FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
Previo a la obtención del Título de:
INGENIERO AGRÓNOMO
Tema:
Aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal
en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum
annuum) en etapa de semilleros en la zona de Vinces-Ecuador
Autor:
Eddie Fabricio Carriel Coello
Tutor:
Ing. Blanca Ortíz Alvarado
Vinces Los Ríos Ecuador
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
PROYECTO DE INVESTIGACION Previo a la obtención del Título de:
INGENIERO AGRÓNOMO
Tema:
Aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en
los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en
etapa de semilleros en la zona de Vinces-Ecuador
Autor:
Eddie Fabricio Carriel Coello
Aprobado por:
Ing. Mariano Bravo Bustamante M.Sc Presidente
ESCUELA/CARRERA INGENIERÍA AGRONÓMICA
UNIDAD DE TITULACION
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL USO NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO ACADÉMICOS
Yo, Eddie Fabricio Carriel Coello con C.I. N° 120451301-2, certifico que los contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo título es “Aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros en la zona de Vinces-Ecuador” son de mi absoluta propiedad y responsabilidad y según el Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no académicos, en favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga el uso del mismo, como fuera pertinente.
___________________________________ Eddie Fabricio Carriel Coello
C.I. N°. 120451301-2
DEDICATORIA
A Dios por la bendición de vivir y por ser mi guía en todas las etapas de mi vida.
A mis padres: Sr. Eddie Carriel Fuentes y Sra. María Coello Zambrano por brindarme su cariño y apoyo.
A mi hermana Cinthia Carriel Coello por estar siempre a mi lado.
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios por el regalo de la vida, por ser mi guía, por darme salud, sabiduría y fortaleza para seguir adelante día tras día.
A mis padres por ser mi ejemplo de lucha y por haberme formado como persona, en especial a mi madre por su apoyo incondicional para que yo pueda lograr una más de mis metas.
A mi hermana por su cariño y por todos los momentos que hemos compartido.
A mi amiga y esposa por motivarme y apoyarme a seguir adelante, además de ser la razón por la que me levanto cada día y porque con tu amor y paciencia me has enseñado muchas cosas positivas en mi vida.
A la Sra. Natalia Naranjo y familia por su apoyo y por hacerme parte de su hogar.
A mis amigos y compañeros de aula: Wilmer Roca, Alexis Márquez, Abigail Anchundia, Alexander Gómez, María Mercedes Cruz, María José Rodríguez, Sandy Cervantes, Maritza Burgos, José Cueto, Marcos Fernández, Rigoberto Vecilla, Ángelo Veliz, Wladimir Romero, Lenin Arboleda, Ariel Sánchez, Guillermo Cerezo, Gilson Villasagua, Juan Alberto Vergara, Welington Monserrate, Adonis García, Mario Peralta, Jaumín Avez, por brindarme su amistad y por los momentos durante el proceso de formación.
A mi tutora Ing. Blanca Ortíz por brindarme su apoyo y su tiempo al ser una guía en el desarrollo de este trabajo de investigación.
A los docentes por los conocimientos y experiencias transmitidas, las mismas que serán de mucho aporte para mi vida profesional entre ellos a los ingenieros: Lauro Díaz, Ricardo Ochoa, Vicente Echeverría, Francisco Malavé, Edwin Mendoza, Marisol Vera.
I ÍNDICE GENERAL
ÍNDICE GENERAL ... I INDICE DE TABLAS ... V INDICE DE CUADROS ... VII RESUMEN ... IX SUMMARY ... X
I INTRODUCCION ... 1
1.1 Situación problematizadora ... 2
1.1.1 Descripción del problema... 2
1.1.2 Problema... 2
1.1.3 Preguntas de la investigación. ... 2
1.1.4 Delimitación del problema ... 2
1.1.4.1 Temporal. ... 2
1.1.4.2 Espacial. ... 3
1.2 Objetivos ... 3
1.2.1 General. ... 3
1.2.2 Específicos. ... 3
II. MARCO TEÓRICO ... 4
2.1 Características botánicas del tomate ... 4
2.1.1 Semilla ... 4
2.1.2 Raíz... 4
2.1.3 Tallos ... 4
2.1.4 Hojas... 4
2.1.5 Flores ... 4
2.1.6 Frutos ... 4
2.2 Características botánicas del pimiento ... 5
II
2.2.2 Raíz... 5
2.2.3 Tallo ... 5
2.2.4 Hojas... 5
2.2.5 Flores ... 5
2.2.6 Frutos ... 5
2.3 Semillero ... 5
2.4 Microorganismos eficientes ... 6
2.4.1 Beneficios de los microorganismos eficientes ... 6
2.5 Grupos de microorganismos eficientes ... 6
2.5.1 Bacterias acidolácticas ... 6
2.5.2 Trichoderma ... 7
2.5.3 Levaduras (Saccharomyces spp) ... 8
2.5.4 Actinomicetos... 8
2.5.5 Bacterias Fototróficas ... 9
2.6 Productos a utilizar ... 9
2.6.1 Bacthon... 9
2.6.2 Tricho-D WP. ... 10
2.6.3 EM-1... 11
2.6.4 Serenade ... 12
2.7 Experiencias investigativas ... 12
III. MARCO METODOLÓGICO ... 15
3.1 Localización del sitio experimental. ... 15
3.1.2 Material de siembra. ... 15
3.1.2.1 Características generales. ... 15
3.2 Métodos ... 15
3.3 Factores en estudio ... 16
III
3.5 Tratamientos ... 16
3.6 Diseño experimental ... 16
3.6.1 Esquema del análisis de varianza. ... 17
3.6.2 Modelo matemático. ... 17
3.6.3 Análisis estadístico. ... 17
3.6.4 Delineamiento del experimento. ... 17
3.7 Manejo del lote experimental ... 18
3.7.1 Siembra del semillero. ... 18
3.7.2 Riego de semillero. ... 18
3.7.3 Manejo de malezas. ... 18
3.7.4 Aplicación de microorganismos eficientes. ... 18
3.7.5 Controles fitosanitarios. ... 18
3.8 Datos a evaluar ... 18
3.8.1 Porcentaje de germinación (%). ... 18
3.8.2 Altura de la planta (cm). ... 18
3.8.3 Diámetro del tallo (mm). ... 18
3.8.4 Número de hojas... 19
3.8.5 Longitud de la raíz (cm). ... 19
3.8.6 Peso húmedo (g). ... 19
3.8.7 Peso seco (g)... 19
3.8.8 Índice de la efectividad de la inoculación (%). ... 19
3.9 Instrumentos ... 19
3.9.1 Materiales. ... 19
3.9.2 Herramienta de campo. ... 20
3.9.3 Insumos. ... 20
3.9.4 Equipos. ... 20
IV 4.1 Determinar el desarrollo foliar y radicular de las plántulas de tomate y pimiento en
base a la aplicación de ME y MPCV. ... 21
4.1.1 Peso húmedo de raíces (g). ... 21
4.1.2 Peso húmedo de la biomasa aérea (g). ... 22
4.1.3 Peso seco de raíces (g). ... 24
4.1.4 Peso seco de biomasa aérea (g). ... 25
4.1.5 Longitud de raíz (cm). ... 27
4.2 Identificar el tratamiento de ME y MPCV más influyente en el desarrollo de las plántulas de tomate y pimiento. ... 29
4.2.1 Porcentaje de germinación (%). ... 29
4.2.2 Diámetro del tallo (mm). ... 31
4.2.3 Altura de plantas (cm). ... 33
4.2.4 Número de hojas por planta. ... 35
4.2.5 Índice de la efectividad de la inoculación (%). ... 37
4.3 Registrar los agentes fitopatógenos presentes en cada uno de los tratamientos después de la aplicación de los microorganismos. ... 42
V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ... 43
VI BIBLIOGRAFIA ... 45
V INDICE DE TABLAS
Tabla 1. Descripción de los tratamientos. ... 16 Tabla 2. Descripción del esquema de análisis d varianza. ... 17 Tabla 3. Descripción del delineamiento experimental. ... 17 Tabla 4. Peso húmedo de raíces en la aplicación de microorganismos eficientes y
promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros.
FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017. ... 22 Tabla 5. Peso húmedo de biomasa aérea en la aplicación de microorganismos
eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de
eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de
microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum
annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017. ... 30 Tabla 10. Diámetro del tallo a los 8, 16 y 24 días en la aplicación de
microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum
anuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017. ... 32 Tabla 11. Altura de plantas a los 8, 16 y 24 días en la aplicación de
VI cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum
annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017. ... 34 Tabla 12. Número de hojas por planta en la aplicación de microorganismos
eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de
semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017. ... 36 Tabla 13. Índice de la efectividad de la inoculación en la aplicación de
microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum
VII microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Cuadro 3 del anexo. Peso seco de raíces en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017. lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Cuadro 6 del anexo. Porcentaje de germinación a los 8, 10 y 14 días en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Cuadro 7 del anexo. Diámetro del tallo a los 8, 16 y 24 días en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
VIII Cuadro 9 del anexo. Número de hojas por plántulas en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
IX RESUMEN
El presente trabajo de investigación denominado “Aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros en la zona de Vinces-Ecuador, se realizó en los predios de la Facultad de Ciencias para el Desarrollo de la Universidad de Guayaquil, ubicada a 1,5 km de la vía Vinces-Palestina, con altitud de 14 msnm, precipitación de 1 400 mm/año, humedad relativa del 83 % y temperatura 26 ºC; tuvo como objetivos: determinar el desarrollo foliar y radicular de las plántulas de tomate y pimiento en base a la aplicación de ME y MPCV, identificar el tratamiento de ME y MPCV más influyente en el desarrollo de las plántulas de tomate y pimiento y registrar los agentes fitopatógenos presentes en cada uno de los tratamientos después de la aplicación de los microorganismos. Se utilizó un diseño completamente al azar con diez tratamientos y cuatro repeticiones dando como resultados que, al inocular dos veces los microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal, al momento de la siembra y a los 15 días después de la siembra se promueve el crecimiento de las plántulas de tomate y pimiento en etapa de semillero y los tratamientos con microrganismos que mejores resultados lograron en el desarrollo foliar y radicular fueron el T2 y T7 = Bacthon 5 cc/L (Azospirillum brasilense y Azotobacter chroococcum), T4 y T9 = Serenade 7 cc/L (Bacillus subtilis) y el T5 y T10 = EM-1 5cc/L(Bacterias fototróficas, Lactobacillus
plantarum, Actinomicetos y Saccharomyces cerevisae).
X SUMMARY
The present research work "Application of efficient microorganisms and promoters of plant growth in the tomato (Solanum lycopersicum) and pepper (Capsicum annuum) crops at seedlings stage in the Vinces-Ecuador area was carried out on the grounds of the Faculty of Sciences for the Development of the University of Guayaquil, located at 1,5 km of the Vinces-Palestine road, with altitude of 14 msnm, rainfall of 1 400 mm / year, relative humidity of 83% and temperature 26 ºC; had as objectives: to determine the foliar and root development of tomato and pepper seedlings based on the application of ME and MPCV, to identify the most influential ME and MPCV treatment in the development of tomato and pepper seedlings and to record the agents phytopathogens present in each of the treatments after application of the microorganisms. A completely randomized design with ten treatments and four replicates was used, giving the results that, when inoculating twice the efficient microorganisms and promoters of plant growth, at the time of planting and 15 days after planting, the growth of seedlings of tomato and pepper in seedlings and the treatments with microorganisms that had the best results in foliar and root development were T2 and T7 = Bacthon 5 cc/L (Azospirillum brasilense and Azotobacter chroococcum), T4 and T9 = Serenade 7 cc/L (Bacillus subtilis) and T5 and T10 = EM-1 5cc/L (Phototrophic bacteria, Lactobacillus plantarum, Actinomycetes and Saccharomyces cerevisae).
1
I INTRODUCCION
El principal objetivo de cualquier semillero es el de producir plántulas de calidad para posteriormente ser trasladadas a campo definitivo, para esto se debe tener en cuenta la respuesta que tienen estas plántulas al ser trasplantadas. El desarrollo de plántulas vigorosas con un crecimiento radical abundante es un requisito para el trasplante, ya que le permite reponerse del estrés causado al ser establecidas en campo y continuar con su desarrollo normal (Vazquez, 2015).
Dentro de las alternativas biotecnológicas para la producción de plántulas tenemos la utilización de bacterias promotoras de crecimiento en las plantas (PGPR), los géneros más conocidos y utilizados en la agricultura son: Rhizobium, Pseudomonas, y Azospirillum, Actinoplanes, Agrobacterium, Azobacter, Bacillus, etc. las mismas que actúan a través de diversos mecanismos ya sea como bioestimulantes, fitoestimulador, biopesticidas o agentes de biocontrol incrementando el crecimiento y la productividad vegetal.
Los microorganismos eficientes EM, están constituidos por un cultivo microbiano mixto que contiene varios tipos de microorganismos con diferentes funciones dentro de las que podemos mencionar: bacterias productoras de ácido láctico, levaduras, actinomicetes, hongos filamentosos y bacterias fotosintéticas que, a través de mecanismos especiales, coexisten dentro de un medio líquido (Zambonino, 2013). Estos microorganismos al ser inoculados en el sustrato producen aumento de la velocidad y porcentaje de germinación de las semillas, por su efecto hormonal, similar al efecto del ácido giberélico, aumento del vigor y crecimiento del tallo y raíces, desde la germinación hasta la emergencia de las plántulas, por su efecto similar a las rizobacterias las cuales son promotoras del crecimiento vegetal e incrementa de las probabilidades de supervivencia de las plántulas debido al vigor de las mismas y mejora la asimilación de nutrientes.
2
de los desechos orgánicos en el suelo, lo cual incrementa también la disponibilidad de nutrientes para las plantas.
Por lo expuesto anteriormente, con este trabajo de investigación se pretende contribuir con información sobre la utilización de microorganismos promotores del crecimiento vegetal en semilleros de tomate y pimiento.
1.1 Situación problematizadora
1.1.1 Descripción del problema.
Los productores de tomate y pimiento realizan semilleros de forma rustica, sin la
aplicación de productos biotecnológicos que contengan microorganismos eficientes para
ayudar a la planta a su buen desarrollo, lo cual se nota al momento de efectuar el
trasplante, presentándose plantas con poco vigor y presencia de plagas y enfermedades;
hay que señalar que los patógenos del suelo, son la causa de muchas pérdidas de cosecha
en los cultivos de hortalizas en la actualidad.
1.1.2 Problema.
Desconocimiento del efecto de la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate y pimiento en la zona de Vinces.
1.1.3 Preguntas de la investigación.
➢ ¿Cuál será el tratamiento que tendrá mayor desarrollo foliar y radicular de las plántulas de tomate y pimiento en base a la aplicación de ME y MPC?
➢ ¿Cuál será el tratamiento de ME y MPC más influyente en el desarrollo de las plántulas de tomate y pimiento?
➢ ¿Qué agentes fitopatógenos estarán presentes en cada uno de los tratamientos después de la aplicación de los microorganismos?
1.1.4 Delimitación del problema 1.1.4.1 Temporal.
3 1.1.4.2 Espacial.
En la Facultad de Ciencias para el Desarrollo, ubicado en el cantón Vinces, provincia de Los Ríos.
1.2 Objetivos
1.2.1 General.
Evaluar el efecto de dos aplicaciones de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento
vegetal a los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa
de semilleros, en la zona de Vinces.
1.2.2 Específicos.
➢ Determinar el desarrollo foliar y radicular de las plántulas de tomate y pimiento en base a la aplicación de ME y MPCV.
➢ Identificar el tratamiento de ME y MPCV más influyente en el desarrollo de las plántulas de tomate y pimiento.
4
II. MARCO TEÓRICO
2.1 Características botánicas del tomate 2.1.1 Semilla
Es aplanada y de forma lenticelas con dimensiones aproximadas de 3 x 2 x 1 mm (CENTA, 2008).
2.1.2 Raíz
El sistema radicular es pivotante, profundo con muchas raíces secundarias, sin embargo, dependiendo las condiciones del cultivo, la raíz pivotante se daña y la planta desarrolla un sistema radicular fasciculado en la que predominan las raíces adventicias (Escalona et al.,2009).
2.1.3 Tallos
El tallo de tomate es herbáceo, no se lignifica, por lo tanto, si no se utilizan estructuras de soporte y conducción (hilos, cañas, etc.) que sostengan a las plantas estas crecen de forma rastrera (Navarrete, 2015).
2.1.4 Hojas
Son compuestas de bordes dentados, foliolos peciolados, lobulados y recubiertos de vellosidades. Se sitúan en número de 7 a 9 de forma alternadas sobre el tallo (Escalona et al., 2009).
2.1.5 Flores
Las flores son perfectas, color amarillo, consta de 5 a 6 estambres, 5 o más pétalos y sépalos, agrupadas en inflorescencias de tipo racimo y está compuesto de 4 a 12 flores (CENTA, 2008).
2.1.6 Frutos
5 2.2 Características botánicas del pimiento
2.2.1 Semilla
De forma aplastada lenticular, de superficie lisa y sin aspecto pubescente con dimensiones de 3-5 mm de longitud (Staller, 2012).
2.2.2 Raíz
Presenta raíz axonomorfa de la que se ramifica un conjunto de raíces secundarias, llegando a profundidades de 0,70 a 1,20, con una mayor densidad en la parte superficial entre los 30-60 cm (Condés, 2012).
2.2.3 Tallo
El tallo principal, así como sus ramificaciones, son de crecimiento limitado o determinado, erecto y frágil. De epidermis brillante, con estrías, a veces muy pronunciadas longitudinalmente y de consistencia tierna en sus inicios, lignificándose más tarde según se desarrolla (Mármol, 2010).
2.2.4 Hojas
Son simples, de color verde claro a oscuro, forma lanceolada, elíptica ancha u ovalada, insertadas en los nudos del tallo, posee un ápice muy pronunciado (acuminado), pecíolo largo y haz glabro, liso y suave al tacto (Staller, 2012).
2.2.5 Flores
Las flores son hermafroditas, esto es, la misma flor produce gametos masculinos y femeninos. Su fecundación es autogama, sin superar el 10% de alogamia (Condés, 2012).
2.2.6 Frutos
Es una baya hueca, semicartilaginosa en forma de cápsula, piel lisa, normalmente asurcada de coloración variadas (verde, rojo, amarillo, naranja, violeta o blanco); dependiendo la variedad, de forma y tamaño variable (Staller, 2012).
2.3 Semillero
6
aspecto nutricional y sanitario de la planta siempre que tenga un tamaño y un vigor adecuado; es decir que solo se atiende al aspecto externo de la planta lo que se llama calidad percibida. Para definir la calidad de una manera más objetiva, además del aspecto externo tendría que tener muy en cuenta la respuesta que estas plántulas ofrecen tras ser trasplantada. De esta forma habría que decidir que atributos de la planta son los más favorables para obtener una mayor producción, de la mejor calidad posible y en un momento adecuado para conseguir los mejores precios en el mercado. Esta puede realizarse asignando valores a los órganos que la constituyen: raíz, tallo y hojas; relacionando finalmente parámetros fácilmente medibles en el semillero con la respuesta que esta planta tiene en cultivo una vez trasplantada.
2.4 Microorganismos eficientes
Son una combinación de microorganismos beneficiosos de origen natural y es un cultivo mixto de microorganismos benéficos naturales, sin manipulación genética, presentes en ecosistemas naturales y fisiológicamente compatibles unos con otros.
2.4.1 Beneficios de los microorganismos eficientes
Según Moreno y Velarde, (2016) el uso de EM en agricultura tiene efectos positivos, como:
➢ Promueve la germinación, crecimiento, florecimiento, fructificación y maduración de las plantas cultivadas.
➢ Realza la capacidad fotosintética de las plantas.
➢ Incrementa la eficiencia de la materia orgánica como fertilizante.
➢ Desarrolla resistencia de las plantas a plagas y enfermedades.
➢ Mejora las propiedades físicas, químicas y biológicas del suelo.
➢ Suprime patógenos y plagas del suelo.
2.5 Grupos de microorganismos eficientes 2.5.1 Bacterias acidolácticas
7
Los Lactobacillus promueven la fermentación y desdoblamiento de lignina y celulosa, permitiendo una más rápida descomposición de los materiales vegetales. También, tienen la habilidad de suprimir microorganismos causantes de enfermedades, como los hongos del género Fusarium, que debilitan las plantas, exponiéndolas al ataque de otras enfermedades y plagas (Moreno y Velarde, 2016).
Según Parra y Cuevas, (2002) son bacterias que ayudan a la fijación de nitrógeno en la planta, entre otros beneficios podemos mencionar:
➢ Producen fitohormonas, como el ácido indolacético y las citoquininas, capaces de acelerar y potenciar el crecimiento de las plantas.
➢ Al permanecer vivas durante años y reproducirse en el suelo, no sólo no lo degradan, sino que contribuyen a su enriquecimiento en nitrógeno y a su regeneración de forma ecológica y gradual, incluso en terrenos de alta concentración salina.
➢ Se ha comprobado que fertilizando los cultivos con estas bacterias y con nitrógeno químico en un porcentaje entre el 20 y 50% del utilizado normalmente, se consigue un aumento de producción sobre las cosechas obtenidas únicamente con fertilizante químico al 100%.
➢ Crea una barrera protectora contra hongos y bacterias patógenas en la raíz de la planta, por lo que ésta crece más sana y fortalecida.
2.5.2 Trichoderma
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Entre los múltiples beneficios que puede aportar Trichoderma podemos mencionar los siguientes:
a) Estimulador del crecimiento de las plantas.
b) Protección de semillas contra el ataque de hongos patógenos. c) Protección directa a suelos y diferentes cultivos.
d) Control sobre diferentes microorganismos fitopatógenos. e) Alternativa para el ahorro de fertilizantes químicos y pesticidas f) Promueve el crecimiento de raíces y pelos absorbentes.
g) Mejora la nutrición y la absorción de agua.
2.5.3 Levaduras (Saccharomyces spp)
Sintetizan tanto sustancias antimicrobiales, como compuestos útiles para el crecimiento de las plantas, partiendo de aminoácidos y azúcares (secretados por las bacterias fotosintéticas), así como de materia orgánica. Los elementos producidos por las levaduras (hormonas y enzimas), promueven la división activa de células, siendo también, sustratos útiles para las bacterias acidolácticas y los actinomicetos (Moreno y Velarde, 2016).
2.5.4 Actinomicetos
Son un grupo de microorganismos unicelulares, muy abundantes en el suelo, aguas estancadas, estiércoles y, en general en lugares donde los restos vegetales se descomponen aeróbicamente. Son un grupo de bacterias filamentosas, que tienen similitud con los hongos, por su morfología, tipo de reproducción y crecimiento en medios de cultivo sólido y líquidos (Blanco, Garcia, y Zans, 2010).
Entre las principales funciones de los actinomicetos se mencionan las siguientes:
➢ Actúan en la descomposición de residuos animales y vegetales liberando amoníaco y ácidos orgánicos. Estos últimos son capaces de formar complejos muy importantes en edafogénesis (proceso de formación y evolución de un suelo) y en la nutrición vegetal, ya que tienen una gran movilidad y capacidad quelante para ceder a las raíces el nutriente que se requiera.
9
➢ Su micelio presenta una parte interesante de la materia prima para la síntesis de compuestos húmicos, además posee unas proteínas (hidrofobinas) que tienen capacidad para que el micelio resista a la falta de agua.
➢ Secreción de sustancias antibióticas como la estreptomicina, tetraciclina, etc., con el fin de producir equilibrios genéricos o antagónicos específicos hacia los componentes de la microflora bacteriana. Incluso son capaces de producir una acción fitopatogénica ejercida por algunas especies sobre plantas de interés agrícola.
2.5.5 Bacterias Fototróficas
Según Toalombo, (2012) indica que son bacterias autótrofas que sintetizan sustancias útiles a partir de secreciones de raíces, materia orgánica y gases dañinos, usando la luz solar y el calor del suelo como fuente de energía. Las sustancias sintetizadas comprenden aminoácidos, ácidos nucleicos, sustancias bioactivas y azúcares, promoviendo el crecimiento y desarrollo de las plantas. Los metabolitos son absorbidos directamente por ellas, y actúan como sustrato para incrementar la población de otros microorganismos eficientes.
2.6 Productos a utilizar 2.6.1 Bacthon
Según Orius, (2015) es un inoculante biotecnológico que desintoxica el suelo agrícola y las raíces, de las toxinas, alcoholes, amonios, agroquímicos, que se acumulan con la descomposición de los residuos del cultivo anterior, con el manejo químico de los
problemas y con la aplicación de los fertilizantes en el suelo. También digiere y bio transforma los residuos de cosecha hasta convertirlos en suelo y en nutrientes
mejorando la fertilidad o fracción orgánica.
10 Ingrediente activo y nombre biológico
Azospirillum brasilense, Azotobacter chroococcum, Lactobacillus acidophillus, Saccharomyces cerevisae.
Grupo en bioinsumos Inoculante Biotecnológico.
Composición garantizada
Azospirillum brasilense: diez mil UFC*/ml de producto comercial. 5%** Azotobacter chroococcum: diez mil UFC*/ml de producto comercial. 5%** Lactobacillus ácido phillus: diez mil UFC*/ml de producto comercial. 5%** Saccharomyces cerevisae: diez mil UFC*/ml de producto comercial. 5%** Ingredientes Aditivos. c.s.p. 1 Litro 80% *
UFC: Unidades Formadoras de Colonias ** Contiene 200,0 gramos de ingrediente activo por litro de producto comercial.
Dosis
Para semillero 10 cc/L de agua aplicar en aspersión al suelo húmedo en capacidad de campo cada 7 o 14 días hasta el trasplante.
2.6.2 Tricho-D WP.
Según Orius, (2016) es un acondicionador de suelo, bioestimulante y agente biotecnológico que actúa como antagonista de varios problemas en el suelo que dañan las raíces y la planta, mejora la formación radicular, bloquea la acción de las enfermedades en el suelo y en las raíces del próximo cultivo para un suelo sano y un cultivo sano.
Ingrediente activo
Minerales nutrientes y esporas en latencia del hongo Trichoderma harzianum.
Grupo de insumo
11
Trichoderma harzianum: 100 millones de esporas por gramo. 20% 60,0 g Ingredientes aditivos. c.s.p. 300 g 19,2%57,6 g.
Dosis
En tomate y pimiento aplicar 3 g/L de agua en aspersión al suelo húmedo en capacidad de campo cada una o dos semanas hasta el trasplante.
2.6.3 EM-1
Es una mezcla de microorganismos benéficos que desplazan a los microorganismos patógenos mejorando la calidad del medio en el que son aplicados. Son microorganismos naturales conocidos como levaduras y las bacterias acido lácticas (Lactobacillus) y fototróficas (presentes en las algas verdes), que promueven un proceso de fermentación antioxidante benéfico, acelera la descomposición de la materia orgánica y promueve el equilibrio de la flora microbiana. Además, promueve el desarrollo foliar y la óptima floración y fructificación de los cultivos, incrementa la capacidad fotosintética de las plantas, optimiza el crecimiento de las plantas y previene la presencia de plagas y enfermedades, mejora las condiciones físicas, químicas y biológicas del suelo y reduce los problemas de salinidad en el suelo (Agearth, 2014).
Preparación de insumos
Mezclar 5% de EM•1 y 5% de melaza, completar el 90% restante con agua dulce. Ejemplo: 10L de EM•1 + 10L de melaza + 180L agua dulce = 200 litros de EM Activado.
Colocar la mezcla en un envase plástico, sin contaminación química, limpio y herméticamente cerrada; dejar escapar los gases generados en el interior del envase plástico, la mezcla debe permanecer durante 5 a 7 días a la sombra antes de su aplicación, se debe controlar que el pH sea inferior a 3.5; si es mayor, desistir de su uso.
Modo de aplicación
12
Control de malos olores: Aplicaciones al 5% de EM Activado al inicio; 2% conforme a resultados.
Elaboración de abono orgánico: Aplicaciones del 5 al 10% de EM Activado de acuerdo a las características del material.
2.6.4 Serenade
Es un producto de origen natural a base de Bacillus subtilis cepa QST 713, formulado para el control de enfermedades producidas por hongos o bacterias en los cultivos, actúa como inductor de las defensas en las plantas, además de promover la producción de sustancias hormonales, es compatible con los principales insectos auxiliares y polinizadores en cultivos hortícolas. (Bayer Crop Science, 2017).
Dosis y modo de empleo
Aplicar Serenade en pulverización normal mediante tractor o mochila, con un volumen de 500 - 1.000 L/ha. Verter directamente el producto en el depósito lleno hasta la mitad de agua y posteriormente añadir el volumen de agua restante mezclando la solución cuidadosamente. Iniciar las aplicaciones cuando las condiciones sean favorables a la aparición de la enfermedad, siempre en tratamiento preventivo ante el riesgo de infección.
2.7 Experiencias investigativas
En la investigación sobre caracterización de rizobacterias aisladas de tomate y su efecto en el crecimiento de tomate y pimiento, desarrollada por Luna et al., (2013) quienes estudiaron cuatro cepas pertenecientes al género Bacillus, en plántulas de tomate lograron aumentos en las variables de: peso fresco de raíces con 0,10 g, peso seco de raíces de 0,05 g, porcentaje de germinación con 97,27 % ; mientras que para el cultivo de pimiento obtuvieron un peso fresco y seco de raíces de 1,44 g y 0,12 g respectivamente, porcentaje de germinación de 96,83 %.
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En el trabajo denominado “Estudio preliminar del efecto de microorganismos benéficos sobre el tomate (Solanum lycopersicum L.) y el nemátodo del nudo radical efecto de la bioinoculación de las cepas pre-seleccionadas se evaluó en la germinación del pimiento en las cuales se destacó una cepa de Azotobacter y un Bacillo Gran negativo. La mayoría de cepas evaluadas incrementaron significativamente el porcentaje de N.
En la investigación desarrollada por Terry, Leyva, y Hernández, (2005), denominada Microorganismos benéficos como biofertilizantes eficientes para el cultivo del tomate (Lycopersicon esculentum, Mill), con el objetivo de evaluar la efectividad agrobiológica deAzospirillumsp, en el crecimiento, desarrollo y rendimiento en el cultivo del tomate, los resultados demostraron que los géneros Pseudomonas, Azospirillum, Azotobacter, Bacillus y Streptomyces, forman parte de la comunidad microbiana de la rizósfera del tomate, en las condiciones estudiadas, y queAzospirillumes el género dominante. La inoculación artificial de esta rizobacteria causó un efecto positivo sobre el crecimiento de las plántulas, así como en el estado nutricional. Además, se obtuvo un alto nivel poblacional en la rizósfera de las plantas inoculadas logrando una longitud de raíz de 17 cm.
Neyra et al., (2013) en su trabajo de investigación denominado “Efecto de la inoculación de Rhizobium etli y Trichoderma viride sobre el crecimiento aéreo y radicular de Capsicum annum var. Longum”, inoculando 5 ml de suspensión de Trichoderma viride en una concentración de 108 esporas/ml, en la variable longitud de raíz obtuvo 7,2 cm.
14
de rizobacterias solubilizadoras de fosfato obtuvieron una altura de planta de 14,29 cm a los 25 días.
Cruz et al., (2016) en su trabajo de investigación sobre la producción de plántulas de hortalizas con Azospirillum sp. y aspersión foliar de miel de abeja, con la inoculación de la rizobacteria Azospirillum en plántulas de tomate, para las variables de diámetro del tallo obtuvieron 3,1 mm, altura de planta con 22,23 cm y en peso seco con valores de 0,47 g.
En la investigación efecto de la inoculación de sustratos con Trichoderma spp. sobre el crecimiento y producción de plantas de chile dulce (Capsicum anuum) Linn bajo ambiente protegido realizada por Campos (2009), en la variable diámetro del tallo obtuvo un promedio de 7,7 mm.
Di Barbaro, Pernasetti, & Stegmayer (2005) quienes, en su investigación, evaluación del efecto de Azospirillum brasilensis en la germinación y emergencia del pimiento pimentonero (Capsicum annum l.var. trompa de elefante), reportan que al inocular la rizobacteria Azospirillum brasilensis se produce una mejor respuesta en el desarrollo de plantines de pimiento; el porcentaje de germinación se incrementó en un 12% en comparación con el testigo, en la variable altura de planta obtuvieron como resultado 7 cm a los 24 días, además observó que en semillas inoculadas con Azospirillum brasilensis no se presentaron signos de infección fúngica mientras que en las no inoculadas si mostraron desarrollo de micelio fúngico.
Hernández y otros (2015) en su trabajo efecto de cepas de Trichoderma asperellum sobre el desarrollo del tomate y Meloidogyne incognita, en plantas tratadas con T. asperellum se mostraron plantas con buen vigor, donde en la variable de número de hojas se obtuvo 9,86 hojas por planta.
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III. MARCO METODOLÓGICO 3.1 Localización del sitio experimental.
El trabajo de investigación se realizó en la Facultad de Ciencias para el Desarrollo (FACDE) de la Universidad de Guayaquil (UG), ubicada a 1,5 km en la vía Vinces-Palestina, siendo sus coordenadas geográficas: 1º 32’ de latitud Sur (paralelo), 79º 47’ de longitud Occidental, con una altura de 14 msnm su temperatura promedio de 26 ºC y precipitación promedio anual de 1 400 mm. 1
3.1.2 Material de siembra.
Como material genético se utilizó la variedad de tomate Floradade y la variedad de pimiento Yolo Wonder.
3.1.2.1 Características generales.
3.1.2.1.1 Tomate Floradade.
Es una variedad de ciclo medio, frutos de buen tamaño, redondos de un peso promedio de 260-300 gr, pulpa roja y consistente, resistente a enfermedades, requiere de suelo fértil y bien abonado.
3.1.2.1.2 Pimiento Yolo Wonder.
Planta vigorosa, bien ramificada y muy productiva. Frutos de cuatro cascos, gruesos, muy carnosos, de color verde intenso, de color rojo cuando está maduro, carne dulce y consistente. Requiere de suelo bien trabajado y preparado, Tiempo de cosecha aproximadamente 65 días después del trasplante.
3.2 Métodos
Se utilizó los métodos teóricos: inductivo-deductivo y análisis-síntesis; el método empírico denominado experimental.
➢ El método deductivo: se utilizó en la evaluación del cultivo.
➢ El inductivo: se utilizó para la obtención de los resultados en los objetivos
específicos del proyecto.
➢ El análisis: se utilizó en los resultados.
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➢ La síntesis: en las conclusiones y recomendaciones.
➢ El método experimental: en la aplicación del ensayo en el campo.
3.3 Factores en estudio
En esta investigación se estudió el efecto de dos aplicaciones de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate y pimiento en etapa de semillero.
3.4. Unidad experimental
Las dimensiones de la unidad experimental fueron de 0,40 m de ancho por 0,46 m de largo, dando un área total de 0,184 m2, la cual estuvo constituida por 30 vasos plásticos de 6 onzas de capacidad distribuidos en 5 x 6 hileras. De las 3 hileras centrales se escogieron diez plántulas a evaluar.
3.5 Tratamientos
Tabla 1. Descripción de los tratamientos.
Cultivo: Tomate Pimiento
Tratamientos Producto Dosis Tratamientos Producto Dosis
T1 Testigo 0 T6 Testigo 0
T2 Bacthon 5cc/L T7 Bacthon 5cc/L
T3 Tricho-D 2g/L T8 Tricho-D 2g/L
T4 Serenade 7cc/L T9 Serenade 7cc/L
T5 EM-1 5cc/L T10 EM-1 5cc/L
3.6 Diseño experimental
17 3.6.1 Esquema del análisis de varianza.
Tabla 2. Descripción del esquema de análisis d varianza.
Fuente de variación Grados de libertad
Ti = Efecto iesimo de los tratamientos €ij = Efecto aleatorio (Error experimental).
3.6.3 Análisis estadístico.
Los datos fueron evaluados por medio del análisis de varianza y para comprobar las medias de los tratamientos, se realizó la prueba de rangos múltiples de Tukey al 5 % de probabilidad estadísticamediante el programa estadístico InfoStat.
3.6.4 Delineamiento del experimento.
Número de plantas por unidad experimental 30
Área útil de la unidad experimental 0.07m2
Distancia entre tratamientos 0.25 m
Longitud de la unidad experimental 0.46 m
Ancho de la unidad experimental 0.40 m
Longitud total del experimento 11.11 m
Ancho total del experimento 1.70 m
18 3.7 Manejo del lote experimental
3.7.1 Siembra del semillero.
El almacigo se realizó en vaso plásticos, los mismos que fueron llenados con una combinación constituida por 50 % de tierra amarilla y 50 % de compost, y se procedió a colocar dos semillas por vaso.
3.7.2 Riego de semillero.
Se realizó de forma manual utilizando bomba de asperjar de mochila, su frecuencia dependió de las condiciones climáticas y estado de humedad del sustrato.
3.7.3 Manejo de malezas.
Se realizó de forma manual arrancando todas las malas hierbas que se encontraron en el semillero.
3.7.4 Aplicación de microorganismos eficientes.
Se preparó una solución con cada uno de los productos a utilizar en las dosis indicadas en los mismos, posteriormente se realizó la inoculación una vez que se colocó la semilla en el sustrato. La segunda aplicación se la realizó a los 15 días después de la siembra.
3.7.5 Controles fitosanitarios.
Se realizó monitoreos constantes para observar el ataque de alguna plaga o enfermedad que cause daño a la planta.
3.8 Datos a evaluar
3.8.1 Porcentaje de germinación (%). Se evaluó a los 8, 10 y 14 días después de la siembra.
3.8.2 Altura de la planta (cm).
La toma de datos se la realizó a los 8, 16 y 24 días después de la siembra.
3.8.3 Diámetro del tallo (mm).
19 3.8.4 Número de hojas.
Se evaluó a los 8, 16 y 24 días después de la siembra del semillero.
3.8.5 Longitud de la raíz (cm).
Se lavó las raíces con agua para eliminar restos del sustrato y posteriormente se midió la longitud del sistema radicular en cada una de las plántulas a evaluar, esto se lo realizó a los 24 días después del trasplante.
3.8.6 Peso húmedo (g).
Una vez lavado el sistema radicular de cada una de las plantas evaluadas, se dejó a temperatura ambiente por un período de 30 minutos para disminuir el exceso de agua, posteriormente se separó la raíz de la biomasa aérea de la planta (tallo-hojas) y se pesó con una balanza digital.
3.8.7 Peso seco (g).
Las mismas plantas que se evaluaron para el peso húmedo, se secaron en una estufa por un periodo de 24 horas a una temperatura de 70 ° C, después del secado se efectuó el peso con la balanza digital, para esta labor se utilizó cada una de las partes de la planta.
3.8.8 Índice de la efectividad de la inoculación (%).
Se calculó a partir de los promedios de los tratamientos, obtenidos mediante la tabla de Tukey aplicando la siguiente fórmula propuesta por Davies, Calderón y Huamán, (2005)
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➢ Cinta adhesiva
➢ Fundas de papel
➢ Vasos plásticos
3.9.2 Herramienta de campo.
➢ Machete
➢ Flexómetro
➢ Bomba de mochila
➢ Pie de rey
3.9.3 Insumos.
➢ Semillas de tomate
➢ Semillas de pimiento
➢ Bacthon
➢ Tricho- D
➢ EM•1
➢ Serenade®
➢ Biocompost
3.9.4 Equipos.
➢ Cámara fotográfica
➢ Calculadora
➢ Computadora
➢ Impresora
➢ Estufa
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IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1 Determinar el desarrollo foliar y radicular de las plántulas de tomate y pimiento en base a la aplicación de ME y MPCV.
Para cumplir con este objetivo se evaluaron las siguientes variables: 4.1.1 Peso húmedo de raíces (g).
Como se observa en el análisis de varianza fue altamente significativo para los tratamientos y no significativo en las repeticiones con un coeficiente de variación de 22,62 % (ver cuadro 1 del anexo).
Efectuada la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad se pudo comprobar que los resultados difieren estadísticamente entre los tratamientos. Donde el T4 (Serenade 7cc/L) logró el mayor peso siendo de 0,21 g, seguido de T3 (Tricho-D 2g/L) con 0,14 g y el T1 (Testigo) obtuvo el menor peso con un valor de 0,07 g, mientras que en el cultivo de pimiento el T9 (Serenade 7cc/L) con 0,08 g obtuvo el mayor valor, seguido del T10 (EM-1 5cc/L) con 0,07 g y el menor valor lo obtuvo el T6 (Testigo) con 0,06 g (ver tabla 4).
22
Tabla 4. Peso húmedo de raíces en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente según la
prueba de Tukey al 5 % de probabilidad.
4.1.2 Peso húmedo de la biomasa aérea (g).
En el análisis de varianza se presentan los cuadrados medios de las evaluaciones y se observa que fue altamente significativo para los tratamientos y no significativo para las repeticiones con un coeficiente de variación de 23,20 % (ver cuadro 2 del anexo).
Efectuada la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad se pudo comprobar que los resultados difieren estadísticamente entre los tratamientos. Donde el T4 (Serenade 7cc/L) con 0,95 g logró el mayor peso, seguido del T3 (Tricho- D 2g/L) con un valor de 0,87 g y el T1 (Testigo) con 0,41 g obtuvo el menor peso, mientras que en pimiento el T10 (EM-1 5cc/L) con 0,34 obtuvo el mayor valor, seguido del T9 (Serenade 7cc/L) con 0,33 g y el de menor valor fue el T6 (Testigo) con 0,26 g (ver tabla 5).
23
semillas de chile jalapeño (Capsicum annuum L. ‘var. Grande’), inoculando las plántulas de chile con la cepa de Azospirillum brasilense obtuvieron un peso fresco de la biomasa aérea de 0,51 g, esto se debe probablemente al género y especie de rizobacteria utilizada en el ensayo, la variedad del cultivo, el contenido de nutrientes del sustrato, además de la capacidad que tienen dichos microorganismos para fijar o solubilizar nutrientes y de la capacidad para promover el crecimiento en las plántulas; varia con el tipo de hospedante, esto debido a la quimio atracción que ejercen los exudados radiculares producidos por las plantas (Kumar, Prakash y Johri, 2011).
Tabla 5. Peso húmedo de biomasa aérea en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos Promedios
T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 0,95 b T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 0,87 b T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 0,85 b T5 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 0,82 b T1 = Tomate testigo absoluto 0,41 a T10 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 0,34 a T9 = Pimiento + Serenade (7 cc/L) 0,33 a T7 = Pimiento + Bacthon (5 cc/L) 0,27 a T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 0,27 a T6 = Pimiento testigo absoluto 0,26 a
Tukey (5%) 0,30
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente según la
24 4.1.3 Peso seco de raíces (g).
Según el análisis de varianza fue significativo en los tratamientos y no significativo para las repeticiones con un coeficiente de variación de 27,37 %. (cuadro 3 del anexo).
Según la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad (tabla 6), se evidenció que los resultados difieren estadísticamente entre los tratamientos; tanto en tomate como en pimiento. Donde T3 (Tricho-D 2g/L), T2 (Bacthon 5cc/L), lograron el mayor peso con 0,06 g y el T5 (EM-1 5cc/L), T1 (Testigo) con 0,04 g obtuvieron el menor peso, mientras que en pimiento el T8 (Tricho-D 2g/L) y T9 (Serenade 7cc/L) obtuvieron el mayor valor con 0,04 g y el menor valor lo obtuvieron el T10 (EM-1 5cc/L), T7 (Bacthon 5cc/L) y T6 (Testigo) con 0,03 g.
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Tabla 6. Peso seco de raíces en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente según la
prueba de Tukey al 5 % de probabilidad.
4.1.4 Peso seco de biomasa aérea (g).
En el análisis de varianza se presentan los cuadrados medios donde se observa que no hay significancia entre los tratamientos ni en las repeticiones con un coeficiente de variación de 38,77% (ver cuadro 4 del anexo).
26
benéficos sobre el tomate (Solanum lycopersicum L.) y el nemátodo del nudo radical (Meloidogyne spp.), inoculando las plántulas de tomate con Bacillus subtilis obtuvieron un peso seco de la biomasa aérea de 3,02 g a los 24 días. En lo referente al cultivo de pimiento (Reyes, Alvarez, El Ayoubi y Valery, 2008) al inocular cepas de Azospirillum en plántulas de pimiento obtuvieron un peso seco de la biomasa aérea de 4 g, esto probablemente se debe a que estos microorganismos tienen la capacidad de fijar nitrógeno atmosférico, solubilizar fosfatos, producción de sideróforos además que producen cambios en las plantas y en la absorción de amonio, nitratos, fósforo, hierro y potasio mejorando la acumulación de minerales en tallos y hojas (Loredo, López y Espinoza, 2004).
Tabla 7. Peso seco de biomasa aérea en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos Promedios
T6 = Pimiento testigo absoluto 0,16 a* T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 0,15 T10 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 0,15 T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 0,14 T9 = Pimiento + Serenade (7 cc/L) 0,14 T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 0,14
T5 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 0,13
T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 0,11 T7 = Pimiento + + Bacthon (5 cc/L) 0,09
T1 = Tomate testigo absoluto 0,08
Tukey (5%) 0,12
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente según la
27 4.1.5 Longitud de raíz (cm).
El análisis de varianza muestra que fue altamente significativo para los tratamientos y no significativo en las repeticiones con un coeficiente de variación de 9,84 % (ver cuadro 5 del anexo).
Según la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad muestra que para los tratamientos de tomate existe diferencia estadística no así para pimiento. En tomate el mejor tratamiento fue T5 (EM-1 5cc/L) con 14,25 cm, seguido del T4 (Serenade 7 cc/L) que obtuvo 14 cm y el de menor valor el T1 (Testigo) con 10,25 cm, mientras que en pimiento el mayor valor lo obtuvieron T7 (Bacthon 5cc/L), T8 (Tricho-D 2g/L) y T9 (Serenade 7cc/L) con 9,5 cm y el de menor valor fue del T6 (Testigo) con 8 cm (ver tabla 8).
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Tabla 8. Longitud de raíz en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos Promedios
T5 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 14,25 b T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 14,00 b T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 13,50 b T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 13,25 b T1 = Tomate testigo absoluto 10,25 a T9 = Pimiento + Serenade (7 cc/L) 9,50 a T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 9,50 a T7 = Pimiento + Bacthon (5 cc/L) 9,50 a T10 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 8,75 a T6 = Pimiento testigo absoluto 8,00 a
Tukey (5%) 2,65
*Promedios con letras iguales no difieren estadísticamente según la
29
4.2 Identificar el tratamiento de ME y MPCV más influyente en el desarrollo de las plántulas de tomate y pimiento.
4.2.1 Porcentaje de germinación (%).
Como se observa en el análisis de varianza existe alta significancia estadística para los tratamientos y no hubo significancia en las repeticiones a los 8, 10 y 14 días con coeficientes de variación de 22,70 %, 13,40 % y 3,87 % respectivamente. (cuadro 6 del anexo).
De acuerdo a la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad los resultados difieren estadísticamente entre los tratamientos, en tomate el tratamiento que mayor valor alcanzó fue el T2 (Bacthon 5cc/L) con 96,53 % seguido del T3 (Tricho-D 2g/L) con 92,78 % y el menor valor lo alcanzó el T1 (testigo) con 86,94 %; en pimiento el mejor tratamiento fue el T7 (Bacthon 5cc/L) con 91,39 % seguido del T9 (Serenade 7cc/L) con 86,11 % y el menor valor lo obtuvo el T8 (Tricho-D 2g/L) con 81,94 %. (tabla 9).
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Tabla 9. Porcentaje de germinación a los 8, 10 y 14 días en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos 8 días 10 días 14 días
Promedios Promedios Promedios T5 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 84,17 c 84,72 b c 90,83 b c d T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 84,17 89,72 96,53 d T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 83,75 c 86,66 c 92,22 c d T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 82,50 c 87,77 c 92,78 d T1 = Tomate testigo absoluto 69,58 b c 78,61 a b c 86,94 a b c T7 = Pimiento + + Bacthon (5 cc/L) 39,58 a b c 62,22 a b c 91,39 c d T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 37,79 a b 59,44 a 81,94 a T9 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 36,67 a 59,16 a 86,11 a b c T6 = Pimiento testigo absoluto 33,33 a 57,50 a 82,75 a b c T10 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 32,08 a 55,80 a 82,22 a
Tukey (5%) 32,26 23,54 8,34
31 4.2.2 Diámetro del tallo (mm).
En el análisis de varianza se presentan los cuadrados medios de las evaluaciones de diámetro de tallo a los 8 y 16 días donde muestran significancia estadística en los tratamientos, pero no en las repeticiones mientras que a los 24 días fue altamente significativo para los tratamientos y significativo para las repeticiones. Donde los coeficientes de variación fueron de 13,42 %, 11,01 % y 10,84 % para los 8, 16 y 24 días después de la siembra (cuadro 7 del anexo).
Realizada la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad aplicada a los promedios de los tratamientos, se muestra que existe diferencia estadística para las plántulas de tomate, no así para las plántulas de pimiento. En las plántulas de tomate el tratamiento que mayor valor alcanzó fue el T5 (Bacthon 5 cc/L) con 1,94 mm y el de menor valor fue el T1 (testigo) con 1,45 mm, mientras que en las de pimiento el T9 (Serenade 7cc/L) obtuvo el mayor valor con 1,35 mm, seguido del T10 (EM-1 5 cc/L) con 1,29 mm y el menor valor el T6 (Testigo) con 1,26 mm (tabla 10.)
32
Tabla 10. Diámetro del tallo a los 8, 16 y 24 días en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum anuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos 8 días 16 días 24 días
Promedios Promedios Promedios T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 0,81 a a b 1,09 a b 1,30 a T6 = Pimiento testigo absoluto 0,76 a a b 0,98 a b 1,26 a T5 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 0,74 a b 1,23 b 1,94 b T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 0,73 a a b 1,17 a b 1,93 b T7 = Pimiento + Bacthon (5 cc/L) 0,72 a a b 1,10 a b 1,33 a T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 0,72 a a b 1,07 a b 1,86 b T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 0,66 a a b 1,18 a b 1,94 b T9 = Pimiento + Serenade (7 cc/L) 0,63 a a b 1,08 a b 1,35 a T10 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 0,62 a a b 1,08 a b 1,29 a T1 = Tomate testigo absoluto 0,58 a a 0,90 a 1,45 a
Tukey (5%) 0,23 0,29 0,41
33 4.2.3 Altura de plantas (cm).
Según los análisis de varianza fue altamente significativo para los tratamientos en la evaluación a los 8 días y significativo para los tratamientos a los 16 y 24 días, mientras que para las repeticiones no fue significativo, donde los coeficientes de variación fueron 16,09 %, 17,50 % y 15,10 % a los 8, 16 y 24 días respectivamente (ver cuadro 8 del anexo). Según la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad se evidenció que los tratamientos difieren estadísticamente. El tratamiento que alcanzo mayor valor en las plántulas de tomate fue T2 (Bacthon 5 cc/L) con 5,24 cm y el de menor valor fue el T1 (Testigo) con 4,36 cm, mientras que para el pimiento el valor más alto lo alcanzó T10 (EM-1 5 cc/L) con 3,75 cm y el de menor valor fue el T6 (Testigo) con 3,02 cm (tabla 11).
Estos resultados son menores a los encontrados por (Noh et al, 2014) quienes en su investigación sobre aislados bacterianos con potencial biofertilizante para plántulas de tomate, al inocular cepas de rizobacterias solubilizadoras de fosfato obtuvieron una altura de planta de 14,29 cm a los 25 días, esto se debe probablemente a la variedad de tomate utilizada (semilla híbrida Sun 7705, Nunhem) y la forma de inoculación del microorganismo ya que este autor inoculo las semillas remojándolas durante una hora en la suspensión bacteriana, luego sembró las semillas en un sustrato húmedo a base de turba y realizo la aplicación de fertilizante (18-18-18) agregando al agua de riego 1 g/L.
34
Tabla 11. Altura de plantas a los 8, 16 y 24 días en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos 8 días 16 días 24 días
35 4.2.4 Número de hojas por planta.
En el cuadro 3 del anexo se observa que existió significancia estadística para los tratamientos a los 8 y 16 días y fue altamente significativo a los 24 días mientras que para las repeticiones no hubo significancia, teniendo como coeficientes de variación 65,15 %, 18,20 % y 11,50 % a los 8, 16 y 24 días respectivamente (cuadro 9 del anexo).
En lo que respecta a la prueba de Tukey al 5 % de probabilidad (tabla 12) se observó diferencia estadísticamente en los tratamientos tanto para tomate y pimiento. En tomate los tratamientos que lograron mayor valor fueron el T2 (Bacthon 5cc/L), T3 (Tricho-D 2g/L) y T4 (Serenade 7cc/L) con 3,25 hojas por planta y el de menor valor el T1 (Testigo) con 2,75 hojas por planta; mientras que para pimiento el mejor valor lo obtuvieron los tratamientos T9 (Serenade 7cc/L), T10 (EM-1 5cc/L), T7 (Bacthon 5cc/L) con 3 hojas por planta y el menor valor el T6 (EM-1 5cc/L), con 2 hojas por planta.
36
Tabla 12. Número de hojas por planta en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Tratamientos 8 días 16 días 24 días
Promedios Promedios Promedios T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 1,50 b 2,00 a b c 3,25 c T9 = Pimiento + Serenade (7 cc/L) 1,25 a b 2,00 a b c 3,00 b c T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 1,25 a b 2,00 a b c 3,00 b c T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 1,00 a b 1,50 a b 2,25 a b T5 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 1,00 a b 2,25 b c 3,00 b c T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 1,00 a b 2,50 c 3,25 c T10 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 0,75 a b 2,00 a b c 3,00 b c T7 = Pimiento + Bacthon (5 cc/L) 0,50 a b 2,00 a b c 3,00 b c T1 = Tomate testigo absoluto 0,50 a b 2,00 a b c 2,75 a b c T6 = Pimiento testigo absoluto 0,00 a 1,25 a 2,00 a
Tukey (5%) 1,39 0,86 0,80
37
4.2.5 Índice de la efectividad de la inoculación (%).
En la tabla 13 podemos observar que el índice de efectividad para las variables evaluadas en el cultivo de tomate los tratamientos que más se destacaron fueron el T2 (Bacthon 5
Por otra parte, en las variables longitud de raíz el T4 (Serenade 7 cc/L) con 39 % seguido del T5 (EM-1 5 cc/L) con 37 %, en el porcentaje de germinación el T2 (Bacthon 5 cc/L) logró tener 11 %, en diámetro del tallo los tratamientos T4 (Serenade 7 cc/L) y T5 ( EM-1 5 cc/L) lograron un valor de 34 %, para la altura de planta el T2 (Bacthon 5 cc/L) alcanzó el mayor valor con 20 % y en número de hojas los T2 (Bacthon 5 cc/L) y T4 (Serenade 7 cc/L) obtuvieron 18 %. Mientras que en pimiento se evidenciaron los siguientes índices de efectividad ; en peso húmedo de raíces el T9 (Serenade 7 cc/L) logro el 33 %, el T10 (EM-1 5 cc/L) alcanzo el 31 % en el peso húmedo de la biomasa aérea, para el peso seco de raíces el T8 (Tricho-D 2 g/L) presentó el 33 %, en el peso seco de la biomasa aérea ninguno de los tratamientos presentó eficiencia, mientras que en la longitud de raíz el T7 (Bacthon5 cc/L), T8 (Tricho-D 2 g/L) y el T9 (Serenade 7 cc/L) lograron 19 %, en el porcentaje de germinación el T7 (Bacthon5 cc/L) obtuvo el 10 %, el tratamiento T9 (Serenade 7 cc/L) con 7 % presentó el mayor valor en diámetro del tallo, en la altura de planta el T10 (EM-1 5 cc/L) logro 24 % y en número de hojas los tratamientos T7 (Bacthon5 cc/L), T9 (Serenade 7 cc/L) y el T10 (EM-1 5 cc/L) obtuvieron el 50 % de efectividad.
38
39
Tabla 13. Índice de la efectividad de la inoculación en la aplicación de microorganismos eficientes y promotores del crecimiento vegetal en los cultivos de tomate (Solanum lycopersicum) y pimiento (Capsicum annuum) en etapa de semilleros. FACDE-UG, Vinces-Ecuador 2017.
Continua…
Tratamientos
Peso húmedo de raíces Peso húmedo de
biomasa aérea Peso seco de raíces
40
…Continua
Tratamientos
Longitud de raíces Porcentaje de germinación Diámetro del tallo
Promedios IEI
% Promedios
IEI
% Promedios
IEI %
T1 = Tomate testigo absoluto 10,25 a 0 86,94 a b c 0 1,45 a 0
T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 13,5 b 32 96,53 d 11 1,93 b 33
T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 13,25 b 29 92,78 d 7 1,86 b 28
T4 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 14 b 37 92,22 c d 6 1,94 b 34
T5 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 14,25 b 39 90,83 b c d 4 1,94 b 34
T6 = Pimiento testigo absoluto 8 a 0 82,75 a b c 0 1,26 a 0
T7 = Pimiento + + Bacthon (5 cc/L) 9,5 a 19 91,39 c d 10 1,33 a 6
T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 9,5 a 19 81,94 a -1 1,3 a 3
T9 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 9,5 a 19 86,11 a b c 4 1,35 a 7
41
…Continua
Tratamientos
Altura de planta Número de hojas
Promedios IEI
% Promedios
IEI %
T1= Tomate testigo absoluto 4,36 a b c 0 2,75 a b c 0
T2 = Tomate + Bacthon (5 cc/L) 5,24 c 20 3,25 c 18
T3 = Tomate + Tricho-D (2 g/L) 4,44 a b c 2 3,00 b c 9
T4 = Tomate + Serenade (7 cc/L) 4,98 c 14 3,25 c 18
T5 = Tomate + EM-1 (5 cc/L) 4,73 b c 8 3,00 b c 9
T6 = Pimiento testigo absoluto 3,02 a 0 2,00 a 0
T7 = Pimiento + + Bacthon (5 cc/L) 3,35 a b 11 3,00 b c 50
T8 = Pimiento + Tricho-D (2 g/L) 3,6 a b c 19 2,25 a b 13
T9 = Pimiento + EM-1 (5 cc/L) 3,49 a b c 16 3,00 b c 50
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4.3 Registrar los agentes fitopatógenos presentes en cada uno de los tratamientos después de la aplicación de los microorganismos.
Para determinar esta variable se realizaron monitoreos constantes y hasta el término de las evaluaciones no se presentó enfermedades en la biomasa aérea ni en el sistema radicular, esto se debe probablemente a las condiciones donde se desarrolló el experimento, como también al efecto antagónico de los microorganismos aplicados.
