SCMIMC
Societat Catalana de Malalties Infeccioses i Microbiologia Clínica. Febrer 2010
Mateu Espasa
Microbiologia, UDIAT-CD Corporació Sanitària Parc Taulí
DIAGNÒSTIC DE LA RESISTÈNCIA
EN TUBERCULOSI
ANTIBIOGRAMA MOLECULAR TB
I. OBJECTIU:
9 Conèixer possible utilitat antibiograma molecular en TB II. INTRODUCCIÓ:
9 Gens associats a resistència
9 Situació epidemiològica resistència (Mundial/Catalunya) 9 III. AVALUACIÓ TÈCNIQUES EXISTENTS:
9 Tècniques amplificació àcids nucleics-hibridació 9 Avantatges vs Desavantatges
IV. CONCLUSIONS:
9 Tècniques detecció directa fiables
9 Genotip vs fenotip sensibilitat
BASES MOLECULARS RESISTÈNCIA I
FÀRMAC GEN / PROTEÏNA
ACCIÓ MUTACIONS FREQÜÈNCIA
MUTACIONS
ISONIAZIDA katG
/ catalasa- peroxidasaactivació isoniazida • codó 315 (AGC-ACC: Ser-Thr).
• deleccions parcials del gen.
30-50%
inhA
/ reductasa transportadora grups acil-enoilsíntesi àcids micòlics paret micobacteriana, enzim NADH
depenent. Àc. nicotínic bloqueig de la zona d’ unió
NADH
• zona reguladora del gen, extrem 5’ (zona d’unió del ribosoma) -
posició -15 (C*T).
• mutacions gen estructural.
15-30%
zona intergènica oxyR-ahpC
oxyR - gen regulador ahpC - activitat peroxidasa
En MTC inactius per mutacions de base
• presència de mutacions en la zona intergènica - activació síntesi gen ahpC. Mutacions de
compensació - mutacions katG
5-10%
kasA / sintetasa transportadora
de grups alkil
síntesi àcids micòlics paret micobacteriana
• mutacions en els codons 66, 269, 312, 413.
(dubtosa la seva relació amb resistència)
5%
BASES MOLECULARS RESISTÈNCIA II
FÀRMAC GEN / PROTEÏNA
ACCIÓ MUTACIONS FREQÜÈNCIA MUTACIONS
RIFAMPICINA rpoB / síntesi subunitat β ARN
polimerasa
Transcripció - síntesi protèica
• zona codons 432-458:
c. 456 (Ser-Leu) / c. 451 (His-Lys) / c. 441 (Val-Asp)
95%
PIRAZINAMIDA pncA / pirazinamidasa
activació pirazinamida, medi àcid
• mutacions o deleccions en una zona de 186aa.
70%
ETAMBUTOL embB
/ arabinosiltransferasa -
proteïna transmembrana
transport àcids micòlics - síntesi paret micobacteriana
• codó 306 (Met-Ile/Val) 50-70%
ESTREPTOMICINA
rrS / 16S ARNrtraducció - síntesi protèica
• nucleòtids 530 i 915 - zona interacció proteïna
12S rib.
5-10%
rpsL / proteïna
ribosomal 12S
Traducció - síntesi protèica
• codons 43 i 88 (AAG- AGG; Lys-Arg)
50-60%
QUINOLONES
gyrA / subunitat AADN girasa
superenrollament ADN • mutacions zona 40aa - codons 90-94
40-80%
9 Resistència apareix des de introducció d’antibiòtics antiTB.
9 Dècada ‘90 brots MDR-TB → “Emergència Mundial” (OMS-1993)
9 4th WHO Antituberculosis Drug Resistance report (2002-2007)
9 50% de MDR-TB → Xina i India.
9 7% de MDR-TB → Rússia.
9 Major proporció de MDR en casos nous Æ Països ex-URSS Azerbaijan (22,3%) i Moldàvia (19,4%).
9 XDR-TB → 37 països (països ex-URSS >25 casos)
EPIDEMIOLOGIA MUNDIAL RESISTÈNCIES TB
CASOS NOUS CASOS TRACTATS GLOBAL R total 17% (8-12) 35%(24-46) 20% (16-24)
INH-R 10%(8-12) 27.7% (19–37) 13%(16-24)
MDR-TB 3%(2-4) 15%(10-21) 5%(4-7)
EPIDEMIOLOGIA MUNDIAL RESISTÈNCIES TB
EPIDEMIOLOGIA MUNDIAL RESISTÈNCIES TB
PREVALENÇA RESISTÈNCIA CATALUNYA (2005-07)
Tractats (n=310) Nous (n=4.566)
Registre de Catalunya – Departament de Salut (Anna Rodés)
Soques INH i/o RMP resistents: nous – n=165 / tractats – n=34
INH (n=92) RMP (n=19)
Diana No. Soc. % Diana No. Soc. %
inhA 24 26,1 rpoB 17 89,5
katG 44 47,8 Wild Type 2 10,5
inhA + katG 3 3,3
Mutació més freqüent S531L
Wild Type 21 22,8 Mutacions més freqüents C15T (katG) i S315T1 (inhA)
MDR (n=18)
Diana No. Soc. %
rpoB 16 88,9
inhA 3 16,7
katG 15 83,3
PREVALENÇA RESISTÈNCIA CATALUNYA (2005-06):
Mecanismes Genètics Resistència
y INH-R potencialment detectables Æ 77%
y RIF-R (MDR-TB) potencialment detectables Æ 90%
AVALUACIÓ TÈCNIQUES I.
Tècniques amplificació ADN i hibridació sondes
9 Ruiz M. et al. J Clin Microb, 2004, 42(4).
Direct Detection of Rifampin- and Isoniazid-Resistant Mycobacterium tuberculosis in Auramine-Rhodamine-Positive Sputum Specimens by Real-Time PCR.
• 205 mostres clíniques BK positiu (108 pacients/17 soques resistents)
• Detecció resistència INH (katG/inhA): sensibilitat global 54%! i especificitat 100%.
• Detecció resistència RIF (rpoB) sensibilitat i especificitat 100%. DETECTA 100% MDR-TB.
9 Marin M et al. Antimicrob Agents Chemother 2004; 48.
Rapid direct detection of multiple rifampin and isoniazid resistance mutations in Mycobacterium tuberculosis in respiratory samples by real-time PCR.
• Optimització PCR temps real per detecció resistència a RIF (rpoB) i INH (katG) en mostra clínica.
• Bona sensibilitat per mostres BK+ i 100% especificitat.
9 Espasa M, et al. J Antimicrob Chemother. 2005, 55(6).
Direct detection in clinical samples of multiple gene mutations causing resistance of Mycobacterium tuberculosis to isoniazid and rifampicin using fluorogenic probes.
• 226 mostres clíniques BK positiu i negatiu (181 pacients/55 soques resistents)
• Detecció resistència INH (katG/inhA): sensibilitat 95% (50% global) i especificitat 100%.
• Detecció resistència RIF (rpoB) sensibilitat i especificitat 100%.
• Sensibiltat en la detecció global de resistència 74% pacients resistents.
y “Casolans” mostres clíniques: Sondes d’ADN fluorescents
AVALUACIÓ TÈCNIQUES II.
Tècniques amplificació ADN i hibridació sondes
9 Aragón LM. et al. J Antimicrob Chemother 2006. 57.
Rapid detection of specific gene mutations associated with isoniazid or rifampicin resistance in Mycobacterium tuberculosis clinical isolates using non-fluorescent low-density DNA microarrays.
• Estudi de 46 soques resistents: 41 INH-R (katG/inhA) i 16 RIF-R (rpoB).
• Soques INH-R, concordància 100% per katG i 95% per inhA. Global INH-R 62%
• Soques RIF-R, concordància 93.8% per rpoB.
y “Casolans” soques MTB: “Low Cost and Density (LCD) Microarrays”
AVALUACIÓ TÈCNIQUES III.
Tècniques amplificació ADN
9 Pietzka AT. et al. J Antimicrob Chemoterap 2009, 63.
Rapid identification of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates by rpoB gene scanning using high-resolution melting curve PCR analysis.
• Estudi de 49 soques MDR-TB. Avaluació només RIF-R (rpoB).
• Sensibilitat del 95.9% , especificitat del 100% i VPN/VPP del 100%.
y “Casolans” soques MTB: “High Resolution Melting (HRM) curves”
AVALUACIÓ TÈCNIQUES IV.
Tècniques amplificació ADN i hibridació sondes
9 Helb D. et al., J.Clin.Microb. 2010,48(1).
Rapid Detection of Mycobacterium tuberculosis and Rifampin Resistance by Use of On-Demand, Near-Patient Technology.
9 Cepheid Announces New Diagnostic Technology to Aid World Efforts in Halting the Spread of Mycobacterium tuberculosis (TB)
¾ Estudi sensibilitat (107 mostres Vietnam):
9 100% sensibilitat BK+
9 71% sensibilitat BK- 9 100% especificitat
¾ Estudi detecció Rif-R (64 mostres Uganda):
9 100% sensibilitat (9 soques Rif-R) 9 100% especificitat
y Comercials mostres clíniques: “GenXpert® MTB/Rif (Chepeid)”
AVALUACIÓ TÈCNIQUES V.
Tècniques amplificació ADN i hibridació sondes
y Comercials mostres clíniques II: “INNOLIPA Rif.TB® (Innogenetics)”
9 Traore H. et al. J Clin Microbiol. 2006 44(12)
.Direct detection of Mycobacterium tuberculosis complex DNA and rifampin resistance in clinical specimens from tuberculosis patients by line probe assay.
9 Tortoli E. et al. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2007 26(1).
Use of the INNO LiPA Rif.TB for detection of Mycobacterium tuberculosis DNA directly in clinical specimens and for simultaneous determination of rifampin susceptibility.
9 Quezada CM. et al. J Clin Microbiol. 2007 45(9).
Implementation validation performed in Rwanda to determine whether the INNO-LiPA Rif.TB line probe assay can be used for detection of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis in low-resource countries.
9 Ogwang S. et al. BMC Infect Dis. 2009 26(9).
Comparison of rapid tests for detection of rifampicin-resistant Mycobacterium tuberculosis in Kampala, Uganda.
9 Acuna-Villaorduna C. et al. Clin Infect Dis. 2008 47(4).
Cost-effectiveness analysis of introduction of rapid, alternative methods to identify multidrug-resistant tuberculosis in middle-income countries.
9 Ling DI. et al. Eur Respir J. 2008, 32(5).
GenoType MTBDR assays for the diagnosis of MDR-TB: a meta-analysis.
AVALUACIÓ TÈCNIQUES VI.
Tècniques amplificació ADN i hibridació sondes
9 Bang D. et al. J Clin Microb, 2006, 44(7).
Rapid Genotypic Detection of RIF and INH-R M.tuberculosis Directly in Clinical Specimens.
9 Somoskovi A. et al. J Clin Microb, 2006, 44(12).
Use of Smear-Positive Samples To Assess the PCR-Based Genotype MTBDR Assay for Rapid, Direct Detection of the M.tuberculosis Complex as Well as Its Resistance to INH and RIF.
9 Hilleman D. et al. Int J Tuberc Lung Dis, 2006, 10 (9).
Application of the Genotype MTBDR assay directly on sputum specimens.
9 Hillemann D. et al. J Clin Microb, 2007, 45(8).
Evaluation of the GenoType MTBDRplus Assay for Rifampin and Isoniazid susceptibility Testing of Mycobacterium tuberculosis Strains and Clinical Specimens.
9 Lacoma A. et al. J Clin Microb, 2008, 46(11).
Genotype MTBDRplus Assay for Molecular detection of riframpin and isoniazid resistance in M.tuberculosis strains and clinical samples.
9 Miotto P. et al. J Clin Microbiol, 2008, 46
Genotype MTBDRplus: a further step toward rapid identification of drug-R M.tuberculosis.
9 Barnard M. et al. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2008, 177.
Rapid molecular screening for multidrug-resistant tuberculosis in a highvolume public health laboratory in South Africa.
9 Nikolayevskyy V. et al. BMC Clin Pathol 2009, 9(2).
Performance of the Genotype® MTBDRPlus assay in the diagnosis of tuberculosis and drug resistance in Samara, Russian Federation.