 0 O157:H7 DS 25 1 25 25 25 25 25 25 0 0 25 0 0 0 25 0 0 0 0 0 O145:NM SUH 6 0 6 5 6 6 6 5 0 0 0 0 6 0 0 6 0 0 0 0 O145:NM DS 6 0 6 6 6 6 6 6 0 0 0 0 6 0 0 6 0 0 0 0 O121:H19 SUH 3 0 3 3 3 0 3 2 0 0 0 0 0 3 0 0 0 0 0 0 O26:H11 DS 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 O59:H19 DS 1 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 O102:H6 DS 1 0 1 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 O103:NM DS 1 0 1 1 1 1 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 O174:NM SUH 1 0 1 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 O174:H21 SUH 1 0 1 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Ont:NM SUH 1 0 1 1 1 1 0 1 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Total (%) 77(100) 2 (2,6) 77 (100) 73 (95) 73 (95) 73 (95) 72 (94) 71 (92) 0 5 (6,5) 55 (71,4) 0 12 (15,6) 10 (13) 55 (71,4) 12 (15,6) 0 0 0 0
NM:nomóvil;Ont:antígenosomáticonotipable;ehxA:hemolisinadeEHEC;eae:intimina;iha:adhesinahomólogaaIrgA;efa:factorparalaadherenciadeE.colienterohemorrágico;
toxB:proteínaplasmídicaqueparticipaenlaadherenciadeSTEC;lpfA:subunidadmayordelafimbriapolarlarga;saa:adhesinaautoaglutinantedeSTEC;subAB:subtilasa;cdt-V:toxina citoletal;ast1:enterotoxinatermoestabledeE.colienteroagregativa.
Cómocitar este artículo:Oderiz S, etal. Detección y caracterización deEscherichia coli productor de toxina Shiga en ni˜nos atendidos en un hospital pediátrico interzonal de la ciudad de La Plata. Rev Argent Microbiol. 2018. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.08.008
ARTICLE IN PRESS
+ModelRAM-247; No.ofPages10
6 S.Oderizetal.
Tabla3 Genotipostxdelascepasaisladasenelperíodo deestudio(n=77)
Serotipo Diagnóstico clínico
n(%)decepas Genotipostx O157:H7 SUH 20(26) stx2a/stx2c(vh-a)
SUH 8(10,4) stx2a SUH 2(2,6) stx2c(vh-a) DS 22(28,6) stx2a/stx2c(vh-a) DS 1 stx2a DS 1 stx2c(vh-a) DS 1 stx1a/stx2a/stx2c(vh-a) O145:NM SUH 6(7,8) stx2a O145:NM DS 6(7,8) stx2a O121:H19 SUH 3(3,9) stx2a O26:H11 DS 1 stx1a/stx2a/stx2c(vh-a) O59:H19 DS 1 stx2a O102:H6 DS 1 stx2b O103:NM DS 1 stx2a/stx2c(vh-a) O174:NM SUH 1 stx2a O174:H21 SUH 1 stx2d
Ont:NM SUH 1 stx2a/stx2c(vh-a)
fueroninsuficientesparaestablecerunnexoentreloscasos. LascepasdelclústerIVposeíanidénticogenotipostxy fue-ronrecuperadasde pacientesque desarrollaron SUH,uno condomicilioenBrandsenyelotroenAzul,perolosdatos epidemiológicos disponibles no permitieron establecer un nexoentreellos.
Las cepas agrupadas en el clúster VI poseían idéntico genotipo stx y fueron aisladas en La Plata de un caso dediarreaconsangreydeotrocasoconSUH,con5a˜nosde diferenciaentreellos.Lascepasagrupadasenlosclústeres IIIyVfuerondiferenciadasporelgenotipodestx.
Discusión
Mediantetécnicasmicrobiológicasestándarytamizajepor PCRseinvestigólapresenciadeSTECenMFdeni˜noscon diagnósticopresuntivodeDSySUHatendidosenel Hospi-taldeNi˜nosSorMaríaLudovica»de laciudaddeLaPlata desdeela˜no2006.Unanálisisretrospectivodepacientescon diarreaaguda basadoenlosresultados obtenidosdurante 6 a˜nos mostró la presencia de STEC enel 4,8% de aque-llosquepresentabanDSyfuenegativoeltamizajeentodos lospacientes con diarrea. Estosresultados nodifieren de losobtenidosenotrosestudiosrealizadosennuestropaís,a pesardelaslimitacionesenlavigilancia,ydelosobservados enelrestodelmundo.
Enpaísespocodesarrollados,larecuperacióndeSTECes menordel2%enni˜nospeque˜noscongastroenteritis9,12yen
losEE.UU.latasadedeteccióndeSTECvadel0al4,1%de lasmuestrasenviadasaloslaboratorios23.
En Argentina, Rivero et al.43 detectaron la presencia
deSTECenel10,1%(44/437)delasmuestrasanalizadasde ni˜noscondiarreaaguda;enel27,3%deellosladiarreaera nosanguinolenta, adiferencia deloquesucedió en nues-troestudio.En2012,López etal.32 efectuaronunestudio
prospectivode2.435ni˜nos(edades:0,5-15a˜nos)condiarrea acuosaosanguinolenta,ydetectaronlapresenciadeSTEC
enel4,1%delospacientesquepresentarondiarreaacuosa demenosde5díasdeevolución,DSdemenosde36hde duración,oambas.Sinembargo,laincidenciadeinfección porSTECfuesignificativamentemayorenpacientesconDS. AlestudiaralospacientesquedesarrollaronSUH posen-térico,pudimosevidenciarlapresenciadeSTECenel39,2% delacohorteanalizada.Estosresultadossonsimilaresalos reportadosporotrosautoresennuestropaís41,43yenChile39,
peroinferioresalosobtenidosenFrancia15yenunestudio
que abarcó Austria y Alemania21. Estas diferencias enlas
tasasdedetecciónorecuperacióndeSTECpuedendepender dediversosfactores,entrelosqueseencuentraneltiempo transcurridoentreeliniciodelossíntomasylarecolección dela muestra,la metodologíautilizada parala detección oelaislamientodelosmicroorganismos,elusodeterapia antimicrobianaantesdeldiagnósticocerteroyotros.
Apartirdeunestudioprospectivo,Tarretal.46
informa-ronlarecuperaciónde E.coliO157:H7enel 91,4%delas muestras de pacientes que desarrollaron SUHposentérico cuandoaquellaseranobtenidasentrelos3y6díasdesde eliniciodeladiarrea,perolarecuperaciónbajabaal33% sisedemorabanmásde7díasenrecolectarlas.Esdecir,al momentoquesemanifestabaelSUH,el67%delospacientes noteníanO157:H7enlaMF.
OtrofactorimportanteparaasociarelSUHconla infec-ciónporSTECeslametodologíautilizadaparaladetección del microorganismo. Labúsqueda decitotoxinas libres en MF,elusodeanticuerposantitoxinaShigaoanti-LPSO157en suero,lautilizacióndeseparacióninmunomagnéticacomo técnicadeinmunoconcentracióndeSTECylaamplificación porPCRcomotécnicadetamizajepermitenaumentar sus-tancialmentelaevidenciadeinfecciónporSTEC21,41.Enel
presente trabajo, la combinación de procedimientos bac-teriológicos y la amplificación por PCR múltiple aplicada permitieronmejorareldiagnósticodeSTECennuestro hos-pital.
En un análisis retrospectivo realizado en nuestro laboratorio22seestudiaron7.075pacientescondiarrea.
Uti-lizando agar MacConkey sorbitol para la recuperación de STECysinefectuartamizajeporPCR,soloserecuperaron 5 aislamientosdeE. coliO157:H7a lolargo de3 a˜nosde estudio.
Cuandoseanalizólaedad delospacientesconSUH,la mediadelgrupofuede29,1meses(intervalo:6-142meses), el62%eramenorde2a˜nosylamayorincidenciaseobservó enlosni˜nosdeuna˜no.Estoshallazgossonunreflejodela situación observada ennuestro país1. Encambio, laedad
promedio del grupo de pacientes con DS fue 45,3 meses (intervalo:7-152meses).
Diversosautoreshanreportadoquelospacientes meno-resexpuestosaSTECpresentanmásriesgodeevolucionar a enfermedad grave4. Este fenómeno podría responder a
un problema de competencia bacteriana y de inmunidad cruzada, yaque losni˜nos mayores olos queproceden de ambientesconcondicionessanitariasdeficientesamenudo presentan ----o han presentado---- otras infecciones intesti-nalescausadaspormicroorganismosquepodríanimpediro limitareldesarrollodeSTEC.
Las cepas STEC caracterizadas pertenecieron a varios serotipos (tabla 1), la mayoría asociados con enfermedad graveenloshumanos.E.coliO157:H7fueelprincipalagente etiológicodeSUHposentérico(73,2%)yelserotipoSTECfue
PFGE-Xbal PF GE-Xbal N.º cepa SML20 SML21 SML13 SML51 SML44 SML23 SML55 SML5 SML7 SML33 SML70 SML12 SML30 SML72 SML73 SML74 SML22 SML26 SML27 SML60 SML14 SML28 SML61 SML19 SML6 SML47 SML57 SML48 SML58 SML46 SML29 SML10 SML8 SML9 SML42 SML24 SML69 SML25 SML39 SML40 SML77 SML34 SML37 SML35 SML71 SML32 SML43 SML2 SML41 SML52 SML53 La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata La Plata Florencio Varela Granbourg S/D S/D Berisso Trenque Lauquen Bolivar Lomas de Zamora Almirante Brown Olavarria Berazategui Berazategui S/D S/D S/D Berisso Berisso Gral. Lamadrid Brandsen Brandsen Azul Azul Florencio Varela Bavio Tandil Tandil S/D Quilmes Ensenada Localidad Clúster l Clúster lV Clúster V Clúster ll Clúster lll Clúster Vl
Figura1 Dedrogramadelarelacióngenéticaentre51cepasE.coliO157:H7estudiadasporXbal-PFGE,connúmerodecepay localidad.
elprevalenteentrelospacientesconDSestudiados(69,4%). Este serotipo esresponsable de másdel 70% delos casos de SUHposentérico enArgentina34 y es el principal
sero-tipoaislado enChile,Japón, Canadá,EE. UU. ypaísesde la UE11,36,39. Con respecto a STEC no O157, los serotipos
implicadosvaríansegúnelpaís,aunqueciertosserogrupos, comoO26,O103,O111yO145,sonlosdescriptosconmayor frecuencia12,21,27. En el presente estudio, se recuperaron
cepasSTECnoO157enel28,5%deloscasosyelserotipomás frecuentefueO145:NM,aligualqueenelrestodenuestro país34.
AlestudiarlaexpresiónfenotípicadelastoxinasShiga, sepudocomprobarlaproducción deestasen76delas77 cepasestudiadas.LaúnicaexcepciónfuelacepaO102:H6 portadoradelgenstx2b,elcualcodificaunatoxinaqueno
Cómocitar este artículo:Oderiz S, etal. Detección y caracterización deEscherichia coli productor de toxina Shiga en ni˜nos atendidos en un hospital pediátrico interzonal de la ciudad de La Plata. Rev Argent Microbiol. 2018. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.08.008
ARTICLE IN PRESS
+ModelRAM-247; No.ofPages10
8 S.Oderizetal.
El presente estudio refleja una elevada sensibilidad a los antimicrobianos en las cepas STEC de origen humano circulantesennuestraregión.Apesardelusoinadecuado de antibióticos en casos de diarrea que se observa en Argentina43----aloquesesumaelusodediversosantibióticos
comopromotoresdecrecimientoenganadooenmedicina veterinaria45----,lapresióndeselecciónqueestosejercenno
severeflejadaenlapérdidadesensibilidadalos antimicro-bianosdelascepasSTECdeorigenhumano50.Encontraste,
losaislamientoseuropeosdeSTECmuestrangradosvariables deresistencia,ylaproporcióndeaislamientos multirresis-tentes(aquellosqueresistena3omásantimicrobianos)es cercanaal20%36.
Lavigilanciamoleculardeestospatógenoshumanos per-mitiócaracterizarlas cepascirculantesenlaregióndeLa Platayalrededores. Todas las cepasO157:H7 yel 82%de lasnoO157portaronel geneae. Estegen sedetectamás frecuentementeencepasaisladas depacientescon enfer-medad grave como SUH o DS que en aquellos pacientes conenfermedadmenosgraveo encontrolessanos4,26. Sin
embargo,lapresenciadeeaenoesesencialparala patogé-nesis.
ElbroteocurridoenEuropaenmayo/juliode2011, aso-ciadoalnuevopatotipodeEAECproductordetoxinaStx2ay alserotipoO104:H4,provocó3.141casosdediarrea/colitis hemorrágica, 881 casos de SUH y50 muertes5. Luego de
ocurridoese brote,el comitécientífico parapeligros bio-lógicosdelaUE14propusoensayarlapresenciadelosgenes
aggR (regulador transcripcional) y aaiC (proteína secre-tada),ambosmarcadoresgenéticoscaracterísticosdeEAEC, entodaslascepasSTECeaenegativas.Siguiendoesa reco-mendación,todaslascepaseaenegativasanalizadaseneste trabajofueronevaluadasparaestosgenes.Elhallazgoenlas cepasSML49serotipoO59:H19 ySML67serotipoO174:H21 desecuencias relacionadascon EAEC (presenciade aggR) encepasproductorasdetoxinaShigaesunhechopoco fre-cuenteennuestro país6. Probablementeestascepas STEC
adquirieronportransferenciahorizontalelplásmidode viru-lenciadecepasEAEC,yaqueelgen aaiC(codificadoenel cromosoma)estáausenteenambas.Sibienesinteresante este hallazgo, se desconoce el impacto de este probable híbridoenlasaludpúblicayserequierenestudios adiciona-lessobreestascepas.
Enestudiospreviossehamostradoquelavirulenciade lascepasSTECparaloshumanosestárelacionadaconeltipo detoxinaShigaproducidaporlabacteria18.Enesteestudio
sedetectólapresenciadestx2enel100%delascepas
estu-diadasysolo2cepasportabanconjuntamentestx1ystx2.Al
estudiarlossubtiposdestx,lapresenciasimultáneadestx2a
ystx2c(vh-a)sedetectóenel76%delosaislamientosO157:H7.
Estoshallazgossonsimilares alosreportadospreviamente enArgentina,dondemásdel90%delascepasO157:H7 pre-sentanestacombinación13,31.Estegenotipofueasociadocon
enfermedadgraveenloshumanosysedemostró queestá presentemás frecuentemente enpacientes conDS ySUH queotrossubtipos18.
LavirulenciadelascepasSTECpuedenoestar relacio-nadaexclusivamentecon laproduccióndetoxinasShiga e intimina, sino también con la presencia de otras adhesi-nasytoxinas.Lafrecuenciadeaparicióndelas adhesinas putativas estudiadas no difiere de la reportada por otros autores8,19,20,47. A pesar de no estar relacionadas con el
potencialpatogénico delascepas28,las adhesinaspodrían
serunimportantefactordecolonizaciónespecie-específico. En este punto cabe resaltar que la combinación
lpfA1-5/lpfA2-3 hallada en las cepas O145:NM se describe por
primera vezenel presentetrabajo, yesdistintade otras cepas O145 descriptas con anterioridad48. Asimismo, no
debemos excluir la posibilidad de complicaciones de la enfermedadatribuiblesaestosfactores.Esdedestacarque ninguna de las cepas STECcaracterizadas en el presente estudio presentósecuencias asociadas a las toxinas subti-lasa, Cdt-VyEast-1.Sinembargo,surelevancia clínicano debeignorarse,debidoaldemostradopotencialpatogénico delascepasconestosfactoresdevirulencia.
LascepasdeE.coliO157:H7presentaronunaltogrado de diversidad genética, tal como se describe en trabajos previosrealizados enArgentina42.Además, enel presente
trabajo se identificaron cepas con idéntico patrón XbaI -PFGErecuperadas endistintaslocalidadesyendiferentes a˜nos,loqueimplicaríaqueestánampliamentediseminadas ypersistenatravésdelosa˜nos.
La aplicación de técnicas de epidemiología molecular contribuyeamejorarlavigilanciadeSTECypermiteintegrar losresultadosdelaboratorioconlosdatosepidemiológicos, perosuimplementaciónentiemporealyelaccesoabases dedatosnacionalesyregionalesesfundamentalpara identi-ficarenformatempranalaprobableocurrenciadeunbrote ynotificarlaalas autoridades,quedebenocuparsedelas accionesdecontrol.Estoquedódemostradoalidentificarun probablebroteporcepasdelclústerIvariosa˜nosdespués dehaberocurrido.
Lagravedaddelascomplicacionesquesuelenacompa˜nar alas infeccionesasociadas conSTECponeenevidencia la necesidaddereforzarlavigilanciaactivaenloslaboratorios demicrobiologíaclínicaennuestropaís,implementar pro-tocolospara ladetecciónde STECymejorar lacapacidad diagnósticayanalíticadeaquellos.Además,nuestros resul-tadosponendemanifiestolaimportanciadecompletar la caracterizaciónfenotípicaygenotípicadelosaislamientos entiemporeal,yaqueestosdatospermitendeterminarel tipodecepasqueestáncirculandoennuestropaís.
Conflicto
de
intereses
Losautoresdeclarannotenerningúnconflictodeintereses.
Agradecimientos
LosautoresagradecenalaBqca.SilvinaGiugnoporsu cola-boraciónenlarecolección,recepciónyconservacióndelas muestras. AlaDra.NoraL.Padolaporsucolaboraciónen la serotipificación delas cepas STEC no-O157y a la Dra. AlejandraLonderoporsucolaboraciónenelanálisisdelos patrones XbaI-PFGE.
Bibliografía
1.AntmanJ,GeffnerL, PianciolaL,Rivas M.Informeespecial:
Síndromeurémico hemolítico(SUH)enArgentina,2010-2013.
ExtractodelBoletínIntegradode VigilanciaN.◦ 222- SE30.
www.msal.gob.ar/images/stories/bes/graficos/0000000799cnt-2014-08Informe-SUH.pdf.
2.BettelheimKA,GoldwaterPN.Serotypesofnon-o157 shigato-xigenicEscherichiacoli(STEC).AdvMicrobiol.2014;4:377---89.
3.BeutinL,MontenegroMA,OrskovI,OrskovF,PradaJ, Zimmer-mannS,StephanR.Close associationofverotoxin(Shiga-like toxin)productionwithenterohemolysinproductioninstrainsof Escherichiacoli.JClinMicrobiol.1989;27:2559---64.
4.BeutinL,KrauseG,ZimmermannS,KaulfussS,GleierK. Cha-racterizationofShigatoxin-producingEscherichiacolistrains isolatedfromhumanpatientsinGermanyovera3-yearperiod. JClinMicrobiol.2004;42:1099---108.
5.BielaszewskaM,MellmannA,ZhangW,KöckR,FruthA,Bauwens A,PetersG,KarchH.CharacterisationoftheEscherichiacoli strainassociatedwithanoutbreakofhaemolyticuraemic syn-dromeinGermanyamicrobiologicalstudy.LancetInfect Dis. 2011;11:671---6.
6.Carbonari C, Miliwebsky E, Deza N, Zolezzi G, Manfredi E,
D’AstekBA,BaschkierA,ChinenI,RivasM.NovelEAEC/STEC
hybridO59:NM[H19]strainsisolatedfromhumaninfectionsin
Argentina. En: Abstract VTEC2015 del 9th Triennial
Interna-tional Symposium on Shiga Toxin-Producing Escherichia coli
Infections.Boston:Massachusetts;2015.p.38.Disponibleen:
http://www.vtec2015.org/wp-content/uploads/2015/09/E-Abstracts-Oral-Poster-21.pdf. [en línea; consultado 18 Mar 2017].
7.Centersfor DiseaseControlandPrevention.(2013).Standard
operating procedure for PulseNet PFGE of Escherichia coli
O157:H7,Escherichiacolinon-O157(STEC),Salmonella
seroty-pes,ShigellasonneiandShigellaflexneri[enlínea;consultado
18Mar 2017]. Disponible en: http://www.cdc.gov/pulsenet/
PDF/ecoli-shigella-salmonella-pfge-protocol-508c.pdf. 8.CergoleNovellaMC,NishimuraLS,DosSantosLF,IrinoK,VazTM,
BergaminiAM,GuthBE.Distributionofvirulenceprofilesrelated tonewtoxinsand putativeadhesinsinShigatoxinproducing Escherichiacoliisolated fromdiversesourcesinBrazil.FEMS MicrobiolLett.2007;274:329---34.
9.Cheng AC, McDonald JR, Thielman NM. Infectious diarrhea indevelopedand developingcountries.JClinGastroenterol. 2005;39:757---73.
10.Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Disk
dif-fusion.Performancestandards forantimicrobialsusceptibility
testing; 23rd Informational Supplement, 2013; M100-S23.
Wayne,PA,EE.UU.
11.CrimSM,IwamotoM,HuangJY,GriffinPM,GillissD,Cronquist AB,CartterM,Tobin-D’AngeloM,BlytheD,SmithK,Lathrop S,Zansky S, Cieslak PR,Dun J,Holt KG, Lance S, TauxeR, HenaoOL.Incidence and trendsof infectionwithpathogens transmittedcommonlythroughfood-FoodborneDiseasesActive SurveillanceNetwork,10USsites,2006-2013.MMWRMorb Mor-talWklyRep.2014;63:328---32.
12.CroxenMA,LawRJ,ScholzR,Keeney KM,WlodarskaM, Fin-layBB.Recentadvancesinunderstandingenteric pathogenic Escherichiacoli.ClinMicrobiolRev.2013;26:822---80.
13.D’AstekBA,delCastilloLL,MiliwebskyE,CarbonariC, Palla-dinoPM,DezaN,RivasM.SubtypingofEscherichiacoliO157: H7strainsisolatedfromhumaninfectionsandhealthycattlein Argentina.FoodbornePathogDis.2012;9:457---64.
14.EFSA. Scientific opinion on VTEC-seropathotype and scien-tific criteria regarding pathogenicity assessment. EFSA J. 2013;11:3138.
15.EspiéE,GrimontF,Mariani-KurkdjianP,BouvetP,Haeghebaert S,FilliolI,LoiratC,DecludtB,MinhNNT,VaillanV,deValkH. Surveillanceofhemolyticuremicsyndromeinchildrenlessthan 15yearsofage,asystemtomonitorO157andnon-O157Shiga toxin-producing Escherichia coli infections in France, 1996-2000.PediatrInfectDisJ.2008;27:595---601.
16.EU Reference laboratory for E. coli. (2015). Detection of
Enteroaggregative Escherichia coli in food byreal timePCR
amplificationoftheaggRand aaiCgenes[enlínea;consultado
18Mar2017].Disponibleen:http://www.iss.it/vtec/.
17.FengPC,JinnemanK,ScheutzF,MondaySR.SpecificityofPCR andserologicalassaysinthedetectionofEscherichiacoliShiga toxinsubtypes.ApplEnvironMicrobiol.2011;77:6699---702.
18.Friedrich AW, BielaszewskaM,Zhang WL,Pulz M, Kuczius T, AmmonA,KarchH.EscherichiacoliharboringShigatoxin2gene variants:Frequencyandassociationwithclinicalsymptoms.J InfectDis.2002;185:74---84.
19.GalliL,MiliwebskyE,IrinoK,LeottaG,RivasM.Virulenceprofile comparisonbetweenLEE-negativeShigatoxin-producing Esche-richiacoli(STEC)strainsisolatedfromcattleandhumans.Vet Microbiol.2010a;143:307---13.
20.Galli L, Torres AG,Rivas M. Identification ofthe long polar fimbriaegenevariantsinthelocusofenterocyteeffacement negativeShigatoxinproducingEscherichiacolistrainsisolated fromhumansandcattleinArgentina.FEMSMicrobiolLett.2010 b;308:123---9.
21.Gerber A, Karch H, Allerberger F, Verweyen HM, Zimmer-hacklLB.ClinicalcourseandtheroleofShigatoxin---producing Escherichiacoliinfectioninthehemolytic-uremicsyndromein pediatricpatients,1997-2000,inGermanyandAustria:A pros-pectivestudy.JInfectDis.2002;186:493---500.
22.Giugno S, Oderiz S. Etiología bacteriana de la diarrea agudaenpacientespediátricos.ActaBioquímClínLatinoam. 2010;44:63---70.
23.GouldLH,BoppC,StrockbineN,AtkinsonR,BaselskiV,BodB, CareyR,CrandallC,HurdS,KaplanR,NeillM,SheaS,Somsel P,Tobin-D‘AngeloM, GriffinPM,Gerner-SmidtP. Recommen-dationsfordiagnosisofShigatoxin–producingEscherichiacoli infectionsbyclinicallaboratories.MMWRMorbMortalWklyRep. 2009;58:1---14.
24.GouldLH,ModyRK,OngKL,ClogherP,CronquistAB,Garman KN,WhitePL.GriffinfortheEmergingInfectionsProgram Food-NetWorkingGroupPM.Increasedrecognitionofnon-O157Shiga toxin---producingEscherichiacoliinfectionsintheUnited Sta-tesduring2000-2010:Epidemiologicfeaturesandcomparison withE.coliO157infections.FoodbornePathogDis.2013;10: 453---60.
25.GrimoldiIA,BrionesLM,FerrarisJR,RodríguezRiloL,SojoE, TurconiA,WainbergE,ZalbaJ,SepliarskyA.Enfermedadrenal crónica,diálisisytrasplante:Estudiomulticéntrico:1996-2003. ArchArgentPediatr.2008;106:552---9.
26.JenkinsC,WillshawGA,EvansJ,CheastyT,ChartH,ShawDJ, DouganG,FrankelG,SmithHR.Subtypingofvirulencegenes inverocytotoxin-producingEscherichiacoli(VTEC)otherthan serogroupO157associatedwithdiseaseintheUnitedKingdom. JMedMicrobiol.2003;52:941---7.
27.JohnsonKE,ThorpeCM,SearsCL.Theemergingclinical impor-tanceofnon-O157Shigatoxin-producingEscherichiacoli.Clin InfectDis.2006;43:1587---95.
28.JuW,ShenJ,ToroM,ZhaoS,MengJ.Distributionof pathogeni-cityislandsOI-122OI-43/48,andOI-57andahigh-pathogenicity islandinShigatoxin-producing Escherichiacoli.ApplEnviron Microbiol.2013;79:3406---12.
29.Krishnan C, Fitzgerald VA, Dakin SJ, Behme RJ. Laboratory investigation of outbreak of hemorrhagic colitis caused by EscherichiacoliO157:H7.JClinMicrobiol.1987;25:1043---7.
30.LeottaGA,ChinenI,EpszteynS,MiliwebskyE,MelamedIC, Mot-terM,Ferrer M,MareyE,RivasM.Validación deunatécnica dePCRmúltipleparaladeteccióndeEscherichiacoliproductor detoxinaShiga.RevArgentMicrobiol.2005;37:1---10.
31.Leotta GA,Miliwebsky ES,Chinen I,Espinosa EM, Azzopardi K, TennantSM,Robins-Browne RM,Rivas M.Characterisation of Shiga toxin-producing Escherichiacoli O157 strains
isola-Cómocitar este artículo:Oderiz S, etal. Detección y caracterización deEscherichia coli productor de toxina Shiga en ni˜nos atendidos en un hospital pediátrico interzonal de la ciudad de La Plata. Rev Argent Microbiol. 2018. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.08.008
ARTICLE IN PRESS
+ModelRAM-247; No.ofPages10
10 S.Oderizetal.
tedfromhumansinArgentinaAustraliaandNewZealand.BMC Microbiol.2008;8:46.
32.LópezEL,ContriniMM,GlatsteinE,GonzálezAyalaSE,Santoro R,EzcurraG,TeplitzE,MatsumotoY,SatoH,SakaiK,Katsuura Y,HoshideS,MoritaT,HarningR,BrookmanS.Anepidemiologic surveillanceofShiga-liketoxin-producingEscherichiacoli infec-tioninArgentineanchildren:RiskfactorsandserumShiga-like toxin2values.PediatrInfectDisJ.2012;31:20---4.
33.LouieM,deAzavedoJC,HandelsmanMY,ClarkCG,AllyB,Dytoc M,BruntonJ.ExpressionandcharacterizationoftheeaeAgene productofEscherichiacoli serotypeO157:H7.Infect Immun. 1993;61:4085---92.
34.MinisteriodeSaluddelaNación.BoletínIntegradode
Vigilan-ciaN.◦ 329---SE39:102-124.2016[enlínea;consultado18
Mar2017].Disponibleen:http://www.msal.gob.ar/images/sto
ries/boletines/Boletin-Integrado-De-Vigilancia-N329-SE39.pdf. 35.NataroJP,KaperJB.DiarrheagenicEscherichiacoli.Clin
Micro-biolRev.1998;11:142---201.
36.Niskanen T, Ciaravino G, Takkinen J. Surveillance of seven
priorityfoodandwaterbornediseasesintheEU/EEA2010-2012;
2015[enlínea;consultado18Mar2017].Disponibleen:http://
ecdc.europa.eu/en/publications/Publications/food-and-water borne-diseases-surveillance-report.pdf.
37.Organización Mundial de la Salud. Enfermedades diarreicas.
NotadescriptivaN.◦ 330abril2013[enlínea;consultado18
Mar 2017].Disponibleen: http://www.who.int/mediacentre/
factsheets/fs330/es/.
38.Paton JC, Paton AW. Pathogenesis and diagnosis of Shiga toxin-producingEscherichiacoliinfections.ClinMicrobiolRev. 1998;11:450---79.
39.Prado V, Cavagnaro SM. Síndrome hemolítico urémico aso-ciadoainfecciónintestinalporEscherichiacoliproductorade shigatoxina (STEC)en pacienteschilenos: aspectosclínicosy epidemiológicos.RevChilInfectol.2008;25:435---44.
40.RiechmannER,TorresJB,RodríguezMJL.Diarreaaguda.
Pro-tocolos diagnóstico-terapéuticos de Gastroenterología
Hepa-tología y Nutrición Pediátrica SEGHNP-AEP. 2014;2:11---20.
[enlínea].Disponibleen:http://www.aeped.es/documentos/
protocolos-gastroenterologia-hepatologia-y-nutricion
41.Rivas M,MiliwebskyE,ChinenI,DezaN, LeottaGA.La epi-demiologíadelsíndromeurémicohemolíticoenlaArgentina.
Diagnósticodelagenteetiológico,reservoriosyrutasde trans-misión.Medicina(BuenosAires).2006;66:27---32.
42.Rivas M, Padola NL, Luchessi PM, Masana M. Diarrheagenic EscherichiacoliinArgentina.En:TorresAG,editor.Pathogenic EscherichiacoliinLatinAmerica.1steditionBenthamE-Book; 2010.p.142---61.ISBN:978-1-60805-192-2.
43.Rivero MA, Passucci JA, Rodriguez EM, Parma AE. Role and clinical course of verotoxigenic Escherichia coli infections in childhoodacute diarrhoea inArgentina. J Med Microbiol. 2010;59:345---52.
44.ScheutzF,TeelLD, Beutin L,Piérard D,Buvens G, Karch H, MellmanneA,CaprioliA,TozzoliR,MorabitoS,StrockbinegNA, Melton-CelsaAR,SanchezM,PerssonS,O’BrienAD. Multicen-terevaluationofasequence-basedprotocolforsubtypingShiga toxinsand standardizing Stx nomenclature. JClin Microbiol. 2012;50:2951---63.
45.SchroederCM,ZhaoC,DebRoyC,TorcoliniJ,ZhaoS,White DG,MengJ.AntimicrobialresistanceofEscherichiacoliO157 isolatedfrom humans,cattle, swine,andfood. ApplEnviron Microbiol.2002;68:576---81.
46.TarrPI,NeillMA,ClausenCR,WatkinsSL,ChristieDL,Hickman RO. EscherichiacoliO157:H7 and thehemolytic uremic syn-drome:Importanceofearlyculturesinestablishingtheetiology. JInfectDis.1990;162:553---6.
47.TomaC,EspinosaEM,SongT,MiliwebskyE,ChinenI,IyodaS, IwanagaM,RivasM.Distributionofputativeadhesinsin diffe-rentseropathotypesofShigatoxin-producingEscherichiacoli. JClinMicrobiol.2004;42:4937---46.
48.TorresAG,BlancoM,ValenzuelaP,SlaterTM,PatelSD,Dahbi G,BlancoJ.Genesrelatedtolongpolarfimbriaeofpathogenic Escherichiacolistrainsasreliablemarkerstoidentifyvirulent isolates.JClinMicrobiol.2009;47:2442---51.
49.TylerSD,JohnsonWM,LiorH,WangG,RozeeKR.Identification ofverotoxintype2variantBsubunitgenesinEscherichiacoliby thepolymerasechainreactionandrestrictionfragmentlength polymorphismanalysis.JClinMicrobiol.1991;29:1339---43.
50.ZhangL,LevyK,TruebaG, CevallosW,TrostleJ,Foxman B, MarrsCF,EisenbergJN.Effectsofselectionpressureandgenetic associationontherelationship between antibiotic resistance andvirulenceinEscherichiacoli.AntimicrobAgentsChemother. 2015;59:6733---40.