Perfil de ácidos grasos de los músculos del pescado tras finalizar la dieta. En el presente estudio, se evaluó el efecto de reemplazar el aceite de pescado en la dieta con aceite de colza sobre el crecimiento y el perfil de ácidos grasos del pargo rojo.
INTRODUCCIÓN
La producción mundial de aceites vegetales es aproximadamente 100 veces mayor que la de aceite de pescado (FAO, 2010). Producción mundial de aceite de pescado y aceite de canola (Datos tomados de Turchini et al., 2009).
ANTECEDENTES
Generalidades del Organismo de Estudio
- Clasificación taxonómica
- Distribución y Hábitat
- Biología
- Estudios sobre cultivo y nutrición de pargo Lutjanus guttatus
En cuanto a las condiciones de cultivo, Castillo-Vagasmachuca et al. 2007) reportaron que es posible engordar 110 g de pargos jóvenes en jaulas flotantes a una densidad de 1.2 kg/m3, con una tasa de crecimiento específico de 1.0% por día y una conversión alimenticia. Se logra un factor de 1,9. Por otro lado, Boza-Abarca et al. 2008) utilizaron gonadotropina coriónica humana para inducir el desove en pargos criados en cautiverio, logrando un 90% de fertilización de óvulos.
Lípidos y su Importancia en Acuicultura
La composición típica de ácidos grasos de algunos aceites de pescado se presenta en la Tabla 2. En otras palabras, los tejidos de peces alimentados con dietas ricas en aceite de pescado tendrán un perfil muy rico en ácidos grasos omega-3 (Guillaume et al., 2004).
Lípidos y Ácidos Grasos
- Estructura química de los ácidos grasos
- Funciones e importancia de los ácidos grasos
- Ácidos grasos esenciales en peces y biosíntesis de ácidos grasos
Las propiedades de las membranas dependen de la naturaleza de los ácidos grasos que las componen. Existen grandes diferencias entre los peces en su capacidad para convertir ácidos grasos de 18 carbonos en sus homólogos de 20 y 22 carbonos (Tabla 4).
Reemplazo de Aceite de Pescado por Aceites Vegetales en Dietas para
Por otro lado, Jutfelt et al., (2007), probaron el reemplazo con aceite de girasol durante la S-smoltificación. En dorada Sparus aurata, Izquierdo et al., (2003) lograron hasta un 60% de sustitución con aceite de colza.
Estudios Sobre Dietas de Finalización en Peces en Cultivo
En organismos jóvenes de mero Cromileptes altivelis fue posible sustituir el 100% del aceite de pescado por aceite de canola sin efectos negativos en el crecimiento según Shapawi et al., (2008). La Figura 8 muestra la influencia que los lípidos de la dieta pueden tener sobre los músculos de la trucha en un experimento con aceite de maíz y aceite de pescado. Se observa un alto contenido de omega-6 en los músculos de las truchas alimentadas con aceite de maíz, mientras que los ácidos grasos omega-3 predominan en las truchas alimentadas con aceite de pescado.
El experimento continuó durante otras 20 semanas para probar la dieta final de aceite de pescado; Los niveles de ácidos grasos EPA y DHA en el músculo se recuperaron en un 80% y el ácido linoleico se redujo en un 50%. Además, se evaluó el uso de una dieta de finalización, utilizando aceite de pescado como única fuente de lípidos como estrategia para recuperar ácidos grasos omega-3, especialmente EPA y DHA, en los músculos del pargo alimentado con diferentes concentraciones de canola. - Se alimenta aceite. .
HIPOTESIS
OBJETIVOS
Objetivo General
Objetivos Particulares
MATERIALES Y MÉTODOS
- Dietas experimentales
- Formulación de las dietas
- Elaboración de las dietas
- Análisis Proximal
- Perfil de Ácidos Grasos
- Determinación Calorimétrica
- Sistema experimental
- Generalidades de los tanques
- Parámetros ambientales
- Organismos de Estudio
- Procedencia
- Alimentación de los peces
- Evaluación del Crecimiento y Supervivencia
- Biometrías
- Parámetros de crecimiento y utilización del alimento
- Análisis Estadísticos
Composición aproximada (% base seca) de los ingredientes utilizados en la preparación de las dietas experimentales. De manera similar, se analizó todo el cuerpo del pez por triplicado, al principio y al final de cada fase del experimento. El perfil de ácidos grasos se determinó tanto en las dietas experimentales como en el músculo de pescado al inicio y al final de cada fase del estudio.
La extracción de lípidos en las muestras se realizó con el método descrito por Folch et al. Finalmente, la identificación y cuantificación de ácidos grasos se realizó mediante cromatografía de gases.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Análisis de Composición Proximal de las Dietas Experimentales
La variación en el contenido de humedad de las dietas en este estudio afectó el contenido de proteínas y lípidos detectado. Sin embargo, las diferencias detectadas fueron inferiores al 6% del contenido lipídico total más alto, que se encuentra dentro del rango del requerimiento lipídico de la especie (García-Ortega, 2009). Este tipo de variaciones se dan en la mayoría de trabajos de este tipo (Gunasekera et al., 2002; Izquierdo et al. 2005; Montero et al., 2005; Mourente et al., 2005; Mourente y Bell, 2006; Francis et al. . .al., 2007; Fountounlaki et al., 2009) Por lo tanto, se consideró que estas diferencias no tuvieron efecto en los parámetros de crecimiento y utilización del alimento de los peces.
Perfil de Ácidos Grasos de las Dietas Experimentales
Perfil de ácidos grasos (% de ácidos grasos totales) de los ingredientes utilizados en la elaboración de las dietas. Como era de esperar, los principales grupos de ácidos grasos estuvieron influenciados por la fuente de lípidos. La concentración de ácidos grasos saturados mostró cierta tendencia a disminuir a medida que aumentaba la cantidad de aceite de colza en la dieta.
El ácido palmítico (16:0) proporcionó la mayoría de los ácidos grasos saturados, seguido del ácido mirístico (14:0). Se observó una clara disminución de estos dos ácidos grasos a medida que aumentaba la cantidad de aceite de canola. En términos de ácidos grasos n-3 totales, hubo una disminución de casi tres veces desde la dieta con 0 % de canola a la dieta con 100 % de canola, lo que se debió a la disminución de EPA y DHA.
Análisis de Composición Proximal de los Peces
Glencross et al., (2003) encontraron que incluso una sustitución del 100% del aceite de colza en el alimento por Pagrus auratus no afecta la composición proximal de los peces. Sin embargo, varios estudios han demostrado diferencias en la composición proximal del pescado cuando se utilizan aceites de origen vegetal. Por su parte, Villa-López (2009) informó, en un experimento con lubina (S. annulatus), que la cantidad de lípidos en el pescado era menor al sustituir el aceite de pescado por aceite de colza en un 90% utilizando proteína de origen animal. por el contrario, este resultado no se obtuvo al utilizar proteína de origen vegetal.
En cuanto a la composición proximal de los peces al final de la segunda fase del estudio, se encontraron diferencias significativas solo en la concentración de proteína, siendo los peces de los grupos de 0 y 25% de canola los que tuvieron la mayor cantidad de proteína (Tabla 11). Shearer (1994) y Guillaume et al., (2004) mencionan que es un fenómeno común que los peces acumulen más grasa y tengan un menor contenido de humedad a medida que envejecen.
Parámetros de Crecimiento y Eficiencia del Alimento durante la Primera
Los resultados obtenidos en términos de crecimiento están respaldados por trabajos de diversos autores sobre la sustitución del aceite de pescado. En general, la sustitución completa del aceite de pescado en los salmónidos se puede lograr sin problemas de crecimiento. Huang et al., (2007) lograron la sustitución total del aceite de pescado por aceite de canola en la dieta de engorde del pargo japonés P.
En barramundi (Lates calcarifer) el reemplazo completo con aceite de soya y aceite de canola afectó negativamente el crecimiento, sin embargo, el reemplazo parcial no tuvo el mismo efecto (Turchini et al., 2009). Además, Patterson et al., (2009) mencionan que los ejemplares de trucha arcoíris son capaces de distinguir entre alimentos con aceites vegetales y alimentos elaborados con aceite de pescado.
Parámetros de Crecimiento y Eficiencia del Alimento de la Segunda
Parámetros de crecimiento, eficiencia alimenticia, índice hepatosomático y supervivencia de los peces al final de la segunda fase del estudio. Los valores de rendimiento alimenticio y eficiencia alimenticia obtenidos en esta etapa son más alentadores que los obtenidos para esta misma especie por Villa-López (2005), quien reporta factores de conversión alimenticia de 3 a 4 y TEA de 24 a 34%., a diferencia los obtenidos en este estudio, que oscilaron entre 1,9 y 2,2 para FCA y 45,9 a 55,9 para TEA.
Efecto del Aceite de Canola en el Perfil de Ácidos Grasos del Músculo
Los peces alimentados con una dieta con 0% de canola tuvieron el mayor contenido de ácidos grasos saturados en el músculo. La retención selectiva de este ácido graso enfatiza su importancia como nutriente esencial (Tocher et al., 2003). También se encontró que el EPA era preferido al DHA como sustrato para la oxidación (Bell et al., 2001a), lo que es consistente con la reducción progresiva del EPA pero no del DHA entre los tratamientos.
Existe evidencia de que cuando el ácido oleico está presente en exceso se prefiere a otros ácidos grasos como sustrato para la beta-oxidación (Bell et al., 2003a; 2003b), lo cual concuerda con lo encontrado en el trabajo actual. Dado que. Resultados similares se han encontrado en otros peces como el salmón del Atlántico, la trucha arco iris, el rodaballo y la dorada (Bell et al., 1997; Bell et al., 2003a; Izquierdo et al., 2005).
Efecto de la Dieta de Finalización sobre el Perfil de Ácidos grasos del
Es importante notar el aumento en el contenido de ácido araquidónico que ocurrió en los peces de los tratamientos de 50% y 100% de canola. Bell et al., (2003) también informan del restablecimiento de EPA a niveles normales en el salmón del Atlántico. Finalmente, la Figura 19 muestra el contenido de DHA (22:6n-3) en el filete de pargo al final de las dos fases.
En el presente estudio (Tabla 16) se encontró que las concentraciones de EPA y DHA en los músculos eran mucho más altas que las reportadas por Castro-González et al., (2004) para los pargos L. Concentración de EPA y DHA (mg/100 g de filete ) ) en el filete de los pargos durante las dos fases de alimentación.
CONCLUSIONES
RECOMENDACIONES
LITERATURA CITADA
Replacing fish oil with crude palm oil in the diet of Atlantic salmon (Salmo salar) affects muscle fatty acid composition and liver fatty acid metabolism. Replacing fish oil with canola oil in Atlantic salmon (Salmo salar) diets affects tissue lipid compositions and hepatocyte fatty acid metabolism. Effects of dietary canola oil levels on growth, fatty acid composition and osmoregulatory ability of juvenile fall salmon (Oncorhynchus tshawytscha).
Effects of dietary canola oil content on growth performance, fatty acid composition and ionoregulatory development of spring chinook salmon parr, Oncorhynchus tshawytscha. Effects of replacing dietary fish oil with vegetable oils on the growth and fatty acid composition of the tissue of the humpback grouper, Cromileptes altivelis (Valenciennes).
Purga: Para eliminar cualquier gas atmosférico que haya ingresado durante el proceso de cocción. Incineración: donde la muestra ingresa al horno calentado a aproximadamente 1000 ºC y se introduce gas oxígeno puro para acelerar el proceso de combustión. Estos gases pasan a través de un filtro en el horno y a través de un refrigerador termoeléctrico para eliminar la humedad.
Análisis: En esta fase los gases obtenidos durante la combustión son homogeneizados en el Lastre mediante una mezcla pasiva. El análisis se realizó según el Método 920.39 (AOAC, 1984) utilizando un equipo de extracción Micro Soxhlet, mediante el cual las grasas de la muestra se extrajeron con éter de petróleo y se evaluaron como porcentaje del peso después de que se evaporó el solvente.
El matraz se coloca en un condensador rosario y se deja refluir durante 5 a 10 minutos. Se añade trifluoruro de boro (BF3) (la cantidad depende del contenido de grasa de la muestra) encima del refrigerante y se deja refluir durante 3 a 5 minutos. Se retira el matraz del fuego, se transfiere el contenido a un tubo de ensayo y se agrega NaCl saturado y se agita hasta que adquiere un color blanco lechoso.
Una vez que se vuelve lechoso, se agrega una pizca de sulfato de sodio para separar los ácidos grasos. El sobrenadante se recoge y se filtra a través de una pipeta Pasteur llena de fibra de vidrio y el filtrado se recoge en un vial de 2 ml.