Estudio preliminar de la alimentacion de las larvas de Cancer antennarius (Crustacea, Brachiura) en condiciones controladas.

ESTUDIO PRELIMINAR DE LA ALIMENTACION DE LAS LARVAL

DE

Cuncer antennarius

(CRUSTACEA, BRACHIURA)

EN CONDICIONES CONTROLADAS

A Denise Re A. Y

L. Fernando Bückle R.*

Centro de Investigación Científica y Educación Superior de Ensenada, Baja California ( CICESE ) Apdo. postal 2732, Ensenada. B.C.. México.

RESUMEN

Cultivos de larvas de

Cancer antennurius

fueron alimentados con yema de huevo,

Skeletonema costatum,

Protein 96, alimento para gato comercial (Cat Chow), y sus combinaciones, en concentraciones de 0.007 ó 0.001 mg/l. También se ensayó suministrando

Branchionus plicatilis

en densidades progresivas. En ésta investigación se alcanzó el estadío Zoea III con una sobrevivencia de un 0.38 o/o al dieciochoavo día. Se diseñó un sistema experimental especial para controlar la densidad del alimento y el cambio continuo de agua de los acuarios.

ABSTRACT

Larvas culture of

Cancer antennarius

were fed with egg yolk,

Skeletonehza

costatum,

Protein 96 and commercial cat food (Cat Chow). These food items were provided single or combined in concentrations of 0.001 or 0.007 mg/l.

Brachionus plicatilis,

provided in progressive higher densities, was also tested. In

this work, Zoea III was attained with a survivorship of 0.38 o/o at the eighteenth day. A special experimental system was design to control food densities and con- tinous water exchange in the aquaria.

INTRODUCTION

El litoral del Pacífico y Golfo de California en las zonas correspondientes a los estados de Baja California y Baja California Sur de México, se han distinguido por su gran variedad de especímenes marinos de alto valor nutritivo, entre los cua- les se encuentra

Cancer antennuhs

que ha sido explotado en cantidades relativa- mente bajas.

Durante los años 1971 y 1975 la recolección de tenazas de

C. antennarius

en Baja California Norte fue superior a los tres años intermedios. A partir del últi-

CIENCIAS MARINAS (Méx.) V. 9 ll), 1983 77-97 (21)

77

mo, hubo un aumento gradual de las pesquerías, alcanzando en 1978 una produc- ción de un 70 o/o más alta de la observada en 1976. Así en ocho años estadís- ticos, el promedio extraído fue de 29.5 toneladas por año (Fig. 1) (com. pers. Departa&ento de Pesca del Estado, Ensenada, B.C.). -

v> 55 N s 45 r

35 s 2 25 0, 15 z c 5

71 72 73 74 75 76 77 70

Fig. 1. Producción anual de tenazas de jaiba en el Municipio de Ensenada, Baja California.

Fig. 2. Distribución geográfica de Oazcer ante-

Deniee Re-Buckle

C. antennarius

vive en sustratos arenosos, rocosos y lodosos (Fig. 2), tiene diferentes nombres vemaculares dependiendo del lugar de origen, por ejemplo, “cangrejos de roca” o “jaiba” como se le denomina en Baja California Norte (México).

Las observaciones de campo y laboratorio indican que el desove y la madu- ración de los huevos de esta especie, ocurre principalmente entre abril y septiem- bre. En los otros meses, las hembras maduras son más bien escasas y se localizan en lugares hondos cerca de la costa, sin embargo, en la Bahía de Todos Santos (Lat. 31° 40’ N, Long. 116O 36’ W) es osi p bl e encontrar jaibas ovígeras todo el Ciño.

Las hembras fertilizadas desovan después de seis o siete meses, hecho direc- tamente comprobado en el laboratorio. Los huevos son adheridos a los pleopodos, donde con los pereiópodos se realiza un cuidado meticuloso para permitir una

adecuada aireación y protección durante el desarrollo embnológico. Los huevos tienen una coloración inicial anaranjado brillante que a medida que se forma la larva cambia a diferentes tonalidades de gris, debido a la reabsorción del deuto- plasma.

La Aquacultura para ser rentable requiere de un número inicial apreciable de larvas para obtener una producción masiva de animales metamorfoseados. Hasta el momento sólo se ha llegado en contadas ocasiones en el género Cancer al esta& Megalopa. Anderson y Ford‘ (1976); Trask, (1970); Sastry, (1977a); Poole;(1966); Mir, (1961); Buchanan y MiNeman, (1969); Roesijadi, (1976) y Sastry (1977b) h an descrito algunos estadíos de desarrollo de las larvas de Cuncer SPP.

También se ha estudiado el crecimiento de las larvas de

Cancer magister

(Reed, 1969)

y

de

C.anthonyi

(Anderson y Ford, 1976), como los adultos de C. pugurus (Bennet, 1973) y de C.

magister

y C. pagurwentre otros (Hartnoll,

1974). Además se ha investigado el consumo de oxígeno de las larvas de C. pro-

ductus y Panuhs

interruptus

por Belman y Childress en 1973. Las investiga- ciones relativas a este género son muchas, pero en particular en relación a C.

antennarius

y específicamente en los problemas de alimentación de los estadíos larvales, no ha sido estudiado sistemáticamente y constituye un aspecto fundamen- tal de la depuración de una técnica Aquacultural.

La

Artemia salina

(Anderon y Ford, 1976; Poole, 1966; Trask, 1970;

Sastry, 1977a) fue utilizada como alimento principal en el cultivo de larvas de

Cancer magister, C.

antennatius,

C. anthonyi y

C. irroratus. También se han usado otros alimentos menos comunes como huevos de

Arbacia sp

(Mir, 1961); el pri- mer estadío nauplio de

Balanus tintininnabulum y B. amphitrite;

Te tramin (alimento para alevines) mejillón molido

Mytihs spp.

(Reed, 1969) e hígado de

Skeletonema costatum

y Thallasiosira pseudonana

a una densidad de 25,000 cel/ml (Fisher y Nelson, 1977).

Con todos estos antecedentes se planteó buscar alimentos más adecuados para cultivar las larvas de

Cancer

antennarius

y tratar de optimizar el cultivo desde la larva Zoea 1 hasta Megalopa, con la consideración de aumentar la materia orgá- nica presente en el agua de mar (0.005 mg/l (Jorgensen, 1954).

En México hasta el momento no se ha encontrado ninguna información en relación al cultivo de larvas o de adultos de esta especie. En este trabajo se descri- ben las primeras experiencias mexicanas de cultivo de larvas de C.

antennatius.

MATERIALESYMETODOS

Debido a la importancia que tiene el estado fisiológico de los huevos para la realización de experimentos dirigidos al cultivo de larvas, se tomaron medidas pre- ventivas consistentes en efectuar la recolección de los machos y las hembras ovíge- ras al amanecer, controlar las condiciones básicas y evitar el stress por manipula- ción mecánica. Para ésto se dispuso de un termómetro, un oxigenómetro y hiele- ras que contenían bolsas con agua de mar congelada. En las hieleras se controla- ban las condiciones de oxígeno disuelto y temperatura durante el traslado de los animales al laboratorio, ubicado aproximadamente a cuatro kilómetros del lugar de pesca.

Las hembras seleccionadas para los experimentos fueron aquellas cuyos huevos tenían una coloración anaranjado brillante, La aclimatación de los anima- les y las condiciones de laboratorio, se hizo incrementando la temperatura del agua gradualmente y a intervalos regulares (1 grado C cada dos horas).

Para hacer observaciones etológicas, algunas hembras y machos fueron re- tenidos en cautiverio, en un filtro biológico en sustrato arenoso v de una ranari-

dad de 800 1 aproximadamente. En este acuario fue posible observar la cópula de dos parejas.

Denise Re-Buclde

I

-16a

Fig. 3.1. Estanque de fibra de vidrio de 1 Ton; 2.- Base de madera, 3.- Estructura de acrílico; 4.- Anillo de soporte ABS; 5.- Bolsa de polietileno; 6.- Embudo; 7.- Manguera de aire; 8.- Malla, 9.- Llaves de paso; lo.- Filtro de aire seco; ll.- Transformador; 12.- Bomba de aire; 13.- Distribuidor de aire seco; 14.- Bombas paristálticas; 15.- Motobomba; 16.- Torre de acrílico; 16a.- Aireador; 17.- Filtro de algodón plástico; 18.- Cámara de distri- bución; 19.- Rebalse; 20.- Control de niveles; 21.- Suministro de agua; 22.- Niveles de agua; 23.- Cajas alimentadoras; 24.- Motor.

una malla de 100 micras cuya función es permitir la salida del a‘gua de recambio (Fig. 3-8). Los acuarios tienen una capacidad de cuatro litros que pueden ser regu- lados al volumen que se requiera. Ocupan un espacio mínimo por lo que es posible

instalar sobre el soporte de acrílico 96 acuarios, lo que redunda en una gran ampli- tud de posibilidades experimentales.

tro (Fig. 3-l 7). El agua se transfiere a una cámara de distribución (Fig. 3-18) que mantiene una capacidad constante de agua con el rebalse (Fig. 3-19) para uni- fomar el fluido de 80 mangueras, 40 en cada lado del sistema. El agua baja a cada uno de los acuarios por una red de tuberías que recorren todo el sistema. De esta manera el goteo constante (8 ml/min) incrementa el nivel de agua en cada acuario y en conjunto elevan el del estanque (Fig. 3-22).

Fuera del estanque se instaló un sistema de control de niveles, (Fig. 3-20) regulado por un mecanismo de sifón, que se acciona cuando la altura del agua su- be a un punto prefijado. Este sistema ofrece las ventajas de mantener una limpie- za constante del acuario, eliminando los catabolitos y el alimento que no fue in- gerido por los animales cultivados.

El aire se inyectó con una bomba “Conde” (Fig. 3.12) en cuyo recorrido se secó y filtró en una unidad de vidrio (Fig. 3-10) rodeada de una resistencia electri- ca conectada a un transformador de 20 Watts (Fig. 3-l 1). La resistencia mantiene la unidad caliente y el aire que circula se seca y se filtra con carbón activado antes de entrar al sistema de acuarios. El objetivo de esta unidad es evitar que el sistema se humedezca y se contamine con protozoos. El aire filtrado pasa por una válvula de regulación general (Fig. 3-9) a un distribuidor (Fig. 3-13) que lo reparte unifor- memente a cada uno de los acuarios (Fig. 3-7).

Para dosificar el alimento de las larvas, se instalaron ocho cajas de acrtlico de cuatro litros de capacidad cada una (Fig. 3-23). Cada caja tiene una paleta de acrílico movida por un mecanismo de poleas y accionado por un motor de l/lOO HP de 32 RPM (Fig. 3-24). De las ca.jas salen cinco mangueras conectadas a las bombas peristáJticas (Fig. 3-14) de veinte canales cadauna (Manostat Modelo Stan- dard de 115 Voltios). Los alimentos impulsados por las bombas peristálticas se di- rigieron a través de mangueras (1/16 de pulgada) a cada acuario y su reparto se hi- zo al azar.

Cada alimento fue representado por una letra mayúscula; A, B,

C,

en el pri- mer experimento y A’, B’ , C’ en el segundo. Las concentraciones de alimentos

ensayadas de 100 O/o, 50 O/o, 33 o/o, 0 o/o y sus réplicas se indican en la Tabla 1.

Denise Re-Buekle

Tabla 1. Distribución de la concentración (O/o) de los alimentos. Los tra- tamientos se indican en la columna de la izquierda. A,B,C, ali-

mentos; “1” testigos.

La eclosión de las larvas demoró aproximadamente 24 hs y por lo general se iniciaba al atardecer o en la noche. Las larvas recien eclosionadas mudan de Pre Zoea a Zoea 1 en los primeros 15 minutos (Mir, 1961; Buchanan y Milleman,

1969

j.

Para conocer el número de larvas del cultivo, el contenido del estanque de eclosión se uniformó. Las muestras (cinco ahcuotas) se colectaron con una botella de Van Dom modificada a un volumen de 36 ml (Buckle et al. 1976) El volumen del muestreador se calculó (Cochran, 1978) con el conocimiento previo del núme- ro inicial de larvas que se iban a cultivar y a la capacidad de agua de los acuarios de experimentación. Una vez estimada la densidad promedio de larvas en el estan- que de eclosión se procedió a calcular una ahcuota, que transferida a los acuarios de experimentación (Fig. 3-5) diera la concentración deseada.

Tabla 2. Combinación de aIimentos proporcionados aI primero (1) y al segundo (II) experimen- to. Vit. C.- Vitamina C; AI./gato.- Alimento para gato (Cat Chow); Skeletonema-

Skeletonema costatum; “I”.- Testigo.

TRATAMIENTOS EXPERIMENTO 1

A B C ABC AB BC CA ” 1”

Yema AI./Goto Skeletonemo Yema Yema AI./Goto Skeletonemo

Vil. c vit. c Vitomina C Al. / Gato A I./Goto Skeletonemo Yerno vit. c Skeletonemo Vitamina C Vitamina C Vitomino C

Vitomino C

TRATAMIENTOS EXPERIMENTO II _I

A' 8' c' ABC ' AB ' BC ’ CA’ ” 1,”

Yema Brochionus Protein 96 Yema huevo

Brochionus Yema huevo Brochionus Protein 96 de huevo pljcatillis Colesterol _plicotillis Brochionus plicatillis Yem 0 Coles- Colesterol Colesterol

Protein 96 plicotillis Colesterol Colesterol ter0l Colesterol Colesterol Protein 96

En el primer experimento se proporcionó yema de huevo, comida para gato comercial (Cat Chow) y Skeletonema costatum. De los dos primeros se pesaron 7.6 gr y se diluyeron en 9.333 1 de agua de mar filtrada y esterilizada con rayos ultravioletas para mantener dentro de los acuarios una concentración de 0.007 gr/l. A todos los tratamientos se les añadió ácido ascórbico en una proporción de 0.25 010 del peso del alimento seco. La administración del alimento se hizo con una velocidad de goteo de 1 ml/min, durante 48 horas. Al cabo de este lapso, el alimento se preparaba de nuevo y de tal forma que no hubiera una interrupción de más de media hora.

Los alimentos ensayados en el segundo experimento fueron yema de huevo, Protein 96 y el Rotífero

Brachionus piicatilis

cultivados según las indicaciones de Theilacker y McMaster, (1971). Los Rotíferos fueron administrados al ensayo en densidades progresivas. La concentración de yema de huevo y Protein 96 propor- cionada a las larvas fue de 0.001 gr/l.

Cada segundo día se tomaron dos muestras por acuario experimental; las larvas se transferían a cajas de Petri reticuladas, donde se determinaba el porcenta- je de sobrevivencia. Las muestras fueron fijadas con una gota de la solución histo-

Denise Re-Buekle

Tabla 3. Composición química de los alimentos probados experimentalmente.

ALIMENTO: YEMA DE HUEW

Protrino-.. 3

Groso---..-- -2

Corbohidrotbs 0

Calor;or~6

Ppso 9r.-- IS

ALIYENlO~#W~roww cosf~~uun

(Porsons,t96lJ

pk dr pwo wco + Kx) ng. dr cpl. 1

Proteinas 37.

Corbohidrotos 20.8

Grosa 4,7

Pi9nrnto WaI 1.6

Cenizos 39.

ALIMENTO: fjAT CttOW*

Rotrino crudo : 30%

Croso-.-- .~ _ 8%

fikr -- _.... ~~ 4 5% .

Yetclos --.-. - ____ 12 %

colcio-~-~-- 1.2%

fdsforo 1.0%

l

lnIngrpdipntps:trigo, IMÍZ, soyo, glutpn dp m&, Caso onimol, carne de pdlo, de pescado,

kvodum seco, gwrten de trigo, ritominos:

A,h,E Y 81s

( Yillikin, 1976 1

TomoRo promedio~9- 2M P

PIso promedio O.lbmg

Contrnido rnr&tco--- 8x ti:01 Contenido colÓrica~53j5fl39cof/gr.

ALIYENTO: PROTEIIY 96

Roftina (llbrt dr humedad 1 Nx 6.25 %.S%

Protrina (N x 6.25) SI.896

Disprrsibilidad rn agua 80-90 %

Aminoácidos Típicas

Aqinisa-- -2260 q fpnilolonino 1590 mg

Cistina 300 Y frronina 1060 mg

Histidino 750 mg Triptófono 42D l g

Isolwcino-- -1410 mg Tirosino III0 mg

Lisina33lO mg Valino- 10 mg

Metionina- . 330 mg

Con los resultados de la sobrevivencia larval (‘Q/o) versus tiempo, se hizo una gráfica por cada uno de los tratamientos alimenticios con el fin de calcular primero las pendientes (m) por pares de datos y obtener una pendiente promedio (r$ de cada tratamiento. Para el examen de la información se utilizaron los estadí- grafos Análisis de Varianza (ANVA) general, “A Priori” y “A Posteriori’* (Sokal y Rholf, 1969), (Schefler, 1969).

RESULTADOS

Se hicieron seis ensayos, de los cuales se reportan los dos mas relevantes y se describen como experimento 1 y II. En cuatro ensayos que no se informan (re- sultados no significativos), los alimentos que se probaron fueron almeja molida

Tivela stultorum,

levadura, una mezcla de harina de maiz, de trigo y de soya y un macerado de huevos de la jaiba

C. antennarius.

EXPERIMENTO 1

A una hembra ovígera colectada en la Bahía de Todos Santos, adaptada a las condiciones imperantes en el laboratorio le eclosionaron las larvas un 29 de ju- lio. Al día siguiente se agregaron a cada uno de los acuarios ( = 40) de experimen- tación 10 200 larvas en el estadío de Zoea 1 (3 larvas/ml). El cultivo se hizo a 23.0°C., con una concentración de oxígeno de 6.7 ppm.

Los alimentos proporcionados en este experimento fueron yema de huevo, comida para gato comercial y

Skeletonema costatum

en una densidad 200 000 cels/ml (Tabla 2).

En este experimento no se tuvieron evidencias de muda. El sexto día fue crítico y las poblaciones de larvas murieron.

En la Tabla 4 se muestran los resultados de sobrevivencia en los controles hechos en el tercero y quinto día de experimentación.

Denise Re-Buclde

Tabla 4. Sobrevivencia de las larvas C. antennorius del primer experimento, controlado al terce- ro y al quinto día.

Alimento A B C ABC AB BC CA

* q I A B C ABC AB BC CA II ”

I

REPLICAS

rl r2 r3 r4 r5 1 Tiempo(dÍos1

Sobreviven,fo t0t0t

-

52 125 17 56 57 3 59.69 %

66 35 27 43 25 3 38.11 %

71 36 55 82 46 3 56.38 o/o

55 38 23 35 3 33.25 %

32 19 17 :! 17 3 26.97 $,

76 19 48 18

72 BI 45 33

:i 3 39.13 %

3 56.14 %

54 79 70 32 28 3 57.11 %

2 I 0 0 13

I 0 3 2 l

I 0 0 0 0

II 18

9 l .e

15 40 15 l

6

% 5

2 E 4

I w 3 0. w c: 2

z 1

I

-1 -2 -3 -4 -5

I

LOGARITMO DE LA PENDIENTE PROMEDIO Ln iii

1

Tabla 5. Valores de las pendientes (m) y sus promedios (m) de cada tratamiento del experimen- to 1 calculados en base a los datos de sobrevivencia en el tiempo.

ALIMENTO A B C ABC AB BC CA ” 1 ”

m( pendientes) 0.54 0.94 0.56 1 .io 1.30 0.99 0.56 0.54

0.99 1.30 1.30 1.03 0.73 1.53 0.55

1.24 1.49 1.67 1 .oo 0.45 1.80 0.55

ll 3 3 3 3 3 3 3 1

iii (promedio) -0.91 1.24 I .18 1.04 _{-___} 0.83 1.44 0.55 0.54

S2 0.138 0.076 0.319 0.002 .o. 188 0.170 0.00003

Tabla 6. Análisis de Varianza de comparación de las pendientes promedio de sobrevivencia de todos los tratamientos alimenticios del experimento 1.

ANALIS IS “ANVA” EXPERIMENTO 1

Fuente de

Variación Ql. SS MS FS

Entre Grupos 7 1. 76 .25 14 1.9795

Intra Grupos 14 1.7892 . 1278

Total 2 I 3.549

b L

Denise Re-Buclde

Tabla 8. Proporción de Brachionus plicatilis versus larvas de C. antennarius que se administró pro-gesivamente al cultivo.

RotÍferos : Lorvos FECHA

Al B’ C’ ABC ’ AB’ BC’ CA’

25 de Enero 0 2:1 0 I:I I:I I :I 0

27 de Enero 0 7 :1 0 2.5 ! I 3.5:1 3.5:1 0

28 de Enero _{l 0} II: l 0 3.6:l 5.5: I 5.5:1 0

2 de Febrero _{I 0} 12:1 0 411 6: I 6:1 0

4 de Feblero ₁ 0 20: I 0 7:1 10.1 I O:I 0

EXPERIMENTO II

Otra hembra que había sido fecundada en el laboratorio el 13 de mayo, de- sovó el 13 de diciembre. Las larvas eclosionaron 39 días después. El estudio se ini- ció introduciendo 5000 larvas por acuario (1.4 larvas/ml). El experimento se con- dujo a 17.8OC y el oxígeno disuelto fue de 8.7 ppm.

En la Tabla 9 se indican los porcentajes de sobrevivencia larval en los con- troles hechos al cuarto y séptimo día, donde en el último se destaca el tratamiento B ‘con un 5.05 O/O de sobrevivencia del estadío Zoea 1.

Tabla 9. Sobrevivencia de las larvas de C. antennarius del ex- perimento II.

REPLICAS rl r2 r3

8 6 2 9 7 4 12 44 70

14 7 2 8 II 4 16 33 %

2 I I 5 l 4 3.88 %

13 10 2 14 10 4 zoco 1 1905 96

7 I I 2 23 2 4 2090 %

9 6 6 4 4 4 12.15 %

10 10 13 8 8 4 19 93 %

0 I 0 0 0 4 048% .

0 0 0 0 0 7 0 OO %

2 I 10 0 0 7 505 %

0 0 0 0 0 7 000 %

I I 0 0 0 7 077 %

2 3 2 2 0 7 zoco 1 4.37 %

0 0 0 0 0 7 0 00 %

0 0 0 0 0 7 000 %

0 00 0 0 7 0.00 96

1 0 0 0 0 10 0.38 %

0 1 I 0 0 10 zoeon 077 %

0 0 0 1 0 10 0388%

I 0 0 0 0 15

0 0 15 Zosa = 0.38 %

En la Fig. 5 se graficó el logaritmo de las pendientes promedio (Ln m) de sobrevivencia de las larvas en todos los tratamientos versus los días en que se hi- cieron los controles. Con ambos parámetros se calcularon las pendientes m que ex- presan una estimación de la sobrevivencia larval con respecto al tiempo (Tabla

10). En éste experimento los tratamientos en relación ala sobrevivencia de las lar- vas fueron significativos al 0.05 o/o p = 0.05 (6,40) = 2.34; Fs = 4.38](Tabla

ll).

-; -; -4 -5 -6

LOGARITMO DE LA PENDIENTE PROMEDIO i

Fig. 5.- Coutrastación de las pendientes promedio de sobrevivencia para cada combinación ali- menticia del experimento II venus días de.control.

Denise Re-Buclde

chlis) en este experimento. Sin embargo, todos los tratamientos que tienen como

componente al Rotífero son también buenas combinaciones (Tabla 12).

Tabla 10. Valores de las pendientes (m) y sus promedios (m) de cada tratamiento del experimento II, calculados en base a los datos de sobrevivencia en el tiempo.

ALIMENTO A’ El’ C’ ABC ’ AB’ BC’ CA’

n (pendientes) 1. 02 0.89 1.61 0.80 0.70 1.06 0. 80

0.56 1.06 0.92 0.63 0.498

0.66 0.70 0.76 0.53

0.35 0.56 0.43

0 90 1.00 0. I I

0.36 0.35 0.53

053 0.093 0.37

.0.37. 0.74 0.4 I

0.47 0.50 0 29

0.55 0.35 0.34

0.32 0.20 0.48

0.29 0.094 0.38

0. 10 0.23

0.48

n I 14 3 12 13 2 I

ii (promedio) _{102 0.488 I 12 0.530 0.4238 1.186 0.80}

S2 - 0 049 0.2079 0.99 0.0299 0.569 -

Tabla ll. Análisis de Varianza de comparación de las pendientes promedio de sobrevivencia de todos los tratamientos alimenticios del experi- mento II.

I

1

ANALISIS DE VARIANZA EXPERIMENTO ñ

Fuente de variaciÓn g. 1. 5. s. m. s. f. 5.

SS entre grupos 6 1.641 0.2735 4.383

SS intro grupos 40 2.496 0.0624

IOftll 46 4.137

F 0.05 (6,401 2.34 4.383"

F 0.01 (6,401 3.29 4.383*+

Tabla 12. Prueba de comparación Múltiple “A Posteriori” de las pendien- tes promedio de sobrevivencia larval para todos los tratamientos alimenticios del experimento II.

t

ANALIS A POSTERIORI EXPERIMENTO ã

I 2 3 4 5

n 13 14 12 2 j

n (- 0.4238 0.488 0. 5 3 0.779 I. 120

I 13 0.4238 -

2 14 0.488 0.642 -

3 12 0.53 0.1062 0.42 -

4 2 0.779 0.3552 0.291 0.249 -

5 3 1.120 0.6962* 0.632* 0.59* 0.341 -

AB’ Et’ ABC’ 8C” C’

I 1 2 3 4 5

C’ es significa tivamcnte diferente de los demos tratamientos.

C = Protein 96 * significativo

L

DISCUSION

El sistema de cultivo diseñado en la investigación de una biotecnia para las larvas de C.

antennarius

desde el punto de vista de la Aquacultura, se aleja de aquellos donde las metas son describir cada uno de los estadíos larvales de las es- pecies estudiadas para lo cual se recurre a densidades muy bajas de larvas (Roesi- jadi 1976; Poole, 1966). En el primer experimento de esta investigación se utiliza- ron 408,000 y en el segundo 200,000 larvas. Pese a la gran cantidad de animales que entraron a los experimentos, estos aun se encuentran aun nivel exploratorio y no constituye la biotecnia definitiva, debido a que es necesario investigar otras relaciones igualmente importantes como son, el efecto de la variación de la tempe- ratura y la salinidad en la sobrevivencia de los diferentes estadíos larvales. El siste- ma de cultivo ideado en esta investigación puede transformarse para esos objeti- vos.

Deniae Re-Buckle

rimentos. Fue claramente evidente (en el segundo experimento) que los progenito- res adaptados a las condiciones de laboratorio, desde el apareamiento hasta la eclosión de las larvas, generaban individuos con mayor probabilidad de sobreviven- cia durante los primeros estadíos larvales como se reflejó en los tratamientos B’ y AB ’ .

La sobrevivencia indicada para otros cultivos de

Cancer

spp., en primera

etapa Pre-Zoea a 1 CF un 30 (Poole, 1966). (1970) refiere

sobrevivencia de 50 010 en estadíA Zoea cuando la

tamorfosis estadío Megalopa también que alta puede

debido las que la para del Es

nectes

idus

sobrevivencia las Zoeas su natural, supera

5 lo- o/o 1978). y (1976), que presen-

de epibiónticos los de mortalidad en na-

Nilson al. indican la en laboratorio, causa-

por de bacteriano impiden intercambio a

vés la del y la larval, las de bran-

o por hongos formas aprisionan apéndices

las Durante examinación las algunas estaban

das hongos adheridos estructuras exoesqueleto. hongos

constituyeron factor regulación la de experimen-

En experimento las se con de (Cat

Skelectonema

y de (Tabla a concentración

0.007 Los estadísticos que combinación yema hue-

y era para sobrevivencia las del Zoea

(Tabla Pese la mortalidad larvas hubo este la

vencia al día los de a 1 mas

ta la por op. (x 460/ DS 13). quinto la

vivencia todos tratamientos de promedio 5 O/O DS = 6 (Tabla 4).

Se estima que la alta mortalidad detectada en el tercero y quinto día de control, se debió en gran medida a la calidad del alimento que pudo repercutir en las larvas que se enfrentan a la ecdycis y a la alta temperatura del agua (23OC). Sin embar- go, cabe destacar que en el quinto día de control se comprobó en el tratamiento en que se combinó

Skeletonema costatum

con yema de huevo (Tabla 4), una so- brevivencia de Zoea 1 de un x = 19.20 O/O. En el control antes referido, los ali-

mentos indicados, adicionados en forma pura a las larvas, solo permitieron en el primero una sobrevivencia de x = O.l9o/o y en el segundo un x = 3.1 lo/, (Ta- bla 4).

El efecto de la administración de la vitamina C aI alimento, no se pudo eva- luar por que las larvas no avanzaron en el desarrollo al estadío de Zoea II.

En vista de los resultados que se habían tenido, los alimentos se cambiaron

conservando la yema de huevo como un ingrediente e incluyendo Protein 96 (0.001 g/l) y el Rotífero

Bracbionus plicatdis

(Kittaka, 1975) (Tabla 8). Estas modificaciones hicieron posible incrementar el tiempo de duración del experimen- to II. En el séptimo día de control los tratamientos de Rotíferos puros y combina- dos (estadísticamente significativos) (Tabla 12) no aumentaron la tasa de sobrevi- vencia del estadío Zoea 1 obtenido en el experimento 1. Sin embargo, la adición de

B. plicatilis

extendió el desarrollo larval hasta el estadío de Zoea III con una so- brevivencia del 0.38O/o (Tabla 9).

Se observó que el volumen del muestreador calculado en base al número ini- cial de larvas que se introducían en los acuarios, perdía en el transcurso del ensayo la sensibilidad requerida para detectar el número real de larvas. Consecuentemente se estima necesario que para este tipo de cultivo, el muestreador se ajuste volumé- tricamente en base a la curva de mortalidad.

De este estudio se desprende que el cultivo de

Cancer antennatius

depara grandes dificultades en la consecución de una biotecnia compatible con la Aqua- cultura. El cultivo de larvas se hizo con las condiciones ambientales de verano (ex- perimento 1) y de invierno (experimento II). Los resultados indican que los culti- vos se ven favorecidos cuando los progenitores se adaptan a las condiciones de la- boratorio (especialmente de invierno) donde los procesos de reproducción se ex- presan en una mayor sobrevivencia larval si se incluye (durante el estadío de Pre- zoea a Zoea 1) una alimentación de microalgas y yema de huevo y en los estadíos de Zoea II y III, alimentos especialmente de origen animal.

Es posible que para el logro de una biotecnia efectiva en los otros estadíos

larvales

de

C. antennarius

sea necesario identificar nuevos alimentos.

AGRADECIMIENTOS

Los autores su agradecimiento Dr. Robert por sus

das indicaciones el análisis

Extendemos nuestra a la de Educación (S.E.P.)

por apoyo económico brindó a investigación a del Instituto

Investigaciones Oceanológicas (U.A.B.C.).

LITERATURA

ANDERSON, W.R. R. F. 1976. Early growth and

val of yellow crab

antbonyi

(Rathbun) BRACH-

YURA) the Laboratory. 7:267-279.

BAILEY, 1959. Statistical in biology. English Universities

Denise Re-Buckle

BUCHANAN, D.V. y R.E. Milleman, 1969. The prezoeal stage of Dungeness crab,

Cancer magister

Dana. Biol. BuIl. 137 (5): 250-255.

Biochem. Physiol.). Vol. 44-A: 821,828.

BENNETT, D.B., 1973. The Effect of limb loss and regeneration on the growth of the edible crab,

Cancerpagzlrus

L; J. Exp. Mar. Biol. Ecol. Vol. 13: 45-53.

BUCHANAN, D. V. y R. E. Milleman, 1969. The prezoeal stage of Dungeness crab,

Cancerpagurus

L; J. Exp. Mar. Biol. Ecol. Vol. 13: 45-53.

BUCKLE, F., Ch. Guisado, E. Tarifeño, A. ZuIeta, L. Cordova, C. Serrano y R. Maldonado, 1976. Estudios biológicos del erizo

Loxecbinus albus

(Molina) (Echinoidea, Echinodermata). Biol. Pesq. Chile. No. 8:31-64.

COCHRAN, W. G. y M. G. Cox, 1976. Diseños experimentales. Edit. Trillas, Méx.

COCHRAN. W. G., 1978. Técnicas de muestreo. C.E.C.S.A. cap. No. 4: 105 - 112. Fisher, W. S. and D.E. Wickham, 1976. Mortalities and epibiotic fouling of eggs from wild populations of the Dungeness crab,

Cancer

mugikter.

Fish. BulI. (U.S.) 74: 201-207.

FISHER, W. S. y R. T. Nelson, 1977. Therapeutic treatment for epibiotic fouling on Dungeness crab

Cuncer magkter

larvae reared in the Laboratory. J. Fish. Res. Board Can. 34: 432-436.

HARTNOLL, R. G., 1974. Variation in growth pattem between some secondary sexual characters in crabs (Decapoda Brachyura). Crustaceana, 27 (2): 129-

136.

JORGENSEN, B., 1954. Quantitativa aspects of filter feeding in Invertebrates. Biol. Review, 30: 391-453.

KITTAKA. J., 1975. Food and growth of Penaid Shrimp Proceedings of the First International Conference on Aquaculture Nutrition. October 1975.

MILLIKIN, M. R., 1978. Blue crab larval culture. Methods and Management Mari- ne Fisheries Review, NOAA. Vol. 40 No. ll. 1978: 10 - 17.

MIR, R.D., 1961. The externaI morphology of the first zoea.I stages of the crabs,

Cancer magister,

Dana,

Cancer antennarius,

Stimpson, and

Cancer antbonyi

Rathbun. California Fish and Game, 47(I): 103 - ll 1.

NILSON, E. H. S. Fisher, and R. A. Shleser, 1975. Filamentous infestations obser- ved on eggs and larvae of cultured crustaceans. Proc. 6 th. World Maricuhu- re Soc. 6: 367 - 375.

PARSONS, T. R., K. Stephens y J. D. H. StrickIand. 1961. On the chemical composition of eleven species of marine phitoplankters. Fish. Res. Bd. Canadá, 18 (6) : 1001 - 1015.

POOLE, R. L., 1966. A description fo laboratory reared zoeae of Cancer

magister

(Dana) and megalopae taken under natural conditions (Decapoda, Bra- chyura). Crustaceana, ll : 83-97.

RATHBUN., M. J. 1930. The cancroid crabs of America. Bu11 U.S. Natl. Mus. 152: 1 - 609.

REED, P.H., 1969. CuIture methods and effects of temperature and sahnity on survival and growth of Dungeness crab

Cancer magister

larvae in the labora- tory. J. Fish. Res. Board Can., 26: 389 - 397.

ROESIJADI, G., 1976. Descriptions of the Prezoeae of

Cancer magister

(Dana) and

Cancer productus

(Randall) and the larval stages of

Cancer antennarius

(Stimpson) (D eca o a rachyura). Crustaceana, p d B 31 (3): 275 - 295.

ROHLF, F. J., y R. R. Sokal, 1969. StatisticaI Tables. Freeman. Edit. : 168 - 198.

SASTRY. A. N., 1977a. The larval development of the Rock Crab, Cancer irrora-

tus

(Say, 1817) under laboratory conditions. (Decapoda, Brachyura) Crus- taceana, 32 (2): 155 - 168.

SASTRY, A.N., 1977b. The larval development of the Jonah Crab,

Cancer borea-

ZiS (Stimpson, 1959), under laboratory conditions (Decapoda Brachyura).

Crustaceana, 32 (3): 290 - 303.

SCHEFLER, W. C., 1969. Statistics for the biological sciences. addison Wesley Publishing Company: 104 - 113.

SNEDECOR G. W. y W. G. Cochran, 1970. Statistical Methods. The IOWA State University Press, Ames, IOWA, U.S.A.

SNEDECOR G. W. y W. G. Cochran, 1978. Métodos Estadísticos C.E.C.S.A. Capítulo 14: 513 - 520.

Denise Re-Buckle

THEILACKER, G. H. y M. F. McMaster, 1971. Mass culture of the rotifer Bra-

chionus plicatilis

and its evaluations as a food for larval anchovies. Interna- tional Joumal on Life in Oceans and Coastal Waters, Vol. 10, No. 2:

183 - 188.

TRASK, T., 1969. A description of laboratory-reared larvae of

Cancer products

Randa11 (Decapoda, Brachyura) and a comparison to larvae of

Cancer ma-

gister

(Dana). Crustaceana, 18 (2) : 133 - 146.

VARGO, S. L. y A. N. Sastry, 1977. Acute temperature and low dissolved oxygen tolerance of Brachyuran

Cancer iworatus

larvae. Marine Biology, 40: 165 -

171.