PCR amplificada a partir de seis muestras de Oenomaus ortygnus Cramer utilizando gel de agarosa. Secuencia del producto de la PCR amplificado a partir del gen COI mediante extracción de ADNmt de Oenomaus ortygnus Cramer.
INTRODUCCIÓN GENERAL
Objetivos específicos
Hipótesis
REVISIÓN DE LITERATURA
Aspectos generales de la guanábana (Annona muricata L.)
Biología
5 según la variedad y presenta numerosas protuberancias en forma de suaves espinas dirigidas hacia el ápice. El mesocarpio es blanco, con fibras algodonosas, las semillas son de color marrón y pueden tener hasta un poco más de 200, dependiendo de la variedad cultivada (León, 2011).
Fenología
Lo anterior coincide con Guzmán (1994) cuando describe que la floración y la fructificación pueden estar presentes durante todo el año, pero se pueden observar cuatro períodos de floración, dos caracterizados por la mayor tasa de floración y los otros dos por la mayor tasa de floración. floración menor, la primera floración ocurre de junio a septiembre con la mayor tasa en julio, mientras que la segunda de noviembre a febrero con la mayor tasa de floración entre finales de diciembre y principios de enero. En la Figura 1 se muestran los dos picos máximos de floración y fructificación, que se presentan en el ciclo de verano, definiendo un período de cosecha con menor intensidad durante la temporada de invierno, en un mismo árbol se presentan diferentes condiciones de floración, así como fructificación de diferentes tamaños y etapas. de madurez (Casares, 1981).
Hábito de crecimiento y desarrollo
Importancia
Usos
En particular, la chirimoya, el saramuyo, la atemoya y la guanábana son las que tienen mayor potencial y oportunidad de exportación como fruta de mesa o pulpa congelada en países de América, Asia y Australia (Peña et al. 2002; Pinto, 2005). 10 bioinsecticidas, antiparasitarios, antibacterianos, antifúngicos, antioxidantes, antitumorales, decorativos, extracciones de esencias y aceites (González-Esquinca et al. 2011, Coria-Téllez et al. 2016, Laguna-Hernández et al. 2017).
Distribución mundial
- Producción mundial
- Distribución nacional
- Producción nacional
La Tabla 2 muestra las principales propiedades edafoclimáticas que las plantas de acedera necesitan para establecerse. En el interior de la república se distribuye en zonas de clima cálido en las zonas costeras de Veracruz, Tabasco, Quintana Roo, Nayarit, Colima, Michoacán, Oaxaca, Guerrero, Yucatán y Chiapas, estados con mayor potencial al actual. cultivado. (Hernández et al. 2013). México es el principal productor de guanábana en el mundo, según estadísticas tiene una producción anual de 29,228.46 mil toneladas anuales con un valor comercial en millones de pesos (SIAP, 2019).
El principal incremento se observa en el valor de la producción, al pasar de 82 millones de pesos a 299,9 millones de pesos en los últimos nueve años (Cuadro 3).
Plagas en la guanábana
Distribución de Oenomaus ortygnus Cramer
- Taxonomía
- Descripción y daños ocasionados por las plagas
14, capullos y flores, tal es el caso de Oenomaus ortygnus Cramer, una plaga importante de cultivos semicomerciales y comerciales en México. La distribución de la plaga se puede observar desde 1990 hasta 2019, abarcando diferentes zonas del Golfo de México, el Océano Pacífico y el Mar Caribe. La Figura 3.15 representa daños severos al botón floral, flor y fruto, permitiendo el ingreso de otros microorganismos patógenos, los cuales son algunos factores limitantes en la producción de estas tres anonáceas (Beccaloni et al 2008).
Cerconota anonella (Lepidoptera: Oecophoridae) las hembras ponen huevos en la epidermis del fruto y cuando la larva emerge se alimenta de la corteza, posteriormente ingresa y se alimenta de las semillas, construyendo galerías en el fruto que sirven como punto de entrada para diversos patógenos (Catañeda, 2000, Hernández, 2011). Son las larvas las que causan el mayor daño al alimentarse del endospermo de la semilla de los frutos en desarrollo. Luego realizan su ciclo de vida dentro de la semilla. Cuando los adultos emergen, forman galerías a través de la pulpa, dejando un orificio de salida. Con un diámetro aproximado de 1 a 2 mm (Hernández et al. 2010), estos orificios permiten el ingreso de patógenos al interior del fruto, provocando pudriciones y afectando la calidad del fruto (Nadel y Peña, 1991). Oenomaus ortygnus Cramer (Lepidoptera: Lycaenidae), la larva de esta plaga se alimenta de yemas florales, impidiendo la polinización y el cuajado de frutos, pudiendo alimentarse también de varias especies de Annona (Coto y Saunders 2001) y (Castañeda-Vildozola et al. 2011). .
LITERATURA CITADA
Annona muricata: A comprehensive review of its traditional medicinal uses, phytochemicals, pharmacological activities, mechanisms of action and toxicity. Natural history and morphology of immature stages of the butterfly Allosmaitia strophius (Godart) (Lepidoptera: . Lycaenidae) on flower buds of Malpighiaceae. Insectos Asociados al Guanábano (Annona muricata L.) en Veracruz, México Insects associated with Soursop (Annona muricata L.) in Veracruz, México.
El resultado determinó que el ciclo de vida de Oenomaus ortygnus Cramer fue aproximatena de 27. The biological material collected was from three production areas, the first in Yaaxhon, which is the curator of the municipality of Oxkutzcab, Yucatán, the second in the Colegio de Postgraduados Campus Campeche and the third in the municipality Arapiraca, Alagoas, Brazil. The study was divided into two phases: a field phase and a laboratory phase. The result showed that the life cycle of Oenomaus ortygnus Cramer was about 27 ± 31 days, which confirms the existence of sexual dimorphism and other morphological features that have not been reported before, such as the presence of androcone in the first pair of forewings in males and the absence of these in females.
On the other hand, the greatest damage caused by the larva was recorded in instar III by feeding on the internal structures of the open flower.
INTRODUCCIÓN
- Importancia y distribución
MATERIALES Y MÉTODOS
- Localización del área de estudio
- Tercera fase (Captura de imagen)
- Descripción del ciclo biológico
- Periodo de incubación larval
- Periodo pupal
- Emergencia de los adultos
- Daños ocasionados al botón floral
24 En la fase de laboratorio, el material biológico colectado de dos áreas de producción fue trasladado al Laboratorio de Parasitología Agrícola de la Universidad Autónoma de Chapingo, Texcoco, Edo. Mientras que el material recolectado en una zona productiva de Brasil fue trasladado al Laboratorio de Investigación en Recursos Naturales (LPqRN) del Instituto de Química y Biotecnología de la Universidad Federal de Alagoa UFAL. El registro de imágenes se realizó en el Laboratorio de Microscopía ubicado en el Centro de Ciencias Agrícolas CECA/UFAL y con la ayuda de un microscopio estereoscópico trilocular modelo OPZTS con cámara digital incorporada graduada a un campo de 2x a 3x.
De manera similar, las cámaras de crecimiento fueron lavadas y desinfectadas para evitar la contaminación por esporas de hongos u otros microorganismos. Con el microscopio estereoscópico se observó la apertura genital de la hembra, la cual se encuentra completamente dividida en el octavo segmento, el cual se extiende desde el margen caudal del séptimo segmento hasta la última parte del margen caudal del octavo segmento, pero sin el noveno al dividir, en En el macho la abertura genital se ubica en el noveno segmento abdominal y muestra una línea ventral y tiene pequeños bultos a cada lado. Esta característica hace que la abertura genital y la abertura anal estén más juntas en los hombres que en las mujeres. En el octavo segmento se puede observar con mayor facilidad debido a la presencia del último sifón, posteriormente fueron colocados en cámaras de cría previamente rotuladas con la fecha de determinación del sexo.
En las cámaras de cría se colocaron cuatro pupas, macho y hembra, previamente identificadas, para determinar el número de días y el cumplimiento de la fase adulta del insecto. La alimentación inicial de los adultos se basó en miel de abeja, con una dosis de tres gotas aplicadas alrededor del borde. . parte superior del contenedor de la cámara de cría durante su ciclo de vida.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
- Ciclo de vida del barrenador de la guanábana
- Huevo
- Larva
- Pupa
- Adultos
- El Macho ♂ de Oenomaus ortygnus Cramer
- Adulto Hembra ♀ de Oenomaus ortygnus Cramer
- Daños ocasionados por la plaga
28 Figura 4. Capullo floral infestado, A) Ubicación del número de huevos en el tallo y pétalos de la flor y B) Morfología del huevo de Oenomaus ortygnus Cramer con aumento de 2,5 X Confirma que en Annona diversifolia se pueden encontrar de 1 a 5 , mientras que Pereira y Anjos (1998) y Coto y Saunders (2001) informan que las larvas se alimentan de flores y pupan en el suelo. En el primer par de alas anteriores presentan una mancha irregular o punto negro que sirve para distinguirlas a simple vista (Figura 8A).
Asimismo, están compuestos por escamas grisáceas modificadas llamadas androconos y se ubican principalmente en la parte dorsal de las alas anteriores en esta especie, entre otras partes del cuerpo como: genitales, abdomen, 1er, 2do y 3er par de patas sirven como secundarias. Estructuras sexuales en el macho que producen feromonas de atracción sexual Figura 8B. Los machos adultos tenían un tinte azul oscuro en el interior con bordes negros en la parte posterior de las alas, mientras que el lado ventral de las alas anteriores y. Uno de los rasgos llamativos más importantes para identificar a la hembra es la ausencia total de las manchas irregulares que se observan en el primer par de alas Figura 7A, mientras que el margen externo de las alas muestra un color negro más intenso y el margen interno es de color azul marino. Figura 8B Esta característica morfológica coincide con lo reportado por Coto y Saunders (2001) y Faynel.
Los daños de Oenomaus ortygnus Cramer iniciaron con la aparición del primer estadio larvario, para lo cual durante su crecimiento y desarrollo la larva utiliza como alimento diversas estructuras florales de yemas y flores abiertas hasta que finaliza el estadio larvario y se observan daños severos. como la perforación de los pétalos, la destrucción total de los ovarios y estigmas, la salida visible de sus excrementos dentro de las flores, que es una característica definitoria de la presencia de esta plaga, y en ocasiones la flor queda adherida al pedúnculo o se desprende. del pedúnculo Apéndice 2.
CONCLUSIONES
LITERATURA CITADA
CARACTERIZACIÓN MORFOLÓGICA Y MOLECULAR DEL
- INTRODUCCIÓN
- MATERIALES Y MÉTODOS
- Colecta de Botones florales
- Identificación morfológica del barrenador de la guanábana
- Identificación molecular del barrenador de la guanábana Oenomaus
- Extracción de ADN
- Amplificación y secuenciacion de ADN
- Análisis filogenético
- RESULTADOS Y DISCUSIÓN
- Identificación morfológica del barrenador de la guanábana
- Larva
- Pupa
- Dimorfismo sexual en adultos
- Identificación molecular
- CONCLUSIONES
- LITERATURA CITADA
Asimismo, para la extracción de ADN se utilizó el método CTAB, posteriormente se amplificó el fragmento final del gen Citocromo Oxidasa I (COI) a 710 pares de bases. La secuencia del producto de PCR que se amplificó a partir del gen COI mediante la extracción de ADNmt de Oenomaus ortygnus Cramer. Se registraron imágenes de la morfología externa de Oenomaus ortygnus Cramer en los diferentes estadios (larva, pupa y adulto). Durante la recolección de material biológico se utilizaron mariposas adultas para realizar la caracterización morfológica y molecular en el laboratorio bacteriano del Departamento de Parasitología Agrícola de la Universidad Autónoma de Chapingo.
La amplificación de la región de ADNmt de COI se realizó en un termociclador BIO RAD® T100™. La identificación morfológica de los diferentes estadios de Oenomaus ortygnus Cramer se realizó con base en las características morfológicas de la especie y con base en la literatura revisada. Los productos de PCR que se analizaron correspondieron a 710 pares de bases (pb) de la región COI del ADNmt, como se muestra en la Figura 12.
Secuencia del producto de PCR que se amplificó a partir del gen COI mediante extracción de ADN total de Oenomaus ortygnus Cramer. La identificación de la guanábana a través de aspectos morfológicos y moleculares coincide con la especie Oenomaus ortygnus Cramer, plaga muy extendida y adaptada en las 12 entidades productoras de México y otros países como Brasil. Mediante análisis filogenético se verificó la identificación de la especie Oenomaus ortygnus, la cual está presente en tres zonas de producción y dos están ubicadas geográficamente en México y una en Brasil.
