INTRODUCCIÓN A LAS TÉCNICAS
DE DETECCIÓN DE ÁCIDOS
NUCLÉICOS
(
N.A.T.
)
BIOQ. LILIANA DI TULLIO BUDASSI FAC. CS .BIOQUÍMICAS Y FARMACÉUTICAS UNIVERSIDAD NACIONAL DE ROSARIO
INFECCIONES TRANSMISIBLES POR TRANSFUSIÓN
Patógenos transmisibles por transfusión
Virus Virus de la Hepatitis B (HBV) Virus de la Hepatitis C (HCV)
Virus de la Inmunodeficiencia Humana 1 y 2 (HIV1/2) Virus Linfotrópico Humano I/II (HTLV I/II)
otros: H1N1, virus del Dengue, West Nile Virus
Parásitos Trypanosoma cruzi (Enf. de Chagas-Mazza) otros: Plasmodium malariae, Pl falciparum
Bacterias Treponema pallidum (Sífilis) Brucella abortus (Brucelosis)
otros
TAMIZAJE DE INFECCIONES TRANSMISIBLES POR TRANSFUSIÓN EN ARGENTINA
(LEY 22.990 - LEY NACIONAL DE SANGRE )
HVB: Enzimoinmunoensayos HBsAg y anti-HBc total
HCV :Enzimoinmunoensayo anti- HCV y Ag HCV
HIV1/2 : Enzimoinmunoensayo ag-p24 y anti-HIV1/2 HTLV I/II: Enzimoinmunoensayo anti-HTLV I/II
Chagas : Enzimoinmunoensayo y Hemaglutinación indirecta, ambos
anti-Tripanosoma cruzi
Sífilis: Test de VDRL anti- Treponema pallidum
Brucelosis: Reacción de Huddlesson, anti-Brucella abortus
TAMIZAJE DE INFECCIONES TRANSMISIBLES POR TRANSFUSIÓN
Métodos indirectos: detección en la sangre (suero o plasma) del donante de la presencia de una respuesta inmune contra un patógeno dado
Diagnóstico serológico mediante diferentes técnicas de laboratorio
Ej: análisis en búsqueda de anticuerpos específicos contra HIV en el suero del donante (EIA anti-HIV 0/1/2)
Métodos directos: detección directa de la presencia del patógeno (genoma o antígenos) en la sangre del donante
Ej: EIA para detectar p24 HIV, HBsAg o HCV ag
Técnicas de biología molecular: buscan el DNA o RNA viral
F
ACTORES DE RIESGO EN LA TRANSMISIÓN DE INFECCIONES A TRAVÉS DE LAS TRANSFUSIÓN Errores humanos o de laboratorio
Problemas en los sistemas de análisis/equipos Insuficiencias en la calidad de los análisis
Entrenamiento deficitario
Seroconversiones atípicas
Variantes o genotipos del patógeno no detectadas
Cambios epidemiológicos
Periodo de “ventana” serológico
Tiempo Infección
Reacción inmune
Reactivo Serológico
P
ERÍODO
V
ENTANA
TIEMPO ENTRE EL MOMENTO DE LA INFECCIÓN Y EL
DESARROLLO DE MARCADORES SEROLÓGICOS
6 Período
Ventana: NAT
Bacterial Contamination of Blood Components: Risks, Strategies, and Regulation Hillyer et al. Joint ASH and AABB Educational Session in Transfusion Medicine. Hematology 2003
Año 1/1000 1/10,000 1/100,000 1/1000,000 Rie sg o de infe cció n po r un id ad tr ansf un di da 1985 1990 1996 1999 2001 HCV HBV HIV 1/180,000 1/1.600,000 1/1.900,000 1/100
Ac Anti-HIV Ac Anti-HCV p24 NAT
EVOLUCIÓN DEL RIESGO EN LA PROVISIÓN DE SANGRE
N
UCLEICA
CIDT
ESTINGVentajas de NAT
Importante avance teconológico en screening de sangre
Altamente sensible & específico
dirigido especificamente a las secuencias nucléicas virales
Detección directa del RNA or DNA viral
Ayuda a la prevención de enfermedades transmisibles por transfusión
Provee una etapa adicional de seguridad a la provisión de sangre segura
Reduce el Período Ventana desde la infección hasta la detección
Tiempo Infección Reactividad Serológica Virus Detección más temprana NAT positivo
O
BJETIVO DE NAT O DGV
:
D
ISMINUCIÓN DEL PERÍODO DE VENTANA
Reacción inmune
9
Eclipse
Período Ventana
EJ: EVOLUCIÓN CLÍNICA DE HIV: DÓNDE ACTÚA NAT?
EVOLUCIÓN EN LA IMPLEMENTACIÓN DE LAS TÉCNICAS NAT EN LOS BANCOS DE SANGRE
1993 se considera formalmente la utilización de NAT para el tamizaje en bancos de sangre, luego que la Food and Drug Administration (FDA) reportara diversos casos de infección por el VHC como consecuencia del uso de inmunoglubulina intravenosa manufacturada.
1995 Comité Europeo para Productos Medicinales Manufacturados (CPMP) se adhirió a este lineamiento, haciéndolo extensivo a todos los productos medicinales derivados del plasma.
1997 Organización Mundial de la Salud (OMS) se establecen estándares para el ADN del VHB, el ARN del VHI-1, el ARN del VHC y el ADN del Parvovirus B19.
2000-2001 diferentes países incorporan paulatinamente NAT para HCV y HIV en el
tamizaje de donaciones.
2009 OMS en su documento “Recommendations: Screening Donated Blood for Transfusion-Transmisibles Infection” sugiere que junto a los ensayos de tamizaje serológicos para VHC, VIH y VHB, dirigidos a los marcadores serológicos de antígenos y/o anticuerpos, se realice la búsqueda de ácidos nucléicos virales para
P
ERÍODOV
ENTANAMODEL TESTING DATA
Fuente: Busch et al. Transfusion.2005;45(2):254-264.
Kleinman and Busch. Transfusion. 2006;36:S23-S29 .
VENTAJAS NAT
13 VIRUS Pruebas serológicas NAT MP (Minipool) NAT ID (Individual) VIH(incluye p24) 16 días 10 días 7 días VHC 70 días 9 días 7 días
VHB 59 días 49 días 38 días
Acortamiento del período de ventana inmunológico
TÉCNICAS BASADAS EN BIOLOGÍA
MOLECULAR
Involucran tres etapas:
1.
Extracción o captura del genoma viral
2.Amplificación
3.
Detección
Ejemplos:
PCR(Polymerase Chain Reaction)
RT-PCR (Real Time PCR)
NASBA (Nucleic Acid Based on Amplification)
15 EasyQ Instrument &
Reagents Desktop computer Strip centrifuge NucliSens EasyQ Incubator NucliSens EasyQ Analyzer
Nuclisens Easy Q system TMA: pasos principales del ensayo
Detección
Captura del blanco o diana (target) Amplificación PCR Real Time PCR TMA NASBA
MODELOS DE PROCESAMIENTO DE LAS
TÉCNICAS NAT
Técnicas “in house” Técnicas comerciales Técnicas Cualitativas Técnicas Cuantitativas Procesamiento de las muestras individuales (ID) o en mini-pools (MP)
16 POOL 48 POOL 24 UNIDADES POOL 24 UNIDADES POOL 8 POOL
NAT D
ETECTAI
NFECCIÓNHCV
MÁS TEMPRANO QUE ELT
EST DEA
NTICUERPOS 17 0 1,000 10,000 100,000 10,000,00 10,000,000 0 1 2 3 4 5 0 10 20 30 40 50 NAT pool HCV Ac HCV GEq/mL S/CO Días 28 días 7 díasFuente: Susan Stramer, Ph.D., American Red Cross, 1999
NAT ID test
PUNTOS IMPORTANTES A CONSIDERAR EN CUANTO AL ORIGEN DEL MÉTODO A ELEGIR
:
Sensibilidad Especificidad
Detección de variantes/subtipos Reproducibilidad
Trazabilidad de reactivos y resultados Software adecuado
Control Interno
Control de Contaminación
Ensayos discriminatorios/confirmatorios Identificación de su uso: RUO o IVD
Marca CE, FDA, ANMAT
PARA ASEGURAR LA CALIDAD DEL RESULTADO, CADA SISTEMA NAT DEBE POSEER CONTROLES ADECUADOS EN SUS DIFERENTES ETAPAS:
Controles de Reactivos: para evaluar la presencia de
ADN/ARN foráneo o productos de amplificaciones precedentes.
Control Negativo: para evaluar los riesgos de
contaminación (en la organización del espacio físico, en los métodos de trabajo, posible aerozolización durante el alicuotado de reactivos)
Control Positivo: para controlar la presencia de
inhibidores y el buen desarrollo de las diferentes etapas.
Control Interno: para verificar la idoneidad de la
amplificación y/o la presencia de inhibidores de la
Marca (s) Formato Muestra Uso habilitado Fabricante Fecha de Aprobación COBAS Ampliscreen HIV-1 Test PCR Plasma Donor Screen Expanded Indications
For Use: Source Plasma donors, other
living donors, and organ donors
Roche Molecular
Systems, Inc 12/20/2002
Procleix HIV-1/HCV Nucleic Acid Test (TMA)
Plasma
Donor Screen Expanded Indications
For Use: Source Plasma donors, living
organ donors and cadaveric samples Gen-Probe San Diego, CA 92121 02/08/2002 UltraQual HIV-1 RT-PCR Assay PCR Plasma
Donor Screen National Genetics Institute
Los Angeles, CA 92121 09/18/2001
UltraQual HCV
RT-PCR Assay PCR Plasma
Donor Screen National Genetics Institute Los Angeles, CA 92121 09/18/2001 COBAS AmpliScreen HCV Test PCR Plasma Donor Screen Expanded Indications
For Use: Source Plasma donors, other
living donors, and organ donors Roche Molecular Systems, Inc 12/3/2002 COBAS AmpliScreen HBV Test PCR Plasma Donor Screen Indications For Use: Source Plasma donors,
other living donors, and organ donors
Roche Molecular
Systems, Inc 04/21/2005
Procleix WNV Assay
Nucleic Acid Test (TMA)
ID
Plasma
Qualitative detection of West Nile Virus (WNV) RNA from volunteer donors Gen-Probe San Diego, CA 92121 12/01/2005 20
COMPARACIÓN DE LA SENSIBILIDAD ANALÍTICA DE LOS TEST NAT
95% Límite de Detección (95% CI)
Ensayo HIV (IU/ml) HCV (IU/ml) HBV (IU/ml) WNV** (Copies/ml) Procleix TMA* 19.62 (17.15-23.16) 2.78 (2.44-3.37) 7.46 (6.43-8.97) 3.4 AmpliScreen* Std preparation 323.4 (284.9-387.3) 41.9 (28.0-111.8) 15.99 (13.78-20.06) Taq Screen 15 AmpliScreen* Multiprep 78.4 (68.4-94.4) 28.8 (20.5-85.8) 4.41 (3.56-6.13)
* Roche’s COBAS AmpliScreen US Package Inserts or Procleix Ultrio CE Package Insert ** From Busch et al. 2000.Transfusion 45, 492-499
DISEÑO
,
ACONDICIONAMIENTO E INFRAESTRUCTURA DEL LABORATORIO DE BIOLOGÍA MOLECULARMetas principales para la instalación:
Proporcionar el espacio suficiente para el flujo
de trabajo y mantenimiento de equipos
Evitar la contaminación
Mantener la correcta temperatura , humedad y
presión del ambiente
CONDICIONES GENERALES
Nivel de seguridad 2 : BSL2
Paredes con pintura resistente a la descontaminación
(ácidos o álcalis)
Pisos con bordes sanitarios, antideslizante o de vinilo.
Presión relativa ambiente: neutra o ligeramente negativa
en área de post-amplificación
Divisorios: gabinetes modulares a base de metal, con
bordes sanitarios y puertas corredizas
Mesadas: resistentes a agentes químicos
Iluminación: compartimiento estanco
Electricidad: UPS de soporte / grupo electrógeno
ÁREAS DEL LABORATORIO DE BIOLOGÍA MOLECULAR
Área de preparación de reactivos y muestras
Área de pre-amplificación
Área de post-amplificación y detección
Se definen las diversas áreas mediante barreras físicas o protocolo de barreras entre un área de trabajo y otra.
Objetivo: evitar la contaminación entre áreas de trabajo diferentes
BIOSEGURIDAD EN EL LABORATORIO DE
BIOLOGIA MOLECULAR
Principal objetivo: minimizar la contaminación a través de…
Diseño del ensayo
Disposición del laboratorio
Control del flujo de trabajo
ÁREAS DEL LABORATORIO DE BIOLOGÍA
MOLECULAR
26
Pre-Amplificación
GESTIÓN DE LA CALIDAD EN EL LABORATORIO DE BIOLOGIA MOLECULAR
Manuales de Gestión de la Calidad
Manuales de procedimientos
Manual de Bioseguridad
Estándares y normativas:
Norma ISO 9001:2000
Norma ISO /IEC17025 /1999
Estándar Paul Erlich Institute
Organismos internacionales: OMS “Collaborative Study
Group” (provee CCE y establece la unidad de medida:
UI/ml)
Acreditación
C
ONCLUSIONES(1)
Disminución del período ventana
Otras aplicaciones: tests que permiten una
detección directa de otros virus. Ej: WNV, otros virus emergentes
Progresar desde analizar mini-pooles a analizar
muestras individuales.
Lograr la implementación de automatización total
de las técnicas de NAT:
-disminución de los errores del operador. -mejor estandarización operativa.
-optimización de los tiempos de reacción.
C
ONCLUSIONES(2)
Necesidad de lograr un consenso nacional acerca de temas puntuales referentes a la implementación de NAT en Argentina:
la obligatoriedad de las técnicas NAT en Medicina Transfusional,
creación de comités de expertos que evalúen la necesidad de legislar el tema
definición de la logística de centralización de muestras para lograr
un tamizaje de manera uniforme y a un costo razonable
evaluación de resultados obtenidos hasta el momento mediante las
técnicas in house y comerciales, en pool o ID, con el objeto de definir si la sensibilidad de dichas técnicas y su ejecución son útiles en nuestro sistema de salud
consolidación en la formación de los recursos humanos dedicados