ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO
DE LOS ALIMENTOS
METODOLOGÍA ANALÍTICA OFICIAL
MICROORGANISMOS
INDICADORES
VOLUMEN
3
Este manual ha sido preparado por integrantes del Grupo Técnico de Microbiología de la RENALOA
COORDINACIÓN TÉCNICA:
- Nancy Passalacqua, CEPROCOR. Córdoba - Josefina Cabrera, INAL - ANMAT
REDACCIÓN:
- María Angélica Díaz. Departamento Laboratorio, Dirección Provincial de
Salud Ambiental (DSA), Trelew - Chubut
- María del Pilar Barrio. Departamento Laboratorio, Dirección Provincial de
Salud Ambiental (DSA), Trelew – Chubut
- Mariela E. Darré, Dirección de Bromatología - Chaco
- Marcela López. Laboratorio Regional Salud Ambiental, Cinco Saltos - Río
Negro
- Mariela Cofre. Laboratorio Regional Salud Ambiental, Villa Regina - Río
Negro
- Marina Susana Condorí. Laboratorio de la Dirección de Bromatología,
SIPROSA, Tucumán
- Daniela Lazarte. Laboratorio de la Dirección de Bromatología, SIPROSA,
Tucumán
- Verónica Trevisán. Instituto Biológico Tomás Perón, La Plata - Cecilia Peirano. Instituto Biológico Tomás Perón, La Plata - Carolina Del Bó. CEPROCOR. Córdoba
- Armando Luis Cañete. INAL - Posadas - María del Carmen Alcaide. INAL - ANMAT
REVISIÓN TÉCNICA:
- María Angélica Díaz. Departamento Laboratorio, Dirección Provincial de
Salud Ambiental (DSA), Trelew - Chubut
- María del Pilar Barrio. Departamento Laboratorio, Dirección Provincial de
Salud Ambiental (DSA), Trelew - Chubut
- Mariela E. Darré, Dirección de Bromatología - Chaco
- Marcela López. Laboratorio Regional Salud Ambiental Cinco Saltos - Río
Negro
- Mariela Cofre. Laboratorio Regional Salud Ambiental, Villa Regina - Río
Negro
- Armando Luis Cañete. INAL - Posadas
- Alina Rondini. Laboratorio de Alimentos Municipalidad de Córdoba. Córdoba - Marina Susana Condorí. Laboratorio de la Dirección de Bromatología,
SIPROSA, Tucumán
- Cecilia Peirano. Instituto Biológico Tomás Perón, La Plata
- Florencia Soledad Mazzeo. Laboratorio de Aguas y Alimentos , Dirección
Provincial de Bromatología, Neuquén
- Carolina Del Bó. CEPROCOR. Córdoba - Nancy Passalacqua. CEPROCOR. Córdoba - Josefina Cabrera Durango. INAL - ANMAT - María del Carmen Alcaide. INAL - ANMAT
REVISIÓN, EDITORIAL Y EDICIÓN:
INDICE
Microorganismos aerobios mesofilos. Generalidades. pág. 5 Método horizontal para el recuento de Microorganismos.
Parte I: Recuento de colonias a 30°C mediante la técnica de siembra en profundidad.
Procedimiento según International Standard Organization ISO 4833-1:2013.
pág. 8
Método horizontal para el recuento de Microorganismos. Parte II: Recuento de colonias a 30°C mediante la técnica de siembra en superficie.
Procedimiento según International Standard Organization ISO 4833-2:2013.
pág. 22
Recuento de aerobios mesófilos en muestras de alimentos. Técnica de recuento en placa.
Procedimiento según BAM, Capítulo 3, enero de 2001. pág. 43 Recuento de microorganismos aerobios mesófilos en
muestras de alimentos.
Técnica de Recuento en placa. Procedimiento según ICMSF – 2000.
pág. 60
Mohos y levaduras. Generalidades. pág. 75 Método horizontal para la enumeración de mohos y
levaduras.
Parte 2: Técnica de recuento en placa para productos con actividad de agua menor o igual a 0.95 .
Procedimiento según International Standard Organization ISO 21527-2:2008.
pág. 78
Recuento de unidades formadoras de colonias de Mohos y Levaduras en leche y productos de la leche.
Técnica de recuento en placa a 25ºC
Procedimiento según International Standard Organization ISO 6611:2004.
pág. 93
Recuento de mohos y levaduras muestras de alimentos. Técnica de recuento en placa.
Procedimiento según APHA 2001. Capítulo 20. pág. 116
Anaerobios Sulfito Reductores. Generalidades. pág. 131 Método Horizontal para el Recuento de bacterias sulfito
reductoras que crecen en anaerobiosis.
Procedimiento según International Standard Organization ISO 15213:2003.
Mi
croor
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A
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M
es
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os
Microorganismos
aerobios mesófilos
nismo
Microorganismos aerobios
mesófilos
1. GeneralidadesEn este grupo se incluyen todos los microorganismos, capaces de desarrollar en presencia de oxígeno a una temperatura comprendida entre 20°C y 45°C con una óptima entre 30ºC y 40ºC.
El recuento de microorganismos aerobios mesófilos, en condiciones establecidas, estima la microflora total sin especificar tipos de microorganismos.
Refleja la calidad sanitaria de los productos analizados, indicando además de las condiciones higiénicas de la materia prima, la forma como fueron manipulados durante su elaboración.
Un recuento bajo de aerobios mesófilos no implica o no asegura la ausencia de patógenos o sus toxinas, de la misma manera un recuento elevado no significa presencia de flora patógena. Ahora bien, salvo en alimentos obtenidos por fermentación, no son recomendables recuentos elevados.
Un recuento elevado puede significar:
- Excesiva contaminación de la materia prima.
- Deficiente manipulación durante el proceso de elaboración.
- La posibilidad de que existan patógenos, pues estos son mesófilos. - La inmediata alteración del producto.
En el uso o la interpretación del recuento de microorganismo aerobios mesofilos hay ciertos factores que deben ser tenidos en cuenta:
Este recuento es sólo de microorganismos vivos.
- La utilidad del indicador depende de la historia del producto y el
momento de la toma de muestra. En alimentos perecederos manipulados correctamente pueden desarrollar recuentos elevados y perder calidad si son almacenados por un período de tiempo prolongado. En este caso, el recuento no se encontraría elevado por la condición de higiene del producto, sino por la vida útil del mismo.
- Los procedimientos que sufre el alimento en su elaboración, por
ejemplo un proceso térmico, pueden enmascarar productos con altos recuentos o condiciones deficientes de higiene. Además, el almacenamiento prolongado en congelación o con pH bajo puede producir una disminución del recuento.
- El recuento de mesófilos nos indica las condiciones higiénico
- en otros productos que han sido madurados con bacterias (por
ejemplo quesos) o alimentos que dentro de su formulación tienen conservadores.
2. Referencias
(1) María del Rosario Pascual Anderson, 1992. Editorial Díaz de Santos, S.A., MADRID, España. Microbiología Alimentaria: Metodología Analítica para Alimentos y Bebidas.
(2) ICMSF. Microorganismos de los alimentos. Técnicas de análisis microbiológico. Volumen I - SEGUNDA EDICION. EDITORIAL ACRIBIA ZARAGOZA (España).
(3) Guía de Interpretación de Resultados Microbiológicos de Alimentos. Administración Nacional de Medicamentos, Alimentos y Tecnología Médica (ANMAT). Instituto Nacional de Alimentos (INAL).
Microorganismos
aerobios mesófilos
nismo
Método horizontal para el recuento
de Microorganismos
Parte I: Recuento de
colonias
a 30°C mediante
la técnica de siembra en profundidad
Procedimiento según
International Standard Organization ISO 4833-1:2013
1. OBJETIVO
El presente procedimiento tiene como objetivo describir la metodología llevada a cabo por el Laboratorio de Microbiología para realizar el recuento de microorganismos capaces de crecer y formar colonias en un medio sólido tras la incubación a 30°C.
2. ALCANCE
Este procedimiento se aplica para realizar un método horizontal para el recuento de microorganismos capaces de crecer y formar colonias en un medio sólido tras la incubación a 30°C.
El método resulta aplicable para:
a) Productos destinados al consumo humano y la alimentación animal;
b) Muestras ambientales de área de producción y manipulación de alimentos para consumo humano y alimentación animal.
Esta parte de la Norma ISO 4833 resulta aplicable para:
1) productos que requieran un recuento fiable cuando se especifica un límite de detección bajo (inferior a 102/g o 102/ml en el caso de muestras líquidas o inferior a 103/g para muestras sólidas); 2) productos en los que se espera la presencia de colonias
invasivas, que ocultan a las colonias de otros organismos. Por ejemplo es probable que la leche o los productos lácteos contengan Bacillus spp. invasivas.
La aplicabilidad de esta parte de la norma ISO 4833 para el análisis de ciertos alimentos fermentados para consumo humano y alimentación animal es limitada y pueden resultar más adecuados otros medios o condiciones de incubación diferentes. Sin embargo, este método se puede aplicar a tales productos, aunque es posible que los microorganismos predominantes en ellos no se detecten efectivamente.
Microorganismos
aerobios mesófilos
En algunas matrices el método descripto en esta parte de la Norma ISO 4833 puede proporcionar resultados diferentes de los obtenidos con el método descripto en la Norma ISO 4833-2.
Normas de referencia: Para la aplicación del presente
procedimiento son indispensables las normas citadas en el punto 5. Referencias.
3. DESARROLLO 3.1. Definiciones
Para el propósito de este documento:
Microorganismos: entidad de tamaño microscópico, que incluye bacterias, hongos, protozoos y virus.
Nota: para el propósito de esta parte de la norma, microorganismos son bacterias, levaduras y mohos capaces de formar colonias en el medio específico y en las condiciones de ensayo descriptas en el siguiente procedimiento.
3.2. Medios de cultivo, reactivos, materiales y equipos 3.2.1. Agua peptona bufferada (BPW)
3.2.2. Solución salina peptonada (SFP) 3.2.3. Agar Plate Count (PCA)
3.2.4 Agar para cubrir (AC), si es necesario ver 3.5.2.8. 3.2.5. Estufa de esterilización
3.2.6. Autoclave
3.2.7. Estufa de incubación: 30°C ± 1°C
3.2.8. Baño de agua o equipo similar capaz de mantener la temperatura entre 44°C y 47°C
3.2.9. Equipo contador de colonias (opcional) , por ejemplo, se puede utilizar un equipo compuesto por un sistema de iluminación sobre fondo negro, con lentes de aumento, capaces de aumentar cerca de 1,5x y un contador mecánico o digital
3.2.10. Peachímetro de exactitud 0.1 a 25°C ± 1°C 3.2.11. Equipo para mezclado (tipo stomacher) 3.2.12. Agitador mecánico (tipo vortex)
3.2.13. Placas de Petri de vidrio o plástico de 90 a 100 mm de diámetro
3.2.14. Pipetas de 1 ml de capacidad, graduadas con divisiones de 0.1 ml, clase A, o pipetas automáticas con tips estériles
3.2.15. Tubos de ensayo, frascos o botellas, de capacidad no mayor a 500 ml.
El método está basado en las siguientes etapas:
3.3.1. Preparación de la muestra, suspensión inicial y diluciones decimales sucesivas.
3.3.2. Siembra en placas utilizando el medio de cultivo específico y la cantidad de muestra apropiada, si el producto inicial es líquido o de una suspensión inicial para el caso de otros productos.
Se preparan otras placas bajo las mismas condiciones, utilizando diluciones decimales de la muestra o de la suspensión inicial.
3.3.3. Incubación aeróbica a 30°C por 72 h.
3.3.4. Cálculo del número de unidades formadoras de colonias (UFC) por mililitro (ml) o por gramo (g) de la muestra, a partir del número de colonias obtenidas en las placas que contienen menos de 300 colonias.
3.4. Muestreo
El plan de muestreo a utilizar está fuera del alcance de esta metodología.
3.5. Procedimiento
3.5.1. Preparación de la muestra, suspensión inicial y diluciones (ISO 6887-1:1999)
NOTA: Para este punto referir a la norma ISO 6887 – 1 y las normas específicas para el alimento en cuestión (ver punto 5. Referencias). 3.5.1.1. Suspensión inicial
En un frasco estéril o bolsa de plástico estéril pesar con una incertidumbre de medición de ± 5 % una cantidad de masa x g o medir con una incertidumbre de medición de ± 5 % un volumen x ml (como mínimo 10 g ó 10 ml a menos que se indique otra cantidad). Agregar una cantidad del diluyente igual a 9 x g ó 9 x ml (dilución 1/10) y homogeneizar entre 1 minuto a 3 minutos dependiendo del alimento.
La temperatura del diluyente debería ser aproximada a la temperatura ambiente, para evitar daños de los microorganismos por cambios bruscos.
NOTA: En algunos casos, particularmente para los productos muy viscosos o muy espesos, podría ser necesario agregar mayor cantidad de diluyente lo cual debe tenerse en cuenta en las operaciones subsiguientes y / o en la expresión de resultados.
3.5.1.2. Diluciones decimales
Transferir con una pipeta 1 ml (con una incertidumbre de medición de ± 5 %) de la suspensión inicial en un tubo con 9 ml del diluyente estéril.
Microorganismos
aerobios mesófilos
Para una óptima precisión no introducir la pipeta más de 1 cm en la suspensión inicial y evitar el contacto entre la pipeta que contiene el inóculo y el diluyente estéril.
Mezclar utilizando preferentemente un agitador mecánico durante 5 segundos a 10 segundos para obtener la dilución 10-2.
Si es necesario repetir esta operación a partir de la dilución 10-2 y diluciones sucesivas, utilizando en cada operación una nueva pipeta estéril para obtener las siguientes diluciones (10-3, 10-4, etc.). Se hacen las diluciones que sean necesarias para obtener un número apropiado de microorganismos para realizar el recuento (ver punto 3.5.3.).
3.5.1.3. Duración del procedimiento
El tiempo transcurrido entre el final de la preparación de la suspensión inicial y el instante en que el inóculo entra en contacto con el medio de cultivo no debe superar los 45 minutos, mientras que el lapso de tiempo límite entre la preparación de la suspensión inicial y el comienzo de la preparación de las diluciones decimales sucesivas es de 30 minutos.
NOTA: si la temperatura ambiente del laboratorio es muy alta estos dos lapsos de tiempo deben ser reducidos.
3.5.2. Inoculación e incubación
3.5.2.1. Transferir por medio de una pipeta estéril 1 ml de la muestra líquida, o 1 ml de la suspensión inicial en el caso de otros productos (dilución 10-1), en dos (2) placas de Petri estériles.
Si se preparan placas de más diluciones, se puede reducir a una placa por dilución.
3.5.2.2. Tomar otra placa de Petri estéril. Transferir utilizando otra pipeta estéril, 1 ml de la dilución 10-1 (productos líquidos) o 1 ml de la dilución 10-2 (otros productos).
3.5.2.3. Si es necesario, se repite el procedimiento con mayores diluciones, utilizando una pipeta estéril nueva para cada dilución decimal.
3.5.2.4. Si es apropiado y posible, se seleccionan solo las diluciones críticas para el paso de incubación (al menos dos diluciones decimales consecutivas), aquellas en las que se espera obtener recuentos entre 10 y 300 colonias por placa.
3.5.2.5. Se coloca entre 12 ml a 15 ml del agar PCA enfriado a 44°C - 47°C en cada placa de Petri, evitando verter directamente el medio sobre el inóculo. El tiempo trascurrido entre que se terminó de preparar la dilución inicial (o la dilución 10-1 si el producto es sólido) y el momento en que se agrega el agar a las placas no debe exceder los 45 min.
3.5.2.6. Se mezcla cuidadosamente el inóculo con el medio de cultivo por rotación suave de la placa de Petri.
3.5.2.7. Se colocan las tapas y se deja solidificar sobre una superficie horizontal fría, a temperatura ambiente.
3.5.2.8. Después de la completa solidificación del medio y solo en los casos en que se sospeche que la muestra contiene microorganismos cuyas colonias invaden la superficie del medio, verter 4 ml del agar para cubrir (AC) o agar PCA a 44°C - 47°C sobre la superficie del medio inoculado. Dejar solidificar de acuerdo a 3.5.2.7.
3.5.2.9. Se invierten las placas y se incuban en la estufa a 30°C ±1°C por 72 h ± 3 h.
NOTA: No apilar más de seis (6) placas. Las placas deben estar separadas unas de otras y de las paredes y techo de la estufa por lo menos por una distancia de 25 mm.
3.5.3. Recuento y selección de las colonias
3.5.3.1. Después de la incubación por el período especificado, seleccionar las placas que, de ser posible, tengan menos de 300 colonias. Contar las colonias, si es necesario utilizando el equipo contador de colonias. Examinar las placas bajo una luz tenue.
3.5.3.2. Es importante que las colonias diminutas sean incluidas en el recuento sin confundirlas con partículas insolubles o precipitado del alimento. Se examinan los objetos dudosos detenidamente, utilizando lentes de aumento si es necesario, para poder distinguir las colonias de otros materiales.
3.5.3.3. Las “colonias diseminadas” o dispuestas en rosario se
consideran como una colonia.
3.5.3.4. Si menos un cuarto (1/4) de la placa está cubierto por un crecimiento difuso o diseminado, se cuentan las colonias en la parte de la placa no afectada y se calcula el número correspondiente para la placa de Petri entera, deduciéndolo por extrapolación del número teórico que debería corresponder a la placa entera. Si hay sobrecrecimiento en un área superior a un cuarto de la placa, se rechaza este recuento.
3.5.5. Expresión de los resultados
Microorganismos
aerobios mesófilos
4. ANEXOS
ANEXO 1: Diagrama de flujo del procedimiento para recuento de Microorganismos aerobios mesófilos
Preparación de la muestra: x g de muestras + 9 x
ml del diluyente (dilución 1/10)
Recuento y selección de las colonias:
Seleccionar preferiblemente las placas que tienen menos de 300 colonias.
Se cuentan las colonias que se observan en cada placa y se calcula el número de unidades formadoras de
colonias presentes en 1 ml ó 1 g de muestra.
Expresión de resultados
Inoculación e incubación: transferir por duplicado 1
ml de las diluciones preparadas en placas de Petri. Si se siembra más de una dilución sembrar solo 1 placa por dilución (sembrar al menos 2 diluciones decimales
consecutivas).
Verter 12 ml -15 ml del agar PCA. Incubar a 30°C ± 1ºC, 72 h ± 3 h.
ANEXO 2: Medios de cultivos y reactivos 1. Agua peptona bufferada (BPW)
Peptona (enzimática) de caseína 10.0 g
Cloruro de sodio (NaCl) 5.0 g
Disodio hidrógeno fosfato dodecahidratado (Na2HPO4.12H2O) 9.0 g Potasio dihidrógeno fosfato (KH2PO4) 1.5 g
Agua destilada 1000 ml
Disolver los componentes en agua, si es necesario calentar. Ajustar el pH a 7.0 ± 0.2 a 25°C. Distribuir en frascos o tubos de acuerdo a las necesidades analíticas. Esterilizar a 121°C durante 15 minutos.
2. Solución salina peptonada (SFP)
Digesto enzimático de caseína 1.0 g
Cloruro de sodio 8.5 g
Agua destilada 1000 ml
Disolver los componentes en agua, si es necesario calentar. Ajustar el pH a 7.0 ± 0.2 a 25°C. Distribuir en frascos o tubos de acuerdo a las necesidades analíticas. Esterilizar a 121°C durante15 minutos.
3. Agar Plate Count (PCA)
Peptona (enzimática) de caseína 5.0 g
Extracto de levadura 2.5 g
Glucosa anhidra (C6H12O6) 1.0 g
Agar, en polvo o granulado 9 - 18 g
Agua destilada 1000 ml
Cuando se examinan productos lácteos, agregar 1.0 g de leche en polvo descremada por litro de medio de cultivo. La leche en polvo descremada debe estar libre de sustancias inhibidoras.
Disolver los componentes en agua, si es necesario calentar hasta la disolución completa del agar. Ajustar el pH si es necesario para obtener un valor después de la esterilización de 7.0 ± 0.2 a 25°C. Se distribuye en tubos, botellas u otros recipientes, volúmenes de medio de 12 ml a 15 ml. Para la conservación de volúmenes mayores se utilizan recipientes de hasta 500 ml de capacidad. Se esteriliza en autoclave a 121 ºC durante 15 minutos.
Microorganismos
aerobios mesófilos
Si el medio se utiliza inmediatamente, enfriar en un baño de agua a 44°C - 47ºC antes de su uso, si no, se deja solidificar y se mantiene a 5°C ± 3ºC no más de 3 meses, protegido de la luz, bajo condiciones en las cuales no se produzcan modificaciones en la composición y propiedades del medio.
Para su empleo, se funde el medio, se deja enfriar y se mantiene a 44°C - 47ºC en el baño de agua antes de su uso.
Usar el agar lo antes posible, este no debe ser retenido por más de 4 h en el baño de agua.
Control de calidad del medio de cultivo:
El agar Plate Count (PCA) es un medio no selectivo, usado en esta parte de la ISO 4833 para colocar en las placas. La productividad del medio debe ser testeada de acuerdo a ISO 11133.
Productividad:
Incubación: (30 ± 1) °C por (72 ± 3) h
Cepas control:
Escherichia coli WDCM 00013 o WDCM 00012 (World Data Centre for Microorganisms (WDCM))
Bacillus subtilis subsp. Spizizenii WDCM 0003
Staphylococcus aureus WDCM 00032 o WDCM 00034
Medio de
referencia: Agar Tripteína Soya
Método de
control: Cuantitativo
Criterio: Coeficiente de productividad: (PR)≥ 0,7
4. Agar para cubrir (AC)
Agar, en polvo o granulado 12 - 18 g
Agua destilada 1000 ml
Agregar el agar al agua y calentar hasta la disolución completa del agar. Ajustar el pH si es necesario para obtener un valor después de la esterilización de 7.0 ± 0.2 a 25°C.
Se distribuye en tubos, botellas u otros recipientes, volúmenes de 4 ml de medio. Para la conservación de volúmenes mayores se utilizan
recipientes de hasta 500 ml de capacidad. Se esteriliza en autoclave a 121ºC durante 15 minutos.
Si el medio se utiliza inmediatamente, enfriar en un baño de agua a 44°C - 47ºC antes de su uso, si no se deja solidificar y se mantiene a 5°C ± 3ºC no más de 3 meses, protegido de la luz, bajo condiciones en las cuales no se produzcan modificaciones en la composición y propiedades del medio.
Para su empleo, se funde el medio, se deja enfriar y se mantiene a 44°C - 47ºC en el baño de agua antes de su uso.
Microorganismos
aerobios mesófilos
ANEXO 3: Cálculo y expresión de los resultados (ISO 7218:2007)
1.1 Método de cálculo: caso general
Para que el recuento sea válido, se suele considerar necesario que el recuento de colonias se realice al menos en una placa que contenga un mínimo de 10 colonias.
El número de microorganismos N presentes en la muestra para análisis se calcula como la media corregida de dos diluciones consecutivas, utilizando la ecuación (1)
Donde:
∑C: es la suma de las colonias contadas en dos placas de las dos diluciones consecutivas, de las cuales al menos una contiene un mínimo de 10 colonias;
V: es el volumen de inóculo utilizado en cada placa, en mililitros;
d: es la dilución correspondiente a la primera dilución elegida (d = 1 cuando se utiliza el producto líquido sin diluir).
El resultado calculado se redondea a dos cifras significativas. Cuando se realiza esta operación:
- si la tercera cifra es inferior a 5, no se modifica la cifra anterior; - si la tercera cifra es igual o superior a 5, la cifra anterior se
incrementa en una unidad.
Preferiblemente el resultado se expresa como un número entre 1.0 y 9.9 multiplicado por la potencia de 10 adecuada, o como un número entero con dos cifras significativas.
El resultado se expresa como número de microorganismos N por
mililitro (para productos líquidos) o por gramo (para el resto de productos).
Ejemplo 1: El recuento ha proporcionado los siguientes resultados:
- Para la primera dilución escogida (10-2): 168 colonias; - Para la segunda dilución (10-3): 14 colonias.
= 168 + 14 = 182 = 16545 1 x 1,1 x 10-2 0,011
Redondeando el resultado como se indicó, el número de microorganismos es de 17.000 o 1.7 x 104 por mililitro o por gramo de producto.
NOTA: en caso de sembrar 0.1 ml V = 0.1 ml
1.2. Método de cálculo para recuento bajo: caso en el que una placa (muestra para análisis o suspensión inicial o primera dilución) contiene menos de 10 colonias
- Si la placa contiene menos de 10 colonias, pero como mínimo
4, el resultado se calcula siguiendo el caso general (1.1) y se expresa como: “el número estimado de microorganismos x por mililitro (productos líquidos) o por gramo (resto de productos)”.
- Si el resultado total oscila entre 1 y 3, la precisión del análisis
es demasiado baja y el resultado debe expresarse como: “hay microorganismos presentes, pero a un nivel inferior a (4xd) por gramo o ml”.
Ejemplo: Si la dilución inoculada es 10-1:
Hay microorganismos presentes, pero a un nivel inferior a 40 UFC/g ó ml
1.3. Método de cálculo para el caso en el que la placa (muestra para análisis, suspensión inicial o primera dilución) no contiene colonias
Si la placa que contiene la muestra para análisis (productos líquidos) o la suspensión inicial (resto de productos), o la primera dilución inoculada o escogida no contiene colonias, el resultado se expresa de la siguiente manera:
“Menos de 1/d microorganismos por mililitro” (productos líquidos) o “menos de 1/d microorganismos por gramo” (resto de los productos).
Donde d es el factor de dilución de la suspensión inicial, o la primera dilución inoculada o escogida (d = 100 = 1 cuando se inocula directamente la muestra para análisis).
Ejemplo:
- Si la dilución más concentrada sembrada fue: 10-1
Microorganismos
aerobios mesófilos
- Si la dilución más concentrada sembrada fue: 10-2
< 100 UFC /ml o g
1.4. Método de cálculo para el caso en el que la placa (muestra para análisis, suspensión inicial o primera dilución) contiene más de 300 colonias
Si el recuento de colonias en todas las placas de todas las diluciones es incontable, mayor a 300, el resultado se expresa de la siguiente manera:
“Más de 300/d microorganismos /g ó ml”
Donde d es la dilución correspondiente a la última dilución escogida. Ejemplo:
- Si la última dilución (más diluida) sembrada fue: 10-3
> 300.000 microorganismos / ml o g > 3x105 UFC/ml o g
ANEXO 4: FOTOS
1. Más de 300 UFC/ml
Microorganismos
aerobios mesófilos
ANEXO 5: REFERENCIAS
(1) International Standard Organization. ISO 4833-1: 2013. Microbiology of food chain. Horizontal method for the enumeration of microorganisms. Part 1: Colony count at 30°C by the pour plate technique.
NOTA: Las siguientes normas de referencias son indispensables para la aplicación del presente procedimiento. Para cada norma de referencia debe aplicarse la edición citada, en caso de no especificarse la misma, deberá aplicarse la última edición (incluyendo cualquier modificación).
IS0 6887-1, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 1: General rules for the preparation of the initial suspension and decimal dilutions
IS0 6887-2, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 2: Specific rules for the preparation of meat and meat products
IS0 6887-3, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 3: Specific rules for the preparation of fish and fishery products
IS0 6887-4, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 4: Specific rules for the preparation of products other than milk and milk products meat and meat products, and fish and fishery products
ISO 6887-5, Microbiology of food and animal feeding stuffs --
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 5: Specific rules for the preparation of milk and milk products
ISO 7218, Microbiology of food and animal feeding stuffs - General
requirements and guidance for microbiological examinations.
ISO 11133, Microbiology of food, animal feed and water -
Preparation, production, storage and performance testing of culture media
Método horizontal para el recuento
de Microorganismos
Parte II: Recuento de colonias a 30°C
mediante la técnica de siembra en superficie
Procedimiento según
International Standard Organization ISO 4833-2:2013
1. OBJETIVO
El presente procedimiento tiene como objetivo describir la metodología llevada a cabo por el Laboratorio de Microbiología para realizar el recuento de microorganismos capaces de crecer y formar colonias en un medio sólido tras la incubación a 30°C.
2. ALCANCE
Este procedimiento se aplica para realizar un método horizontal para el recuento de microorganismos capaces de crecer y formar colonias en un medio sólido tras la incubación a 30°C.
El método resulta aplicable para:
a) Productos destinados al consumo humano y la alimentación animal;
b) Muestras ambientales de área de producción y manipulación de alimentos para consumo humano y alimentación animal.
Esta parte de la Norma ISO 4833 resulta aplicable para:
1) Productos que contengan organismos sensibles al calor que puedan representar una proporción significativa de la flora total (por ejemplo organismos psicrótrofos alimentos refrigerados y congelados, alimentos desecados u otros alimentos que puedan contener organismos sensibles al calor);
2) Productos que contengan bacterias aerobias estrictas que puedan representar una proporción significativa de la flora total (por ejemplo Pseudomonas spp.);
3) Productos que contengan partículas pequeñas que puedan resultar difíciles de distinguir de las colonias en una placa sembrada en profundidad;
4) Productos cuyo color intenso impida el reconocimiento de las colonias en una placa en profundidad;
5) Productos en los que se requiera una distinción entre distintos tipos de colonias como parte de la garantía de la calidad alimentaria.
Microorganismos
aerobios mesófilos
Además de la técnica de siembra manual por extensión en placa, esta parte de la Norma ISO 4833 también describe el uso de un sembrador de placas en espiral, un método rápido para realizar el recuento de colonias en superficie (anexo 5).
La aplicabilidad de esta parte de la norma ISO 4833 al examen de ciertos alimentos fermentados para consumo humano y alimentación animal es limitada y pueden resultar más adecuados otros medios o condiciones de incubación diferentes. Sin embargo, este método se puede aplicar a tales productos, aunque es posible que los microorganismos predominantes en ellos no se detecten efectivamente.
En algunas matrices el método descripto en esta parte de la Norma ISO 4833 puede proporcionar resultados diferentes de los obtenidos con el método descripto en la Norma ISO 4833-1.
Normas de referencia: Para la aplicación del presente
procedimiento son indispensables las normas citadas en el punto 5. Referencias
3. DESARROLLO 3.1. Definiciones
Para el propósito de este documento:
Microorganismos: entidad de tamaño microscópico, que incluye bacterias, hongos, protozoos y virus.
Nota: para el propósito de esta parte de la norma, microorganismos son bacterias, levaduras y mohos capaces de formar colonias en el medio específico y en las condiciones de ensayo descriptas en el siguiente procedimiento.
3.2. Medios de cultivo, reactivos, materiales y equipos 3.2.1. Agua peptona bufferada (BPW);
3.2.2. Solución salina peptonada (SFP); 3.2.3. Agar Plate Count (PCA);
3.2.4. Estufa de esterilización; 3.2.5. Autoclave;
3.2.6. Cabina de secado o incubación, con ventilación por convección, para el secado de las placas, capaz de mantener la temperatura entre 37°C y 55°C, o cabina de flujo laminar;
3.2.7. Estufa de incubación: 30°C ± 1°C;
3.2.8. Baño de agua o equipo similar capaz de mantener la temperatura entre 47°C y 50°C;
3.2.9. Equipo contador de colonias (opcional), por ejemplo, se puede utilizar un equipo compuesto por un sistema de iluminación sobre fondo negro, con lentes de aumento, capaces de aumentar cerca de 1,5x y un contador mecánico o digital;
3.2.10. Peachímetro de exactitud 0.1 a 25°C ± 1°C; 3.2.11. Equipo para mezclado (tipo stomacher); 3.2.12. Agitador mecánico (tipo vortex);
3.2.13. Placas de Petri de vidrio o plástico de 90 a 100 mm de diámetro, o 140 mm;
3.2.14. Pipetas de 0.1 ml y 1 ml de capacidad nominal, graduadas, clase A, o pipetas automáticas con tips estériles (ISO 8655-2).
3.2.15. Tubos de ensayo, frascos o botellas, de capacidad no mayor a 500 ml.
3.2.16. Esparcidor/Espátula de vidrio, plástico o acero, estéril, para extender el inóculo sobre la superficie del medio de cultivo.
3.3. Principio (ver anexo 1)
El método está basado en las siguientes etapas:
3.3.1. Preparación de la muestra, suspensión inicial y diluciones decimales sucesivas.
3.3.2. Siembra de la cantidad de muestra apropiada si el producto inicial es líquido o de una suspensión inicial para el caso de otros productos en la superficie de placas, que contienen el medio de cultivo específico.
Se preparan otras placas bajo las mismas condiciones, utilizando diluciones decimales de la muestra o de la suspensión inicial.
3.3.3. Incubación aeróbica a 30°C por 72 h.
3.3.4. Cálculo del número de unidades formadoras de colonias (UFC) por mililitro (ml) o por gramo (g) de la muestra, a partir del número de colonias obtenidas en las placas que contienen menos de 300 colonias.
3.4. Muestreo
El plan de muestreo a utilizar está fuera del alcance de esta metodología.
3.5. Procedimiento
3.5.1. Preparación de la muestra, suspensión inicial y diluciones (ISO 6887-1:1999)
NOTA: Para este punto referir a la norma ISO 6887–1 y las normas específicas para el alimento en cuestión (ver punto 5. Referencias). 3.5.1.1. Suspensión inicial
Microorganismos
aerobios mesófilos
En un frasco estéril o bolsa de plástico estéril pesar con una incertidumbre de medición de ± 5 % una cantidad de masa x g o medir con una incertidumbre de medición de ± 5 % un volumen x ml (como mínimo 10 g ó 10 ml a menos que se indique otra cantidad). Agregar una cantidad del diluyente igual a 9 x g ó 9 x ml (dilución 1/10) y homogeneizar entre 1 minuto a 3 minutos dependiendo del alimento.
La temperatura del diluyente debería ser aproximada a la temperatura ambiente, para evitar daños de los microorganismos por cambios bruscos.
NOTA: En algunos casos, particularmente para los productos muy viscosos o muy espesos, podría ser necesario agregar mayor cantidad de diluyente lo cual debe tenerse en cuenta en las operaciones subsiguientes y / o en la expresión de resultados.
3.5.1.2. Diluciones decimales
Transferir con una pipeta 1 ml (con una incertidumbre de medición de ± 5 %) de la suspensión inicial en un tubo con 9 ml del diluyente estéril.
Para una óptima precisión no introducir la pipeta más de 1 cm en la suspensión inicial y evitar el contacto entre la pipeta que contiene el inóculo y el diluyente estéril.
Mezclar utilizando preferentemente un agitador mecánico durante 5 a 10 segundos para obtener la dilución 10-2.
Si es necesario repetir esta operación a partir de la dilución 10-2 y diluciones sucesivas, utilizando en cada operación una nueva pipeta estéril para obtener las siguientes diluciones (10-3, 10-4, etc.). Se hacen las diluciones que sean necesarias para obtener un número apropiado de microorganismos para realizar el recuento (ver punto 3.5.3.).
3.5.1.3. Duración del procedimiento
El tiempo transcurrido entre el final de la preparación de la suspensión inicial y el instante en el que se realiza la siembra no debe superar los 45 minutos, mientras que el lapso de tiempo límite entre la preparación de la suspensión inicial y el comienzo de la preparación de las diluciones decimales sucesivas es de 30 minutos.
NOTA: si la temperatura ambiente del laboratorio es muy alta estos dos lapsos de tiempo deben ser reducidos.
3.5.2. Inoculación e incubación
3.5.2.1. Transferir por medio de una pipeta estéril 0.1 ml de la muestra líquida, o 0.1 ml de la suspensión inicial en el caso de otros productos (dilución 10-1), al centro de dos (2) placas de Petri estériles preparadas de acuerdo al punto 3 del anexo 2.
Si se preparan placas de más diluciones, se puede reducir a una placa por dilución.
Para los productos en los que se espera obtener recuentos bajos, el límite de detección puede aumentarse por un factor de 10, si se siembra 1.0 ml de la muestra, si la muestra es líquida, o 1.0 ml de la suspensión inicial para otros productos, en placas de mayor tamaño (140 mm) o en la superficie de 3 (tres) placas de Petri pequeñas (90 mm). En ambos casos se preparan por duplicado, utilizando 2 (dos) placas grandes o 6 (seis) pequeñas.
3.5.2.2. Tomar otra placa de Petri preparada con el medio de cultivo. Transferir utilizando otra pipeta estéril, 0.1 ml de la dilución 10-1 (productos líquidos) o 0.1 ml de la dilución 10-2 (otros productos). 3.5.2.3. Si es necesario, se repite el procedimiento con mayores diluciones, utilizando una pipeta estéril nueva para cada dilución decimal.
3.5.2.4. Cuidadosamente extender el inóculo en forma uniforme y lo más rápido posible, sobre la superficie del agar, sin tocar las paredes de la placa de Petri con el esparcidor o espátula. Se puede utilizar el mismo esparcidor/espátula para todas las diluciones de la misma muestra, comenzando con la mayor dilución y progresando en orden hacia la dilución con mayor cantidad de la muestra o menos diluida. Se colocan las tapas y se dejan las placas a temperatura ambiente por 15 min para que el inóculo sea absorbido por el agar.
3.5.2.5. Se invierten las placas preparadas y se incuban en la estufa a 30°C ± 1°C por 72 h ± 3 h.
NOTA:
Para el uso del sembrador de placas en espiral ver anexo 5.
No apilar más de seis (6) placas. Las placas deben estar separadas unas de otras y de las paredes y techo de la estufa por lo menos por una distancia de 25 mm.
3.5.3. Recuento y selección de las colonias
3.5.3.1. Después de la incubación por el período especificado, seleccionar las placas que, de ser posible, tengan menos de 300 colonias. Contar las colonias, si es necesario utilizando el equipo contador de colonias. Examinar las placas bajo una luz tenue.
3.5.3.2. Es importante que las colonias diminutas sean incluidas en el recuento sin confundirlas con partículas insolubles o precipitado del
Microorganismos
aerobios mesófilos
alimento. Se examinan los objetos dudosos detenidamente, utilizando lentes de aumento si es necesario, para poder distinguir las colonias de otros materiales.
3.5.3.3. Las “colonias diseminadas” o dispuestas en rosario se
consideran como una colonia.
3.5.3.4. Si se espera el crecimiento de colonias invasivas, se examinan las placas a las 24 h o 48 h y se marcan las colonias visibles.
3.5.3.5. Si menos un cuarto (1/4) de la placa está cubierto por un crecimiento difuso o diseminado, se cuentan las colonias en la parte de la placa no afectada y se calcula el número correspondiente para la placa de Petri entera, deduciéndolo por extrapolación del número teórico que debería corresponder a la placa entera. Si hay sobrecrecimiento en un área superior a un cuarto de la placa, se rechaza este recuento.
3.5.5. Expresión de los resultados
4. ANEXOS
ANEXO 1: Diagrama de flujo del procedimiento para recuento de Microorganismos aerobios mesófilos
Inoculación e incubación:
1. Transferir por duplicado 0.1 ml de las diluciones preparadas en placas de Petri con agar PCA, si se siembra más de una dilución sembrar solo 1 placa por dilución (sembrar al menos 2 diluciones decimales consecutivas).
2. Para muestras con recuentos bajos sembrar 1.0 ml de la muestra o dilución en placas de mayor tamaño (140 mm) o en la superficie de 3 (tres) placas de Petri pequeñas (90mm) por duplicado. 3. Incubar a 30°C ± 1ºC, 72 h ± 3 h.
Recuento y selección de las colonias:
1. Seleccionar preferiblemente las placas que tienen menos de 300 colonias.
2. Se cuentan las colonias que se observan en cada placa y se calcula el número de unidades formadoras de colonias presentes en 1 ml ó 1 g de muestra
Expresión de resultados
Preparación de la muestra: x g de muestras + 9 x
Microorganismos
aerobios mesófilos
ANEXO 2: Medios de cultivos y reactivos 1. Agua peptona bufferada (BPW)
Peptona (enzimática) de caseína 10.0 g
Cloruro de sodio (NaCl) 5.0 g
Disodio hidrógeno fosfato dodecahidratado (Na2HPO4.12H2O) 9.0 g Potasio dihidrógeno fosfato (KH2PO4) 1.5 g
Agua destilada 1000 ml
Disolver los componentes en agua, si es necesario calentar. Ajustar el pH a 7.0 ± 0.2 a 25°C. Distribuir en frascos o tubos de acuerdo a las necesidades analíticas. Esterilizar a 121°C durante15 minutos.
2. Solución salina peptonada (SFP)
Digesto enzimático de caseína 1.0 g
Cloruro de sodio 8.5 g
Agua destilada 1000 ml
Disolver los componentes en agua, si es necesario calentar. Ajustar el pH a 7.0 ± 0.2 a 25°C. Distribuir en frascos o tubos de acuerdo a las necesidades analíticas. Esterilizar a 121°C durante15 minutos.
3. Agar Plate Count (PCA)
Peptona (enzimática) de caseína 5.0 g
Extracto de levadura 2.5 g
Glucosa anhidra (C6H12O6) 1.0 g
Agar, en polvo o granulado 9 - 18 g
Agua destilada 1000 ml
Cuando se examinan productos lácteos, agregar 1.0 g de leche en polvo descremada por litro de medio de cultivo. La leche en polvo descremada debe estar libre de sustancias inhibidoras.
Disolver los componentes en agua, si es necesario calentar hasta la disolución completa del agar. Ajustar el pH si es necesario para obtener un valor después de la esterilización de 7.0 ± 0.2 a 25°C. Se distribuye en tubos, botellas u otros recipientes, volúmenes de medio de 12 ml a 15 ml. Para la conservación de volúmenes mayores se utilizan recipientes de hasta 500 ml de capacidad. Se esteriliza en autoclave a 121ºC durante 15 minutos.
Si el medio se utiliza inmediatamente, enfriar en un baño de agua a 47°C - 50ºC antes de su uso, si no se deja solidificar y se mantiene a 5°C ± 3ºC, no más de 3 meses, protegido de la luz, bajo condiciones en las cuales no se produzcan modificaciones en la composición y propiedades del medio.
Para su empleo, se funde el medio, se deja enfriar y se mantiene a 47°C – 50ºC en el baño de agua antes de su uso.
Preparación de las placas:
Colocar 15 ml - 20 ml del medio en placas de Petri estériles y se deja solidificar.
Las placas preparadas se pueden conservar a 5°C ± 3°C hasta 4 semanas.
Inmediatamente antes de su uso, las placas se deben secar de acuerdo a ISO 11133.
Control de calidad del medio de cultivo:
El agar Plate Count (PCA) es un medio no selectivo, usado en esta parte de la ISO 4833 para colocar en las placas. La productividad del medio debe ser testeada de acuerdo a ISO 11133.
Productividad:
Incubación: (30±1) °C por (72±3) h
Cepas control:
Escherichia coli WDCM 00013 o WDCM 00012 (World Data Centre for Microorganisms (WDCM))
Bacillus subtilis subsp. Spizizenii WDCM 0003
Staphylococcus aureus WDCM 00032 o WDCM 00034
Medio de
referencia: Agar Tripteína Soya
Método de Control Cuantitativo
Microorganismos
aerobios mesófilos
ANEXO 3: Cálculo y expresión de los resultados (ISO 7218:2007)
1.1. Método de cálculo: caso general
Para que el recuento sea válido, se suele considerar necesario que el recuento de colonias se realice al menos en una placa que contenga un mínimo de 10 colonias.
El número de microorganismos N presentes en la muestra para análisis se calcula como la media corregida de dos diluciones consecutivas, utilizando la ecuación (1)
Donde:
∑C: es la suma de las colonias contadas en dos placas de las dos diluciones consecutivas, de las cuales al menos una contiene un mínimo de 10 colonias;
V: es el volumen de inóculo utilizado en cada placa, en mililitros;
d: es la dilución correspondiente a la primera dilución elegida (d = 1 cuando se utiliza el producto líquido sin diluir).
El resultado calculado se redondea a dos cifras significativas. Cuando se realiza esta operación:
- si la tercera cifra es inferior a 5, no se modifica la cifra anterior; - si la tercera cifra es igual o superior a 5, la cifra anterior se
incrementa en una unidad.
Preferiblemente el resultado se expresa como un número entre 1.0 y 9.9 multiplicado por la potencia de 10 adecuada, o como un número entero con dos cifras significativas.
El resultado se expresa como número de microorganismos N por
mililitro (para productos líquidos) o por gramo (para el resto de productos).
Ejemplo1: El recuento ha proporcionado los siguientes resultados:
- Para la primera dilución escogida (10-2): 168 colonias; - Para la segunda dilución (10-3): 14 colonias.
= 168 + 14 = 182 = 165454 0,1 x 1,1 x 10-2 0,0011
Redondeando el resultado como se indicó, el número de microorganismos es de 170000 o 1.7 x 105 por mililitro o por gramo de producto.
NOTA: en caso de sembrar 1 ml V = 1 ml
1.2. Método de cálculo para recuento bajo: caso en el que una placa (muestra para análisis o suspensión inicial o primera dilución) contiene menos de 10 colonias
- Si la placa contiene menos de 10 colonias, pero como mínimo
4, el resultado se calcula siguiendo el caso general (1.1) y se expresa como: “el número estimado de microorganismos x por mililitro (productos líquidos) o por gramo (resto de productos)”.
- Si el resultado total oscila entre 1 y 3, la precisión del análisis
es demasiado baja y el resultado debe expresarse como: “hay microorganismos presentes, pero a un nivel inferior a (4xd) por gramo o ml”.
Ejemplo:
Si la dilución inoculada es 10-1 y se sembró 1 ml: “Hay
microorganismos presentes, pero a un nivel inferior a 40 UFC/g ó ml”
Si la dilución inoculada es 10-1 y se sembró 0.1 ml: “Hay microorganismos presentes, pero a un nivel inferior a 400 UFC/g ó ml”
1.3. Método de cálculo para el caso en el que la placa (muestra para análisis, suspensión inicial o primera dilución) no contiene colonias
Si la placa que contiene la muestra para análisis (productos líquidos) o la suspensión inicial (resto de productos), o la primera dilución inoculada o escogida no contiene colonias, el resultado se expresa de la siguiente manera:
“Menos de 1/d microorganismos por mililitro” (productos líquidos) o “menos de 1/d microorganismos por gramo” (resto de los productos).
Donde d es el factor de dilución de la suspensión inicial, o la primera dilución inoculada o escogida (d = 100 = 1 cuando se inocula directamente la muestra para análisis).
Ejemplo:
- Si la dilución más concentrada sembrada fue 10-1 y se sembró
1 ml
Microorganismos
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- Si la dilución más concentrada sembrada fue 10-2 y se sembró
1 ml
< 100 UFC /ml o g
1.4. Método de cálculo para el caso en el que la placa (muestra para análisis, suspensión inicial o primera dilución) contiene más de 300 colonias
Si el recuento de colonias en todas las placas de todas las diluciones es incontable, mayor a 300, el resultado se expresa de la siguiente manera:
“Más de 300/d microorganismos /g ó ml”
Donde d es la dilución correspondiente a la última dilución escogida. Ejemplo:
- Si la última dilución (más diluida) sembrada fue 10-3 y se
sembró 1ml
> 300.000 microorganismos /ml o g > 3x105 UFC/ml o g
ANEXO 4: FOTOS
1. Más de 300 UFC/ml
Microorganismos
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ANEXO 5: Recuento de colonias en superficie utilizando un sembrador de placas en espiral
5.1. General
Este anexo especifica un método para el recuento de microorganismos presentes en alimentos, alimentos para animales y muestras ambientales utilizando un sembrador en espiral y el recuento de colonias que crecen sobre el medio sólido después de la incubación aeróbica (para una definición de microorganismo ver punto 3.1.).
5.2. Principio
5.2.1. La muestra, si es líquida, o la suspensión inicial en el caso de otros productos se deposita cuidadosamente sobre la superficie de una placa de agar rotativa en forma de un espiral de Arquímedes. 5.2.2. El volumen depositado disminuye mientras el sistema dispensador (aguja o microjeringas estériles descartables) se mueve del centro al borde de la placa, por lo que se establece una relación exponencial entre el volumen sembrado y el radio del espiral.
5.2.3. Durante la incubación, las colonias desarrollan a lo largo de las líneas donde fue depositada la muestra sobre el agar. La cuadrícula de recuento es calibrada para el volumen de muestra sembrado sobre las diferentes áreas del agar.
5.2.4. Se cuenta en un área determinada el número de colonias y se hacen los cálculos para obtener el recuento por gramo o mililitro de la muestra. Alternativamente, se puede utilizar para el recuento un sistema automático.
5.3. Medios de cultivo y diluyentes Ver punto 3.2. y anexo 2.
Las soluciones que se detallan a continuación se utilizan para la limpieza y descontaminación de las jeringas. Estas no son necesarias si se utiliza microjeringas estériles descartables.
5.3.1. Agua estéril: Se puede agregar 1% de polisorbato 80 si la muestra a sembrar contiene materia grasa.
5.3.2. Solución de hipoclorito de sodio: 5% de cloro libre 5.4. Equipos
Ver punto 3.2.
5.4.1. Sembrador de placas en espiral: Se ajusta para distribuir el volumen total de la muestra a sembrar, por ejemplo: 0.05 ml, 0.1 ml, 0.2 ml o 0.4 ml por placa. Generalmente incluye una trampa de vacío para el control de la carga, distribución de la muestra, disposición de los residuos de la misma y la limpieza y desinfección del sistema. La presión residual requerida es de 24 KPa a 35 KPa (160 mmHg a 260 mmHg).
5.4.2. Equipo contador de colonias: con una cuadrícula calibrada, relaciona el volumen de la muestra sembrada con áreas específicas del agar. Alternativamente se pueden utilizar sistemas automáticos de recuentos.
5.4.3. Vaso de precipitado de 5 ml, estéril, descartable: algunos modelos nuevos utilizan diferentes tamaños de vasos, particularmente para el lavado y desinfección.
5.4.4. Microjeringas estériles descartables: opcional
5.4.5. Placas de agar: preparadas de acuerdo al anexo 2. Es importante que las placas contengan la cantidad suficiente, profundidad uniforme y que la superficie del agar esté nivelada.
5.5. Muestreo
El plan de muestreo a utilizar está fuera del alcance de esta metodología.
5.6. Procedimiento
5.6.1. Preparación de la muestra, suspensión inicial y diluciones (ISO 6887-1:1999)
NOTA: Para este punto referir a la norma ISO 6887 – 1 y las normas específicas para el alimento en cuestión (ver punto 5. Referencias). En general, cuando se utiliza el sembrador en espiral no se necesitan diluciones de la muestra, o se necesitan pocas.
Transferir, utilizando una pipeta estéril, 3 ml o 5 ml del homogenizado de la muestra a un vaso de precipitado de 5 ml descartable estéril.
Si es necesario, se deja la muestra en reposo por unos minutos antes de remover la porción de líquido del sobrenadante para el plaqueo en espiral, debido a que la presencia de partículas puede obstruir los tubos del sistema. Si es frecuente la obstrucción de los mismos, se recomienda el uso de bolsas de plástico estériles con filtro para la preparación de la suspensión inicial en muestras que no son líquidas. 5.6.2. Preparación del sembrador en espiral
Ver ISO 7218.
a) Programar el equipo de acuerdo a las instrucciones del fabricante, si es necesario ajustar.
b) En particular se debe verificar:
La altura a la cual se eleva el brazo, de manera que se dispense el volumen correcto, para máquinas que operan mecánicamente;
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Que la placa etiquetada esté centrada en la plataforma giratoria;
Que la punta de la aguja o microjeringa forme el ángulo correcto con la superficie del agar, de acuerdo a lo que especifica el fabricante.
Que la aguja comience a sembrar y luego seleccione los puntos correctos. Para equipos electrónicos solo se debe verificar el punto de inicio.
Se deben repetir los pasos de verificación, durante la operación del equipo, si se produce el daño de la aguja o el desalineado de la misma, lo que es indicado por la deposición irregular de la muestra.
5.6.3. Inoculación 5.6.3.1. General
a) Los pasos que se describen a continuación se aplican a modelos operados manualmente, los modelos semiautomáticos, deben ser operados según las instrucciones del fabricante.
b) Llenar un vaso de precipitado estéril con la solución de hipoclorito de sodio, un segundo vaso con agua estéril y el tercer vaso con la muestra.
c) Limpiar la punta de la aguja, y desinfectarla entre el plaqueo de cada muestra, lavándola por 1 segundo con la solución de hipoclorito de sodio y luego por 1 segundo con agua estéril. d) Después del lavado, bajar la aguja dentro de la muestra y abrir
la válvula de relleno. Extraer la muestra a través de la aguja hasta que se forme una columna continua de líquido en el tubo que se encuentra sobre la válvula de relleno. Cuando la punta de la aguja se encuentre todavía debajo del nivel del líquido, cerrar la válvula de vacío. Levantar la aguja y rotar el recipiente de la muestra fuera del camino.
e) Colocar en la base la placa de agar preparada, marcar sobre un lado, sobre la plataforma giratoria, y bajar la aguja hasta que el tip descanse libremente sobre la superficie del agar. Encender el motor y dejar que la plataforma rotatoria gire hasta que la aguja se levante y el equipo se detenga automáticamente. Colocar la tapa y remover la placa de la plataforma giratoria. f) Después de cada muestra analizada, el equipo se lava con
anteriormente. Cuando el equipo no se va a utilizar nuevamente, se deja lleno con agua estéril.
g) Si se siembra más de una dilución por muestra, se comienza a plaquear por la mayor dilución (más diluida).
h) Se dejan las placas con las tapas por 15 minutos a temperatura ambiente hasta que el inóculo es absorbido por el agar.
5.6.3.2. Control de esterilidad:
a) Verificar la esterilidad del sembrador en espiral plaqueando agua estéril antes y después de cada serie de muestras examinadas.
5.6.4. Incubación Ver punto 3.5.2.
5.6.5. Recuento de colonias 5.6.5.1. Cuadrícula de Recuento:
a) Se encuentran disponibles dos tipos de cuadrícula dependiendo del tamaño de la placa de Petri utilizada.
b) Alternativamente, la cuadrícula de recuento transparente para placas de 150 mm de diámetro puede utilizarse para el recuento de placas de 90 mm de diámetro si se utiliza solo la parte interna del círculo que tiene un diámetro de 90 mm.
c) Utilizar las cuadrículas provistas junto al equipo y de acuerdo a las especificaciones del fabricante.
d) La cuadrícula se utiliza para relacionar el número de colonias contadas en un área de la placa con el volumen de muestra sembrado en dicha área.
Microorganismos
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Figura A1 5.6.5.2. Calibración y Verificación
a) Los volúmenes sembrados sobre varios segmentos de la cuadrícula están dados en el manual de operaciones que acompaña el equipo sembrador en espiral.
b) Para calibraciones con mayor precisión, los volúmenes por área de la cuadrícula deben ser verificados por un experto.
c) Para verificar los volúmenes depositados en cada segmento, preparar 11 concentraciones bacterianas en el rango de 106 células/ml y 103 células/ml por diluciones seriadas (1+1) de suspensiones de bacterias que no tengan crecimiento invasivo sobre las placas de agar.
d) Sembrar todas las diluciones por duplicado de acuerdo a lo especificado en 3.5.2. y con el sembrador en espiral, utilizando el mismo medio y las mismas condiciones de incubación (mismo incubador).
+ concentrado
- concentrado
e) Luego de la incubación contar las colonias. Calcular el volumen depositado en cada área de la cuadrícula de recuento de la siguiente manera:
V = CA
Cml
Donde
V: es el volumen del área de la cuadrícula (en ml); CA: es el recuento por la técnica en espiral de esa área
Cml: es el recuento por la técnica estándar por ml.
f) Verificar el volumen total sembrado por el sembrador en espiral pesando la cantidad sembrada en una balanza analítica con una precisión de ± 2 mg.
5.6.5.3. Examen e informe de los recuentos de las placas en espiral (método manual)
a) Centrar la placa incubada sobre la cuadrícula. Seleccionar un segmento y contar las colonias desde el borde exterior hasta el centro, hasta contar un total de 20 colonias.
b) Continuar el recuento de las restantes colonias en el área (ej. segmento o subdivisiones del segmento) en el cuál la colonia número 20 fue observada. Registrar este número junto con el número del área que incluía la colonia número 20 (ej. 3c, 3b, 3a, 4c, 4a, en la figura A1).
c) Contar el mismo área en el lado opuesto de la placa y dividir el recuento total de las dos áreas por el volumen, conocido, depositado sobre las áreas sembradas. Esto da como resultado el recuento por mililitro de muestra.
d) Si el número total de colonias es mayor que 75 y el recuento en el área donde se contó la colonia número 20 está completo, el recuento es generalmente bajo debido a un error asociado al crecimiento masivo de las colonias. Es recomendable que el recuento se realice contando los segmentos adyacentes anulares alrededor de la circunferencia hasta contar al menos 50 colonias. Calcular el recuento dividiendo las colonias contadas por el volumen del área donde se contaron las colonias.
e) Si se cuentan menos de 20 colonias en toda la placa, el intervalo de confianza para el recuento obtenido es amplio. f) Si el recuento excede las 75 colonias en la primer área, ej. área
3c, registrar el resultado estimado como >300.000 colonias/ml. 5.6.5.4. Examen e informe de los recuentos de las placas en espiral (utilizando un contador electrónico de colonias)
a) Seguir las instrucciones del fabricante, pero verificar manualmente (5.6.5.3.) al menos cuando el equipo se utiliza por primera vez o cuando se examina una nueva matriz.
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5.6.6. Cálculo y expresión de resultados
a) Calcular el recuento de colonias en la placa en espiral.
b) Informar los recuentos como el recuento en placa en espiral por g o ml de muestra según corresponda.
ANEXO 6: REFERENCIAS
(1) International Standard. ISO 4833-2: 2013. Microbiology of food chain. Horizontal method for the enumeration of microorganisms.
Part 2: Colony count at 30°C by the surface plating technique.
NOTA: Las siguientes normas de referencias son
indispensables para la aplicación del presente procedimiento. Para cada norma de referencia debe aplicarse la edición citada, en caso de no especificarse la misma, deberá aplicarse la última edición (incluyendo cualquier modificación).
IS0 6887-1, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 1: General rules for the preparation of the initial suspension and decimal dilutions
IS0 6887-2, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 2: Specific rules for the preparation of meat and meat products
IS0 6887-3, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 3: Specific rules for the preparation of fish and fishery products
IS0 6887-4, Microbiology of food and animal feeding stuffs -
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 4: Specific rules for the preparation of products other than milk and milk products meat and meat products, and fish and fishery products
ISO 6887-5, Microbiology of food and animal feeding stuffs --
Preparation of test samples, initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination - Part 5: Specific rules for the preparation of milk and milk products
ISO 7218, Microbiology of food and animal feeding stuffs - General
requirements and guidance for microbiological examinations.
ISO 11133, Microbiology of food, animal feed and water -
Preparation, production, storage and performance testing of culture media.
Microorganismos
aerobios mesófilos
Recuento de aerobios mesófilos
en muestras de alimentos
Técnica de recuento en placa
Procedimiento según
Bacteriological Analytical Manual (BAM)
Capítulo 3, enero de 2001
1. OBJETIVO
El presente procedimiento tiene como objetivo describir la metodología llevada a cabo por el Laboratorio de Microbiología para realizar el recuento de microorganismos aerobios mesófilos por la técnica de recuento convencional de colonias en placa a 35°C ± 1ºC en muestras de alimentos.
2. ALCANCE
Este procedimiento se aplica para realizar la enumeración de microorganismos aerobios mesófilos por la técnica de recuento de colonias en placa a 35°C ± 1ºC en muestras de alimentos congelados, refrigerados, precocidos o preparados.
El método de recuento en placa espiral automatizado para el examen de productos alimenticios y cosméticos (5), que se ajusta a la AOAC
Official Methods of Analysis, sec. 977.27; no se detalla en este documento.
Normas de referencia: Para la aplicación del presente
procedimiento son indispensables las referencias citadas en el anexo 4.
3. DESARROLLO
3.2. Medios de cultivo, reactivos, materiales y equipos
3.2.1. Solución buffer fosfato de Butterfield (Solución stock) (ver anexo 2)
3.2.2. Buffer para realizar diluciones (ver anexo 2) 3.2.3. Agar plate count (APC) (ver anexo 2)
3.2.4. Estufa de esterilización 3.2.5. Autoclave
3.2.6. Estufa de incubación: 35°C ± 1°C; leche, 32°C ± 1°C
3.2.7. Baño de agua circulante para mantener el templado del agar, capaz de mantener la temperatura a 45°C ± 1 °C