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RINOTRAQUEITIS INFECCIOSA BOVINA, INFECCIÓN, EPIDEMIOLOGÍA Y POTENCIA Y EFICACIA PARA VACUNAS BOVINAS QUE CONTENGAN EN SU FORMULACIÓN

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RINOTRAQUEITIS INFECCIOSA BOVINA, INFECCIÓN, EPIDEMIOLOGÍA

Y POTENCIA Y EFICACIA PARA VACUNAS BOVINAS QUE CONTENGAN

EN SU FORMULACIÓN

El herpesvirus bovino 1 (BoHV-1) es el agente etiológico de la rinotraqueitis infecciosa bovina, enfermedad respiratoria, reproductiva y, eventualmente neurológica, del ganado bovino doméstico y salvaje, de distribución mundial. La enfermedad provoca un amplio rango de manifestacio-nes clínicas que incluyen, rinotraqueitis, vulvovaginitis /balanopostitis pustular infecciosa, conjuntivitis, aborto, enteritis y también encefalitis. Los casos de enfermedad respiratoria o genital provocados por BoHV-1, en ausencia de complicaciones bacterianas secundarias, tienen una duración promedio de 5–10 días. La infección por BoHV-1 comprende tres diferentes estadios:

• Enfermedad aguda • Latencia

• Reactivación

La infección es transmitida en forma directa o indirecta

En la infección respiratoria directa, el virus penetra en el animal por vía nasal a través de aerosol o por contacto de mucosas entre animales infectados, y se replica en el tracto respiratorio. Luego, se disemina y replica en la conjuntiva ocular y mediante su transporte por el axón de las neuronas alcanza el ganglio trigémino. En una infección genital, el agente se replica en la mucosa genital y se establece de forma latente en los ganglios sacros. Las vías de transmisión indirectas son por alimento, agua, o semen contaminados.

Una vez superada la fase aguda de la enfermedad, el ganado se recupera, aunque el virus se aloja en las neuronas y se mantiene latente de por vida. El animal latentemente infectado, no presenta síntomas y no puede diferenciarse de los animales vacunados, ya que ambos presentan los mismos anticuerpos. El estrés asociado a diferentes manejos productivos como el transporte o el parto, puede inducir la reactivación de la infección latente y el virus puede excretarse de modo intermitente y subclínico. Así, estos animales seroposi-tivos se convierten en una alta fuente de transmisión de la infección en el rodeo.

Epidemiologia de la infección

El primer aislamiento BoHV-1 se realizó en 1956 a partir de casos de rinotraqueítis infecciosa en bovinos en los

Estados Unidos. Los primeros casos clínicos reporta-dos en ese país datan de la década del 80. Según diversos estudios, la distribución de la infección es mundial y su incidencia es muy variable.

Estudios realizados por el Grupo de Sanidad Animal del INTA Balcarce, Argentina, indicaron que sistemas productivos como los utilizados en Argentina la inciden-cia de infección por IBR oscila entre el 7,6 y 82%. Argentina y Brasil poseen también una elevada inciden-cia de BoHV-5, variante asoinciden-ciada a casos de meningo encefalitis. Un estudio realizado en 2004 en Galicia, España -región de que concentra el 16.8% de la ganadería española- arrojo prevalencias del 17.3 al 54%, con un 42.1% de rodeos seronegativos.

El desafio de erradicar la infección por BoHV-1

La infección por BoHV-1 induce una respuesta de anticuerpos y una respuesta inmune celular en 7–10 días. Los anticuerpos neutralizantes pueden persistir hasta 5 años luego de la infección, pero se necesita de reestimulaciones (reactivación o vacunación) para mantener sus títulos en niveles detectables. Por el contrario, los anticuerpos totales, evaluados por técnicas de ELISA que utilizan el virus completo, permanecen detectables durante toda la vida. Si bien la protección frente a la infección esta dada principalmen-te por la inmunidad celular, se sabe que niveles eleva-dos de anticuerpos se asocian con mayores índices de protección al desafío experimental.

En varios países de Europa se están realizando campañas de erradicación con o sin vacunación (obligatorias y/o voluntarias) que han llevado a la erradicación de la infección en Noruega, Finlandia, Suecia, Austria, Dinamarca, Suiza y algunas regiones de Italia y Alemania. En el resto del mundo (incluyendo las américas y países europeos como España) la infección continua siendo endémica y con prevalencias elevadas. Las grandes diferencias de status sanitario frente a IBR en los diferentes países de la comunidad Europea han llevado a la aparición de restricciones para la libre circulación del ganado y sus productos. Estas normativa impulsa a todos los países con produc-ción pecuaria a optimizar sus planes de control y aumentar la calidad de sus herramientas sanitarias (métodos de diagnóstico, vacunas, métodos de control de potencia y eficacia de dichas vacunas)

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En general, las vacunas contra BoHV-1 disponibles en el mercado evitan la manifestación de síntomas clínicos graves y reducen la liberación del virus después de la infección, pero no evitan la infección. Este decir, por el momento la vacunación contra este agente no es esterilizante.

En la actualidad se dispone de varias vacunas con BoHV-1 atenuado e inactivado. Las vacunas contienen cepas del virus que se han multiplicado durante múltiples pasajes en cultivo celular. Las vacunas inactivadas contienen altos niveles de virus inactivados o porciones de las partículas víricas (glicoproteínas) suplementadas con un adyuvante para estimular una respuesta inmune adecuada. Las vacunas inactivadas se administran por vía intramuscular o subcutánea. Para los planes de erradicación se recomienda el uso de vacunas marcadoras o DIVA (que permiten la diferenciación entre animales infectados y vacunados) y se basan en mutantes delecionados (por ejemplo gE-) y su aplicación conlleva el uso de pruebas diagnósticas paralelas que permiten distinguir entre el ganado infectado y el ganado vacunado. Este tipo de vacunas se utiliza en Europa en los países que aplican programas de erradicación con campañas de vacuna-ción. En algunos países, los animales infectados restantes son eliminados dando como resultado una región libre de BoHV-1. En países endémicos, como Argentina, Brasil, España se aplican programas de vacunación intensiva voluntarios que logran reducir la prevalencia de los animales infectados.

Los organismos de control internacional (APHIS, USA; EMEA-CVMP, UE; OIE; VICH) exigen para la aproba-ción de vacunas que contienen IBR ensayos de poten-cia y eficapoten-cia en la especie de aplicación, que implican la vacunación y desafío de bovinos susceptibles y seronegativos. Una vez aprobado el producto, el control de calidad de cada serie a liberar debe realizar-se por medio de una prueba de potencia que determine la inmunogenicidad del producto en bovinos o en otro modelo animal de laboratorio (prueba in vivo) que haya sido estadísticamente validado y posea un grado de concordancia aceptable respecto de la prueba de potencia en la especie destino. En este sentido es altamente deseable que el modelo en cuestión sea validado como herramienta predictiva del grado de protección que conferirá la vacuna frente a la descarga viral en bovinos seronegativos. La dificultad de contar

con bovinos seronegativos y el elevado costo de las pruebas de inmunogenicidad en el hospedador natural, no permite realizar en forma rutinaria esta prueba de potencia y eficacia en la especie blanco. Es por ello que en Argentina se decidió desarrollar y validar una prueba estandarizada en animales de laboratorio (cobayos) que permita evaluar la potencia de cada lote de vacuna, garantizando así la presencia en el mercado de produc-tos estandarizados y eficaces.

En relación al bienestar animal, los organismos interna-cionales fomentan el desarrollo de pruebas in vitro, para evitar o reducir al mínimo el uso de animales de para pruebas experimentales de control. En el caso particular de estas vacunas, simples o combinadas e inactivadas, la aplicación de estas técnicas es posible y merece su exploración, pero dado que presentan el inconveniente de que deberían estandarizarse para cada formulación en particular (conjunto de antígenos inactivados y adyuvantes, vacunas a sub unidades y vacunas a DNA), aún se considera inevitable pasar por una prueba in vivo para evaluar la Potencia de estos productos.

CONTROL DE POTENCIA EN COBAYOS

El modelo cobayo desarrollado en Argentina, si bien se trata de un ensayo in vivo, el número de animales a utilizar (n=6 por vacuna y 4 testigos/placebos) y la cantidad de extracciones de sangre se reduce al mínimo. Los cobayos presentan la ventaja frente a otros animales de laboratorio, como ratones, que por su mayor tamaño permite que se puedan tomar muestras seriadas de suero, sin comprometer la vida del animal. Además, con el volumen de muestra obtenida se puede evaluar la calidad de las vacunas polivalentes para todos los antígenos virales que la componen; las que, en algunos casos llegan a contener hasta 4 valencias de estos 5 agentes: herpesvirus bovino, virus de la diarrea viral bovina, virus respiratorio sincicial, virus de parainfluenza 3, rotavirus bovino. Finalmente, la evaluación serológica es independiente del tipo de adyuvante (oleoso o acuoso) y de la cantidad y calidad de los virus inactiva-dos que componen la formulación. Es importante desta-car que los cobayos son una especie libre de BoHV-1 y, por lo tanto, naturalmente seronegativos para anticuer-pos (Ac) contra este agente viral.

La validación del modelo cobayo para la valencia IBR indicó que la respuesta de anticuerpos inducida por las vacunas de BoHV-1 en bovinos y cobayos fue

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directa-mente proporcional a la concentración de antígeno contenido en la vacuna y permite diferenciar las vacunas en tres categorías, no satisfactoria, satisfactoria y muy satisfactorias (Tabla 1 y 2). Vacunas representativas de cada categoría fueron evaluadas en una prueba de desafío experimental con IBR en bovinos seronegativos, demostrándose diferente grado de protección para cada categoría.

El modelo cobayo presento una concordancia casi perfecta con del bovino para clasificar las vacunas y logró predecir adecuadamente no sólo la calidad inmunogénica de las vacunas, sino también su grado de eficacia frente al desafío experimental en bovinos. Las vacunas clasificadas como muy satisfactorias o satisfac-torias por el modelo cumplieron con los requisitos exigidos por el CFR americano y el manual de diagnósti-co y vacunas de los animales terrestres de la OIE para su aprobación. La prueba fue evaluada por el SENASA-Argentina durante 3 años (2008-2010) y actualmente ha sido adoptada como prueba oficial para el control de vacunas de IBR en Argentina, se espera su uso pueda extenderse a otros países.

La prueba propuesta no necesita infraestructura ni tecnología compleja, sólo un bioterio con cobayos y técnicas serológicas corrientes (ELISA, VN) de uso rutinario en los laboratorios de virología, correctamente armonizadas con normas internacionales (9.CFR, OIE, EMEA) y preferentemente validadas bajo normas ISO-IEC 17025.

Tabla 1. Puntos de corte determinados por ELISA expresados como el log10 de la inversa de la dilución de suero analizado que resulta positiva en el ensayo. Titulo promedio de Ac de grupos de 5 cobayos, evaluado a los 30 días post vacunación (dpv) y grupos de 5 bovinos seronegativos evaluados a los 60 dpv. Los bovinos reciben dos dosis de vacuna con un interva-lo de 30 días y se muestreas a interva-los 0 y 60 dpv. Los cobayos reciben dos dosis de vacuna (1/5 del volumen de la dosis bovina) con un intervalo de 21 días y se muestrean a los 0-30 dpv.

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Dra. Viviana Parreño, Responsable de la Sección de Virus Entericos, Instituto de Virologia, CICV y A, INTA, Castelar, Argentina. vparreno@cnia.inta.gov.ar Dra. Virginia Barros, Servicio de control de vacunas virales no vesiculares, DILAB, SENASA, Argentina. vbarros@senasa.gov.ar

Dra. Alejandra Romera, Responsable del Laboratorio de Herpesvirus bovinos,

Instituto de Virologia, CICV y A, INTA, Castelar, Argentina. aromera@cnia.inta.gov.ar

Para Cicloneo| www.cicloneo.com.ar REFERENCIAS:

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2- CFR.113.216. Bovine Rinotracheitis Vaccine, killed virus, editor.: US Goverment printing office, 1985, : 670-1. 3- Pidone, C.L., Galosi, C.M., Etcheverrigaray, M.E. Herpesvirus bovinos 1 y 5. Articulo de revisión. Analecta veterinaria 1999; 19, ½:40-50.

Tabla 2. Puntos de corte determinados por VN, expresados como títulos de Ac neutralizantes calculados por el método de Reed y Muench. Título promedio de Ac de grupos de 5 cobayos, evaluado a los 30 días post vacunación (dpv) y grupos de 5 bovinos seronegativos evaluados a los 60 dpv. Los bovinos reciben dos dosis de vacuna con un intervalo de 30 días y se muestreas a los 0 y 60 dpv. Los cobayos reciben dos dosis de vacuna (1/5 del volumen de la dosis bovina) con un intervalo de 21 días y se muestrean a los 0-30 dpv.

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