Printing Método
7. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES.
Esta investigación plantea importantes aspectos a ser considerados en el diseño de estrategias de manejo de la “Virosis” del tomate de árbol, reafirmando los resultados recientes reportados por Ayala (2009), Jaramillo (2009) y Rodríguez (2009), en el sentido que la etiología de dicha enfermedad es compleja e incluye virus de diferentes grupos taxonómicos como potyvirus, polerovirus, cucumovirus y nepovirus entre otros, y además deja abierta la posibilidad de que la semilla sexual de este frutal sirva como vía de transmisión vertical de virus y de medio de dispersión a largas distancias del PLRV y de una o varias especies de potyvirus no determinadas, lo que en cierta medida permitiría explicar el porqué de la importancia generalizada de esta enfermedad en todas las regiones productoras del país. Adicionalmente, la investigación identifica a la producción y comercialización de plantas de vivero de tomate de árbol, como un aspecto que debe ser tratado con mayor rigurosidad técnica, pues es claro que desde los propios viveros se están dispersando los diferentes virus que afectan este cultivo. Finalmente en este estudio se presenta una metodología estandarizada de detección de virus basada en hibridización dot- blot que genera niveles de sensibilidad de detección un poco mayores que la prueba de ELISA y además, al no basarse en reacciones enzimáticas como el RT-PCR, no se ve tan afectada por la gran cantidad de metabolitos inhibidores de dichas reacciones presentes en los tejidos y órganos del tomate de árbol. Se espera que este trabajo estimule al gremio de productores de frutas del país y a las autoridades de sanidad vegetal del estado a considerar la generación de semilla certificada de tomate de árbol como un aspecto clave para alcanzar altos niveles de competitividad en este frutal, así como la necesidad de dar continuidad a investigaciones que especialmente permitan caracterizar los niveles de variación de los virus asociados a la “Virosis” y profundicen en los mecanismos de transmisión y del rango de hospedantes de dichos virus.
Desde una perspectiva práctica, los hallazgos de esta investigación conducen al planteamiento de las siguientes medidas tendientes a reducir los niveles de incidencia y severidad de la “Virosis” del tomate de árbol en Colombia:
a) Adquirir el material de siembra a partir de plantas madres certificadas por su sanidad viral, mantenidas bajo condiciones de casa malla que impida la llegada de insectos vectores de virus desde cultivos aledaños y preferiblemente procedentes de cultivo in vitro o de semilla sexual previamente evaluadas como libre de virus por métodos serológicos o moleculares.
b) Establecer rotaciones de cultivos de tomate de árbol con plantas no solanáceas, de manera que se reduzcan los niveles de inóculo viral y de sus posibles vectores. c) Evitar las situaciones de sobrefertilizacion que conduzcan a la obtención de tejidos
verdes suculentos que atraigan y soporten un mayor nivel de insectos con potencial de actuar como vectores de virus.
d) Con base en análisis de fertilidad de suelos y follaje, realizar aplicaciones de elementos menores, importantes para el normal funcionamiento de diferentes rutas metabólicas de defensa en las plantas y para obtener una calidad y llenado apropiado de frutos.
e) Realizar un control oportuno y eficiente de enfermedades causadas por hongos, bacterias y nematodos, de manera que en las plantas se reduzca el estrés biótico por dichas causas y de esta forma puedan expresar plenamente sus mecanismos de defensa frente a los patógenos virales.
f) Mantener una observación continua sobre la presencia de síntomas de “Virosis” en el cultivo, eliminándose apropiadamente las plantas “foco de enfermedad” detectadas.
g) Realizar tratamientos con productos desinfectantes a las herramientas utilizadas para las prácticas culturales realizadas al cultivo.
h) Establecer podas de formación y fitosanitarias adecuadas, que favorezcan una alta tasa fotosintética en las plantas, aumenten la aireación en el follaje y distribuyan uniformemente la producción de frutos.
i) Evitar arreglos agronómicos que incluyan cultivos de solanáceas, especialmente de papa con cultivos de tomate de árbol, siendo preferible además el aislamiento de dichos cultivos en el tiempo y/o espacio geográfico.
8. BIBLIOGRAFIA
Agrios, G. 2005. Plant Pathology. Fifth Edition. Elsevier Academic Press. 922 p.
Akinjogunta, O.J., Taiwo, M.A. y Kareem, K.T. 2008. Immunological and molecular diagnostic methods for detection of viruses infecting cowpea (Vigna unquiculata). African Journal of Biotechnology 7: 2099-2103.
Ali, A. y Kobayashi, M. 2009. Seed transmission of Cucumber mosaic virus in pepper.
Journal of Virologicals Methods. En prensa.
Alvarez, A. E., Garzo, E., Verbeek, M, Vosman, B., Dicke, M. y Tjallingii, W. F. 2007. Infection of potato plants with Potato leafroll virus changes attraction and feeding behaviour of Myzus persicae. Entomologia Experimentalis et Applicata 125: 135–144.
Aramburu J., Galipienso L. & Matas M.. 2006. Characterization of potato virus Y isolates from tomato crops in northeast Spain. European Journal of Plant Pathology 115:247-258.
Ashoub, A. 2003. Full-length sequence of Egyptian potato leafroll virus (PLRV) isolate. Arabian Journal Biotechnology 6: 173-182.
Astier, S., Abouy, J., Maury, Y. Robaglia, C. Lecoq, H. 2007. Principles of Plant Virology, Genome, Pathogenicity, Virus, Ecology. Science Publisher. 472 p.
Ayala, M. 2009. Caracterización del Potyvirus asociado a la virosis del tomate de árbol en Antioquia. Trabajo de Grado presentado para optar al Título de Magíster en Ciencias Agrarias. Octubre. 96 p.
Bashir, M. y Hampton, R.O. 1996. Detection and identification of seedborne viruses from cowpea (Vigna unquiculata (L.) walp) germplasm. Plant Pathology 45: 54-58.
Bernal, J.A., Saldarriaga, A. y Zapata, J.L. 1998. Evaluación de la transmisión del virus del tomate de árbol. Informe final (proyecto CORPOICA-PRONATTA). 55p.
Bernal, J.A. y Tamayo, P.J. 2003. Tecnología para el cultivo del tomate de árbol. Manual técnico No. 3. Centro de investigación La Selva. Corpoica.
Betancourth, C., Goyes, R. y Bravo, D.A. 2003. Caracterización biológica de un virus del tomate de árbol (Solanum betaceum Send) en el departamento de Nariño. Fitopatología Colombiana 27: 7-10.
Blas, Borja, M.J., Saiz, M. y Romero, J. 1994. Broad Spectrum Detection of Cucumber Mosaic Virus (CMV) Using The Polymerase Chain Reaction. Journal of Phytopathology 141: 323-329.
Boonham N, Walsh K., Hims M., Preston S., North J., & Baker I. 2002. Biological and sequence comparisons of Potato virus Y isolates associated with potato tuber necrotic ringspot disease. Plant Pathol 51: 117-126.
Brunt A, Crabtre K, Dallwitz M.J., Gibss A.J., Watson L. y Zurcher, E.J. (eds). 1996. Plant virus online: Descriptions and list from the VIDE Database. Disponible en: http://image.fs.uidaho.edu/vide/refs.htm.
Craig, G., Stephen, W. Wylie, J. y Jones, M. 2004. Diagnosis of plant viral pathogens. Current science 86:1604-1607.
Chávez, B. y Varon, F. 2001. Enfermedad de etiología viral en cultivos de tomate de árbol. Epidemiología Agrícola. p 39-43.
Chu, F.H., Chao, C.H., Chung, M.H., Chen, C.C., y Yeh, S.D. 2001. Completion of the genome sequence of Watermelon silver mottle virus and utilization of degenerate primers for detecting tospoviruses in five serogroups. Phytopathology 91:361-368.
Craig G., Stephen W., Wylie J., Michael G. & Jones K. 2004. Diagnosis of plant viral pathogens. Current science 86:1604-1607.
Cruz J., L.F. 2005. Identificacion de virus en Solanum betaceum. Tesis de Ingeniería Agronómica, Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia sede Bogotá. 48 p.
Cuspoca, J. 2007. Evaluación de virus de tomate de árbol (Solanum betacea) en plantas indicadoras y su detección por PCR. Tesis de Ingeniería Agronómica, Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia sede Bogotá. 31 p.
Domier, L., Steinlage, T., Hobbs, A., Wang, Y., Herrera-Rodríguez, G., Haudenshield, J., MacCoppin, N. y Hartman, G. 2007. Plan Disease 91: 546-550.
Eagles, R., Gardner, R. y Forster, R. 1994. Incidence and distribution of six virus infecting Tamarillo (Cyphomandra betaceum) in New Zealand. New Zealand Journal of Crop Horticultural Science 22: 453-458.
Eiras, M., Chaves, A., Colariccio, A. y Chagas, C.M. 2007. First Report of Turnip mosaic virus in Horseradish in Brazil. Fitopatología Brasileira 32: 165-167.
Felsenstein, J. 1985. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evolution. 39: 783-791.
Finetti-Sialer, M., Di Franco, A., Papanice, M. A. y Gallitelli, D. 2007. Tomato necrotic yellows induced by a novel strain of Alfalfa mosaic virus. Journal of Plant Pathology 79:115-120.
Fletcher, J.D. 1987. New plant diseases records in New Zealand: Additional hosts of alfalfa mosaic virus and cucumber mosaic virus. New Zealand Journal of Agricultural Research 30: 505-506.
Frosheiser, F.L. 1974. Alfalfa mosaic virus transmission to seed through alfalfa gametes and longevity in alfalfa seed. Phytopathology 64:102-105.
Fujisaki, K. y Ishikawa, M. 2008. Identification of an Arabidopsis thaliana protein that binds to Tomato mosaic virus genomic RNA and inhibits its multiplication. Virology 380: 402–411.
Gallitelli, D. 2000. The ecology of Cucumber mosaic virus and sustainable agriculture. Virus Research 71: 9-21.
García-Arenal, F., Escriu, F., Aranda, M., Alonso-Prados, J., Malpica, J. y Fraile, A. 2000.
Molecular epidemiology of Cucumber mosaic virus and its satellite RNA. Virus Research
71: 1-8.
García-Arenal, F. y García 2000. Estructura y expresión del genoma de los virus de plantas. Capítulo 1. En: Llácer, G., López M.M., Trapero, A y Bello, A. Patología Vegetal. Sociedad Española de Fitopatología. Mundi prensa. 659 p.
Garrido, M.J. y Trujillo, G.E. 2000. Pruebas de transmisión mecánica con el virus del bandeado amarillo del sorgo (SYBV). Revista Facultad de Agronomía, Universidad Central de Venezuela 17: 269-281.
Gil, J.F. Ayala, M., Jaramillo, M., Martínez, J.E., Alvarez, J., Gutierrez, P., Gonzalez, P., Cotes, J.M.y Marín, M. 2009. Incidencia del Potyvirus asociado a la virosis del tomate de árbol (Solanum betaceum) en Antioquia (Colombia). En: XV Congreso Latinoamericano y XVIII Congreso Chileno de Fitopatología. Libro de Resúmenes. Pag. 160.
Gil, J.F. Ayala, M., González, P. y Marín, M. 2009. Identificación de Potyvirus en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav) en Antioquia mediante detección serológica. Revista Politécnica, Politécnico Colombiano Jaime Isaza Cadavid 8: 112-120.
Gobernación de Antioquia. 2008. Anuario Estadístico Agropecuario Año 2007: Estadisticas Agropecuarias por concenso. Disponible en: www.antioquia.gov.co. Consulta: Octubre- 2009.
Gobernación de Cundinamarca. 2002. Anuario Estadístico Agropecuario Año 2000:
Estadisticas Agropecuarias por concenso. Disponible en:
www.planeacion.cundinamarca.gov.co. Consulta: Octubre-2009.
Gobernación de Cundinamarca. 2006. Anuario Estadístico Agropecuario Año 2005:
Estadisticas Agropecuarias por concenso. Disponible en:
www.planeacion.cundinamarca.gov.co. Consulta: Octubre-2009.
Guyader S. & Ducray D.G. 2002. Sequence analysis of Potato leafroll virus isolates reveals genetic stability, major evolutionary events and differential selection pressure between overlapping reading frame products. Journal of General Virology 83: 1799-1807.
Hemmati, K. y McLean, D. L. 1977. Gamete-seed transmission of alfalfa mosaic virus and its effect on seed germination and yield in alfalfa plants. Phytopathology 67: 576-579.
Hsu, Y.C., Yeh, T.J. y Chang, Y.C. 2005. A new combination of RT-PCR and reverse dot blot hybridization for rapid detection and identification of potyviruses. Journal of Virological Methods 128: 54-60.
Hull, R. 2004. Mathew’s Plant virology. Fourth Edition. Elsevier Academic Press, USA. 1001 p.
Husted, K. 1995. Reason for non-aphid transmissibility in a strain of Kalanchoe mosaic potyvirus. Virus Genes 11:59-61.
Hyun, K. y Park, W.M. 2008. Complementary DNA Hybridization Analysis of Double-
stranded RNAs Associated with Cucumber Mosaic Virus-As Strain. Journal of
ICTVdB Management (2006a). 00.010.0.04.001. Cucumber mosaic virus. In: ICTVdB - The Universal Virus Database, version 4. Büchen-Osmond, C. (Ed), Columbia University, New
York, USA. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/
ICTVdB Management (2006b). 00.071.0.01.013. Tomato mosaic virus. In: ICTVdB - The Universal Virus Database, version 4. Büchen-Osmond, C. (Ed), Columbia University, New
York, USA. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/index.htm
ICTVdB Management (2006c). 00.010.0.01.001. Alfalfa mosaic virus. In: ICTVdB - The Universal Virus Database, version 4. Büchen-Osmond, C. (Ed), Columbia University, New
York, USA. Disponible en:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/00.010.0.01.001.htm
ICTVdB Management (2006d). 00.057.0.01.065. Tamarillo mosaic virus. In: ICTVdB - The Universal Virus Database, version 4. Büchen-Osmond, C. (Ed), Columbia University, New
York, USA. Disponible en:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/00.057.0.01.065.htm
ICTVdB. Management (2006e). 00.018.0.03.029. Tomato ringspot virus. In: ICTVdB - The Universal Virus Database, version 4. Büchen-Osmond, C. (Ed), Columbia University, New
York, USA. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/
Ivars, P., Alonso, M., Borja, M. y Hernández, C. 2004. Development of a non-radioactive dot-blot hybridization assay for the detection of Pelargonium flower break virus and Pelargonium line pattern virus. European Journal of Plant Pathology 110: 275–283.
Jacobi, V., Bachand, G.D., Hamelin, R.C. y Castello, J.D. 1998. Development of a multiplex immunocapture PCR assay for detection and differentiation of tomato and tobacco mosaic tobamoviruses. Journal of Virological Methods 74: 167–178.
Jaramillo, M. 2009. Análisis serológico y molecular de virus asociados al cultivo de tomate de árbol (Solanum betaceum) en Colombia. Trabajo de Grado presentado para optar al Título de Magíster en Biotecnología. Octubre. 127 p.
Jaramillo, M., Ayala, M., Martínez, J.E., Álvarez, J., Gutiérrez, P. y Marín, M. 2009. Detección y caracterización del PLRV (Polerovirus) en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum) en Colombia. En: XV Congreso Latinoamericano y XVIII Congreso Chileno de Fitopatología. Libro de Resúmenes. Pag. 159.
Johansen, E., Edwards, M. y Hampton, R. 1994. Seed transmission of viruses: current perspectives. Annual Review Phytopathology 32: 363-386.
Johansen, I. E., Dougherty, W. G., Keller, K. E., Wang, D. y Hampton, R. O. 1996. Multiple viral determinants affect seed transmission of pea seedborne mosaic virus in Pisumsativum. Journal General Virology 77:3149-3154.
Khan, J. y Dijkstra, J. 2002. Plant viruses as molecular pathogens. Food Product Press Oxford. 537 p.
Khan, J. y Dijkstra, J. 2006. Handbook of plant virology. Food Product Press Oxford. 452 p.
Kogovsek, P., Gow, L., Pompe-Novak, M., Gruden, K., Foster, G.D., Boonham, N. y Ravnikar, M. 2008. Single-step RT real-time PCR for sensitive detection and discrimination of Potato virus Y isolates. Journal of Virological Methods 149: 1-11.
Kokkinos, C.D. y Clark, C.A. 2006. Real-time PCR assays for detection and quantification of sweetpotato viruses. Plant Disease 90:783-788.
Komoda, K., Mawatari, N., Hagiwara-Komoda, Y., Naito, S., and Ishikawa, M. 2007. Identification of a Ribonucleoprotein Intermediate of Tomato Mosaic Virus RNA Replication Complex Formation. Journal of Virology 81: 2584–2591.
Kunate, G. y Neya, B.J. 1996. Rapid detection of cowpea aphid-borne virus in cowpea seeds. Annual Applied Biology 129: 261-266.
Levin R. E. 2004. The Application of Real-Time PCR to Food and Agricultural Systems. A Review. Food Biotechnology 18: 97-133.
Li R., Mock R., Huang Q., Abad J., Hartung J. & Kinard G.. 2008. A reliable and inexpensive method of nucleic acid extraction for the PCR-based detection of diverse plant pathogens. Journal of Virological Methods 154: 48-55.
Llácer, G., López, M.M., Trapero, A. y Bello, A. 1996. Patología Vegetal Tomo I. Sociedad Española de Fitopatología. Mundi prensa. 695 p.
Makkouk, K.M., Hsu, H.T. y Kumari, S.G. 1993. Detection of three plant virases by dot- blot and tissue-blot immunoassay using chemiluminescent and chromogenic substrates. Journal Phytopathology 139: 97-102.
Makkouk, K.M. y Kumari, S.G. 2002. Low cost paper can be used in tissue-blot immunoassay for detection of cereal and legume viruses. Phytopathologia Mediterranea 41: 275-278.
Maldonado, C. y Sánchez de Luque, C. 1984. Caracterización, purificación y serología del virus de la necrosis anular del tomate de árbol (Cyphomandra betacea sendt). En: Resúmenes VI Congreso ASCOLFI. Santa Marta, Colombia. 54 p.
Martínez, A.K., Morales, F.J. y Vallejo, F.A. 2008. Caracterización molecular de un begomovirus del tomate en el Valle del Cauca, Colombia, y búsqueda de fuentes de resistencia para el mejoramiento de la variedad Unapal Maravilla. Acta Agronómica 57: 3.
Martínez, J.E., Gil, J.F., Ayala, M.L., Jaramillo, M., Rodríguez, V., Lagos, L.E. y Marín, M. 2009. Virus asociados a la enfermedad de la virosis del tomate de árbol (Solanum betaceum) en los departamentos de Nariño y Putumayo de Colombia. En: XV Congreso
Latinoamericano y XVIII Congreso Chileno de Fitopatología. Libro de Resúmenes. Pag. 226.
Más, P. y Pallas, V. 1995. Non-isotopic tissue-printing hybridization: a new technique to study long-distance plant virus movement. Journal of Virological Methods 52: 317-326.
Mason, G., Roggero, P. y Tavella, L. 2003. Detection of Tomato spotted wilt virus in its vector Frankliniella occidentalis by reverse-transcription polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods 109:69-73
Matthews, R.E.F. 1993. Diagnosis of plant virus diseases. CRC Press. 374 p.
Maude, R.B. 1996. Seedborne diseases and their control. CAB international. 279 p.
Maule, A. y Wang, D. 1996. Seed transmission of plant viruses: a lesson in biological complexity. Trends in Microbiology 4: 153-158.
Mayo, M., Ryabov, E., Fraser, G. y Taliansky, M. 2000. Mechanical transmission of Potato leafroll virus. Journal of General Virology 81: 2791–2795.
Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural - MARD. 2006. Observatorio agrocadenas Colombia. Disponible en http://www.agrocadenas.gov.co). Consulta: Enero 2008.
Morris, T.J y Dodds, J.A. 1979. Isolation and analysis of double-stranded RNA from virus- infected plant and fungal tissue. Phytopathology 69: 854-858.
Mowry, Th. M. y Ophus, J. D. 2002. Effects of sub-lethal imidacloprid levels on Potato leafroll virus transmission by Myzus persicae. Entomologia Experimentalis et Applicata 103: 249–255.
Mumford, R. A. Barker, I. y Wood, K. R. 1996. The Biology of the Tospoviruses. Annual applied Biology 128:159-183.
Murkherjee K., Verma Y., Chakrabarti S., Singh M.N. & Khurana S.M.P.. 2003. Cloning and sequencing of coat protein gene of an Indian Potato leafroll virus (PLRV) isolate and its similarity with other members of Luteoviridae. Virus genes 26: 247-253.
Nie, X. y Singh, R.P. 2001. A novel usage of random primers for multiplex RT-PCR detection of virus and viroid in aphids, leaves, and tubers. Journal of Virological Methods 91: 37–49.
Ochoa L, J. e Insuasti A, M. 2005. Etiología de las enfermedades virales del tomate de arbol en Ecuador. Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Quito (Ecuador). Informe Técnico Anual - INIAP (Ecuador). Est. Exp. Santa Catalina. Departamento Nacional de Protección Vegetal estudios agronómicos, fitopatológicos y entomologicos de frutales nativos andinos 1:1-4.
Ogawa T., Tomitaka Y., Nakagawa A. & Ohshimab K. 2008. Genetic structure of a population of Potato virus Y inducing potato tuber necrotic ringspot disease in Japan; comparison with North American and European populations. Virus Research 131: 199-212.
Pasquini, G. y Barba, M. 2006. The question of seed transmissibility of Plum pox virus. Boletínn OEPP/EPPO 36: 287–292.
Plchova H. y Cerovska N. 2009. Short communication: Molecular analysis of Potato leafroll virus isolates from the Czech Republic Tomas Moravec Æ Petr Dedic Virus Genes 39: 153-155.
Rizos, H., Gunn, L.V., Pares R.D. y Gillings M.R. 1992. Differentiation of Cucumber mosaic virus isolates using the polymerase chain reaction. Journal of General Virology 73: 2099-2103.
Rodríguez, V. 2009. Identificación serológica y molecular de los agentes causales asociados a enfermedades virales del tomate de árbol (Solanum betaceum) en cultivos del
municipio de Córdoba (Nariño). Trabajo de Grado presentado para optar al Título de Bióloga. Octubre. 89 p.
Roselló, S., Díez, M. Jo. y Nuez, F. 1996. Viral diseases causing the greatest economic losses tomato crop - a review. Scientia Horticulturae 67: 117- 150.
Rott, M. E., Tremaine, J. H. y Rochon, D. M. 1991. Nucleotide sequence of Tomato ringspot virus RNA-2. Journal of General Virology 72: 1505-1514.
Rubio, L., Janssen, D., Cuadrado, I.M., Moreno, P. y Guerri, J. 2003. Rapid detection of cucumber vein yellowing virus by tissue-print hybridisation with digoxigenin-labelled cDNA probes. Journal of Virological Methods 114: 105-107.
Saldarriaga, A. y Bernal, J.A. 1994. Virus en tomate de árbol (Cyphomandra betacea Sendt). 5 pp. En: Resúmenes XV Congreso ASCOLFI. Bogotá. 150 p.
Saldarriaga, A., Bernal, J.A. y Tamayo, P. 1997. Virosis del tomate de árbol. En: Enfermedades del cultivo de árbol en Antioquia: Guía de reconocimiento y control. Boletín técnico CORPOICA.
Sambrook, J. y Russell, D.W. 2001. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Third edition. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, U.S.A. p. 5.26- 5.50.
Samuitiene, M., Zitikaite, I., Navalinskiene, M. y Valiunas, D. 2003. Identification of tomato ringspot nepovirus by RT-PCR. Biologija 4: 35-38.
Sánchez, de Luque. C. 1982a. Estudios de hospedantes de un nuevo virus en el tomate de árbol (Cythomandra betacea Sendt). En: Programa y resúmenes V Congreso Asociación Colombiana de Fitopatología ASCOLFI, XXII Reunión Anual de la Sociedad Americana de Fitopatología. División Caribe, ASP- CD, Cali, Colombia. Julio 12 - 17. P. 41 -42.
Saldarriaga, A., Zapata, J.L. y Bernal, J. 1998. Estudios de evaluación de la transmisión del virus del tomate de árbol. pp.56. Informe final (proyecto CORPOICA-PRONATTA).
Sánchez, de L., C. 1982b. Presencia de virus en tomate de árbol (Cyphomnadra betacea (Cav) Sendt) en Colombia. En: Programa y resúmenes V Congreso, Asociación Colombiana de Fitopatología ASCOLFI, XXII Reunión Anual de la Sociedad Americana de Fitopatología - División Caribe, APS - CD. Cali, Colombia. Julio 12 - 17. P. 3.
Sañudo, B. y Orellana, G. 1989. Un virus afectando tomate de árbol (Cyphomandra betacea) en Valle del Sibundoy, Putumayo. ASCOLFI Informa 15: 24.
Singh, R.P., Kurz, J., Boiteau G. y Bernard, G. 1995. Detection of Potato leafroll virus in single aphids by the reverse transcription polymerase chain reaction and its potential epidemiological application. Journal of Virological Methods 55: 133-143.
Singh R., Nie, X. & Singh, M. 2003. Duplex RT-PCR: reagent concentrations at reverse transcription stage affect the PCR performance. Journal of Virological Methods 86: 121- 129.
Singh R., Valkonen T., Gray S. M., Boonham N., Jones R. A. C., Kerlan C. & Schubert J. 2008. Brief Review Discussion paper: The naming of Potato virus Y strains infecting potato. Archives of Virology 153: 1-13.
Sokhandan, N., Rasaei, B. M. y Nourinejhad, S. 2006. Detection, differentiation and phylogenetic analysis of Cucumber mosaic virus isolates from cucurbits in the northwest region of Iran. Virus Genes 32:277–288.
Taliansky M., Mayo M. & Barker H. 2003. Pathogen profile Potato leafroll virus: a classic pathogen shows some new tricks. Molecular Plant Pathology 4: 81-89.
Tamayo, P.J. 1996. Enfermedades Virales del tomate de árbol (Cyphomandra betacea (Cav).Sendt.) en Colombia. ASCOLFI Informa 22: 26-29.
Tamayo, P.J., Zapata, J.L. y Salazar, L.F. 1999. El mosaico y la virosis del tomate de árbol en el altiplano norte de Antioquia. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín. 52: 781-785.
Tsai, J. C., Chen, T. H. y Chang, C. A. 2008. Identification and characterization of a Tomato mosaic virus isolate infecting Ixora (Ixora duffii cv. 'Super King'). Plant Pathology Bulletin 17: 143-155.
Tsompana, M., Abad, J., Purugganan, M. y Moyer, J. W. 2005. The molecular population genetics of the Tomato spotted wilt virus (TSWV) genome. Molecular Ecology 14: 53– 66.
Valverde R.A. 1990. Analysis of Double-Stranded RNA for Plant Virus Diagnosis. Plant Disease 74 (3):255-258.
Vizuete, B., Insuasti, M. L., Ochoa, J. y Ellis, M. S.f. 1990. Biological and serological characterization of tree tomato virus diseases in Ecuador. INIAP, Ohio State University. 3 p.
Wang, D. W. y Maule, A. J. 1997. Contrasting patterns in the spread of two seed-borne viruses in pea embryos. Plant Journal 11:1333-1340.
Xu, H. y Nie, J. 2006. Identification, characterization, and molecular detection of Alfalfa mosaic virus in potato. Phytopathology 96: 1237-1242.
Yelina, N. E., Savenkov, E. I., Solovyev, A. G., Morozov, S. Y. y Valkonen, J. P. 2002. Long-distance movement, virulence, and RNA silencing suppression controlled by a single protein in hordei- and potyviruses: Complementary functions between virus families. Journal of Virology 76:12981-12991.
Zitikaitė, I. y Samuitienė, M. 2008. Identification and some properties of Alfalfa mosaic alfamovirus isolated from naturally infected tomato crop. Biologia 54: 83–88.