Identificación de focos de leptospira en porcinos cría de la zona central cafetera para su prevención y control :informe de actividades 1997

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(2) i'. ^-90 9-1. Dt ttVES. A. \-. Q.

(3) Cr. Corporación Colombiano de Ir.. - xión Agropecuario. ^gi ona l. INFORME DE PROGRESO 1998. Identificación de focos de leptospira en porcinos cría de la zona central cafetera para su prevención y control.. Dra. Graciela Giraldo de León. Actividades Programadas 1998 Gk. . Tener identificados los focos de Leptospira.. B. • Modelo para determinar el estado de portador del pie de cría. • Continuidad en el mantenimiento de cultivos correspondientes a los diferentes focos en investigación. • Continuidad en la conformación y mantenimiento de un cepario. • Establecimiento de un cepario que sirva de base para la preparación de vacunas homólogas. CO. (. -. 9 C.

(4) • Montaje y estandarización de técnicas para la diferenciación de leptospiras patógenas de saprofitas.. • Coordinación de tesistas y pasantes en los experimentos que hacen parte del proyectos de Leptospira y el de Reproducción.. • Enfrentamiento de los aislamientos de leptospiras de aguas (cepas) a un número determinado de sueros de las porcícolas en estudio para verificar reactividad serológica.. • Elaboración de un plegable sobre medidas generales de prevención y control de leptospirosis.. . Plan preventivo de la infección en animales y humanos de las porcícolas en estudio.. Actividades Ejecutadas 1998. • Se identificó los focos de leptospiras: Pie de cría, caninos, roedores, aguas de consumo, lavados, residuales y humanos, en las quince porcícolas en estudio.. Aguas: • Se realizó el tercer y el cuarto muestreo con un total de 78 y 86 muestras respectivamente. Los cuales se sometieron al proceso de visualización directa y cultivos respectivos para el aislamiento de Leptospira..

(5) 3. Pie de Cría:. • Se realizó el tercer muestreo con un total de 475 muestras para exámenes serológicos mediante las técnicas de Microaglutinación lisis e Inhibición del Crecimiento de leptospiras.. • Se trabajó las orinas provenientes del tercer muestreo e igualmente los materiales patológicos tales como embriones, fetos, nacidos débiles, nacidos muertos, secreciones los cuales se les llevó a cabo visualización directa y cultivos específicos para el aislamiento de Leptospira. Caninos:. • Se recolectaron 49 muestras de sangre de caninos para exámenes serológicos, mediante las técnicas de Microaglutinación e Inhibición del Crecimiento y 10 orinas para visualización directa y cultivos de las porcícolas en estudio.. • Se tomaron 58 muestras de sangre de caninos de la zona urbana para análisis serológico mediante las técnicas de Microaglutinación e Inhibición del Crecimiento y 16 orinas para su visualización directa y cultivos.. • Análisis serológico comparativo de resultados obtenidos de muestras de casos procedentes de porcícolas y zona urbana de Manizales..

(6) 4. Humanos:. • Se tomaron 71 muestras de sangre en los trabajadores de las porcícolas para realizar pruebas MAL 1:50 e IC, visualización directa de orina, Ph y los correspondientes cultivos.. • En cuanto a la Central de Sacrificio se tomaron sangres (112) y orinas (112) correspondientes a tres muestreos para realizarles pruebas serológicas Microaglutinación (MAL) e Inhibición del Crecimiento (IC), Visualización directa de Orinas y sus respectivos cultivos.. Roedores:. o Se capturaron 17 roedores (ratas y ratones) a las cuales se les realizó exámenes serológicos, y de sus tejidos visualización directa y cultivos.. Actividades Propias del Laboratorio Ejecutadas 1998. • Preparación de medios de cultivos para los repiques constantes con el objeto de purificación de las muestras; soluciones buiferadas, antibióticos, preparación de materiales, y de antígenos para realizar las pruebas serológicas. • Mantenimiento de siete cepas de referencia con las cuales se llevan a cabo las pruebas serológicas e igualmente mantenimiento de 29 cepas aisladas de los diferentes focos en estudio..

(7) 5. • Procesamiento según la metodología establecida para el aislamiento de leptospiras procedentes de: pie de cría (secreciones, material de abortos, nacidos muertos, nacidos débiles, y orinas) aguas: consumo, lavado y residuales, roedores: Orinas y tejidos, Humanos: Orinas, estos cultivos han sido sometidos a repiques continuos con el objeto de llegar a la purificación y aislamiento de leptospiras. • Inoculaciones a ratas con el objeto de purificar cultivos y a la vez observar la patogenicidad de los mismos. • Salidas a porcícolas para toma de sangres y orinas en humanos y realizar en el mismo sitio los cultivos.. • Capacitación permanente a siete tesistas que hicieron parte de los objetivos del Proyecto. Cuatro de los cuales terminaron el Semestre A y dos en el Semestre B. • Capacitación a tres tesistas que hacen parte al Proyecto de Reproducción en Bovinos.. • Capacitación en el estudio de leptospirosis según metodología establecida por el Proyecto de Leptospira a una Bacterióloga de la Universidad del Valle, Seccional de Salud.. Resultados Relevantes y/o Avances. • El examen directo (campo oscuro) es una herramienta importante para determinar la presencia de leptospiras en aguas de consumo, lavado e igualmente las residuales de las porcícolas en estudio..

(8) . Las aguas utilizadas en las quince porcícolas en estudio tanto para consumo como lavado y residuales presentan una alta positividad a Leptospira spp. • Los tanques de almacenamiento para consumo de animales, fueron los sitios donde se obtuvo el mayor número de cultivos positivos y por consiguiente de aislamientos.. • El cultivo de las aguas para el aislamiento de leptospiras es el método más certero para el diagnóstico de la misma.. • Las aguas en el tercer muestreo a examen directo se encontró una tasa proporcional de positividad de 32.3% para tanque de almacenamiento, 25.8% para chupones y 16% para tanque de lavado. Esta proporción de positividad se mantuvo en los cultivos de los mismos, en los cuales correspondió una tasa proporcional de positivas de 36.4% para tanques de almacenamiento, 27.3% para chupones, y 4.5% tanque de lavado. La tasa proporcional de crecimiento de Leptospiras a partir de aguas servidas fue del 9.11%, en tanto que para el examen directo había sido de 6.5%. • En el cuarto muestreo la tasa proporcional de positividad al examen directo para tanque de almacenamiento fue del 50% mientras que para aguas servidas fue de 37.5%, y chupones del 12.5%, de las demás fuentes de aguas no se encontró positividad. En cuanto a los cultivos la tasa, proporcional más alta a positividad de cultivos correspondió a chupones 50%, seguida a tanque de almacenamiento 25% distribuyéndose al resto de la tasa entre pozo superficial y nacimiento. Por lo tanto la mayor contaminación se encuentra en tanques de almacenamiento, chupones y aguas servidas..

(9) 7. . En las aguas servidas de las porcícolas se encontró por visualización directa una positividad del 100% a Leptospira; por lo cual las aguas residuales son factor de alto riesgo ambiental, de zoonosis y de persistencia de la enfermedad. Las aguas de consumo de las porcícolas fueron positivas a leptospiras, variando entre el 20 y 100% constituyéndose en un factor de riesgo de contaminación.. • Se evidencia el descuido del manejo de las aguas para consumo de animales dado por la mayoría de los porcicultores, que pueden acarrear problemas sanitarios en el plantel e igualmente el daño ambiental que provocan al no hacer tratamientos de las aguas servidas como se establece en la ley de regulación ambiental en Colombia "Disposiciones sanitarias de las aguas". (Tablas. 1,2,3,4,5).. • Al completar y analizar los tres chequeos serológicos se concluyó que la enfermedad en la zona se presenta en el 100% de los predios, con una prevalencia real de 67.6% ± 15.9. para las porcícolas de la región. La prevalencia inicial del. 13%. fue. subvalorada debido a las técnicas que se emplearon. Las investigaciones realizadas demuestran que la leptospirosis es de presentación crónica en el pie de cría, lo que permite establecer la necesidad de implementar pruebas que detecten Inmunoglobulinas G. • El diagnóstico serológico real de la leptospirosis debe hacerse mediante pruebas que detecten la presencia de Inmunoglobulinas G y M, por lo tanto, debe implementarse dicha metodología para detectar estas inmunoglobulinas. • La visualización directa y cultivos es un buen apoyo diagnóstico, tratándose de fluidos y tejidos corporales, y/o cuando se presenten serologías con resultado negativo. Metodología de apoyo diagnóstico. (Tablas. 5,6,7,8,9)..

(10) . El 78:7% de los roedores examinados fueron positivos a leptospiras por cultivo 59/75 y por visualización directa el 70.7%. . Los roedores especie (R. Norvergicus) fue la que presentó más alta positividad a leptospiras.. • La reactividad serológica de los roedores para las pruebas de Microaglutinación lisis e Inhibición del Crecimiento fue baja para los serovares incluidos en el estudio, pudiendo tener anticuerpos para otros serovares diferentes. (Tablas 10,11,12,13). • La prevalencia real de leptospirosis en caninos de las porcícolas es de 37.2% siendo el serovar predominante la L. icterohaemorraghiae, en comparación con los caninos de la zona urbana que es de 26.8% predominando el serovar L. canícola. • • La L. ¡cterohaemorraghiae es la más prevalente en el pie de cría porcina (62.87%) y en los caninos de las porcícolas de 32%. (Tablas 14,15).. • En lo que respecta a los humanos se encontró que la prueba de MAL 1:50 solo presentó reactividad en la primera toma con una prevalencia de 4.3% y un intervalo de confianza de (4.3 - 10.3%), por su parte la IC igualmente tan solo se encontraron reactores en la primera toma con una prevalencia de 10.9% con un intervalo de confianza de (1.75 - 20.2%). • Las visualizaciones de las orinas fueron siempre positivas obteniéndose secuencialmente prevalencias de 26.1%, 47.0% y 62.5%, este último con un intervalo de confianza de 28.3% a 96.7%, lo cual indica una mayor sensibilidad de este procedimiento respecto a las serologías..

(11) • En cuanto a los cultivos de orinas estos fueron también positivas a los tres muestreos de manera secuencial, 58.7, 23.5 y 62.5% con un intervalo de confianza de esta última de 28.3 a 96.7%. Esto indica que el cultivo es el procedimiento más sensible para el diagnóstico en personas de las porcícolas. Finalmente la positividad total en las porcícolas estudiadas, sumando las positivas en los cuatro procedimientos utilizados fue en su orden de 60,9%; 47.0% y 62.5%, este último con un intervalo de confianza de 28.3 a 96.7%. Se puede concluir que utilizando los cuatro procedimientos diagnósticos se incrementa de una manera significante la posibilidad de detectar individuos infectados y que las serologías por si solos no son adecuados para el diagnóstico de leptospirosis en humanos.. • Finalmente el promedio de la prevalencia general es de 56.8% con un error estándar de 8.5%.. • En cuanto a la Central de Sacrificio se tomaron sangres. (112) y orinas (112). correspondientes a tres muestreos. Al realizar los análisis solo se encontró reactores positivos para la Inhibición del Crecimiento, en la segunda toma, por lo tanto no hubo reacciones serológicas en la primera ni tercera toma, por el contrario en la visualización directa de orina y cultivos se encontró positividad en las tres tomas. Este resultado es similar a lo encontrado en las porcícolas, ya descrito en los párrafos anteriores. Los cultivos de las orinas presentaron prevalencias más altas que las visualizaciones directas siendo las prevalencias obtenidas secuencialmente de 6.7%, 33.3% y 20%. Por parte de la visualización directa presentó las siguientes prevalencias secuenciales: 4.4, 14.3 y 16.0%. En cuanto a la prevalencia total, estos fueron de 6.7, 40.5 y 25.0%..

(12) 10. o El promedio de la prevalencia general total es de 24.1% ± 16.9, por lo tanto el grado de infección por Leptospira en personal de riesgo de los porcicultores es más alta que en los trabajadores de la central de sacrificio.. • La reactividad serológica de los pacientes en estudio utilizando la Microaglutinación Lisis (MAL) fue baja igualmente que la prueba de Inhibición del Crecimiento (IC).. • En cuanto a la visualización directa de orinas siempre fueron positivas, obteniéndose secuencialmente prevalencias de 26.1%, 47.0% y 62.5% en los tres muestreos igualmente presentaron los cultivos prevalencias de 58.7, 23.5 y 62.5%. • Igualmente se presentó en el estudio de los trabajadores de la Central de Sacrificio donde las técnicas serológicas por si solas no constituyen un diagnóstico certero y en donde la visualización directa y los cultivos constituyen una metodología indispensable para un diagnóstico eficiente de leptospirosis en humanos.. • Según los resultados obtenidos en los trabajadores de las porcícolas y los de la Central de Sacrificio, se destaca el grado de infección que presentan los trabajadores de las porcícolas constituyéndose en personal de alto riesgo que los de la central de sacrificio.. • Se ha establecido una metodología específica (pruebas bioquímicas) para la diferenciación de leptospiras patógenas de las saprofitas los cuales se realizan con las cepas aisladas. • Cabe resaltar que al enfrentar las cepas aisladas de aguas a un número de sueros de las porcícolas en estudio, no se encontró reactividad serológica de la MAL y si se obtuvo positividad a la técnica de lC, corroborándose la cronicidad de la.

(13) 11. leptospirosis con dicha técnica e igualmente la posibilidad de anticuerpos presentes en los sueros del pie de cría contra las cepas aisladas de aguas.. • Metodología diagnóstica aplicable tanto en las aguas como a las diferentes especies de animales y humana, en lo que respecta al estudio de leptospirosis.. • Se llevó a cabo el plan preventivo a cada predio en estudio.. • Se elaboró un plegable (1000 unidades) sobre leptospirosis tanto animal como humana cuya finalidad es dar a conocer aspectos básicos de la enfermedad, normas de prevención y control.. Labores de Gestión. • Merece destacarse la gestión con Pronatta, Ceisa, ICA, Universidad de Caldas, Universidad Católica, Unisarc, Seccionales de Salud de Caldas, Quindío y Risaralda y porcicultores vinculados al Proyecto, igualmente con otras instituciones Internacionales dedicadas la investigación de Leptospira, con el objeto de buscar intercambio y asesoramiento científico respecto a la tipificación de cepas asiladas.. Autoevaluación. El proyecto ha tenido un desarrollo satisfactorio, llevándose a cabo las actividades programadas. En el momento se ha terminado los experimentos de aguas, pie de cría,.

(14) 12. caninos, roedores y humanos, identificados como focos de infección los cuales generaron una metodología de trabajo y de diagnóstico que son bases para posteriores investigaciones.. Es de importancia anotar la participación activa del personal de las porcícolas así como Seccionales de Salud, esto como respuesta a un continuo monitoreo del Proyecto y a los resultados obtenidos.. Con el desarrollo del Proyecto y los resultados se ha creado conciencia del problema de la leptospirosis tanto a nivel humano como animal, las Seccional de Salud del eje cafetero se han visto en la necesidad de realizar investigaciones conjuntas con el fin de establecer la prevalencia real, con diagnósticos confiables y diferenciales con otras etiologías similares, con la posibilidad de incluirla en la lista de enfermedades de declaración obligatoria, así mismo asesoramiento en cuanto al estudio de la misma.. El proyecto ha permitido la vinculación de siete tesistas de pregrado de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad de Caldas y Facultad de Bacteriología de la Universidad Católica de los cuales han terminado la pasantía seis. El laboratorio de Investigación Pecuaria, Regional Nueve Corpoica, Manizales, ha sido reconocido como líder en la investigación de esta etiología, dando capacitación a personas de entidades interesadas y recibiendo solicitudes de prestación de servicios por otras entidades. Es de importancia anotar la participación activa del personal de las porcícolas así como Seccionales de Salud, esto como respuesta a un continuo monitoreo del Proyecto y a los resultados obtenidos..

(15) 13. Se tiene 29 cepas aisladas de agua y pie de cría, caninos, roedores y humanos las cuales están conformando el cepario.. Transferencia. . Se dictaron conferencias en Manizales, Pereira y Armenia, sobre el diagnóstico de leptospirosis en animales y humanos.. • Panel sobre la importancia de las zoonosis.. • Jornada Científico - Tecnológico Regional (nuevas tecnologías). Presentación de tres trabajos sobre avances del proyecto "Leptospirosis en roedores. Aislamiento del germen y de portador' "Leptospirosis porcina en la zona cafetera. Prevalencia serológica muestra! y condición de portador del pie de cría" "Aislamiento de leptospiras en aguas de consumo lavado y residuales de porcícolas del eje cafetero" "Los caninos como portadores de leptospira. Estudio realizado en 17 poicícolas y en la Clínica Veterinaria de la Universidad de Caldas'. • Se realizaron conferencias en cada uno de los predios en estudio para dar a conocer medidas de prevención y control con los resultados obtenidos, como también a las Seccionales de Salud y otras entidades participantes e interesadas en el estudio. Artículos Publicados • Cálculó de la prevalencia serológica real de la leptospirosis en porcinos..

(16) 14. • Leptospirosis porcina. Prevalencia serológica de porcícolas vacunadas y no vacunadas..

(17) Tabla 1. Tasa proporcional (%) de positividad de muestras de aguas, a cultivos para leptospiras sp. Datos del tercer muestreo en quince porcícolas de Caldas, Quindío y Risaralda. 1998.. Cultivo Sitio general de muestreo. Entrada de agua.. Fuente No. 1. Nacimiento 2. Quebrada captación 3. Filtro purificación 4. Pozo superficial 5. Pozo profundo. Tanque de almacenamiento agua 6. Tanque de para consumo de animales,. Tanque de almcenaminto agua para lavado. Bebederos encorrales. Tanque de almacenamiento aguas servidas. TOTALES. No. muestras. Porcícolas. Positivo. Negativo. Tasa proporcional de positivos (%). cultivadas 2. 2,3. 0. 2. 0.0. 1. 15. 1. 0. 4.5. 1. 10. 0. 1. 0.0. 1. 4,7. 0. 1. 0.0. 1. 4 2,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15. 0. 1. 0.0. 8. 18. 36.4. almacenamiento. 26. 7. Caneca. 1. 1. 1. 0. 4.5. 8. Poceta levante. 1. 4. 1. 0. 4.5. 9. Tanque de lavado. 6. 3,4,13,15. 1. 5. 4.5. 10. Agua manguera. 3. 6,7,8,11,12,13,15. 2. 1. 9.1. 11. Chupones 12. Agua servida. 28. Todas. 6. 22. 27.3. 4. Todas. 2. 2. 9.1. 75. 15. 22. 53. 100.0. 12. INFORM98.XLS.

(18) Tabla 2. Tasa proporcional (%) de positividad de muestras de aguas, a examen directo para leptospiras sp. Datos del tercer muestreo en quince porcícolas de Caldas, Quindío y Risaralda. 1998.. Cultivo Sitio general de muestreo. Entrada de agua.. Fuente No.. 1. Nacimiento. 2. Quebrada captación 3. Filtro purificación 4. Pozo superficial 5. Pozo profundo Tanque de almacenamiento agua 6. Tanque de almacenamiento para consumo de animales. 7. Caneca 8. Poceta levante Tanque de almcenaminto agua 9. Tanque de lavado para lavado. 10. Agua manguera Bebederos encorrales. 11. Chupones Tanque de iiento 12. Agua servida aguas 12. No. muestras. Porcícolas. Positivo. Negativo Tasa proporcional de positivos (%). cultivadas 2 1 1 1 1. 2,3 15 10 4,7 4 2,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15. 0 0 1 1 1. 2 1 0 0 0. 0.0 0.0 3.2 3.2 3.2. 16 1 0. 32.3 0.0 3. 26 1 1. 1 4. 10 0 1. 6 3 28. 3,4,13,15 6,7,8,11,12,13,15 Todas. 5 2 8. 1 1 20. 16.1 6.5 25.8. 7 78. Todas 15. 2 31. 5 47. 6.5 100.0 INFORM98.XLS.

(19) Tabla 3. Tasa proporcional (%) de positividad de muestras de aguas, a cultivos para leptospiras sp. Datos M cuarto muestreo en quince porcícolas de Caldas, Quindío y Risaralda. 1998.. Cultivo Sitio general de muestreo. Entrada de agua.. Fuente No.. 1. Nacimiento 2. Quebrada captación 3. Filtro purificación 4. Pozo superficial 5. Pozo profundo. No. muestras. Porcícolas. Tanque de almcenaminto agua para lavado. Bebederos encorrales. Tanque de almacenamiento aguas servidas. TOTALES. Negativo Tasa proporcional de. cultivadas. positivos (%). 1. 2,3. 1. 0. 8. 1. 15. 0. 1. 0.0. 1. 10. 0. 1. 4. 4,7. 2. 2. 16.7. 1. 4 2,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15. 0. 1. 0.0. 3. 17. 25.0. Tanque de almacenamiento agua 6. Tanque de almacenamiento 20. para consumo de animales.. Positivo. 7. Caneca. 1. 1. 0. 1. 0.0. 8. Poceta levante. 1. 4. 0. 1. 0.0. 9. Tanque de lavado. 6. 3,4,13,15. 0. 6. 0.0. 10. Agua manguera. 6. 6,7,8,11,12,13,15. 0. 6. 0.0. 11. Chupones 12. Agua servida. 29. Todas. 6. 23. 50.0. 12. O. 1. Todas. O. 1. 0. 1. 0.0. 71. 1. 15. 12. 1. 59. 1. 100.0 INFORM98.XLS.

(20) Tabla 4. Tasa proporcional (%) de positividad de muestras de aguas, a examen directo para leptospiras sp. Datos del cuarto muestreo en quince porcícolas de Caldas, Quindío y Risaralda. 1998. Cultivo Sitio general de muestreo. Fuente No.. Positivo. 2. Quebrada captación 3. Filtro purificación 4. Pozo superficial 5. Pozo profundo. 0. 1. 0.0. 1. 15. 0. 1. 0.0. 1. 10. 0. 1. 0.0. 4. 4,7. 0. 4. 0.0. 1. 4 2,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15. 0. 1. 0.0. 4. 20. 50.0. 7. Caneca. 1. 1. 0. 1. 0.0. 8. Poceta levante. 1. 4. 0. 1. 0.0. 9. Tanque de lavado. 6. 3,4,13,15. 0. 6. 0.0. 10. Agua manguera. 6. 6,7,8,11,12,13,15. 0. 6. 0.0. 11. Chupones 12. Agua servida. 29. Todas. 1. 28. 12.5. Tanque de almcenaminto agua. Bebederos encorrales. Tanque de almacenamiento aguas servidas. TOTALES. 1 1. positivos (%). 2,3. 24. para consumo de animales.. Tasa proporcional de. 1. Tanque de almacenamiento agua 6. Tanque de almacenamiento. para lavado.. Negativo. cultivadas. 1. Nacimiento. Entrada de agua.. Porcícolas. No. muestras. 12. 1. 11. 1. Todas. 1. 3. 1. 8. 37.5. 86. 1. 15. 1. 8. 1. 78. 100.0 INFORM98.XLS.

(21) Tabla 5. Infección por leptospira. por serovar hallado, por la técnica de microaglutinación Lisis (1:50), en 17 porcícolas de Caldas, Quindío y Risaralda, 1997.. No.. No.. TASA. PORCÍCOLAS. CERDOS. PORPORCIONAL. REACTORAS. INFECTADOS. (%). icterohemorragiae. 14. 3010. 85.51. gripotiphosa. 7. 280. 7.95. canícola. 7. 207. 5.88. bratislava. 1. 7. 0.20. pomona. 1. 16. 0.45. 3520. 99.99. SEROVAR. TOTALES. INFORM98.XLS.

(22) Tabla 6. Prevalencia de reactores positivos a leptospira, por seruar, en la prueba de inhibición del crecimiento. Datos de 17 por....ilas de Caldas, Quindío y Risaralda. 1997.. PORCICOLA POBLACIÓN (N) 1 2 3. 53 43 109. 4 5. 133 1164. 6 7 8. 39 57 64. TAMAÑO LEPTOSPIRA POSITIVOS MUESTRA (Serovar) (n) 12 icterohemorragiae 2 7 icterohemorragiae 2 17 icterohemorragiae 13 pomona 1 gripotiphosa 1 2 canicola bratislava 2 39 icterohemorragiae 17 62 icterohemorragiae 14 gripotiphosa 3 canicola 1 H. bovis 2 9 icterohemorragiae 2 8 icterohemorragiae 7 14 icterohemorragiae 14 1 pomona 1 gripotiphosa 1 canlcola 1 H. bovis 1 16 icterohemorragiae 5 gripotiphosa 2. 9. 139. 10. 187. 64. 11. 149. 12. 12. 81. 14. 13. 574. 72. 14. 5920. 95. 15. 588. 47. 16 17 TOTALES. 51 12 9343. 9 9 506. bratislava icterohemorragiae canicola bratislava H. bovis H. pratjino icterohemorragiae H. bovis icterohemorragiae gripotiphosa icterohemorragiae pomona gripotiphosa canicola icterohemorragiae pomona gripotiphosa canicola bratislava H. bovis H. pratjino icterohemorragiae pomona gripotíphosa canícola bratislava H.bovis H.pratjirio icterohemorragiae icterohemorragiae. 1 21 2 1 1 1 3 1 10 8 11 1 5 1 44 18 6 11 6 5 3 14 8 10 4 2 4 2 2 3 304. PREVALENCIA INSTANTÁNEA (%) 16.6 28.6 76.5 5.9 5.9 11.8 11.8 1 43.6 22.6 43 1.6 3.2 22.2 87.5 100.0 7.1 7.1 7.1 7.1 31.2 12.5 6.2 6.2 32.8 3.1 1.6 1.6 1.6 25 8.3 71.4 57.1 15.3 1.4 6.9 1 1.4 46.3 18.9 6.3 11.6 6.3 5.3 3.1 29.8 17.0 21.3 8.5 4.2 8.5 4.2 1 22.2 33.3 60.1. ERROR STANDARD 10.7 17 10.3 5.7 5.7 7.8 7.8 7.9 5.3 2.7 1.6 2.2 13.8 11.7 0.00 3.2 3.2 3.2 3.2 11.6 8.3 6.0 6.0 5.9 2.2 1.6 1.6 1.6 12.5 8.0 12 13.2 4.2 1.4 3.0 1.4 5.1 4.0 2.5 3.3 2.5 2.3 1.8 6.7 5.5 6.0 4.0 2.9 4.0 2.9 13.8 13.6 2.2. INTERVALO DE CONFIANZA 16.6, 38.0 28.6, 62.6 55.9, 97.1 5.9, 17.3 5.9, 17.3 11.8, 17.4 11.8, 17.4 27.8, 59.4 12, 33.2 4.8, 10.2 1.6, 4.8 3.2, 7.6 22.2, 49.9 64.1, 100 0.7, 13,5 0.7, 13,5 0.7, 13,5 0.7, 13,5 19.6,42.8 12.5,29.1 6.2, 18.2 6.2, 18.2 21.0, 44.6 3.1, 6.6 1.6, 4.8 1.6, 4.8 1.6, 4.8 25,50 8.3, 24 47.4, 95.4 30.7, 83.5 6.9, 23.7 1,4, 4.2 0.9, 12.9 1.4. 4.2 36,1, 56.5 10.9,26.9 1.3,11.3 5.0,18.2 1.3,11.3 0.7, 9.9 3.1, 6.7 16.4,43.2 6.0, 28.0 9.3, 33.3 0.5, 16.5 4.2, 10.0 0.5,16.5 4.2,10.0 22.2,49.8 13.6,60.5 55.7. 11.2. 1. NIVEL DE SIGNIFICANCIA <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 -.-<005 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <105 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05 <0.05. No. INFECTADOS 9 12 83 6 6 13 13 58 264 56 19 26 9 50 64. 43 17. 6. 37 2 58 46 89 8 40 8 2741 1119 373 687 373 314 183 175 100 125 50 25 50 25 11 4 10079. INFORM98.XLS.

(23) Tabla 7. Número de cerdos infectados, y tasa proporcional de infección (%) por serovar de leptospira, por la prueba de Inhibición del crecimiento, en 17 porcícolas de Caldas, Quindio y Risaralda, 1997.. SEROVAR icterohemorragiae. No. PORCÍCOLAS REACTORAS 17. No. CERDAS INFECTADOS 3704. TASA PORPORCIONAL (%) 49.77. pomona. 5. 1238. 16.63. gripotiphosa. 8. 668. 9.0. canícola. 8. 797. 10.71. bratislava. 5. 423. 5.68. H. bovis. 6. 400. 5.37. H. pratjino. 3. 211. 2.83. 7441. 99.99. TOTALES. INFORM98.XLS.

(24) Tabla 8. Prevalencia de leptospirosis, por pruebas Quindío y Risaralda. 1997.. de. MICROAGLUTINACIÓN. microaglutinación Lisis positivos 1:50 y por Inhibicioii de crecimiento. Datos de 17 porcícolas de Caldas,. PORCÍCOLA. N. (n). (+). (.). PREVALENCIA (%). INTERVALO DE CONFIANZA. 1. 53. 12. 1. 11. 8.3. 8.3., 24.3. 2. 43. 7. 0. 7. 0.00. 3. 109. 17. 4. 13. 23.5. 4. 133. 39. 7. 32. 5. 1144. 62. 17. 6. 39. 9. 7. 57. 8. INHIB. CRECIMIENTO (+). (-). PREVALENCIA (%). INTERVALO DE CONFIANZA. POSITIVOS AMBAS PRUEBAS. POSITIVOS AMBAS PRUEBAS (%). 2. 10. 16.7. 16.7, 38.3. 1. 8.3 (8.0). 2. 5. 28.6. 28.6, 62.6. 0. 0.0. 2.9, 44.1. 13. 4. 76.5. 55.9, 97.1. 4. 23.5 (10.3). 17.9. 5.7, 30.1. 17. 22. 43.6. 27.8, 59.4. 6. 15.4 (7.9). 45. 27.4. 16.1, 38.7. 18. 44. 29.0. 17.4, 40.6. 3. 4.8(2.7). 5. 4. 55.5. 22.3, 88.7. 2. 7. 22.2. 22.2, 49.9. 0. 0.0. 8. 4. 4. 50.0. 14.6, 85.4. 7. 1. 87.5. 64.1, 100. 3. 37.5 (17.1). 12. 9. 3. 6. 33.3. 1.9, 64.7. 3. 6. 33.3. 1.9, 64.7. 3. 33.3 (15.7). 9. 139. 16. 11. 5. 68.8. 45.6, 92.0. 5. 11. 31.2. 8.0, 54.4. 5. 31.2 (11.6). 10. 187. 64. 17. 47. 26.6. 15.6, 37.6. 23. 41. 35.9. 23.9, 47.9. 3. 4.7 (2.6). 11. 149. 12. 8. 4. 66.7. 39.5, 93.9. 4. 8. 33.3. 6.1, 60.5. 1. 8.3 (8.0). 12. 81. 14. 13. 1. 92.9. 79.2, 100. 11. 3. 78.6. 56.6, 100. 10. 71.4 (12.1). 13. 574. 72. 41. 31. 56.9. 45.3, 68.5. 13. 59. 18.0. 1.2, 34.8. 7. 9.7 (3.5). 14. 5920. 60. 36. 24. 60.0. 47.4, 72.6. 53. 7. 88.3. 80.1, 96.5. 14. 23.3 (5.5). 15. 588. 47. 16. 31. 34.0. 20.2, 48.7. 23. 24. 48.9. 34.3, 63.5. 8. 17.0 (5.5). 16. 51. 9. 0. 9. 0.00. 2. 7. 22.2. 22.2, 49.9. 0. 0.00. 17. 64. 14. 2. 12. 14.3. 14.3, 32.9. 14. 0. 100.0. 2. 14.3 (9.3). TOTALES. 9343. 506. 185. 286. 36.6. 32.4, 40.8. 212. 259. 41.9. 37.5, 46.3. INFORM98.XLS.

(25) Tabla 9. Serovariedades de leptospira, presentes en 17 porcícolas de Caldas, Quindío y Risaralda. 1997. Prueba de microaglutinación Lisis 1:50. PORCÍCOLA. SEROVAR 3. icterohemorragiae. gripotiphosa. canícola. 1. 4. 13. 14. 15. 10. 13. 14. 15. 10. 13. 14. 15. 9. 10. 6. 9. 6. 9. 5. 6. 5. bratislava. pomona. Nota: 6,9,10,13,14,15 icter + gripot + canícola: Negativas 2,16. 7. 8. 11. 12. 17. 7. 13. INFORM98.XLS.

(26) Tabla 10. Taxonomía de los roedores capturados, por sexo, y resultado del examen de visualización directa de la leptospira en órganos, por campo oscuro.. Taxonomía roedores. No. de capturas. Sexo ________ Hembra Macho. Visualización de tejidos. (+)*. (-). Ratus rattus. 32. 22. 54. 35. 19. Ratus norvegicus. 4. 6. 10. 8. 2. Mus musculus. 0. 11. 11. 10. 1. 36. 39. 75. 53. 22. Total. INFORM98.XLS.

(27) Tabla 11. Diferenciasen los resultados obtenidos entre ¡aprueba de visualización directa en campo oscuro y el cultivo de tejidos. Cultivos positivos. Hígado. Corazón. Riñón. Roedores positivos. Visualización directa. 23. 22. 22. 53. Cultivo. 32. 26. 37. 59. 9. 4. 15. 6. ¡Diferencia. INFORM98.XLS.

(28) Tabla 12. Visualización de leptospiras en campo oscuro, a partir de diferentes materiales diagnósticos, obtenidos de 75 roedores capturados en doce porcícolas de Calds, Quindío y Risaralda. 1996 - 1998.. PORCÍCOLA. 1 2 3 4 5 6 8 10 12 14 15 16 TOTALES. ROEDORES CAPTURADOS. SANGRE + .. ORINA + -. VISUALIZACIÓN DIRECTA HÍGADO ICORAZóN + + -. NSH NSH 0 2 1 1 1 0 0 2 1 8 17a 1 5 0 1 0 2 0 2 3 4 0 3 2 NSH NSH 1 6b 1 3 0 3 4 121 4b 1 1 2 1 2 3 6 0 1 4 9 75. 2 2 0 0 7 3 17 2 1 1 2 1 2 0 3 1 8 4 2 2 3 4 5 2. 5 1 5 1 15 1 23 1 52 1 22 1 1- - - -. a. Se trabajaron seis sangres de los diecisiete roedores. b. Visualizción del púlmón parcial. NSH: No se hizo. 0 1 5 15 2 3 3 5 8 2 2 7. 1 RIÑÓN 1 PULMÓN + -. +. -. 2 0 2 0 1 01 0 2653 3 1 14 NSH NSH 21 3 10 22NSHNSH 2 1 0 1 2 4 2 2 2 1 10 11 1 2 10 22 2 3 NSH NSH 7 2 18. 53 22 53 32 - - -. 10 -. PREVALENCIA VACUNA --Wr NO REAL. 50 45,6 84,6 46,6 62,5 79,1 59 60,8 95,8 64,1 74,9 59,2. X. X. X. X - X X X X X X X 6 -. 6. INFORM98.XLS. _.OM.

(29) Tabla 13. Visualización de leptospiras en campo oscuro, en orinas de 20 de los 75 roedores capturados en 16 porcícolas y resultados serológicos a la prueba de MAL 1:50, e IC, para las muestras de esta especie.. IC. Ubicación Población No. Roedores Clasificación Visualización MAL 1:50 Porcícola geográfica porcina. 1 2 3. Villamaría Villamaría Manizales. 28 40 108. 4. Palestina. 136. 5. Circasia. 1236. 6 8. Manizales Manizales. 34 79. 10. Pereira. 176. 12. Chinchiná. 89. 14. Pereira. 15. Santa Rosa. 16. Manizales. TOTALES. a. No se pudo obtener muestra de orina. b. Toma de orina y sangre parcial. c. NSH: No se hizo. 3718 396 51 1 6087 1. capturados. de roedores. (+). (-). 2a. R. rattus M. musculus 7 R. rattus 1 M. musculus. NSH 0 0. NSH 1 2. 1 8b. (+). (-). (+). (-). 1 0 2 0 NSH NSH NSH NSH 0. 16 R. rattus 1R.norvegicus 1 0 0 3 R. norvegicus 1 R. rattus 2 0 0 3 R. norvergicus 1 R. rattus 0 3 0 3a M. musculus NSH NSH NSH NSH NSH NSH 2 R. rattus 4 M. musculus 6b 1 NSH NSH NSH NSH o 11 R. rattus 1 M. musculus 12b 1 1 3 113 0 2 R. rattus 2 R. norvegicus 1 1 NSH NSH NSH NSH 5 R. rattus 1 6b R. norvegicus NSH NSH NSH NSH 1 2 8 R. rattus 1 R. norvegicus 9' 4 6 0 1 10 0 17b. 75. 1. 5. 15 1 1. 29. 0. 14. INFORM98.XLS.

(30) Tabla 14. Prevalencia "real de leptospirosis, por adicción de la microaglutinación lisis 1:50 y la inhibición del crecimiento, en 17 porcícolas yen la consulta médica de la Universidad de Caldas.. Lugar Porcícolas primera toma Porcícolas segunda toma. Consulta. Universo (caninos). Reactividad positiva MAL + IC. Prevalencia puntual (%). Error estándar. 51. 19. 37,2. 6,7. 23,8-50,6. 18. 7. 38,9. 11,5. 15,9-61,9. 41. 11. 6,9. 13,0-40,6. 1. 26,8. Intervalo confianza. (%). 1. INFORM98.XLS.

(31) Tabla 15. Prevalencia por serovar, por la técnica de microaglutinación lisis 1:50, en 17 po'rcícolas de Caldas, QUindío y Risaralda. Primera Toma.. Serovar. No. caninos infectados. Prevalencia puntual (%). Error estándar (%). Intervalo de confianza. Pomona. 2. 3,9. 2,72. 3,9-9,4. Icterohemorragiae. 2. 3,9. 2,72. 3,9-9,5. gripotyphosa. 5. 9,8. 4,16. 1,5-18,1. canícola. 3. 5,9. 3,29. 5,9-12,5. bratislava. O. O. Hardjo bovis. O. O. Hardjo pratjino. O. O. TOTAL. 1. 12. 1. 23,5. 1. 5,94. 1. 11,6-35,4. INFORM98.XLS.

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