Tesis de Grado presentada como parte de los requisitos para optar al Título de Biólogo Marino.
PROFESOR PATROCINANTE: DR. DIRK SCHORIES INSTITUTO: CIENCIAS MARINAS Y LIMNOLÓGICA FACULTAD: CIENCIAS
PROFESOR COPATROCINANTE: MCs. ALEJANDRO BRAVO S. INSTITUTO: CIENCIAS MARINAS Y LIMNOLÓGICA
FACULTAD: CIENCIAS
Universidad Austral de Chile
Facultad de Ciencias
Escuela de Biología Marina
Yoselin Raquel Z. Roa Aravena
VALDIVIA – CHILE
2012
Taxonomía, riqueza y distribución de esponjas marinas de Caleta Yerbas
Buenas (Seno de Reloncaví, X Región de Los Lagos, Chile)
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1. INDICE
Págs.
1. Índice de figuras, gráficos y tablas………....2-7
2. Resumen………...………...8 3. Abstract………...9 4. Introducción………...10-13 Objetivo General………...13 Objetivos Específicos………...13-14 5. Material y métodos………...……….14-23
5.1) Descripción del área de estudio 5.2) Extracción muestras para taxonomía 5.3) Geo-referenciamiento
5.4) Cobertura por medio de Foto-cuadrantes 5.5) Inclinómetro
5.6) Cobertura por medio de Videos 5.7) Identificación por Taxonomía
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5.7.1) Preparación de placas de espículas 5.7.2) Preparación de cortes de esqueleto
6. Resultados………24-56
6.1) Inventario de las especies recolectadas e identificación taxonómica. 6.2) Identificación de especie, no descrita por otros autores.
6.3) Cobertura y diversidad de esponjas en las tres distintas profundidades. 6.3.1) Cobertura por Foto-cuadrantes
6.3.2) Presencia de esponjas en los Videos 6.4) Inclinación del substrato.
6.5) Análisis de varianza.
7. Discusión………...57-65
8. Conclusiones………...………...66-67
9. Anexos………...68-75
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INDICE DE FIGURAS Y TABLAS
Figura 1. Mapa de la zona de estudio. Específicamente Estuario de Reloncaví, 1: Caleta Yerbas
Buenas………...15
Figura 2: Análisis de los foto-cuadrantes con el programa CPCe 3.6, usando la una matriz de 10x10 correspondiente a 100 puntos………....18
Figura 3. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los transeptos. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Mayo 2010)………19
Figura 4. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los transeptos. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Septiembre 2010)………...19
Figura 5: Cuadrante de 26x40cm, 1: Inclinómetro; 2: Brújula. Nótese que el inclinómetro marca un ángulo de 100° de inclinación (Circunferencia de inclinómetro 36 cm)………...20
Figura 6. Mapa de la zona de estudio, Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los videos. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m de profundidad y verde 20m de profundidad………...21
Figura 7: Cliona chilensis; a) Tilostilos.……….………...28
Figura 8: Axinella crinita; a) Estilos..………...29
Figura 9: Leucosolenia lucasi; a) triactinas, b) Tetractinas………...30
Figura 10: Tethya papillosa; a) megásteres oxisferásteres, b) Estilos………...31
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Figura 12: Tethya melinka; a-b) Oxisferásteres; b) Acantostrongilásteres pequeños.…...33
Figura 13: Tedania mucosa; a) Estilos………...34
Figura 14: Tedania spinata; a) Estilos o subtilostilos………...35
Figura 15: Clionaopsis platei; a ) Espirásteres cortos y macizos; b) Oxas lisas………...36
Figura 16: Myxilla araucana; a) Estilos………...37
Figura 17: Haliclona (Reniera) caduca; a, b) Oxas..……….………...38
Figura 18: Haliclona (Reniera) porcelana; a) Distribución espículas en el esqueleto………….……….39
Figura 19: Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis; a) Acantoestilos; b) Tornotes; c) Sigma; d) Isochela………...40
Figura 20: Halicnemia papillosa; a) Estilos; b) Gedornte tornotes………...41
Figura 21: Haliclona (soestella) auletta; a) Tornotes………...42
Figura 22: Acarnus sp. ; a) Acantoestilos; b) Chela; c) Cladotylotes; d) Toxa acolada……..…………...43
Figura 23: Sycon sp; a) Triactina………..……...44
Figura 24: Familia Hymedesmiidae; a) Acantostilos………....……..45
Figura 25: Familia Niphatidae; a) Oxa………..……….46
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Figura 27: Muestra la calidad de la imágenes obtenidas por medio de los videos a las tres distintas
profundidades………...53
Tabla 1: Especies encontradas, indicando la fecha y profundidad a la cual se encontraron………...26 Tabla 2: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. (mayo 2010)...50
Tabla 3: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. (septiembre 2010). ………..……….50
Tabla 4: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. Nótese que en la tabla se encuentran representadas las esponjas con las cuatro especies más abundantes encontradas (mayo y septiembre 2010) n=40. ...……….………...51
Tabla 5: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. Nótese que en la tabla se encuentran representadas las cuatro especies de esponjas más abundantes recolectadas y también en el mes de septiembre se registró la presencia de Axinella crinita y no de Clionaopsis platei como en el mes de mayo. (mayo y septiembre 2010) n=40……….………...52
Tabla 6: Muestra el porcentaje de cobertura de un total de 200 imágenes obtenidas por medio de los
videos………...53
Tabla 7: Especies recolectadas, indicando la inclinación de su substrato a la cual se
7
Tabla 8: Análisis de varianza (ANOVA simple), comparando la cobertura en las tres profundidades
muestreadas. No existen diferencias significativas entre las profundidades (p-valor > 0,05). (mayo)………...…56
Tabla 9: Análisis de varianza (ANOVA simple), comparando la cobertura en las tres profundidades
muestreadas. Existen diferencias significativas entre las profundidades (p-valor < 0,05). (septiembre)………...56
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2. RESUMEN
Este trabajo presenta un inventario de 20 especies de esponjas marinas registradas en la zona sur de Chile, específicamente Caleta Yerbas buenas (X Región, de Los Lagos), de ellas 18 pertenecen a la clase Demospongiae, de estas 4 son del orden Hadromerida, 2 del orden Halichondria, 7 del orden Poecilosclerida, 4 al orden Haplosclerida y 1 pertenece al orden Chondrosida. Las otras 2 especies encontradas pertenecen a la clase Calcarea (Leucosolenia
lucasi y Sycon sp.), ambas pertenecientes al orden Leucosolenida. Se presentan fotografías de las
especies recolectadas, como también fotografías de las espículas identificadas para cada especie. Dónde se encontró que Cliona chilensis era la esponja más dominante encontrada en las tres profundidades estudiadas. Se comparó, estos datos con otros trabajos realizados por otros autores. Se elaboró 2 métodos para estimar cobertura de esponjas en esta zona; se comparó ambos métodos para ver cuál era el más adecuado, el primero utilizando foto-cuadrantes y el segundo utilizando videos; al comparar video y fotografía vemos que el video (Sony TVR 900, 720x576 px) consume menos tiempo en terreno y nos provee de un mejor registro permanente, pero la fotografía a su vez es de mejor resolución para la identificación de las especies (camera Nikon D70s, 3000x2000px). Basados en estos estudios se consideró que los foto-cuadrantes era el mejor método a utilizar en este caso, por ser más preciso y exacto.
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3. ABSTRACT
This paper presents an inventory of 20 marine sponge species recorded in the south of Chile, specifically in Caleta Yerba Buena (X Region, Los Lagos), 18 of them belong to the Demospongiae class, 4 of them from the Hadromerida order, the other 2 from the Halichondria order, 7 from the Poecilosclerida order, 4 from the Haplosclerida order and 1 belongs to the Chondrosida order. The other 2 species found, belong to the Calcarea class (Leucosolenia lucasi and Sycon sp.), both belong to the Leucosolenida order. Photographs of the recollected species are presented, as well as photographs of spicules identified with the species. It was found that
Cliona chilensis was the most dominant sponge in the three depths studied. These data were
compared with other works done by other authors. Two methods were elaborated to estimate sponges coverage in this area; both methods were compared to see which was the most suitable, the first method by the use of photo-quadrants and the second one by the use of videos. Comparing the video and the photography we observed that the video (Sony TVR 900, 720x576 px) consumes less time in the field and provides us with a better permanent record, but at the same time the picture has a better resolution for the identification of the species (camera Nikon D70s, 3000x2000px). Based on these studies it was found that the photo-quadrants were the best method to use in this case for being more precisely and accurate.
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4. INTRODUCCIÓN
Las esponjas constituyen un grupo de gran éxito evolutivo, que se ha ramificado en varios miles de especies, las estimaciones para el número de especies descritas de Porifera en el mundo varían de 5500 (Bouchet, 2006) a 5000-10000 (Groombridge & Jenkins, 2002), pero se estima que existen al menos 15.000 especies de esponjas a escala mundial, de las cuales sólo 7.000 están descritas actualmente en la literatura (Willenz et al 2009). Y unas 150 especies aproximadamente serían de agua dulce. Y son en cierta forma un recurso biológico desconocido. Las esponjas son animales bentónicos inmóviles que se alimentan por filtración. Generalmente las esponjas son marinas, aunque existen algunas especies que viven en aguas dulces, como la única familia citada para Chile de Demospongias de agua dulce Spongillidae (Sielfeld, 2002). Siempre viven unidas al substrato y no se desplazan. A veces se desarrollan dentro de algunas oquedades en la roca, son denominadas entonces esponjas incrustantes. El tamaño de la esponja es muy variable y oscila entre 1 cm y varios metros. Hay esponjas que viven aisladas y esponjas coloniales, aunque la mayoría son individuos aislados y masivos.
El Phylum Porifera está subdividido en tres Clases (Hexactinellida, Calcarea y Demospongiae), principalmente de acuerdo a la composición y estructura de sus elementos esqueléticos. La Clase Hexactinellida posee un esqueleto de espículas silíceas con seis rayos y viven principalmente en aguas marinas profundas. La Clase Calcarea poseen un esqueleto formado por espículas de carbonato de calcio, casi siempre con 3 rayos. La Clase Demospongiae son las más abundantes, representan el 85-90% de la fauna global de esponjas e incluyen las escasas especies de agua dulce conocidas (Willenz et al 2009).
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Las esponjas están estrechamente ligadas a las condiciones ambientales del lugar donde viven, y muchas desaparecen rápidamente por destrucción del hábitat, la pesca excesiva, etc. En general se considera a las esponjas buenos indicadores de la actividad hidrodinámica, de la concentración de sustancias en suspensión, de la alteración de los hábitat, etc., y su estructura ecológica nos puede proveer de una importante información sobre el comportamiento temporal de algunas de estas variables ambientales. Además desde hace tiempo se sabe que las esponjas constituyen una importante fuente de productos bioactivos, que se interpreta como un sistema de defensa química frente a factores externos causantes de estrés como la depredación, el exceso de recubrimiento por organismos adherentes (fouling) o la fuente de competencia por el espacio.
Como una consecuencia probable de sus más de 5000 kilómetros de largo, la costa (que abarca 41° de latitud) y el hecho que posee el sistema más complejo e inaccesible de islas, fiordos y canales, Chile tiene un deficiente inventario taxonómico de la fauna de esponjas (Försterra et al., 2005; Hajdu et al., 2006; Carvalho et al., 2007). Uno de los primeros inventarios realizados en Chile arrojó un catastro de 140 especies registradas en toda esta área (Breitfuss, 1898 y Thiele 1905). Los trabajos más relevantes en el ámbito nacional son los realizados por Burton (1930, 1936) y Desqueyroux-Faúndez (1972, 1990). En 1999 Pansini & Sará identificaron 44 especies encontradas en el Estrecho de Magallanes las muestras fueron obtenidas en 1991 y 1994, de ellas se identificaron 18 familias y 29 géneros, en donde las familias más numerosas fueron Clathriidae con 7 especies, Suberitidae con 6, Myxillidae y Haliclonidae con 4. Por otro lado el trabajo realizado por Matthew et al., (2008), determino la riqueza de especies de todas las taxas de invertebrados bentónicos de Chile, incluyendo por supuesto las esponjas, se encontró 206 especies distintas a lo largo de la costa chilena, incluyendo las Islas del Pacífico (Isla de Pascua,
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Archipiélago Juan Fernández, Isla Sala y Gómez e Islas Desventuradas) las especies encontradas corresponden al 3,75% del total mundial (5500 especies aprox.) tomando como referencia el trabajo de Brusca & Brusca (2003).
En el ambiente marino la zona con mayor número de especies conocidas, es la del territorio antártico chileno con 144 especies, llama la atención el escaso número de especies conocidas para la zona norte del país, donde, si bien la diversidad de esponjas es en general baja, también existe falta de estudios en la zona (Sielfeld, 2002). Por otro lado, en lo que concierne a la zona sur de nuestro país el último trabajo es el Willenz et al (2009) quienes describen un total de 39 especies distintas de esponjas en la zona de los fiordos. Aun así son escasos los trabajos que nos entreguen datos concretos en relación a la ecología de las esponjas que habitan las costas del sur de Chile, en donde datos de abundancia y cobertura son prácticamente desconocidos.
Esta falta de trabajos y especialistas que se dediquen al estudio de esponjas marinas se debe en gran medida a la gran dificultad que existe a la hora de identificar las especies, a veces asociado a la falta de caracteres morfológicos estables y a la gran plasticidad morfológica que en conjunto presenta el grupo. Su clasificación tradicionalmente ha estado basada en la naturaleza y forma de sus elementos esqueléticos y en su disposición dentro del animal y existe tan alta diversidad de esos elementos que se ha tenido que crear una nomenclatura especializada. Actualmente, en la clasificación de las esponjas se recurre a características más sofisticadas que las puramente morfológicas para complementar las observaciones tradicionalmente empleadas. Así, se recurre al estudio de aspectos ultra estructurales como la forma y tamaño de las espículas, la forma y tamaño de las cámaras coanociticas, de características celulares, (Boury-Esnault et al., 1990), de la estructura de la larva y hábitos de la misma (Wapstra & Soest, 1987), entre otros.
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Para realizar un monitoreo e identificación de la diversidad marina es necesario conocer la diversidad biológica de las esponjas marinas de nuestras costas con carácter prioritario, así como su ecología para buscar una forma de conservación y establecer una metodología subacuática para estimar la cobertura de esponjas marinas en un área determinada. Muchas de estas especies marinas están desapareciendo rápidamente debido a la destrucción del hábitat y la sobrepesca.
OBJETIVO GENERAL
Caracterizar (determinar) la riqueza y diversidad de esponjas marinas de Caleta Yerbas Buenas (Puerto Montt, X Región de Los Lagos).
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
1) Identificar e inventariar las especies de esponjas por medio de taxonomía, morfología, fotografías y preparaciones de espículas.
2) Determinar si existe diferencia entre lacobertura y diversidad de esponjas en tres profundidades distintas (5,10 y 20 m de profundidad).
14 4) Determinar si hay diferencias en la presencia de esponjas dependiendo de la inclinación de su
substrato.
5. MATERIALES Y MÉTODOS
5.1) Caracterización del área
El lugar de estudio fue el sector de Caleta Yerbas Buenas (41°40'23''S, 72°39'24''W, ubicada a aproximadamente 32 km. al sureste de la ciudad de Puerto Montt, X Región, Chile (Fig. 1). Las precipitaciones media anual de esa zona es de 2.342 mm, con un máximo en junio (Di Castri & Hajek, 1976), debido a las altas precipitaciones en esta zona, la salinidad no presenta mayores cambios. La temperatura del aire y el agua son moderadas y similares entre sí. Media de verano es de 15,1 ° C y la media en invierno 7,7 º C (Di Castri & Hajek, 1976). La temperatura promedio del agua a 20m es de 11°C. La salinidad promedio en esta zona a 20m es de 36,9PSU, a 10m es de 36,1PSU y a 5m es 35,9PSU. Para la extracción de las muestras se realizaron buceos en marea media.
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Figura 1. Mapa de la zona de estudio. A) Chile continental, B) Seno de Reloncaví, C) Área de
estudio en el Seno de Reloncaví. (Nota: Flecha azul indica específicamente el área de estudio Caleta Yerbas Buenas).
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5.2) Extracción muestras para taxonomía
Las muestras para la identificación taxonómica fueron extraídas por medio de buceo autónomo a tres profundidades 5, 10 y 20 m en marea media. Esto se hizo en dos épocas distintas del año, el primer muestreo correspondió a los días 10 y 11 de mayo y el segundo muestreo se realizó el día 23 de septiembre del año 2010. Para la extracción se utilizó una espátula o un cuchillo, con los que se cortó un trozo considerable de esponja abarcando desde el pinacodermo hasta el coanodermo, luego este trozó era depositado en una bolsa Ziploc previamente rotulada. Junto con esto se tomó una fotografía in situ de la esponja, la cual nos ayudaría después para la caracterización en vivo de la especie, donde consideramos color, forma y consistencia. Fuera del agua, cada trozo de esponja era traspasado a un frasco rotulado con la fecha, lugar y profundidad y luego se fijaba con alcohol al 95% para ser transportadas al laboratorio. Se recolectaron 13 muestras a 5m, 20 muestras a 10m y 21 muestras a 20m en el mes de mayo; en el mes de septiembre se recolectaron 7 muestras a 5m, 9 muestras a 10m y 13 muestras a 20m. La recolección de las muestras se hizo con el objetivo de obtener la mayor cantidad de especies diferentes, es decir, se recolectaba un trozo de esponja que encontrábamos por el trayecto del buceo, sin importar si recolectábamos 1 o 5 muestras de la misma especie.
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5.3) Geo- referenciamiento
Consistió en, que por medio de buceo, geo-referenciar las fotografías tomadas con los foto-cuadrantes, esto se llevó a cabo de la siguiente manera: Dos buzos, uno llevaba una cámara de fotos y el otro llevaba una boya la cual tenía el GPS submarino GARMIN 76 CSx conectado con una antena en la superficie (el cable del GPS se mantenía en dirección vertical a la superficie del agua). El buzo que llevaba la boya debía tener cuidado en no dar mucha cuerda a la boya, es decir en llevar la boya lo mas perpendicular posible a la dirección de buceo. El GPS se prendía antes de iniciar el buceo y grababa a intervalos de 5 segundos un punto durante el recorrido del buceo, así se formo un registro de los lugares donde tomamos las fotos. Previamente sincronizábamos la hora del GPS con la de la cámara fotográfica antes y después del buceo. Posteriormente se guardo las posiciones del GPS dentro de la imágenes (formato jpg) usando el programa GeoSetter 3.6. En el caso de la cámara de video se marco el inicio y el final de la ruta con dos puntos de referencia (waypoints) (Schories & Niedzwiedz 2011).
5.4) Cobertura por medio de Foto-cuadrantes
Para obtener la cobertura, consistió en fotografiar por medio de foto-cuadrantes, las tres profundidades a estudiar 5, 10 y 20 metros. Los foto-cuadrantes tenían un área de 26 x 40 cm. Cada foto-cuadrante fue analizado con el programa CPCe 3.6 (Kohler & Gill, 2006), se analizaron 40 foto-cuadrantes para cada profundidad, con el fin de estimar la cobertura de las especies de esponjas que allí habitan y también la cobertura de otras especies como; equinodermos, moluscos, algas, crustáceos, etc. Se utilizó una cuadricula de 10x10 lo que corresponde a 100 puntos (Fig. 2), se procedió a identificar el individuo que caía justo bajo cada
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punto, para así obtener después los porcentajes de cobertura, esto se hiso con cada fotografía y se obtuvieron los porcentajes de cobertura en cada caso. Posteriormente se combinaron los datos de cada imagen para producir comparaciones entre las tres profundidades distintas, además de comparar dentro de los mismos a través de la generación automática de hojas Excel. Cada imagen fue en primera instancia analizada por separado y los datos generados fueron posteriormente combinados, con los de otras imágenes en una sola hoja que contenía en general parámetros estadísticos descriptivos para cada una de las especies y sustrato. Para la presentación de los resultados de cobertura se utilizó la desviación estándar. El recorrido de los transeptos realizados se presenta en las Figuras 3 y 4.
Figura 2: Análisis de los fotocuadrantes con el programa CPCe 3.6, usando la una matriz de
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Figura 3. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los
transeptos. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Mayo 2010).
Figura 4. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los
Fotocuadrantes. Rojo 5 m de profundidad; azul 10 m y verde 20m de profundidad (Septiembre 2010).
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5.5) Inclinómetro
Se fabricó un inclinómetro (Fig. 5) el cual se colocó en la base del cuadrante de 26x40cm, de esta forma logramos conocer el ángulo de la pared en donde se encontraba cada muestra. El inclinómetro consiste en un disco el cual contiene dentro un peso fijado en el fondo, en el exterior una regla con 36cm, en donde 1cm equivale a 10° de inclinación.
Figura 5: A: Cuadrante de 26x40cm, 1: Inclinómetro con indicador metálico; 2: Profundímetro.
Nótese que el inclinómetro marca un ángulo de 100° de inclinación. 3: nivel de agua (al lado izquierdo), B: Vista mecánica del inclinómetro; a: círculo rojo indica el peso.
5.6) Cobertura por medio de videos
Se realizaron grabaciones por medio de una cámara de video en las tres profundidades a estudiar 5, 10 y 20 m. Las grabaciones se hicieron los días 10 y 11 de mayo del 2010, la distancia recorrida a 5m fue de 202m, a 10m de 180m y a 20m de 142m (Fig. 6). La cámara de video fue
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llevada por un buzo poniéndola vertical al fondo y el buceo fue realizado a una velocidad homogénea en las tres profundidades. Una vez realizados los videos, se llevaron al programa DVDVideosoft 5.2, en donde se extrajeron imágenes con una resolución de 720x576 px cada 2 segundos. Se escogieron 200 imágenes de cada profundidad para su posterior análisis, el cual consistió en observar y clasificar en dos; clasificación A (hay esponja) y clasificación B (No hay esponja). Con estos datos, se calculo un porcentaje para cada categoría.
Figura 6. Mapa de Caleta Yerbas Buenas. Indicando el recorrido donde se hicieron los videos. Rojo 5
m de profundidad con una distancia recorrida de 202m; azul 10 m de profundidad con una distancia recorrida de 180m y verde 20m de profundidad con 142m recorridos.
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5.7) Identificación por Taxonomía
La identificación taxonómica fue realizada junto con el Dr. Eduardo Hajdu en el Laboratorio de Porífera de la Universidad Federal de Rio de Janeiro en el mes de noviembre del 2010. Se trabajó con las fotografías tomadas in situ, y se hizo un preparado de espículas de cada esponja muestreada siguiendo el procedimiento descrito por Hooper (2000). De esta forma se logró identificar cada una de las esponjas muestreadas en cada zona.
7.1) Preparación de placas de espículas
1) Se debe extraer un pequeño trozo de esponja y después colocarlo en un tubo de ensayo, agregar 10ml de Hipoclorito de Sodio (Cloro).
2) Luego, hay que flamear el tubo en un mechero, moviendo con pinza de madera hasta que la materia orgánica se degrade.
3) Se debe colocar agua destilada al tubo (10ml) y luego llevar a una centrífuga por 4 minutos a 1000 revoluciones, con una pipeta extraer el sobrenadante, repetir esto 2 veces. 4) Posteriormente, con una pipeta tenemos que extraer el sobrenadante y agregar alcohol al
90% (10ml), luego llevar a la centrífuga por 4 minutos a 1000 revoluciones hacer esto 2 veces.
5) Después, con una pipeta sacamos el sobrenadante y colocamos nuevamente alcohol pero solo 4 ml.
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6) Debemos montar las placas sobre una estufa caliente o plancha, resuspendemos las espículas con una pipeta y colocamos 3 gotas en un portaobjeto, dejamos secar.
7) Cuando la placa este seca observamos si hay suficientes espículas, sino colocamos 1 o 2 gotas más y dejamos secar.
8) Finalmente cuando este seco agregar 1 o 2 gotas de bálsamo de Canadá para fijar la muestra, colocamos el cubreobjetos y dejamos secar.
5.7.2) Preparación de cortes de esqueleto
1) Cortamos un trozo de esponja perpendicular a la superficie de la esponja y hacemos un corte más profundo del esqueleto interno utilizando un bisturí nuevo y limpio.
2) Luego colocamos el trozo en un portaobjeto y llevamos a una estufa o plancha, dejamos secar.
3) Finalmente cuando este seco colocamos 1 o 2 gotas de bálsamo de Canadá para fijar la muestra y cubrimos con un cubreobjetos, dejamos secar el bálsamo.
Nota: Una vez secas las preparaciones (esto puede tardar hasta una semana, debido al bálsamo de Canadá, el que requiere varios días para estar completamente seco), se llevan directamente a un microscopio óptico para su observación y posterior identificación.
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6. RESULTADOS
6.1) Inventario de las especies recolectadas e identificación taxonómica. Se encontraron 20 especies distintas de esponjas. Estas especies fueron (Tabla 1):
1. Cliona chilensis (Thiele, 1905) 2. Axinella crinita (Thiele, 1905) 3. Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) 4. Tethya papillosa (Thiele, 1905) 5. Mycale doellojuradoi (Burton, 1940)
6. Tethya melinka (Hajdu, Willenz & Lobo-Hajdu) in press. 7. Tedania mucosa (Thiele, 1905)
8. Tedania spinata (Ridley, 1881) 9. Clionaopsis platei (Thiele, 1905) 10. Myxilla araucana (Hajdu et al, in press)
11. Haliclona (Reniera) caduca (Desqueyroux- Faúndez, Carvalho & Willenz) in press. 12. Haliclona (Reniera) porcelana (Desqueyroux- Faùndez, Lôbo- Hajdu & Willenz) in
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13. Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis (Thiele, 1905) 14. Halicnemia papillosa (Thiele, 1905)
15. Haliclona (Soestella) auletta (Thiele, 1905) 16. Sycon sp. (Risso, 1826)
17. Acarnus sp. (Gray, 1867)
18. Familia Hymedesmiidae (Topsen, 1928) 19. Familia Niphatidae (Van Soest, 1980) 20. Familia Chondrillidae (Gray 1872)
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Tabla 1: Especies encontradas, indicando la fecha y profundidad a la cual se encontraron.
Especie Autor
5m 10m 20m
Mayo Septiembre Mayo Septiembre Mayo Septiembre
1. Cliona chilensis (Thiele, 1905) x x x x x x
2. Axinella crinita (Thiele, 1905) x x
3. Leucosolenia lucasi (Dendy, 1891) x
4. Tethya papillosa (Thiele, 1905) x x x x
5. Mycale doellojuradoi (Burton, 1940) x
6. Tethya melinka sp. nov.
(Hajdu, Willenz & Lobo-Hajdu)
in press. x
7. Tedania mucosa (Thiele, 1905) x x x
8. Tedania spinata (Ridley, 1881) x
9. Clionaopsis platei (Thiele, 1905) x
10. Myxilla araucana
(Hajdu et al, in
press) x x
11.Haliclona (Reniera) caduca
(Desqueyroux- Faúndez, Carvalho & Willenz sp. nov.) in press. x 12. Haliclona (Reniera) porcelana (Desqueyroux- Faùndez, Lôbo- Hajdu & Willenz sp. nov.) in press. x 13. Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis (Thiele, 1905) x
14. Halicnemia papillosa (Thiele, 1905) x x X
15. Haliclona (Soestella)
auletta (Thiele, 1905) x
16. Sycon (Risso, 1826 x
17. Acarnus sp. (Gray, 1867) x
18. Familia Hymedesmiidae (Topsen, 1928) x
19. Familia Niphatidae (Van Soest, 1980) x
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En relación a las fechas de muestreo, se encontró que Cliona chilensis, Axinella crinita, Tethya
papillosa, Tedania mucosa, Myxilla araucana y Halicnemia papillosa estaban presentes en los
dos meses distintos de muestreo (mayo y septiembre), en donde Cliona chilensis fue la única que se encontró en las tres profundidades muestreadas (5, 10 y 20 m), Axinella crinita se encontró solo a 20m, Tethya papillosa fue encontrada a 5 y 10m, Tedania mucosa fue encontrada a 10m en el mes de mayo y a 5 y 10m en el mes de septiembre, Myxilla araucana fue encontrada a 5m metros en el mes de mayo y a 10m en el mes de septiembre, Halicnemia papillosa fue encontrada a 20m en el mes de mayo y a 10 y 20m en el mes de septiembre. Las especies encontradas solo en el mes de mayo fueron Leucosolenia lucasi a 5m, Mycalle doellojuradoi a 10m, Tethya
melinka a 10m, Haliclona (Reniera) caduca a 10m, Haliclona (Reniera) porcelana a 10m, Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis a 20m, Acarnus sp. a 20m, Sycon a 10m, Hymedesmia sp. a
20m, Haliclona (Soestella) auletta a 20m, Familia Niphatidae a 5m y la Familia Chondrillidae a 5m. Las especies encontradas solo en el mes de septiembre fueron Tedania spinata a 10m y
Clionaopsis platei a 20m de profundidad. A continuación se presentan las especies encontradas
en una ficha completa, que contiene la taxonomía, sinónimos, nombre común, descripción general de la especie obtenida de la literatura, distribución, espículas y observaciones personales que corresponden a datos obtenidos en el momento de muestreo.
28
Cliona chilensis
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Hadromerida (Topsent, 1894)
Familia Clionaidae (D´Orbingny, 1851)
Sinónimos: Pseudosuberites pseudo (Dickinson, 1945)
Nombre común: Esponja zapallo perforadora
Descripción General: Grande; mayoritariamente globular. También formas finas costras con
papilas visibles o no, enterrándose en el sustrato, o cubren completamente fragmentos de sustrato calcáreo. Ósculos más bien grandes, conspicuos, con una corta membrana en forma de chimenea, o no visibles (probablemente contraídos). Superficie con abundantes pailas planas, redondeadas. Consistencia firme, ligeramente compresible y elástica. Color en vivo amarillo fuerte, con manchas púrpura o marrón debido a algas epibiónticas, que son más frecuentes sobre ejemplares grandes; color con etanol beige (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile 23°S- 44°S. Profundidad 10-30m (Willenz et al 2009).
Espículas: Megascleras: tilostilos (Fig. 7a) longitud 358 µm. Comparamos estos datos con los de
Willenz et al (2009) (Anexo 1), tilostilos longitud 270-549 μm, grosor 11-16μm.
Observaciones personales: Color en vivo Amarillo fuerte, al estar fijada en etanol adquiere un
color café, muy abundante en zona sur de Chile, ejemplares encontrado desde los 5 m hasta los 20 m, consistencia dura y rígida, con pequeñas prolongaciones regulares planas y redondas. Espículas, del tipo megascleras; tilostilos medidos hasta 350 μm.
29
Axinella crinita
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Halichondrida (Gray,1867)
Familia Axinellidae (Carter, 1875)
Nombre común: Esponja arbolito
Descripción General: Erecta, ramificada, frecuentemente más de 15 cm de alto. Ramas finas,
normalmente menos de 5 mm de grosor. Ósculos poco visibles. Superficie áspera o aterciopelada. Coloración en vivo amarillo claro; después de recolección y etanol, beige (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 40°S-54°S. Profundidad 10-150m (Willenz et al 2009); especímenes
encontrados a 20m.
Espículas: Megascleras: estilos de longitud 550 µm (Fig.8 a). Comparamos estos datos con los de
Willenz et al (2009) (Anexo 2) estilos longitud 340-1.037μm, ancho 6-26μm (Anexo. 2a); estilos más pequeños (Anexo. 2b-c) tiene pequeñas espinas sobre extremo agudo, longitud 145-466μm, ancho 6-22μm (Anexo. 2 d-e)
Observaciones personales: Rígida y ramificada, similar a ramas de los arboles, finas, superficie
áspera, irregularidades pequeñas; color en vivo blanco; y en etanol beige.
Figura 8: Axinella crinita; a) Estilos Fig. 1
30
Leucosolenia lucasi
(Dendy, 1891)
Clase Calcarea
Orden Leucosolenida (Hartman, 1958)
Familia Leucosoleniidae (Minchin, 1900)
Nombre común: Esponja chimenea traslúcida
Descripción General: Delicada, formada por tubos erectos asconoides (longitud 6-10 mm, diámetro
2-5 mm) conectados por un estolón. Ósculos sin borde, en parte terminal de los tubos. Superficie ligeramente híspida debido a diactinas protuberantes (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 42°S-43°S. Profundidad 8-12m (Willenz et al 2009); especímenes encontrados
a 5m.
Espículas: Megascleras: triactinas sagital (Fig. 9 a), espículas con tres radios, longitud de un radio
200μm; tetractina sagital (Fig. 9 b), espículas con cuatro radios, comparar con (Anexo 3)
Observaciones personales: se encontró en concha de gasterópodo, formada por pequeños tubos
conectados, color en vivo café claro, superficie suave.
31
Tethya papillosa
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Hadromerida (Topsent, 1894)
Familia Tethyidae (Gray, 1848)
Sinónimos: Donatia papillosa (Thiele, 1905)
Nombre común: Esponja bolita de queso común
Descripción General: Esférica. Ósculos no visibles. Superficie aterciopelada rugosa. Consistencia
compresible. Esponja se contrae después de recolección y manipulación. Color en vivo amarillo claro; color en etanol más claro (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 41°S- 43°S.Profundidad 10-18m (Willenz et al 2009). Especímenes
encontrados entre los 5-10m.
Espículas: Megascleras: Estilos (Fig. 10b) longitud 800 µm, microscleras: megásteres oxisferásteres
(Fig. 10 a). Comparamos estos datos con Willenz et al (2009) (Anexo 4) estilos longitud 400-1.500μm, ancho 5-24μm. Microscleras: megásteres y micrásteres. Megásteres son oxisferásteres Ø 42-50μm (Anexo 4 d). Micrásteres varían de acantostrongilásteres (Anexo 4e) a acantosferostrongilásteres (Anexo 4 f) o esferoxiásteres (Anexo 4 h) Ø 8-18μm.
Observaciones personales: De forma esférica, pequeña, superficie irregular, color en vivo amarillo
ambar; color en etanol amarillo claro.
32
Mycale doellojuradoi
(Burton, 1940)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Familia Mycalidae (Lundbeck, 1905)
Nombre común: Esponja de Doello Jurado
Descripción General: Masiva; cónico-tubular. Ósculo apical, 15 mm de diámetro. Superficie casi
lisa a marcadamente irregular, con numerosas proyecciones conulosas. Superficie aterciopelada. Consistencia blanda, pero no frágil. Color en vivo amarillo claro a blanquecino; color en etanol gris (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 42°S-48°S. Profundidad 8-93m (Willenz et al 2009). Especímenes encontrados
a 10m.
Espículas: Megascleras: substilos (Fig. 11 b) longitud 385 µm. Microscleras anisoquelas grandes
longitud 51 µm. Comparamos estos datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 5) substilos (Anexo 5 a,b,c) longitud 373-433μm, ancho 4-10μm. Microscleras anisoquelas grandes longitud 50-58μm (Anexo 5 d); intermedias longitud 30-40μm (Anexo 5 e); pequeñas longitud 17-24μm (Anexo 5 f).
Observaciones personales: superficie irregular, con algunas proyecciones, consistencia blanda y
firme, color en vivo amarillo ámbar, color en etanol café.
33
Tethya melinka
(Hajdu, Willenz & Lobo-Hajdu sp. nov.)
Clase Demospongiae
Orden Hadromerida (Topsent, 1894)
Familia Tethyidae (Gray, 1848)
Nombre común: Esponja bolita de queso de Melinka
Descripción General: Esférica a semiesférica. Ósculos no visibles. Superficie ligera a
marcadamente conulosa, (cónulos a menudo de aspecto globular). Consistencia compresible. Esponja se arruga después de recolección y manipulación (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile 44°S. Profundidad 10-16m (Willenz et al 2009). Especímenes encontrados a
10m.
Espículas: Microscleras: Oxisferásteres (Fig. 12 a), acantostrongilásteres pequeños (Fig.12 b).
Comparamos estos datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 6) Megascleras: estilos longitud 231-1.210μm y ancho 2,5-19μm (Anexo 6 a, b, c). Microscleras: megásteres y micrásteres. Megásteres son oxisferásteres, lisos, en una categoría de tamaño Ø 15-57μm (Anexo 6 d, e). Micrásteres son acantostrongilásteres, en 3 categoías de tamaño: grandes, al interior del coanosoma, Ø 29-32μm (Anexo 6 f); medianos, Ø 10-14,5μm (Anexo 6 g); pequeños, Ø 8,5-9μm (Anexo 6 h, i).
Observaciones personales: Forma esférica, superficie lisa con pequeñas protuberancias,
consistencia más bien dura, color en vivo amarillo anaranjado con pequeñas tonalidades café.
34
Tedania mucosa
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Familia Tedaniidae (Ridley & Dendy, 1886)
Sinónimos: Tedania excavata (Thiele, 1905)
Tedania fuegiensis (Thiele, 1905)
Tedania pectinicola (Thiele, 1905)
Nombre común: Esponja de fuego mucoso (esponja viscosa de fuego)
Descripción General: Masiva; con proyecciones cortas lobuladas (~ 1 cm) o largas digitadas (~ 5
cm), generalmente con ósculos apicales relativamente grandes. Superficie aterciopelada. Consistencia dura y friable. Color en vivo amarillo rojizo o beige; color en etanol tonos beige (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 32°S-55°S. Profundidad 10-31m (Willenz et al 2009). Especímenes
encontrados a 5 y 10m.
Espículas: Megascleras: Estilo (Fig. 13a), longitud 280 µm. Comparamos estos datos con los de
Willenz et al (2009) (Anexo 7) tornotes ectosómicos longitud 169-230μm, ancho 3-8μm (Anexo 7 a, b, c); estilos rectos o ligeramente curvado, longitud 220-350μm, ancho 5-19μm (Anexo 7 d, e, f). Microscleras: oniquetas, en 2 categorías: grandes, longitud 135-295μm (Anexo 7 g, h, i); pequeñas longitud 43-104μm (Anexo 7 j, k, l).
Observaciones personales: Grande, consistencia dura y resistente, con proyecciones cortas y
lobuladas, distinguible claramente los ósculos. Color en vivo beige o café claro; color en etanol café claro.
35
Tedania spinata
(Ridley, 1881)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Familia Tedaniidae (Ridley & Dendy, 1886)
Sinónimos: Oxytedania bifaria (Sará, 1978)
Tedania corticata (Sará, 1978)
Tedania laminariae (Sará, 1978)
Tedania murdochi (Topsent, 1913)
Nombre común: Esponja de fuego mucoso (esponja viscosa de fuego)
Descripción General: Masiva; forma un estrato fino sobre ostiones, o presenta proyecciones
lobuladas (~ 3-4 cm altura), generalmente con ósculos apicales relativamente pequeños. Consistencia dura y friable. Superficie aterciopelada. Color en vivo beige o marrón purpúreo oscuro; color en etanol diferentes tonos de beige (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 39°S-50°S. Profundidad 14-19m (Willenz et al 2009). Especímenes
encontrados a 10m.
Espículas: Megascleras: Estilos o subtilostilos longitud 240 µm (Fig. 14 a). Comparamos estos
datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo 8) tornotes ectosómiccos, lisos, longitud 153-244μm, ancho 3-5,5μm (Anexo 8 a, b, c); estilos o subtilostilos, rectos o ligeramente curvados, lisos, longitud 182-344μm, ancho 3-8,5μm (Anexo 8 d, e, f). Microscleras: oniquetas categorías: grandes, longitud 119-239μm (Anexo 8 g, h, i); pequeñas, longitud 42-68μm (Anexo 8 j, k, l).
Observaciones personales: Grande, consistencia dura y resistente, con proyecciones cortas y
lobuladas, distinguible claramente los ósculos. Color en vivo morado oscuro; color en etanol morado.
36
Clionaopsis platei
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Hadromerida (Topsent, 1894)
Familia Clionidae (D´Orbigny, 1851)
Sinónimos: Clionopsis platei (Thiele, 1905)
Nombre común: Esponja de zapallo falso
Descripción General: Grande; generalmente globular. Ósculos grandes; conspicuos, con corta
membrana en forma de chimenea, o no visible. Superficie con abundantes papilas planas, redondeadas, orificios inhalantes claramente visibles en ejemplares vivos. Consistencia dura, ligeramente compresible, elástica. Color en vivo amarillo oscuro, con manchas púrpura o marrón debido a la presencia de algas epibiónticas; color en etanol beige (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 23°S-44°S. Profundidad 0-32m (Willenz et al 2009). Especímenes encontrados
a 20m.
Espículas: Megascleras: oxas lisas, longitud 450µm (Fig. 15 b). Microscleras: espirásteres corto y
macizo (Fig. 15 a), longitud 25µm. Comparamos estos datos con los de Willenz et al (2009) (Anexo
9) megascleras: oxas lisas, longitud 340-530μm, ancho 8-32μm (Anexo 9 a, b); tilostilos longitud
220-350μm, ancho 5-21μm (Anexo 9 c). Microscleras: espirásteres grandes y finos, longitud 40-80μm, ancho 8-10μm (Anexo 9 d, e); espirásteres cortos y macizos, longitud 20-30μm, ancho 10-20μm (Anexo 9 f, g, h).
Observaciones personales: Grande, superficie con papilas planas, consistencia dura y ligeramente
compresible. Color en vivo amarillo con manchas café, color en etanol café claro. Esta especie es fácilmente confundible con Clionaa chilensis al verlas a simple vista, es por eso que es muy necesario hacer un análisis de las espículas para una mejor identificación.
37
Myxilla araucana
(Hajdu et al., in press)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Suborden Myxillina
Familia Myxillidae (Dendy, 1922)
Nombre común: Esponja miga de pan araucana
Descripción General: Esponja erecta; ligeramente cónica, cónica invertida o fusiforme con
profundos surcos longitudinales. Ósculos 3-5mm de diámetro; apicales ocasionalmente con pequeña membrana perioscular. Superficie lisa, consistencia blanda. Color en vivo amarillo claro blanquecino; en etanol beige (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 42°S-44°S, hábitat; sustrato rocoso inclinado, profundidad 15-23m (Willenz et
al 2009) individuos encontrados a 5m.
Espículas: Megascleras: estilos longitud 418µm (Fig. 16 a). Comparamos estos datos con los de
Willenz et al (2009) (Anexo 10) Megascleras: estilos rectos o ligeramente curvados, lisos, longitud 410-425μm, ancho 14-17μm (Anexo 10 a); Subtilotes, ectosómicos, longitud 195-245μm, ancho 9-16μm (Anexo 10 b, c, d); acantostilos espinados, finos, longitud 62-165μm, ancho 4-12μm (Anexo 10 e, f, g). Microscleras: isoquelas ancoradas, longitud 54-65μm (Anexo 10 h, i).
Observaciones personales: Tamaño grande, superficie lisa, consistencia blanda, color en vivo
amarillo claro y en etanol beige.
38
Haliclona (Reniera) caduca
(Desqueyroux- Faúndez, Carvalho &
Willenz sp.nov.) in press
Clase Demospongiae
Orden Haplosclerida (Topsent, 1928)
Familia Chalinidae (Gray, 1867)
Nombre común: Esponja de nube beige.
Descripción General: Lobulada; base masivamente incrustante; 8-10 cm de diámetro; 10-11
lóbulos; 5-6cm altura. Cada lóbulo porta un ósculo apical coronado por una corta membrana en chimenea. Superficie lisa. Consistencia muy blanda, frágil. Color en vivo blanquecino a rosa; en etanol beige claro (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 42°S-43°S; profundidad 13m (Willenz et al 2009), individuos encontrados a
5m de profundidad.
Espículas: Megascleras: oxas (Fig. 17 a), longitud 95µm. Comparamos estos datos con los de
Willenz et al (2009) (Anexo 11) Megascleras: oxas, fusiformes, ligeramente curvadas, con puntas romas, longitud 85-113μm, ancho 5-10μm (Anexo 11 a).
Observaciones personales: Pequeña, superficie lisa, consistencia blanda, color en vivo rosado y en
etanol beige.
39
Haliclona (Reniera) porcelana
(Desqueyroux- Faúndez,
Lôbo-Hajdu & Willenz sp.nov.) in press
Clase Demospongiae
Orden Haplosclerida (Topsent, 1928)
Familia Chalinidae (Gray, 1867)
Nombre común: Esponja violeta blanda
Descripción General: Base finamente incrustante; con lóbulos cortos (5-10mm altura), digitados,
casi siempre cilíndricos. Lóbulos distribuidos irregularmente, con ósculo apical de igual diámetro que el lóbulo. Superficie regular, lisa. Consistencia muy blanda y frágil. Color en vivo violeta a rosa; en etanol gris claro (Willenz et al 2009).
Distribución: Chile: 42°S-43°S, profundidad 5-18 m (Willenz et al 2009), individuos encontrados a
5 m.
Espículas: Megascleras: oxas, longitud 145µm. Comparamos estos datos con los de Willenz et al
(2009) (Anexo 12) Megascleras: oxas, ligeramente curvadas, con puntas agudas, longitud 120-173μm, ancho 5-10μm (Fig. 18 a).
Observaciones personales: Superficie lisa, consistencia blanda, pequeña, color en vivo rosado y en
etanol gris.
40
Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Suborden Myxillina
Familia Myxillidae (Dendy, 1922)
Sinónimos: Ectomyxilla chilensis (Thiele, 1905)
Ectyomyxilla chilensis (Thiele, 1905)
Myxilla chilensis (Thiele, 1905)
Descripción General: Con numerosas verrugas planas en la superficie, a veces en pequeños grupos,
la mayoría un poco más grande de 1-2mm. Los diámetros de sus ósculos es de un poco más de 1mm (Thiele 1905).
Distribución: Chile, 44°S (Thiele 1905)
Espículas: Megascleras: Acantostilos longitud 185 µm (Fig.19 a), tornotes longitud 178 µm
(Fig.19b). Microscleras: Sigmas 45µm de largo (Fig. 19c), isochela 27µm de largo (Fig. 19d). Comparamos estos datos con Thiele (1905) Megascleras; Acantoestilos 170-200 μm de longitud y 10-12μm de ancho. Tornotes ligeramente fusiformes 170-190 μm de largo y 7,6μm de ancho. Microscleras; Sigmas 45-47μm de largo y 2,3μm de ancho. Isochela la más pequeña es de 12-15μm de largo, la más grande es de aproximadamente 2 veces mayor de 25-35μm de largo.
Observaciones personales: Tamaño mediano, consistencia blanda y esponjosa, ósculos
distinguibles, color en vivo blanquecino con manchas amarillas, color en etanol gris.
41
Halicnemia papillosa
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Halichondria
Familia Heteroxyidae
Sinónimos: Higginsia papillosa (Thiele, 1905)
Descripción General: Porosa y áspera, con grandes agujeros de diferentes tamaños, forma ovoide,
el diámetro de sus ósculos es por lo general inferior a 1mm, color en vivo amarillo claro. (Thiele, 1905)
Distribución: Chile 44°S; profundidad 30m (Thiele, 1905) individuos encontrados a 10 y 20m. Espículas: Megascleras: Estilos longitud 1,3mm (Fig. 20 a). Microscleras: gedornte tornotes
longitud 140 µm (Fig. 20 b). Comparamos estos datos con Thiele (1905) Megascleras; Estilos miden mas de 1,5mm de largo y Amphioxes que son mucho más delgados que los estilos, solo 5,6μ de ancho y su longitud es de 1mm. Microscleras; gedornte tornotes miden entre 100 a 170 μ de longitud.
Observaciones personales: Con grandes poros, en tamaños diversos, consistencia blanda, color en
vivo blanco invierno, color en etanol gris.
42
Haliclona (soestella) auletta
(Thiele, 1905)
Clase Demospongiae
Orden Haplosclerida (Topsent, 1928)
Familia Chalinidae (Gray, 1867)
Haliclona (Soestella) auletta (Thiele, 1905)
Sinónimos: Haliclona auletta (Thiele, 1905)
Reniera auletta (Thiele, 1905)
Descripción General: Esponja tubular, ramificada, cada tubo de diferente ancho y largo,
ligeramente curvas e irregulares. (Thiele, 1905)
Distribución: Chile 44°S Calbuco.
Espículas: Megascleras: Tornotes 148 µm de largo (Fig. 21 a). Comparamos estos datos con Thiele
(1905) Tornotes: 150µ de largo y 11µ de ancho.
Observaciones personales: Esponja blanda, tubular, de color en vivo blanco y en etanol beige.
Ósculos muy visibles e identificables.
43
Acarnus
sp.
(Gray, 1867)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Familia Acarnidae
Descripción General: Esponja incrustante, tamaño pequeño, superficie lisa, consistencia blanda y
pegajosa, color en vivo naranjo y en alcohol marrón.
Distribución: Chile: 44°S, individuos encontrados a 20m
Espículas: Megascleras: Acantoestilos (Fig. 22 a); Cladotylotes (Fig. 22 c); Toxa acolada (Fig. 22
d). Microsclera: Chela (Fig. 22 b)
Observaciones personales: Superficie lisa, consistencia blanda, color en vivo naranjo fuerte y en
etanol granate.
44
Sycon sp
(Risso, 1826)
Clase Calcarea
Subclase Calcaronea
Orden Leucosoleniida
Familia Sycettidae
Sinónimos:
Dunstervillia
(Bowerbank, 1845)
Homoderma
(Lendenfeld, 1885)
Leuckartea
(Haeckel, 1872)
Scypha
(Gray, 1821)
Streptoconus
(Jenkin, 1908)
Sycarium
(Haeckel, 1869)
Sycocystis
(Haeckel, 1870)
Syconella
(Schmidt, 1868)
Sycortis
(Haeckel, 1872)
Sycum
(Agassiz, 1846)
Tenthrenodes
(Jenkin, 1908)
Descripción General: Esponja cilíndrica, de consistencia delicada, con forma de jarrón, áspera y
que parece fijada al sustrato por un delgado peciolo. Alcanza hasta 5cm de alto y 7.5mm de diámetro. Un único ósculo terminal, rodeado a menudo por una corona de espinas. Esqueleto formado por triactinas, tetractinas y oxas. Color cremoso, amarillento, grisáceo y blanquecino. Se encuentra sobre rocas, conchas y estipes de macroalgas. Desde el intermareal hasta los 100m de profundidad.
Distribución: Desde las islas británicas al mediterráneo Espículas: Megascleras: Triactinas (Fig. 23 a)
Observaciones personales: Forma tubular, consistencia blanda, tamaño pequeño, color en vivo
blanco invierno, color en etanol gris.
45
Familia Hymedesmiidae
(Topsen, 1928)
Clase Demospongiae
Orden Poecilosclerida (Topsent, 1928)
Familia Hymedesmiidae (Topsent, 1928)
Descripción General: Especie que forma pequeñas placas incrustantes, con pequeñas
irregularidades y protuberancias, consistencia blanda, color en vivo naranjo y en alcohol marrón.
Distribución: Chile: 44°S, individuos encontrados a 20m.
Espículas: Megascleras: Acantostilos (Fig. 24 a). Microscleras: sigmas e isoquetas
Observaciones personales: Pequeña, superficie irregular, consistencia blanda, color en vivo
anaranjado y en etanol granate.
46
Familia Niphatidae
(Van Soest, 1980)
Clase Demospongiae
Orden Haplosclerida (Topsent, 1928)
Suborden Haplosclerina
Descripción General: Haplosclerida con formas de crecimiento incrustante y masivo, en forma de
abanico, vaso o ramificada. Esqueleto ectosomal se compone de densas multiespiculas, en tres dimensiones, por lo general más compacto que el esqueleto coanosomal. Color en vivo café claro y en etanol café oscuro. (Desqueyroux-Faúndez & Valentine, 2002a.)
Distribución: La mayoría de las especies son tropicales o subtropicales. (Van Soest, 1980), especies
encontradas a 5 m de profundidad.
Espículas: Megascleras: oxas (Fig. 25 a) en dos formas strongylote y stylote.
Observaciones personales: Forma irregular, consistencia blanda, superficie lisa, color en vivo café
claro y en etanol café oscuro.
47
Familia Chondrillidae
(Gray, 1872)
Clase Demospongiae
Orden Chondrosida (Boury-Esnault & Lopès, 1985)
Descripción General: Orden Chondrosida (anteriormente asignada al orden Hadromerida). Masivas
esponjas incrustantes firmes, suaves, resistentes y flexibles. Superficie lisa y brillante, color en vivo beige y en etanol café.
Distribución: Chile: 44°S, individuos encontrados a 5m. Espículas: No se logro la identificación de las espiculas.
Observaciones personales: Esponja blanda, color en vivo café, ósculos no distinguibles a simple
vista. Muestra encontrada sobre un mitílido.
48
6.2) Identificación de especie, no descrita por otros autores.
Se encontró una especie, no descrita para esta zona. Su descripción se encuentra solo hasta las costas de Perú. Esta especie es Acarnus sp. (Figura 22) la cual es una esponja de tipo incrustante, de tamaño pequeño, con una superficie bastante lisa, de un color naranjo intenso. Acarnus sp. pertenece a la Familia Acarnidae y una de sus mayores características es que presenta diferentes tipos de espículas de variados tamaños y formas, entre los que encontramos megascleras (Acantostilos, Cladotylotes, Toxa) y microscleras (Chelas).
6.3) Cobertura y diversidad de esponjas en las tres distintas profundidades.
6.3.1) Cobertura por Foto-cuadrantes.
El análisis de las fotografías permitió estimar la cobertura de las esponjas marinas en las dos fechas de muestreo. En el mes de mayo (Tabla 2), la cobertura promedio tuvo su máximo de 1,26 ± 2,54% a los 10m de profundidad, a los 5m de profundidad la cobertura promedio fue de 0,45 ±1,93% y a los 20m la cobertura promedio fue de 0,90 ±2,39% con respecto al mes de septiembre los datos obtenidos fueron (Tabla 3), la cobertura promedio tuvo su máximo de 1,67 ± 3,27% a los 20m de profundidad, a los 5m la cobertura promedio fue de 0,00±0,00% y a los 10m la cobertura promedio fue de 1,08% ±2,95%.
En relación a las otras especies que habitan en Caleta Yerbas buenas podemos decir que, en el mes de mayo (Tabla 4), del Phylum Mollusca la clase más abundante fue Gastropoda (Crepipatella sp.), la cual a las tres profundidades obtuvimos una cobertura de alrededor del
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44±25%, le siguen del Phylum Equinodermata la clase Echinoidea (Arbacia dufresni, Loxechinus
albus y Pseudechinus magellanicus) con un 11±9,0% aprox., en las tres profundidades y un tipo
de alga Rhodophyta con un 2,5±4,0% aprox. en las tres profundidades muestreadas. Esto nos indica que en esta zona el Phylum Porifera no es abundante y que las especies dominantes son gastropodos (Crepipatella sp), equinoídeos (Loxechinus albus) y asteroidea (Cosmasterias
lurida). En el mes de septiembre, las especies más abundantes siguen siendo las pertenecientes a
la Clase Gastropoda que alcanza un 57,7±15,0% a los 5m, 46,4±22,0% a los 10m y a los 20m con un 63,3±11,0%, Echinoidea llega a un 12,5±7,0% a los 5m y a un 7,4±8,0% a los 10m, disminuyendo bastante a los 20m alcanzando un 1,0±1,0% de cobertura.
En relación a las especies de esponjas más abundantes, encontramos que en el mes de mayo
(Tabla 5) Cliona chilensis se encuentra presente en las tres profundidades distintas siendo a 10m
donde alcanza una mayor cobertura con un 0,4±1,0%, Halicnemia papillosa domina los 5m de profundidad con un 0,39±1,9% , Tedania spinata se hace presente con un 0,45±1,4% a los 10m y un 0,2±1,0% a los 20m de profundidad, Clionaopsis platei aparece también a 10m con un
0,24±1,4% de cobertura y a 20m con un 0,24±1,4% de cobertura. En el mes de septiembre no se encuentran esponjas a 5m de profundidad, pero Tedania spinata domina los 10m con un 0,95±2,7%, y a los 20m encontramos Halicnemia papillosa con un 0,73±1,8%, Cliona chilensis con 0,3±1,9% y aparece Axinella crinita con un 0,02±0,1% de cobertura.
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Tabla 2: Porcentaje de Cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. n=40. (Mayo 2010)
Mayo
Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar
Error estándar
5 0,45 1,93 0,37
10 1,26 2,54 0,40
20 0,90 2,39 0,38
Tabla 3: Porcentaje de Cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas Buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. n=40. (Septiembre 2010)
Septiembre
Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar
Error estándar
5 0,00 0,00 0,00
10 1,08 2,95 0,47
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Tabla 4: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. Nótese que en la tabla se encuentran representadas los cuatro grupos más abundantes encontrados (Mayo y Septiembre 2010) n=40.
MAYO
Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar Error estándarSEPTIEM
BRE
Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar Error estándar Porifera Porifera 5 0,45 1,93 0,37 5 0,00 0,00 0,00 10 1,26 2,54 0,40 10 1,08 2,95 0,47 20 0,90 2,39 0,38 20 1,67 3,27 0,52 Echinoidea Echinoidea 5 12,45 13,59 2,62 5 12,52 7,56 1,20 10 8,25 4,62 0,73 10 7,43 8,17 1,29 20 11,51 11,44 1,81 20 1,01 1,33 0,21 Asteroidea Asteroidea 5 2,06 7,89 1,52 5 1,08 4,36 0,69 10 1,82 5,31 0,84 10 0,98 4,34 0,69 20 1,44 6,51 1,03 20 0,16 1,00 0,16 Gastropoda Gastropoda 5 43,73 27,72 5,34 5 57,77 15,58 2,46 10 43,47 24,54 3,88 10 46,45 22,82 3,61 20 43,26 25,82 4,08 20 63,31 11,93 1,89 Rhodophyta Rhodophyta 5 1,93 4,08 0,79 5 1,77 2,90 0,46 10 3,88 4,45 0,70 10 4,93 4,05 0,64 20 2,81 4,75 0,75 20 6,11 28,57 4,5252
Tabla 5: Porcentaje de cobertura media y desviación estándar en cada una de las profundidades
muestreadas en Caleta Yerbas buenas, utilizando una matriz de 10x10 puntos. Nótese que en la tabla se encuentran representadas las cuatro especies de esponjas más abundantes encontradas y también en el mes de septiembre se encontró la presencia de Axinella crinita y no de Clionaopsis platei como en el mes de mayo. (Mayo y Septiembre 2010) n=40.
MAYO
Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar ErrorSEPTIE
MBR
E
Profundidad (m) % de Cobertura (Media) Desviación estándar Error Halicnemia papillosa Halicnemia papillosa 5 0,37 1,92 0,37 5 0,00 0,00 0,00 10 0,00 0,00 0,00 10 0,00 0,00 0,00 20 0,25 1,58 0,25 20 0,73 1,80 0,28 Cliona chilensis Cliona chilensis 5 0,04 0,19 0,04 5 0,00 0,00 0,00 10 0,35 1,34 0,21 10 0,00 0,00 0,00 20 0,08 0,35 0,06 20 0,33 1,19 0,19 Clionaopsis platei Axinella crinita 5 0,00 0,00 0,00 5 0,00 0,00 0,00 10 0,24 1,49 0,24 10 0,00 0,00 0,00 20 0,24 1,49 0,24 20 0,025 0,16 0,03 Tedania spinata Tedania spinata 5 0,00 0,00 0,00 5 0,00 0,00 0,00 10 0,42 1,47 0,23 10 0,95 2,74 0,43 20 0,16 1,04 0,16 20 0,00 0,00 0,006.3.2) Presencia de esponjas en los videos.
El análisis de los Videos permitió estimar la presencia de las esponjas marinas en las tres profundidades de muestreo. A los 5 m de profundidad (Tabla 6), la presencia de esponjas fue de 4%, a los 10m de profundidad fue de 24,5% y a los 20m de profundidad la presencia fue de 48,5%. Estos resultados se obtuvieron de las 200 imágenes escogidas para cada una de las
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profundidades estudiadas, se calculó un porcentaje para cada categoría. Se quiso también ocupar el programa CPCe 3.6 para el análisis de la cobertura, pero esto no fue posible debido a que la calidad de las imágenes obtenidas de los videos no era óptima (Fig. 27).
Figura 27: Muestra la calidad de la imágenes obtenidas por medio de los videos. a) 5 m de profundidad;
b) 10m de profundidad y c) 20 m de profundidad.
Tabla 6: Muestra el porcentaje de presencia y ausencia de un total de 200 imágenes obtenidas por medio
de los videos
Profundidad (m) Hay esponja (A) No hay esponja (B) Presencia A (%) Ausencia B (%)
5 8 192 4% 96%
10 49 151 24,50% 75,50%
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6.4) Inclinación del substrato.
En relación a la presencia de esponjas marinas con la inclinación de su substrato, podemos decir que Cliona chilensis prefiere los substratos con una inclinación pequeña, todos los individuos encontrados estaban en substratos de entre 10º a 30º, Axinela crinita fue encontrada en substratos con inclinación de 40º a 45º; Leucosolenia lucasi, Tethya papillosa, Mycale doellojuradoi,
Clionaopsis platei, Myxilla araucana, Myxilla (ectyomyxilla) chilensis, prefieren substratos con
una pequeña inclinación todas ellas fueron encontradas en un substrato de 30º, Tedania mucosa y
Tedania spinata al parecer no son tan selectivas al momento de asentarse porque fueron
encontradas en substratos de entre 20º a 90º; Haliclona (Reniera) caduca y Haliclona (Reniera)
porcelana prefieren también substratos con una inclinación entre 10º a 40º; Halicnemomia papillosa fue encontrada en substratos de 10º, 20º y 40º; Haliclona (soestella) auletta y la especie de la Familia Chondrillidae fueron encontradas en substratos de 10º de inclinación; los
individuos de la Familia Hymedesmiidae y de la Familia Niphatidae fueron encontradas en substratos de 20º de inclinación.
