Utilización de prebiótico en la alimentación de pollos de engorde.

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Facultad de Ciencias Veterinarias

-UNCPBA-

Utilización de prebiótico en la alimentación de

pollos de engorde

Arocena, Pablo Fernando; Zonco Menghini, Carlos Alberto; Rubio,

Roberto.

Marzo 2017

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Utilización de prebiótico en la alimentación de pollos de engorde

Tesina de la Orientación Producción Animal, presentada como parte de los requisitos para optar al grado de Veterinario del estudiante: Pablo Fernando Arocena.

Tutor: Médico Veterinario, Zonco Menghini, Carlos Alberto.

Director: Ingeniero Agrónomo, Rubio, Roberto.

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Dedicatorias y Agradecimientos

A mi Familia por estar en todos los momentos de alegría, tristeza, risas, llantos, en toda mi vida.

A la Facultad por darme el lugar, durante todo este tiempo, para poder recibirme de Veterinario.

A Carlos Zonco por el tiempo dedicado y explicarme el desarrollo de esta actividad.

A los veterinarios Ignacio Peña, Maximiliano Conde, Matías Fontana, Carla Braco por ser tan excelentes personas y tener el tiempo y dedicación para explicarme todo lo que ellos sabían con mucho amor a lo que se dedican. A Walter, Darío, Jorge, Alberto, Nadal, Fabián por ayudarme a realizar y obtener los datos para esta tesina.

A la empresa Toledo por darme la oportunidad de realizar mi residencia en dicho lugar.

A Roberto Rubio por la PACIENCIA y ayuda constante que me brindo en todo el desarrollo de la tesina.

A Ignacio Puertas por aportarme datos e información sobre prebióticos. A Rebeca Spinelli por ayudarme en la realización de esta tesina.

A Federico Chompa por los consejos pre residencia.

A Lucrecia Montalivet por el tiempo y dedicación de explicarme formulas químicas.

A mis Amigos de la facultad (Concepción, Ivana, Laura, Vane, Cacho, Marito, Micaela) que estuvieron desde el primer día de facultad junto a mí. A mis amigos de la vida (German, Martín, Matías, Fernando) que siempre estuvieron en los momentos difíciles.

Al grupo de “Cubana” y Gimnasio Red Dragon por ser un sostén importante durante toda mi carrera.

A quienes han pasado por mi vida en su momento para ayudarme y aconsejarme.

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Resumen

En el mes de Octubre del 2015 en la ciudad de Mar del Plata, granja Don Abel perteneciente a la empresa Toledo S.A., se evaluó la utilización de un prebiótico (Premix NP) con diferentes concentraciones, las cuales fueron de 250 y 500 gramos de prebiótico / tonelada de alimento. Se emplearon un total de 65.499 aves de la línea Cobb 500, dividiéndolos en tres tratamientos, un testigo (sin adición de prebióticos), un T1 (con 250 gramos de prebiótico / tonelada de alimento) y un T2 (con 500 gramos de prebiótico / tonela de alimento). Cada tratamiento tenía 3 repeticiones. Los resultados obtenidos demostraron un mejor pesaje en T2 a lo largo de 49 días, no obstante los T tuvieron mejor pesada que los T1. Una mayor mortandad se obtuvo en T y la menor se observó en T1, aunque en el análisis estadístico no se demostró una diferencia significativa en este punto, al igual que en la conversión de alimento, en donde T tuvo una mejor conversión que en los tratados siendo significativa esa diferencia.

Palabras claves

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Contenido

Introducción ... 1

Objetivos ... 2

Hipótesis ... 2

Marco teórico ... 3

Probióticos ... 3

Efectos de los probióticos en las aves ... 5

Prebióticos ... 7

Efecto de los prebióticos en las aves ... 8

Tipos de prebióticos en el mercado ... 10

Fructanos ... 10

Galacto – oligosacáridos (GOS) ... 16

Lactulosa ... 17

Xilo – oligosacárido (XOS) ... 18

Isomalto – oligosacárido ... 19

Manano - oligosacárido (MOS) ... 19

Relación prebiótico y probiótico ... 23

Simbióticos ... 23

Producto utilizado en esta experiencia ... 24

Experiencias anteriores del producto ... 28

Materiales y Métodos ... 29

Materiales ... 29

Granja y distribución de galpones ... 29

Pre Recepción ... 30

Recepción ... 31

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Bebederos portátiles ... 32

Comederos y Bebederos fijos ... 33

Campanas, Rafias y Ventiladores ... 33

Papel cartón y Papel corrugado ... 34

Peso del pollito bb recién ingresado ... 34

Plan de luz ... 35

Trabajo diario y semanal ... 35

Ampliación de la zona de recepción ... 36

Extracción de cama húmeda ... 37

Medicación ... 38

Vacunación ... 38

Alimentación ... 39

Tipos de alimentos ... 40

Producto Utilizado ... 43

Captura y traslado de Animales ... 43

Pesada de camión transporte ... 45

Método ... 46

Resultados ... 47

Densidad ... 47

Análisis por tratamientos ... 47

Alimento ... 48

Consumo de alimento ... 48

Kilogramos promedios de carne por tipo de alimento ... 49

Peso promedio de carne por cabeza por tipo de alimento ... 49

Temperatura y Humedad ... 50

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Humedad ... 51

Mortalidad ... 53

Tratamientos ... 53

Galpones ... 54

Descarte ... 55

Tratamientos ... 56

Pesadas ... 57

Resumen de los datos estadísticos día lunes ... 57

Resumen de los datos estadísticos día viernes ... 58

Día 0 ... 59

Día 7 ... 62

Día 14 ... 64

Día 21 ... 66

Día 28 ... 68

Día 35 ... 70

Día 42 ... 72

Día 49 ... 74

Aumento Diario de Peso (ADP) ... 77

Análisis estadístico del ADP ... 77

Ganancia de peso vivo y aceleración ... 77

Aumento Diario de Peso / Edad ... 78

Conversión alimenticia Real y Ajustada ... 79

Factor de Eficiencia Productiva (FEP) ... 81

Discusión ... 82

Conclusión ... 84

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Bibliografía ... 85

Índice de Fotografías

Fotografía 1: Estructura química de las levanas (Hann, 2005). ... 11

Fotografía 2: Estructura química de la inulina (Zamora, 2016). ... 12

Fotografía 3: FOS: Estructura química de kestosa, nistosa, fructofunarosyl nystosa (Dergal et al, s.f.)... 14

Fotografía 4: Estructura química de los Galacto oligosacáridos (Cobas, S.f.). ... 17

Fotografía 5: Estructura química de la Lactulosa (Vivoni, 2015). ... 18

Fotografía 6: Estructura química de la Isomaltosa (Anónimo, s.f.). ... 19

Fotografía 7: Inflorescencia de la planta de alcachofa (Cynara scolymus) (Anónonimo, s.f.). ... 25

Fotografía 8: Inflorescencia de Cardo Mariano (Silybum marianum) (Anónimo, 2011). ... 27

Fotografía 9: Estructura química de la colina (Anónimo, s.f.). ... 27

Fotografía 10: Granja Don Abel - Mar del Plata (google maps). ... 29

Fotografía 11: Zona de recepción previo al alojamiento. ... 30

Fotografía 12: Transporte y descarga del pollito bb. ... 31

Fotografía 13: Comedero portátil. ... 32

Fotografía 14: Bebederos portátiles. ... 32

Fotografía 15: Campanas y Rafia. ... 33

Fotografía 16: Pesada del pollito bb... 35

Fotografía 17: Termohigrómetro. ... 36

Fotografía 18: Dosificador. ... 38

Fotografía 19: Camión tolva llenando silo. ... 39

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Índice de Tablas

Tabla 1: Composición Proximal de la alcachofa (Cynara scolymus)

(Valderrama Castro, 2014). ... 26

Tabla 2: Comparación de los resultados en experiencias anteriores. ... 28

Tabla 3: Grupo y Tratamiento de cada galpón (Elaboración propia). ... 30

Tabla 4: Plan de luz según edad (Cobb-Vantress et al., 2015). ... 35

Tabla 5: Día del ciclo con cantidad de metros cuadrados totales. ... 37

Tabla 6: Día de extracción de humedad por galpón. ... 37

Tabla 7: Composición del alimento Pre iniciador. ... 40

Tabla 8: Composición del alimento Iniciador. ... 41

Tabla 9: Composición del alimento Terminador. ... 42

Tabla 10: Composición del alimento de Retiro. ... 43

Tabla 11: Densidad (animales/m2_{). ... 47}

Tabla 12: Análisis estadístico de animales por metro cuadrado por tratamientos (animales/m2_{). ... 48}

Tabla 13: Kilogramos de alimentos consumidos en cada galpón (kg). ... 48

Tabla 14: Análisis estadístico del consumo total de alimento entre tratamientos (kg). ... 49

Tabla 15: Kilogramos de carne producidos por tipo de alimento (kg). ... 49

Tabla 16: Pesos promedios de carne por cabeza por tipo de alimento (kg/cab). ... 49

Tabla 17: Análisis estadístico de temperatura entre los días (°C). ... 50

Tabla 18: Análisis estadístico de la temperatura por tratamientos (°C). ... 50

Tabla 19: Análisis estadístico de temperatura por zonas (°C). ... 51

Tabla 20: Análisis estadístico de la temperatura por tratamientos (°C). ... 51

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Tabla 22: Análisis estadístico de humedad entre los días (%H). ... 52

Tabla 23: Análisis estadístico de humedad por tratamientos (%H). ... 52

Tabla 24: Análisis estadístico de humedad por zonas (%H). ... 52

Tabla 25: Análisis estadístico de humedad por tratamientos (%H). ... 53

Tabla 26: Análisis estadístico de humedad por zonas (%H). ... 53

Tabla 27: Análisis estadístico de mortalidad diaria por tratamientos. ... 54

Tabla 28: Análisis estadístico de mortandad por galpón. ... 55

Tabla 29: Descarte en el día 14 y 40. ... 56

Tabla 30: Análisis estadístico del descarte por tratamientos. ... 57

Tabla 31: Resumen del análisis estadístico de pesos de los tratamientos del día lunes (gr). ... 57

Tabla 32: Resumen del análisis estadístico de los pesos de las zonas del día lunes (gr). ... 58

Tabla 33: Resumen del análisis estadístico de pesos de los tratamientos del día viernes (gr). ... 58

Tabla 34: Resumen del análisis estadístico de los pesos de las zonas del día viernes (gr). ... 59

Tabla 35: Análisis de los pesos día 0 entre los diferentes días (gr). ... 59

Tabla 36: Análisis estadístico de los pesos de los tratamientos día 0 (lunes) (gr). ... 60

Tabla 37: Análisis estadístico de los pesos de los tratamientos día 0 (viernes) (gr). ... 60

Tabla 38: Análisis estadístico de los pesos de las zonas día 0 (lunes) (gr). 61 Tabla 39: Análisis estadístico de los pesos de las zonas día 0 (viernes) (gr). ... 61

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Tabla 42: Análisis estadístico de los pesos de las zonas día 7 (lunes) (gr). 63

Tabla 43: Análisis estadístico de los pesos de las zonas día 7 (viernes) (gr). ... 64

Tabla 46: Análisis estadístico de los pesos de las zonas día 14 (lunes) (gr). ... 66

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Tabla 68: Análisis estadístico del aumento diario de peso por tratamientos (gr). ... 77

Tabla 69: Análisis estadístico de la ganancia de peso vivo por tratamientos (gr). ... 78

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Tabla 71: Análisis estadístico de ADP/Edad. ... 79

Tabla 72: Análisis estadístico de conversión alimenticia real. ... 80

Tabla 73: Análisis estadístico de conversión alimenticia ajustada. ... 81

Tabla 74: Análisis estadístico del FEP. ... 81

Índice de Gráficos

Gráfico 1: Porcentaje de mortalidad semanal por tratamientos. ... 54

Gráfico 2: Mortandad diaria por galpón. ... 55

Gráfico 3: Pesos promedios por tratamientos día 0. ... 60

Gráfico 4: Pesos promedios por zonas día 0. ... 61

Gráfico 8: Pesos promedios por zona día 14. ... 65

Gráfico 14: Peso promedios por zonas día 35. ... 72

Gráfico 19: Aumento diario de peso por galpón. ... 77

Gráfico 20: ADP/Edad. ... 79

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Gráfico 22: Conversión alimenticia ajustada. ... 80

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Introducción

Los aditivos en la alimentación animal se vienen utilizando desde la década del 40, como por ejemplo es el caso de los antibióticos que logran mejorar técnica y económicamente la producción aviar.

A través de los años la biotecnología realiza investigaciones para lograr el uso de aditivos que mejoren los resultados de la producción, sin dejar residuos que dañen la salud humana; estos aditivos son los probióticos, levaduras, prebióticos y/o enzimas.

Los prebióticos son sustancias o productos que no son absorbidos o hidrolizados en el tracto gastrointestinal y que se adicionan al alimento, cuya función principal es el crecimiento de determinada flora benéfica, mejorando la salud y proporcionando beneficios en el tracto gastrointestinal previniendo la colonización de patógenos.

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Objetivos

La siguiente tesina tiene como objetivo evaluar la evolución del peso vivo de aves suplementadas con un prebiótico (manano oligosacárido).

Hipótesis

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Marco teórico

Existe, en algunos casos, confusión con respecto a la diferencia que hay entre un prebiótico con un probiótico, con lo cual en este marco teórico propongo presentar las diferencias que significan ambos productos. Los probióticos son microorganismos vivos que se agregan en el alimento y estimulan la flora benéfica en el intestino del animal, en cambio los prebióticos son sustancias que se adicionan en el alimento, estos no se absorben y sirve como sustrato para estimular la flora benéfica del intestino.

Probióticos

El probióticos está definido como un cultivo de microorganismos vivos que, utilizado como aditivo alimentario, beneficia al animal mejorando el equilibrio de su microbiota intestinal (Fuller, 1992 en De Paz, 2013). Son aquellos microorganismos vivos que, al ser agregados como suplemento en la dieta, afectan en forma beneficiosa al desarrollo de la flora microbiana en el intestino (Fuller, 1989 en De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

En este sentido, estimulan las funciones protectoras del sistema digestivo. Son también conocidos como bioterapéuticos, bioprotectores o bioprofilácticos y se utilizan para prevenir las infecciones entéricas y gastrointestinales (Penna 1998, en De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

Los probióticos son microorganismos viables que aumentan la ganancia de peso y los rangos de conversión alimenticia (propiedades zootécnicas) y disminuyen la incidencia de diarrea (Simón y col., 2001 en Tomas De Paz, 2013).

Para que un microorganismo pueda realizar esta función de protección tiene que cumplir los postulados de Huchetson: ser habitante normal del intestino, tener un tiempo corto de reproducción, ser capaz de producir compuestos antimicrobianos y ser estable durante el proceso de producción, comercialización y distribución para que pueda llegar vivo al intestino (Pardio 1994, en De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

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antagonismo que impide la multiplicación de los patógenos y la producción de toxinas que imposibilitan su acción patogénica. Este antagonismo está dado por la competencia por los nutrientes o los sitios de adhesión. Mediante la inmuno-modulación protegen al huésped de las infecciones, induciendo a un aumento de la producción de inmunoglobulinas, aumento de la activación de las células mononucleares y de los linfocitos (Penna 1998, en De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

Los probióticos deben cumplir funciones en el animal, una vez incorporado en la alimentación, entre las que se incluyen: la disminución del pH intestinal, liberación de metabolitos protectores como los ácidos grasos, el peróxido de hidrógeno y bacteriocinas, entre otras, que previenen el crecimiento de patógenos, como Candida albicans, Clostridium perfringens, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Proteus vulgaris, Pseudomona aeruginosa, Psudomona

flourescens, Salmonella typhosa, S. schottmuelleri, Shigella dysenteriae, S.

paradysenteriae, Sarcina lutea, Serratia marcescens, Staphylococcus aureus,

Enterococcus faecalis, Lactococcus lactis, Vibrio cholerae o parahaemoliticus

(Vimala et al., 2006 en Gutiérrez Ramírez et al., 2013).

Los probióticos, además, ayudan a la regulación de la movilidad intestinal y la producción de moco (Gupta, et al., 2009 en Gutiérrez Ramírez et al., 2013). También, usan mecanismos enzimáticos que modifican los receptores de toxinas y los bloquean, previniendo la colonización de patógenos por competencia (Vandenbergh, 1993 en Gutiérrez Ramírez et al., 2013).

Para que un microorganismo sea útil como probiótico debe cumplir determinadas características (Ewing y Cole, 1994 en Tomas de Paz, 2013):

a) Seguro para el animal, sin causar enfermedad ni toxicidad.

b) Resistente al ácido y a la bilis; debe llegar vivo al intestino, por lo que debe soportar el pH gástrico y la acción de los ácidos biliares del intestino delgado.

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d) Capacidad de inhibir el crecimiento de patógenos: deben producir ácidos u otras sustancias que inhiban el crecimiento de patógenos Gram negativos como Escherichia coli.

e) Estables y viables durante los procesos tecnológicos.

f) Estables y viables durante el almacenaje. Hay que tener en cuenta si el microorganismo usado es aerobio o anaerobio para conservarlo adecuadamente.

Muchos microorganismos como Bacilus cereus, Bacillus licheniformis,

Bacillus subtilis, Enterococcus faecium, Lactobacillus facíminis y Saccharomyces

cerevisiae han sido autorizados como nuevos aditivos en la alimentación. Todas

estas cepas han demostrado efectos positivos en diferentes individuos, sobre todo en el incremento de los parámetros productivos y en una mejor condición sanitaria y salud intestinal (Breul, 1998, en Bazay Dulanto, 2010). Si bien muchas cepas de bacterias como Lactobacillus spp., Bacillus subtilis y Bifidobacteria han sido usadas comercialmente para producir probióticos, también pueden usarse levaduras como Saccharomyces cerevisiae para manipular las condiciones dentro del intestino (Pollmann, 1992; Fox, 1994; Close, 2000; Lázaro et al., 2005 en Bazay Dulanto, 2010).

Los probióticos constituyen una alternativa para el uso de antibióticos promotores del crecimiento en producción animal.

Efectos de los probióticos en las aves

Mecanismo de acción de los probióticos

El efecto benéfico de los probióticos se atribuye en general a mecanismos diferentes que a su vez pueden deberse a varias causas, a saber:

 La exclusión competitiva de bacterias nocivas, ya sea por:

 Competencia por nutrientes.

 Competencia por sitios de fijación en el intestino.

 Aumento de la respuesta inmunológica del hospedero.

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 Aporte de macro y micronutrientes para el animal, aporte de enzimas digestivas (Hassan y Frank, 2001 en Tomas De Paz, 2013).

Probióticos en la salud gastrointestinal

Los probióticos pueden influir positivamente en la biodisponibilidad de nutrientes al facilitar la disociación de las proteínas de la leche entera, liberando calcio y magnesio en grandes cantidades, a diferencia de cuando no se utilizan probióticos. Los probióticos están involucrados también en la síntesis de vitaminas del complejo B, fosfatos y además, algunas cepas, pueden ejercer un efecto estabilizador en la flora intestinal incrementando una resistencia a las infecciones, así como en la prevención y tratamiento de diversas formas de diarreas. Las cepas de lactobacilos como Lactobacillus GG, producen substancias antimicrobianas que son activas contra diversas bacterias presentes en la microflora normal del intestino, como Escherichia coli, Streptococcus, Clostridium difficile, Bacteroides fragilis y Salmonella (Gorbach, 1996 en Tomas De Paz, 2013).

Probióticos más usados en la alimentación de las aves

Según Ewing y Cole los probióticos más usados son (1994, en Tomas De Paz, 2013):

a) Bacillus: Es más estable a los tratamientos térmicos y al pH gástrico debido a su capacidad de formar esporas, que deben germinar en el intestino para ser activos. No pueden adherirse a la pared intestinal pero tienen una gran capacidad de multiplicación.

b) Streptococci: También forman parte de la microbiota intestinal y producen

ácido láctico. Sus características beneficiosas son similares a las de los lactobacilos, pero se han estudiado menos porque algunas especies pueden ser patógenas.

c) Lactobacilli: Se usan con frecuencia pues no son patógenos, son

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d) Saccharomyces: son microorganismos eucariotas y sus propiedades son completamente diferentes a las de las bacterias. Por ejemplo, las levaduras son resistentes a los antibióticos, sulfamidas y otros agentes antibacteriales. Esta resistencia es genéticamente natural y no es susceptible a ser modificada o transmitida a otros microorganismos. El tamaño de las levaduras varia alrededor de 5 x 10 µm y es también significativamente mayor al de la bacteria (0.5 x 5 µm).

Prebióticos

Gibson y Roberfroid (1995, en Velasco et al., 2010) definen los prebióticos como “sustancias o productos que no son absorbidos o hidrolizados durante su tránsito por el aparato digestivo, sirven de sustrato a las bacterias beneficiosas, estimulando su crecimiento y/o su actividad metabólica, alteran la microbiota intestinal de manera favorable para el hospedador e inducen efectos positivos, no sólo en el medio intestinal, sino también sistémicos. Estos mismos autores completaron años más tarde su concepto inicial de prebiótico basándose en diversas investigaciones científicas y establecieron que para clasificar a un ingrediente alimenticio como prebiótico, debe cumplir tres requisitos:

1. resistir la acidez gástrica, la hidrólisis por las enzimas digestivas y la absorción gastrointestinal;

2. ser fermentado selectivamente por un número limitado de microorganismos potencialmente beneficiosos, localizados principalmente en el colon, estimulando su crecimiento y/o actividad metabólica;

3. alterar la microbiota del colon hacia una composición más saludable, incrementando la población de especies sacarolíticas y reduciendo la población de especies patógenas.”

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cumplen estos criterios tan estrictos, sin que se pueda negar su eficacia. Así, los que más se utilizan comercialmente son: fructo oligosacáridos (FOS), manano oligosacáridos (MOS), galacto oligosacáridos (GOS), transgalacto oligosacáridos (TOS), fructanos (inulina) y lactulosa (Gibson y Roberfroid, 1995 en Benavides, 2011).

Los oligosacáridos utilizados como prebióticos pueden ser de origen natural, pero en su mayoría se obtienen por síntesis o hidrólisis enzimática. Los FOS se obtienen industrialmente a partir de la sacarosa o por hidrólisis de fructanos de mayor tamaño como la inulina; los MOS principalmente a partir de la pared celular de levaduras (Saccharomyces cerevisiae), aunque también los hay de otros orígenes (garrofa, sintéticos, etc.). Existen productos comerciales que contienen diferentes formas de oligosacáridos (Iji, 2001 en Benavides, 2011).

Tanto la temperatura como la humedad no producen ningún tipo de efecto sobre los resultados y la interacción de los mismos tampoco producen cambios con el prebiótico utilizado.

Efecto de los prebióticos en las aves

Producción de sustancias antimicrobianas

Los oligosacáridos, indigestibles para el animal, son fermentados por la flora intestinal y convertidos en ácidos grasos volátiles (acético, propiónico y butírico principalmente), ácido láctico, y gases (dióxido de carbono, metano e hidrógeno). Así, la mejora de la flora intestinal se debe tanto al incremento de las especies beneficiosas como a la producción de sustancias antimicrobianas y la acidificación del medio intestinal, con lo que se consigue una reducción directa del crecimiento de ciertos patógenos (Santin, y col., 2001 en Tomas De Paz, 2013).

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función colónica, de forma que pueden incluso disminuir el riesgo de cáncer (Marti del Moral et al., 2003 en Hernández-Carranza et al., 2010).

Efecto sobre la mucosa intestinal

Los enterocitos tienen un ciclo continuo de proliferación a partir de la maduración y migración de las células de la cripta intestinal. La ingestión de toxinas o la producción de amonio por la flora intestinal aceleran su descamación, lo que requiere un gasto extra de energía y de proteínas para el crecimiento y desarrollo de este tejido; se le ha atribuido al MOS la mejora en el crecimiento y el aumento en la altura de las vellosidades intestinales, que permite una mejor digestión y absorción de nutrientes; ello podría ser consecuencia de una mayor eficacia de la respuesta inmunitaria intestinal (Santin y col., 2001 en Tomas De Paz, 2013).

Estimulación de la respuesta inmune

Los manano-oligosacáridos modulan la respuesta inmunitaria, actuando sobre uno o más de los componentes implicados en la respuesta inmunitaria mediada por citoquinas. En avicultura la información es escasa y aún se necesitan estudios in vivo para poder llegar a conclusiones firmes en este aspecto (Shane, 2001 en Tomas De Paz, 2013).

La mayoría de las experiencias prácticas con oligosacáridos en alimentación avícola se han llevado a cabo para prevenir infecciones por Salmonella, efecto que en el caso de los FOS precisa de dosis superiores al 0,37% (Iji y Tivey, 1998 en Tomas De Paz, 2013).

La adición de FOS o MOS en el alimento (Bailey 1991; Fukata y cols., 1999 en Tomas De Paz, 2013) o en el agua de bebida (Oyofo y col., 1989 en Tomas De Paz, 2013) reduce la colonización por Salmonella. No todas las especies de esta bacteria responden de igual forma; algunas, como S. infantis, no poseen fimbrias sensibles a la manosa y son capaces de unirse a la mucosa intestinal; por ello la suplementación con manosa no reduce la colonización por S. infantis

en pollos (Allen y col., 1997 en Tomas De Paz, 2013).

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separado. Sin embargo, una vez más dicho efecto depende de la microbiota presente en la situación inicial, dosis, vía y duración de la administración, el cual puede ser perjudicado por muchas situaciones prácticas como estrés, cambios de pienso y tratamientos antibióticos. Además, un exceso de oligosacáridos puede causar una proliferación microbiana excesiva que desencadene problemas diarreicos (Bailey y col., 1991 en Tomas De Paz, 2013).

Digestibilidad de nutrientes

En las aves, los efectos nutritivos de la inclusión de prebióticos en el pienso han sido menos investigados que los relativos a la microbiota intestinal y al control de ciertas patologías gastrointestinales y, por consiguiente, la información disponible es bastante más escasa. A esto se une, además, que los resultados obtenidos difieren según que el aditivo utilizado sea un fructano de cadena corta, como los FOS, o de cadena más larga, como la inulina o, incluso, que se trate de otro tipo de prebiótico (Niness y col., 1999 en Tomas De Paz, 2013).

Tipos de prebióticos en el mercado

Fructanos

Los fructanos son carbohidratos de reserva que se localizan en los tejidos vegetativos, sobre todo en la base de los tallos y órganos subterráneos de especies vegetales mono y dicotiledóneas. De acuerdo con su estructura química, los fructanos se definen como aquellos compuestos en los que la mayoría de los enlaces son de tipo fructosil-fructosa (Lewis, 1993, en Velasco et al., 2010), abarcando desde polímeros de alta masa molecular hasta oligómeros tan pequeños como el disacárido inulobiosa. Existe una amplia variedad en los vegetales, dependiendo de su estructura: lineal, ramificada o cíclica; tipo de enlace: β (2,1) o β (2,6); longitud de la cadena que determina el grado de polimerización (GP): oligómeros (GP10); y presencia o ausencia de glucosa en el extremo de la cadena.

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general, lineales, aunque pueden tener ramificaciones a través de enlaces β (2,1) (ver: Fotografía 1). Las levanas están presentes en las partes vegetativas de los cereales de invierno (trigo, cebada, avena y centeno) y las gramíneas pratenses perennes (ray-grass, dactilo, festuca, etc.). Por otro lado el de las inulinas incluye los fructanos que contienen principal o exclusivamente enlaces β (2,1)-fructosil-fructosa (Carpita et al., 1989; Niness et al., 1999). Los fructooligosacáridos (FOS) pueden contener enlaces tipo inulina, tipo levano o ambos, y se definen por un bajo grado de polimerización (entre 3 y 5).

Fotografía 1: Estructura química de las levanas (Hann, 2005).

Los fructanos tipo inulina tienen una serie de efectos beneficiosos cuando se incluyen en la dieta, tanto en el hombre como en los animales, sobre la composición y actividad de la microflora intestinal, la producción de heces, la absorción de Ca y otros minerales, la inmunidad y resistencia a infecciones y la homeostasis lipídica. Además, estos carbohidratos reducen el riesgo de determinadas enfermedades como las infecciones intestinales, la enfermedad inflamatoria intestinal, el cáncer de colon, la osteoporosis y la obesidad. Estos efectos beneficiosos se han atribuido a su característica estructura química y a sus propiedades fermentativas (Roberfroid, 2007, en Velasco et al., 2010). Los enlaces β-glicosídicos de los fructanos tipo inulina son resistentes a la hidrólisis por las enzimas digestivas de los mamíferos y las aves, que sólo hidrolizan los enlaces α-glicosídicos, impidiendo su absorción a través de la pared intestinal (a excepción de los de GP 2 y 3 (grado de polimerización, GP: oligómeros (GP<10) o polímeros (GP>10), y llegando, por lo tanto, intactos al intestino grueso (Niness

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intestinal no es atribuible a sus propiedades físico-químicas, como ocurre con otros componentes de la fibra dietética, sino a sus efectos fisiológicos y a sus propiedades fermentativas específicas (Roberfroid, 2007 en Velasco et al., 2010).

Es un hidrato de carbono no digerible que está presente en muchos vegetales, frutas y cereales (Sangeetha et al, 2005 en Hernández-Carranza et al., 2010).

Fotografía 2: Estructura química de la inulina (Zamora, 2016).

Una vez en el intestino grueso, los fructanos fermentan por acción de la microbiota intestinal dando lugar a AGCC, como los ácidos acético, propiónico y butírico, y ácido láctico, que se absorben fácilmente en el colon (sólo el 5-10% se excreta en las heces) y alcanzan la circulación sistémica. Este incremento en los AGCC produce una disminución del pH que da lugar a una reducción de bacterias proteolíticas pertenecientes a los géneros Clostridium,

Staphylococcus, Salmonella, entre las que se pueden encontrar algunas

especies patógenas, así como de Escherichia coli. Al mismo tiempo, se aprecia un aumento del número de bacterias intestinales sacarolíticas pertenecientes a los géneros Bifidobacterium y Lactobacillus que, generalmente, se han asociado con efectos beneficiosos para la salud (Xu et al., 2003 en Velasco et al., 2010).

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de los ácidos butírico y láctico, así como el de la relación ácido butírico/ácido acético.

Diversas investigaciones sustentan la idea de que el uso de prebióticos puede producir un incremento de la altura de las vellosidades intestinales, así como de la propia longitud del intestino (Parker, 1974; Fuller, 1989; Goldin, 1998; Sanders, 1999 en Velasco et al., 2010).

Es bien conocido que ciertos componentes de las raciones de los pollos, como por ejemplo determinados polisacáridos no digestibles, pueden favorecer el desarrollo del tracto intestinal, debido a su gran capacidad de retención de agua, lo cual incrementa la viscosidad del quimo y, por tanto, el tiempo de permanencia del alimento en el intestino (Brenes et al., 1993; Parsaie et al., 2007 en Velasco et al., 2010).

Se ha demostrado un incremento significativo de la digestibilidad de la proteína, así como de la digestibilidad ileal de la mayoría de los aminoácidos cuando en el pienso se incluyó inulina. En relación con la digestibilidad de la grasa y de los principales ácidos grasos (ácidos oleico y linoleico), se observa una respuesta lineal positiva a la inclusión de inulina en el pienso (Alzueta et al., 2010 en Velasco et al., 2010).

Puede concluirse que los fructanos tipo inulina estimulan la población de bifidobacterias y lactobacilos en el intestino de los pollos de carne y podrían mejorar la digestibilidad de la proteína y la grasa. Sin embargo, como ya han indicado diversos investigadores (Patterson y Burkholder, 2003; Verdonk et al., 2005 en Velasco et al., 2010), variables como la concentración del prebiótico, el tipo de ración, las características de los animales (entre ellas, el sexo) y, sobre todo, las condiciones higiénicas y de estrés medioambiental, pueden influir sobre la respuesta de los pollos a estos prebióticos.

Fructo - oligosacáridos (FOS)

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inulobiosa y levanobiosa. La unión de grupos fructosilos a la sacarosa en diferentes posiciones genera cetosas, las cuales son la base de todos los fructanos naturales (Madrigal y Sangronis, 2007 en Hernández-Carranza et al., 2010).

Los FOS son fructosilpolímeros que consisten en cadenas lineales de D-fructosa (aunque se pueden observar diferentes grados de ramificación según la complejidad), presentan un enlace  2-1 y usualmente tienen una molécula de

D-glucosa terminal unida a una fructosa por un enlace α 2-1. La naturaleza de estos enlaces tiene importantes implicaciones bioquímicas que se asocian a una baja digestibilidad de los mismos cuando son consumidos por seres humanos (Perrin et al., 2001 en Hernández-Carranza et al., 2010). La presencia del enlace  2-1 hace que los FOS no sean digeribles como lo sería cualquier hidrato de

carbono típico, lo que a su vez tiene como consecuencia que tengan un bajo valor calórico y una funcionalidad como fibra dietética (Niness, 1999 en Hernández-Carranza et al., 2010). Debido a su estructura química, los FOS son solubles en agua (Chacón, 2006 en Hernández-Carranza et al., 2010) (ver:Fotografía 3).

Fotografía 3: FOS: Estructura química de kestosa, nistosa, fructofunarosyl nystosa (Dergal et al, s.f.).

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Después del almidón, los FOS son los polisacáridos no estructurales más abundantes en la naturaleza; están presentes en muchas especies de plantas e inclusive en algunos mohos y bacterias (Franck, 2006 en Hernández-Carranza

et al., 2010).

Los FOS no son hidrolizados en el tracto digestivo dada la ausencia tanto de exoinulinasa como de exolevanasas, sufriendo posteriormente por ello una fermentación en el colon. Químicamente se hidrolizan por calentamiento en una disolución de ácido oxálico (Tita y Smeekens, 2003 en Hernández-Carranza et al., 2010).

No obstante, si de cantidades se trata, las principales fuentes de FOS son la achicoria (Cichorium inlybus), alcachofa (Cynara scolymus), yacón (Smallanthus

soncholius) y dalia (Dahliapinnata spp) (Chacón, 2006 en Hernández-Carranza

et al., 2010).

Los FOS producen efectos benéficos en la salud, debido a que son parte de la fibra dietética, la cual se define como "aquella parte de plantas o bien hidratos de carbono análogos que son resistentes a la digestión y a la absorción en el intestino delgado de humano y que experimentan una fermentación parcial o total en el intestino grueso; incluyéndose en esta definición polisacáridos, oligosacáridos, lignina y sustancias vegetales asociadas" (A.A.C.C., 2001 en Hernández-Carranza et al., 2010).

Además de ser un aporte en fibra dietético, los FOS pueden favorecer selectivamente el crecimiento de las bacterias lácticas y Bifidobacterium. Esta capacidad de estimular el crecimiento en el colon de bacterias específicas consideradas beneficiosas, de estimular y hasta anular el crecimiento de bacterias patógenas, se conoce como efecto prebiótico (Roberfroid, 2001 en Hernández-Carranza et al., 2010).

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y bifidobacterias, una de las mejores terapias para la inflamación asociada a la colitis ulcerativa activa (Cherbut, 2002 en Hernández-Carranza et al., 2010).

Se atribuye a los FOS la capacidad de evitar el estreñimiento al permitir una mejor formación del bolo fecal y favorecer la movilidad intestinal (Tokunaga, 2004 en Hernández-Carranza et al., 2010).

El consumo de FOS ha demostrado mejorar la absorción de minerales tales como el calcio, magnesio, zinc, hierro y cobre. La absorción de minerales generalmente se da en forma mayoritaria en el intestino delgado, aunque el intestino grueso puede también representar un sitio de absorción, gracias a la ayuda de los ácidos grasos de cadena corta derivados de la fermentación (Tokunaga, 2004 en Hernández-Carranza et al., 2010).

No existe evidencia experimental alguna que indique que los FOS presentan algún grado de toxicidad.

Galacto – oligosacáridos (GOS)

Los oligosacáridos contienen en su estructura entre tres y diez unidades de monosacáridos, aunque por las características similares que poseen algunos disacáridos respecto a compuestos de mayor tamaño, se incluyen unos disacáridos como la lactulosa entre los oligosacáridos conocidos (Crittenden et al., 1996; Rastall, 2010 en Villarreal, 2014).

Este tipo de compuestos se encuentran de manera natural en alimentos como frutas, vegetales, leche y miel. En la mayoría de los casos, tanto en estado natural como en productos para el consumo humano, los oligosacáridos no son puros, por el contrario, son una mezcla de varios compuestos de este tipo con diferentes grados de oligomerización (Crittenden et al., 1996; Rastall, 2010 en Villarreal, 2014).

Los oligosacáridos basados en la galactosa se denominan galacto oligosacáridos (GOS) y son producidos a partir de lactosa. Los tipos de enlace que puede presentarse entre las unidades de galactosa-glucosa en los GOS son -(1-3), -(1-4) y -(1-6), siendo predominante el enlace-(1-4) (Mahoney, 1998;

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presentes en la mezcla de productos de GOS que resultan del complejo de reacciones involucradas durante la síntesis de estos compuestos (Yang, S-T et al., 2001b en Villarreal, 2014) (Ver: Fotografía 4).

Fotografía 4: Estructura química de los Galacto oligosacáridos (Cobas, S.f.).

Dentro de las propiedades de los GOS se pueden nombrar su solubilidad en agua y su sabor dulce, por lo general entre 0.3 y 0.6 veces el sabor dulce de la sacarosa. Esta propiedad de los GOS y demás oligosacáridos, depende de la estructura y peso molecular, así como el nivel de mono y disacáridos presentes en la mezcla (Crittenden et al., 1996; Panesar et al., 2010; Sako et al., 1999 en Villarreal, 2014).

Comparados con los mono y disacáridos, el alto peso molecular de los GOS trae como consecuencia un aumento en la viscosidad de las soluciones de estos compuestos.

En estudios recientes se ha reportado la habilidad de los galacto oligosacáridos para promover el crecimiento de bifidobacterias en el colon, constituyéndolos como prebióticos (Crittenden et al., 1996; Rastall, 2010; Thammarutwasik et al., 2009; Tomomatsu, 1994; Torres et al., 2010; Yang, S-T

et al., 2001b en Villarreal, 2014). También se estudió que mejora la absorción de

minerales como el calcio y magnesio.

Lactulosa

La lactulosa (4-O-β-galactopiranosil-D-fructosa) es un disacárido que se origina por isomerización de la lactosa en medios básicos (Montgomery 1929 en Villen, 2000).

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Fotografía 5: Estructura química de la Lactulosa (Vivoni, 2015).

La lactulosa no se digiere en el intestino delgado y al llegar al colon sirve como fuente de energía para las bacterias intestinales que tienen capacidad de hidrolizarla, es un buen substrato para las bifidobacterias y Bacterias Lácticas en general mientras que otras bacterias intestinales tales como Escherichia coli y

Bacteroides fragilis metabolizan la lactulosa muy lentamente (Salminen et al., 1997 en Villen, 2000). Como consecuencia de la asimilación de la lactulosa por las bifidobacterias, se originan ácidos grasos de cadena corta, fundamentalmente acético, propiónico y butírico a la vez que desciende el pH y se inhibe la proliferación de Escherichia coli, Bacteroides y Clostridios. Por tanto, la incorporación de lactulosa en la dieta origina un aumento en bacterias probióticas y una disminución de las bacterias putrefactivas y potenciales patógenas. Estas variaciones de la flora intestinal tienen las siguientes consecuencias: 1) reducción de las actividades enzimáticas de glucosidasa, β-glucuronidasa, azo-reductasa y nitro-reductasa, 2) aumento de la presencia en heces de ácidos orgánicos de cadena corta, 3) disminución del pH y aumento de la humedad en heces (Ballongue et al., 1997 en Villen, 2000).

Los productos del metabolismo de la lactulosa aumentan la presión osmótica del contenido intestinal lo que da lugar a una mayor retención de agua, facilitando el barrido fecal hacia el recto.

Xilo – oligosacárido (XOS)

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humano. Se encuentran en frutas y verduras, pero también en la miel y la leche (Galisteo et al., 2008 en Marchena 2012).

La obtención de XOS se produce a partir de materiales lignocelulósicos (LCM), provenientes de residuos forestales (madera de eucalipto) o de residuos de algunas agroindustrias (maíz, almendras, aceite de oliva, arroz, avena, cebada). Estos componentes, mejoran la calidad de los alimentos, proporcionando un cambio en sabor y características físico-químicas; razón por la cual son utilizados como ingredientes en alimentos.

Este oligosacárido es estable en un amplio rango de pH (2,5 a 8,0) y temperatura.

Los XOS tienen la capacidad de estimular el crecimiento de bacterias del género Bifidobacterium en el intestino grueso (Caselato de Souza et al., en Marchena 2012).

Isomalto – oligosacárido

Posee enlaces α (1-4)-glucosa y α (1- 6)-glucosa. Se obtiene por procesos microbianos o enzimáticos, transgalactosilación de maltosa y síntesis enzimática a partir de sacarosa. Su grado de polimerización es 2 a 8 unidades; se encuentran en la salsa de soja, el sake y la miel (Figueroa et al., 2011 en Marchena 2012) (Ver: Fotografía 6).

Fotografía 6: Estructura química de la Isomaltosa (Anónimo, s.f.).

Manano - oligosacárido (MOS)

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y secado por spray, el cual ofrece una herramienta nutricional novedosa para ayudar a sostener la salud animal, y por consiguiente, optimizar el rendimiento bajo diferentes condiciones de producción (González, 2003 en Caraveo Suarez, 2010).

En la pared celular interna de las levaduras encontramos Glucanos. Los β-glucanos son polisacáridos estructurales, cadenas de moléculas de glucosa con uniones β-1,3 y β-1,6, similares al almidón (almidón son α-1,4 y uniones α-1,6). Estos glucanos son capaces de promover tanto la respuesta inmune natural como la adquirida.

En la pared celular externa encontramos Oligosacáridos mananos. El MOS es un carbohidrato funcional complejo, con cadenas de diferentes azúcares llamados manosa unidos entre sí por uniones β-1,6, que se extrae de la pared exterior de la célula, de las cepas de la levadura Saccharomyces cerevisiae, que contiene mananos fosforilados. Dichos carbohidratos cumplirían roles inmunológicos y nutricionales en animales jóvenes (Dildey et al., 1997 y Franklin

et al., 2005 en Curiquén y González s.f.).

Las bacterias patógenas se unen a las manosas ubicadas en el exterior de las células intestinales del huésped, siendo éstas fermentadas por los patógenos. Un mecanismo de unión es a través de la Fimbria Tipo 1 manosa-sensitiva la que se encuentra en numerosas cepas de Escherichia coli y

Salmonella sp. (Dvorak et al., 1997 y Finucane et al., 1999 en Curiquén y González s.f.). Los MOS actúan previniendo la adherencia de las lectinas bacterianas a los carbohidratos presentes en la superficie de las células intestinales. Esta acción reduce la colonización del tracto digestivo con patógenos, los que son excretados en las heces. Así, los MOS previenen infecciones bacteriales a través de mecanismos diferentes a los utilizados por los antibióticos, impidiendo la habilidad de desarrollar resistencia por parte de los patógenos (Newman et al., 1993; Dildey et al., 1997 y Finucane et al., 1999 en Curiquén y González s.f.).

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cuerpo del animal están localizadas dentro del intestino como parte del tejido linfoide; proporcionando protección inmunológica, tanto específica como no específica, de manera de proteger la superficie del tracto gastrointestinal.

En el sistema inmunológico no específico los macrófagos cumplen una función muy importante en la etapa temprana de la lucha contra las bacterias invasoras. El estímulo inicial se produce por la fagocitosis de un antígeno en particular. Sin embargo, las citocinas de las células T auxiliares y los productos de la pared celular de microbios extraños, pueden acelerar la actividad de los macrófagos, además las células T auxiliares activan la parte complementaria del sistema inmunológico a través de la estimulación de la actividad fagocítica, acelerando la eliminación de los patógenos del animal huésped. Teniendo en cuenta lo anteriormente mencionado, los MOS estimulan la actividad macrófaga cuando estos se exponen directamente a la bacteria invasora, en un sistema in vitro, o cuando se otorgan como parte del alimento a los animales (Alltech, 1999b en Curiquén y González s.f.).

Las inmunoglobulinas A (IgA) de la mucosa, parte importante de la respuesta inmunológica específica, protegen al animal previniendo la adherencia de las bacterias, o de las toxinas, a las células epiteliales del intestino. Al respecto, (Savage et al., 1996 en Curiquén y González s.f), reportaron un 25% de aumento de la concentración de IgA en bilis e IgG en plasma de pavos alimentados con MOS. Los mecanismos mediante los cuales los MOS estimulan la producción de la IgA no han sido totalmente esclarecidos; aunque existe la hipótesis de que las células M toman pequeñas porciones de MOS y los transporta a las placas de Peyer para que pueda actuar como auxiliar en el estímulo para la producción de IgA (Alltech, 1999b en Curiquén y González s.f.).

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El bloqueo de la colonización de bacterias patógenas, la modulación del sistema inmune y la mejora en la mucosa del intestino ha resultado benéfico.

Así mismo producen una moderación en la fermentación promovida por la microflora intestinal, favoreciendo la absorción de nutrientes.

Las investigaciones en la industria avícola se centran en la alimentación, ya que mediciones en esta área ayudan a reducir la incidencia de infecciones por

Salmonella, a través del uso subterapéutico de antibióticos en las dietas. El sulfato de cobre es incorporado a las dietas de aves como un antimicrobial y promotor de crecimiento por varios años. Éste afecta la forma en que los antibióticos actúan sobre el crecimiento microbial del intestino. Es por esto que se ha evaluado la incorporación de los MOS en dietas suplementadas con cobre como alternativa al uso de antibióticos y de este mineral. En este tipo de animales se recomienda el suministro de los MOS a razón de 1 kg/ton de alimento durante toda la etapa de crecimiento (Savage et al., 1996 en Curiquén y González s.f.).

En broilers, el uso de los MOS ha generado resultados similares en peso y eficiencia de conversión alimenticia, respecto a los valores logrados por aves tratadas con el antibiótico Bacitracina.

En una experiencia, se midió la longitud de las vellosidades, parámetro en el cual no se registraron diferencias en el grupo tratado con MOS al compararlo con el control (alimentación sin aditivos); estos sugiere que los MOS mejoran el desempeño por medio de mecanismos diferentes al incremento de la longitud de las vellosidades. Resultados similares, se registraron en una investigación con pavos. De acuerdo a los resultados señalados en ambas investigaciones se puede concluir que los MOS son una alternativa práctica a la Bacitracina (Savage

et al., 1996 en Curiquén y González s.f.).

La inclusión de los MOS en las dietas de especies animales, brinda los siguientes beneficios (Rodríguez, P. 2007 en Curiquén y González s.f.):

*Mejora la conversión alimenticia.

*Reduce la mortalidad.

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*No tiene ningún efecto perjudicial en el comportamiento a la resistencia de antibióticos en animales suplementados.

Relación prebiótico y probiótico

Es responsabilidad de la microflora intestinal, fundamentalmente las bifidobacterias y los lactobacilos, la producción de AGCC y ácido láctico, como consecuencia de la fermentación de carbohidratos no digeribles. Estos productos disminuyen el pH en el colon creando un ambiente donde las bacterias potencialmente patógenas no pueden crecer y desarrollarse. Los prebióticos constituyen el sustrato fundamental de las bacterias probióticas (De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

Simbióticos

La combinación de prebióticos con probióticos se ha definido como simbiótico, la cual beneficia al huésped mediante el aumento de la sobrevivencia e implantación de los microorganismos vivos de los suplementos dietéticos en el sistema gastrointestinal (Nutr, 1999 en De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

Aún está poco estudiada esta combinación, que podría aumentar la supervivencia de las bacterias en su fase de tránsito intestinal y por tanto, aumentaría su potencialidad para desarrollar su función en el colon.

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prebióticos, probióticos o ambos (simbióticos) (De la Cagigas Reig y Blanco Anesto, 2002).

Así también, en resumidas cuentas se diferencian en que los prebióticos son fibras que estimulan la propia flora gastrointestinal; son útiles en la prevención de enfermedades; y se consideran como alimentos funcionales, cuyo papel va más allá de la ingesta de nutrientes, buscando un efecto promotor de la salud.

Los probióticos son microorganismos vivos que compiten con los patógenos; se ha demostrado que tienen efectos tróficos e inmunológicos sobre la mucosa.

Producto utilizado en esta experiencia

El producto utilizado en esta experiencia llamado “Premix”, está constituido por 60% de manano oligosacáridos (MOS) utilizado como prebiótico en este producto, concentrado al 55%, o sea que el producto final tiene 33% de MOS. La fracción de protección hepática es el 15% y básicamente es 10% extracto de Cynara y 5% extracto de cardo mariano. Luego tiene 15% de colina al 60% como factor lipotrópico. El 10% restante son excipientes y conservantes. El precio comercial estará alrededor de 12 dólares (186 $).

Extracto de Cynara scolymus (Alcachofa)

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Fotografía 7: Inflorescencia de la planta de alcachofa (Cynara scolymus) (Anónonimo, s.f.).

La parte utilizada para la elaboración del extracto seco son las hojas, cuyo principio activo son los ácidos fenólicos, principalmente ácidos cafeilquínicos, conocidos por su marcado efecto antioxidante (Brown et al., 1998 en Bernardino, 2010), también como colagogo y colerético.

Los extractos de alcachofa se utilizan en la medicina contra enfermedades del hígado, para el tratamiento de la hepatitis e hiperlipidemia, para ejercer un efecto hepatoprotector (Kirchhoff et al., 1994; Kraft, 1997; y Gebhardt et al. 1997 en Bernardino, 2010). Recientemente, la investigación se ha centrado en la actividad antioxidante extractos de hojas de alcachofa.

La alcachofa no presenta extracto etéreo (lípidos), y es baja en colesterol, es rica en vitamina B, C y minerales, es fuente prometedora de productos biofarmaceúticos. Se ha demostrado que aumenta la absorción de calcio, magnesio, y disminuye los niveles de colesterol (Coudray et al., 1997; Niness, 1999 en Bernardino, 2010).

Otras sustancias que se encuentran en pequeña cantidad, pero dotadas de notables efectos fisiológicos positivos son:

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Tabla 1: Composición Proximal de la alcachofa (Cynara scolymus) (Valderrama Castro, 2014).

Componente Nutricional g/100 g de materias Seca

Proteína 18,91

Lípidos 1,69

Carbohidratos Solubles 12,41

Cenizas 9,31

Fibra Soluble 13,47

Fibra Insoluble 44,42

Los Esteroles: son compuestos que se encuentran en la alcachofa y tienen la capacidad de limitar la absorción del colesterol en el intestino (Tabarne, 2009 en Valderrama Castro, 2014).

Algunos autores atribuyen al extracto de la alcachofa, principios activos con propiedades: a) hepático-coleréticas y colagogas que facilitan la emulsión y formación de micelas grasas en duodeno (Gebhard & Fausel, 1997; Fintelmann,

1996 en Valderrama Castro, 2014) y b) prebióticas intestinales (inulina), que permiten una mayor absorción y biodisposición sistémica de lípidos (Fintelmann,

1996 en Valderrama Castro, 2014).

Silybum marianum (Cardo Mariano)

El “cardo mariano” o “cardo asnal” es una planta herbácea también perteneciente a la familia de las Asteráceas, anual o bianual, con 1-2 metros de altura, hojas profundamente lobadas, espinosas, con manchas blancas en la cara superior, involucro globoso, frecuente en suelos modificados (Cabrera et al., 1993 en Bernardino, 2010).

La parte utilizada para la elaboración es la flor (Ver: Fotografía 8).

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Fotografía 8: Inflorescencia de Cardo Mariano (Silybum marianum) (Anónimo, 2011).

Se ha demostrado que la silibina, componente mayoritario de la silimarina (Morazzoni y Bombardelli, 1995 en Bernardino, 2010), conserva la funcionalidad e integridad estructural de las membranas de los hepatocitos.

Colina

La colina es un metabolito importante, constituyente de lípidos complejos, como la fosfatidil-colina, y de la acetil-colina, un intermediario químico del sistema nervioso (Ver: Fotografía 9).

Fotografía 9: Estructura química de la colina (Anónimo, s.f.).

No puede ser considerada una vitamina, pues es sintetizada en cantidades importantes en el organismo. Por otra parte, la cantidad total de este compuesto que el organismo demanda es muy superior a las necesidades habituales de los factores vitamínicos (Blanco, 1997).

La colina está ampliamente distribuida en los alimentos y es por eso que es muy difícil que se produzca carencia. Las fuentes más importante son la carne, la yema de huevo, los cereales, porotos, maní, etc.

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La administración de colina promueve la movilización de esos depósitos anormales de grasas. Este efecto recibe el nombre de acción lipotrópica (Blanco, 1997).

Experiencias anteriores del producto

Con base en tres experiencias anteriormente realizadas con el producto “Premix”, realizadas en diferentes granjas cabe destacar los siguientes resultados:

En el “establecimiento 1” podemos mencionar que se utilizó 250 gr/ton del producto teniendo como resultado una mejor conversión y mejor peso promedio también se destaca mayor ganancia de peso diario, aunque hubo una mayor mortandad en los animales.

En el “establecimiento 2” se hicieron dos experiencias, donde la primera tuvo los mismos resultados que en el “establecimiento 1”, en cambio en la segunda se percibió un mejor peso promedio, peor conversión por ende una menor ganancia de peso diario y mayor mortandad.

En el “establecimiento 3” se realizó esta prueba en el año 2014 y se pudo observar un mejor peso promedio y conversión aunque la mortandad fue mayor en aquellos animales que fueron alimentados con el producto en cuestión (ver Tabla 2).

En resumen, teniendo en cuanta el producto en los diferentes establecimientos, los resultados fueron:

Tabla 2: Comparación de los resultados en experiencias anteriores. Establecimiento

M e d i c i ó n 1 2 3

P e s o P r o m e d i o + + + +

Ganancia de Peso Diario + + - ?

C o n v e r s i ó n + + - +

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Materiales y Métodos

Materiales

Granja y distribución de galpones

La experiencia se inició el día viernes 23 de Octubre de 2015 llevándose a cabo en la Granja Don Abel perteneciente a la empresa Toledo (ver Fotografía 10), situada en la ruta 226 Km 12,5. Se utilizaron un total de 65.499 aves de la línea Cobb 500, destinando 9 galpones los cuales se dividieron en diferentes grupos.

Los pollos testigos (T) no consumieron ningún aditivo de prebiótico en el alimento, los pollos del tratamiento 1 (T1) consumieron 250 gramos de prebiótico por tonelada de alimento y los pollos del tratamiento 2 (T2) consumieron 500 gramos de prebiótico por tonelada de alimento.

El primer grupo (G1), ingresados el día viernes 23 de Octubre, estuvo integrado por el galpón 9 (T), el galpón 7A (T1) y el galpón 7B (T2). En cada galpón del G1 se ingresaron 6800 animales. Con una densidad de alojamiento en la zona de recepción de 45,3 animales por metro cuadrado.

Fotografía 10: Granja Don Abel - Mar del Plata (google maps).

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El G3 estuvo integrado por los galpones 8B (T), 12 (T1) y 13 (T2). En cada galpón ingresaron 8033 animales con una densidad en la zona de recepción de 53,5 animales por metro cuadrado. En la Tabla 3 se observa un resumen de los diferentes tratamientos y grupos.

Tabla 3: Grupo y Tratamiento de cada galpón (Elaboración propia). Grupo

G1 G2 G3

Tratamiento

T 9 8 A 8 B

T1 7 A 10 12

T2 7 B 11 13

Pre Recepción

Las zonas para la recepción de los pollitos bb en todos los galpones fueron de 150 m2_.

Fotografía 11: Zona de recepción previo al alojamiento.

En la zona de recepción se colocó cama de viruta de madera y sobre estas 6 líneas de papel en donde se esparció alimento pre iniciador, 30 tolvas portátiles, 20 bebederos portátiles. En los laterales del galpón se colocó rafia y papel corrugado. Esta área del galpón tenía 4 líneas de bebederos tipo nipple y 2 líneas de comederos tipo plato, 8 calefactores infrarrojos: 4 de 2000 cal. y 4 de 1000 cal., un foco de 45 watts y un ventilador. Con respecto a los comederos lineales se ajustaron la cantidad de los mismos según grupo (Ver: Fotografía 11).

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La temperatura de la zona de recepción se tomó en el medio y en los dos extremos, realizando un promedio de los mismos.

Recepción

En la planta de incubación los pollitos bb fueron colocados en bandejas de plástico, con un sobre piso de papel madera, conteniendo 100 animales cada una. El transporte se realizó en un camión a 26°C, el cual fue desinfectado al ingreso del predio.

Fotografía 12: Transporte y descarga del pollito bb.

Para la descarga de los animales el camión se aproximó lo más posible al portón del galpón y se bajaron las bandejas en pilas de 3, las cuales fueron depositadas sobre el suelo hasta bajar la cantidad correspondiente. Luego de contar las bandejas y verificar el número, se cerró el portón del galpón e inmediatamente se depositaron los animales sobre el papel donde se encontraba el alimento (ver Fotografía 12).

Luego de realizar este mismo procedimiento en cada galpón se volvió a tomar la temperatura en los galpones.

Comederos portátiles

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todos los días a la mañana, luego de llenar los bebederos. Los mismos se distribuían en 4 hileras, dos centrales de 8 comederos y dos externas de 7 comederos.

Fotografía 13: Comedero portátil.

Bebederos portátiles

Los bebederos portátiles eran de plástico, con una capacidad de 3 litros (ver Fotografía 14). Con un total de 20 bebederos por galpón, los mismos se encontraban desde el mismo inicio del ingreso de los pollitos bb hasta el día 7 inclusive. El llenado de los bebederos se realizaba en forma rutinaria todos los días a la mañana. Los mismos se ubicaban sobre unos tacos de madera para mayor estabilidad. Se los distribuía en 4 hileras de 5 bebederos cada una.

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Comederos y Bebederos fijos

Los comederos fijos eran de transporte en espiral (sinfín) con platos. En el extremo de la zona de recepción había un plato llamador con un switch que pone en marcha el sistema de alimentación cuando se queda sin alimento. En el otro extremo del comedero lineal, se encontraba una tolva con otro switch que activaba el sinfín que traía el alimento desde los silos cuando la tolva se quedaba sin alimento.

Los bebederos lineales eran con nipples de acero y multidireccional. En uno de los extremo tenía un regulador de presión y en el otro una válvula para poder extraer el agua. En ambos extremos tenían también un indicador de nivel de agua.

Tanto los comederos y bebederos lineales fueron ajustados a la altura de los animales según la edad de los mismos.

Campanas, Rafias y Ventiladores

Se mantuvo la misma cantidad de calefactores a medida que se fue dando espacio al galpón.

Fotografía 15: Campanas y Rafia.

La rafia es un hilo de fibra sintética que se usa para mejorar la temperatura interna de la zona de recepción evitando la salida de calor e ingreso de aire frio. Estas se ubicaron en los laterales de la zona de recepción y se dejaron colocadas hasta el día 7 (ver Fotografía 15).

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adaptación de los animales con los ventiladores por los ruidos que generaban los mismos, y evitar así un estrés de los pollos.

Papel cartón y Papel corrugado

El papel cartón se utilizó para depositar alimento hasta el día 3. Los mismos estaban colocados en 6 tiras que iban de punta a punta de la zona de recepción. Cabe recordar que su función es aumentar la cantidad de superficie de alimento, la cual se recomienda que sea del 50% aproximadamente, esta función es complementada con los comederos portátiles y comederos en línea.

El papel corrugado se colocó parado en las paredes laterales de punta a punta de la zona de recepción, con el corrugado hacia la pared cuya función es aislar a los pollitos bb del frío, este papel se sacó junto al papel de cartón en el día 3.

Peso del pollito bb recién ingresado

Luego de ser tomada la temperatura de cada galpón se realizó el peso de los pollitos bb. Los animales se encerraron en 3 corralitos ubicados en los dos extremos de la zona de recepción y un corralito en el medio.

Se pesaron como mínimo una cantidad de 100 animales, utilizando una balanza digital con capacidad máxima de 5 Kg y pesando de a un pollito, dejando informado dichos pesos en su respectiva planilla, este procedimiento se realizó en todas las pesadas semanales (Ver Fotografía 16).

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Fotografía 16: Pesada del pollito bb.

Plan de luz

Los focos utilizados eran de 45 watts, siendo el plan el siguiente (ver Tabla 4):

Tabla 4: Plan de luz según edad (Cobb-Vantress et al., 2015).

Edad (días) Enciende Apaga (hs.) Enciende (hs.)

1 - 7 Atardecer 23:00 00:00

8 - 21 Atardecer 23:00 05:00

22 - 35 Atardecer 23:00 03:00

36 - faena Atardecer 23:00 00:00

Trabajo diario y semanal

(50)

Fotografía 17: Termohigrómetro.

La T° y H° se tomó de 3 puntos diferentes del galpón, en las dos puntas y en el medio para luego poder realizar un promedio del galpón. A partir desde ahora se van a denominar esos sectores madre, medio y chapa. Teniendo en cuenta que la chapa es el sector de donde se agrando la zona de recepción, el medio es la mitad del galpón y la madre es el sector donde originalmente se ubicaron a su ingreso los pollitos bb.

Finalizada la toma de T° y H° se comenzaba a recolectar los animales muertos, empezando y finalizando por los mismos galpones como se hizo en la toma de T° y H°. Recolectada la mortalidad diaria, era contada y anotada en la planilla y luego se la llevaba a un compost.

Los días viernes se realizaba la pesada semanal del G1, y las pesadas de G2 y G3 los días lunes; consistía en encerrar a los animales en tres sectores diferentes del galpón utilizando una chapa como corralito. El encierre de los animales se realizaba en tres sectores, madre, medio y chapa. La pesada se hacía en una balanza digital y de un animal por vez y el peso indicado por la balanza se transcribía a una planilla, para luego sacar el peso promedio, desvío estándar y porcentaje de desvío estándar. Siempre se pesaba un mínimo de 100 animales por galpón, cabe aclarar que se pesaban todos los animales que se encerraban.

Ampliación de la zona de recepción