RESUMEN GENERAL
INTRODUCCION
En el caso de los xiloglucanos, se ha demostrado que tienen actividad biológica, incluyendo auxina y antiauxina. Otro material es el exoesqueleto de crustáceos para la obtención de quitosano, es rico en quitina y tiene una estructura cristalina resistente a los solventes convencionales (de la Paz et al., 2013) que es muy similar a la propiedad de resistencia de los gloquidios.
OBJETIVOS
HIPÓTESIS
MARCO TEORICO
Impacto ambiental por las glóquidas de tuna
Composición y estructura general de las paredes celulares
- Composición de las paredes celulares
- Estructura de las paredes celulares
- Componentes polisacáridos
- Celulosa
- Hemicelulosa
- Pectinas
Las propiedades físicas y funciones biológicas de las paredes celulares dependen principalmente de los polímeros estructurales que las constituyen y de su interacción para formar la matriz de la pared. La formación de la pared primaria ocurre cuando la placa celular está completa y consiste en el depósito de 3 a 4 capas de material de microfibrillas de celulosa en las células hijas, con un espesor fino que oscila entre 0,1 y 1,0 μm. La pared secundaria se forma cuando las células dejan de crecer y en la parte interna de la pared se depositan nuevas capas de material más gruesas que la primaria (Azcón-Bieto & Talón, 2008).
Los polisacáridos se clasifican como los compuestos más abundantes en las paredes celulares de todas las plantas y representan aproximadamente el 90% de la biomasa de las paredes primarias y del 65 al 85% de las paredes secundarias (Azcón-Bieto & Talón, 2008). En todos los tipos de xiloglucano, las cadenas de galactosa pueden estar presentes en forma acetilada. 2009) describieron que el xiloglucano se encuentra en las paredes celulares primarias de las dicotiledóneas y representa entre el 20 y el 25% de su peso seco, y alrededor del 60-70% de las moléculas de glucosa están unidas al residuo -D-xilopiranosilo en el C-6. , mientras que en las monocotiledóneas representa sólo del 2 al 5% de su peso seco, además, sólo el 36-37% de la glucosa está xilosilada y tiene una cantidad mucho menor de fucosa. Los xiloglucanos no solo se unen fuertemente a la superficie de la celulosa, sino que también pueden retenerse en la red de microfibrillas mediante enlaces covalentes o mediante la reacción de transglicosilación (Salazar & Gamboa, 2013), sino también cadenas.
Los polisacáridos de pectina se encuentran entre los polímeros más complejos conocidos y participan en muchas funciones vitales de las plantas (Rachel, 2012). En todas las plantas, las pectinas se encuentran en las paredes celulares y constituyen aproximadamente el 35% de la composición de la pared primaria en las dicotiledóneas y el 5% en las gramíneas. Aproximadamente la mitad de la ramnosa está glicosilada en C-4 en cadenas laterales ricas en residuos de L-arabinosa y D-galactosa, como arabinanos, galactanos o arabinogalactanos (Barceló et al., 2009).
Composición y estructura de las glóquidas de tuna
- Composición de las paredes celulares de las glóquidas
- Estructura de las glóquidas
El ramnogalacturonano II (RG II) forma aproximadamente 12 monosacáridos diferentes, muchos de los cuales contienen residuos de glucosilo que son raros en las plantas (Barceló et al., 2009). En un estudio de Ulloa et al. 2020) encontraron que las tunas contienen cantidades similares de celulosas y hemicelulosas (41,1% y 41,2% respectivamente) y 5% de ligninas; Este contenido es menor al reportado para espinas de cladodios de Nopal, aunque las proporciones de los dos primeros componentes se mantienen iguales, con un valor de 47.9% para celulosa, 48.4% para hemicelulosa y 25% para lignina (ceniza, grasa). y ceras en cantidades muy pequeñas) (Malainine et al., 2003). La columna vertebral del cladodio tiene en su composición celulosa y arabinano en cantidades casi iguales, cercanas al 50%, con una fuerte interacción en las microfibras de la columna vertebral (Malainine et al., 2003; Ulloa et al., 2020).
La fracción arabinano del esqueleto se encuentra en una pared secundaria moderadamente ramificada en el 31% de su estructura, que consta de 67 unidades de α-L-arabinofuranosa residual en el esqueleto y 33 unidades como cadenas laterales terminales y está compuesta por los siguientes monosacáridos: L -arabinosa (94,3 %), L-ramnosa (1,6%), ácido D-galacturónico (1,4%), D-glucosa (0,7%) y D-galactosa (0,6%) (Vignon et al., 2004). Las estructuras externas de los gloquidios (Fig. 3) según las observaciones de Ulloa et al. 2020) presentan barbas retrovertidas en toda su estructura, e internamente presentan una estructura cristalina debido a fibras de celulosa perfectamente ordenadas, con una longitud promedio de 1667 μm y un diámetro de 67,3 μm. El cuerpo de la columna está formado por una disposición paralela de finas fibras de celulosa que, según algunos investigadores (Malainine et al., 2003;.
Vignon et al., 2004 y Gindl-Altmutter & Jozef, 2012, las dimensiones de la columna vertebral de celulosa contenida en la columna vertebral de Opuntia ficus-indica tienen un diámetro promedio de 5 a 10 μm, una longitud promedio de 0,3 a 0,5 mm y una Luz muy pequeña alineada a lo largo del eje principal de la columna. Según estudios de Cooper et al. 2017), el porcentaje de cristalinidad de espinas de diferentes especies de cactus está relacionado con la especie y varía entre 48% y 76,3%. Gindl-Altmutter & Jozef (2012) mostraron claramente que la espina de Opuntia ficus-indica es una de las más altas entre los cactus con un 57% en comparación con otros materiales lignocelulósicos, por ejemplo la madera de abeto tenía una cristalinidad del 34%, el bagazo de caña de azúcar del 41% ( López -Martínez et al., 2016), cáscara de arroz 52%, aserrín 44% (Torres et al., 2017) y es similar a la quitina en el exoesqueleto del camarón en 57.4% (Rojas et al., 2018).
Composición, estructura y clasificación de las oligosacarinas
- Estructura y composición de las oligosacarinas
- Clasificación de las oligosacarinas
- Oligogalacturónidos
- xiloglucanos
- Oligoglucanos
- Oligoquitina
- Quitooligosacarinas
Según Falcon et al.2015) La OGP se ubica en la fracción péctica que forma la pared celular de la planta y es liberada por la acción metabólica de la planta o por el ataque de organismos fitopatógenos. Se caracterizan por derivar de la fragmentación de los β-glucanos en la pared celular de hongos fitopatógenos. El quitosano es un polímero lineal derivado de la quitina, unido por enlaces distribuidos aleatoriamente β-1,4-D-glucosamina (unidad desacetilada) y N-acetil-D-glucosamina (Enríquez-Guevara et al., 2010).
PROPIEDADES FITOQUÍMICAS DEL PUNNY (Opuntia albicarpa SCHEINVAR) Y SU POTENCIAL PARA USO AGRONÓMICO. El hidrolizado de gloquídeo de Blanca burrón presentó un contenido total de pectina expresado como ácido galacturónico, mg·100 g-1 de muestra. Las propiedades fitoquímicas de los gloquidios y el contenido de pectina indicaron que el subproducto de la tuna tiene un buen potencial para su uso como nutrientes y como bioestimulante para cultivos agrícolas.
El proceso de despunte es la operación poscosecha para eliminar los gloquidios de las tunas, de forma manual o mecánica antes de la comercialización del fruto (Inglese, 2020). El muestreo de los gloquidios se realizó en dos zonas de Las Tunas, una en los talleres beneficiarios de ejidatarios de la comunidad de San Felipe Teotitlán, Nopaltepec, Estado de México, ubicada en las coordenadas 19º latitud norte y 98º 40'. Según los resultados (Cuadro 1), la concentración de betalaínas totales (BT) en los gloquidios de la variedad Blanca Cristalina (16,2±3,4 mg·100g-1) fue menor que en la variedad Blanca.
Los extractos de gloquídeas liberan principalmente la pigmentación correspondiente a BC (8,0 y 14,9 mg·100g-1), a pesar de la diferencia de BC entre ambas variedades. Propiedades del fruto de pitahaya (Hylocereus sp.) y su potencial de uso en la industria alimentaria.
OLIGOSACARINAS ENDÓGENAS COMO BIOESTIMULADORES DE
Las principales funciones de las oligosacarinas endógenas fueron descritas por Reyes-Pérez et al. 2020) donde estudios previos han demostrado que la OGP puede competir con el ácido indolacético (AIA), creando un antagonismo a nivel de la membrana celular en los sitios de interacción con las auxinas. También se encontró que OGP puede estimular la síntesis de etileno en frutos de uva y mejorar su color (Acosta et al., 2018). Aislamiento de extractos bioestimulantes Se aislaron y cuantificaron oligosacarinas a partir de extractos de pectina de gloquidios de tuna utilizando la metodología de Marin-Campos et al.
En cada planta de las tres especies se midió la biomasa aérea, radicular, bulbosa y total según la metodología de Soriano-Melgar et al. Área foliar y rendimiento en calabaza Para medir el área foliar se utilizó el método según Martin et al. 2020), para lo cual se recolectaron cinco hojas fisiológicamente maduras por planta. El primero fue cuantificado mediante el método propuesto por Figueroa-Cares et al. 2018), para lo cual se recolectaron tres frutos por unidad experimental.
Los sólidos solubles totales (SST) se determinaron según la metodología de Figueroa-Cares et al. 2018), consistente en una gota de pulpa de fruta y se colocó en un refractómetro digital portátil HI (Hanna, Rumania). En relación con lo anterior, los resultados muestran que con dosis crecientes de oligosacarinas, el diámetro apical disminuyó en comparación con el control (producto comercial), pero las alturas de los tratamientos con oligosacarinas se mantuvieron cercanas a esto, lo que podría indicar la inducción de elongación celular, pero no de proliferación celular (Hernández et al., 2015). Aunque la comercialización de flores de calabaza suele realizarse en manojos o unidades (Lara-Cortés et al., 2013), el rendimiento puede ser un buen indicador de que las oligosacarinas endógenas mejoran la floración.
Este comportamiento se explica sobre la base de que las oligosacarinas, como los brasinoesteroides, jasmonatos y otros bioestimulantes del crecimiento vegetal en concentraciones bajas y medias promueven la actividad fisiológica, pero en concentraciones altas tienen efectos antagónicos e inhibidores de los procesos fisiológicos y bioquímicos de la planta. Alarcón-Zayas et al., 2018). Según Rogach et al.2020) el ácido giberélico (AG3) provoca un aumento en el tamaño lineal de los brotes y el aumento de la biomasa en raíces, tallos y hojas, correlacionado con la activación de promotores endógenos de este compuesto y del indol-3-acético. ácido (IAA). ) en tallos y hojas, mejorando los procesos de crecimiento y diferenciación.
CONCLUSIONES GENERALES
BIBLIOGRAFÍA
EFECTO DEL GRADO DE ACETILACIÓN SOBRE LAS PROPIEDADES FARMACOTÉCNICAS DE LA CITINA EXTRAÍDA DE EXOESQUELETOS DE CAMARÓN. IMPORTANCIA DE LAS PECTINAS EN LA DINÁMICA DE LA PARED CELULAR DURANTE EL DESARROLLO DE LA PLANTA. Universidad Autónoma Chapingo, Maestría en Agroforestería para el Desarrollo Sostenible, Departamento de Tierras.