Ubicación
El trabajo se llevó a cabo en el vivero comercial “Cazones”, Cazones, Ver. Material vegetal
Plantas de 5 meses provenientes de semilla producidas en almacigo, de los siguientes portainjertos: citrange „Carrizo‟ (P. trifoliata L. Raf. x C. sinensis L.), citrumelo „Swingle‟ (C.P.B. 4475) y limón „Volkameriano‟ (C. volkameriana Ten. & Pasq.) con los grados de malformación deseados y altura uniforme de 15 cm se trasplantaron a bolsas de polietileno negras de 20 x 34 cm. Al momento del trasplante las plántulas se sumergieron en una solución de Benlate® (Benomyl) con dosis de 1 g L-1.
Sustrato
Se utilizó una mezcla de tierra vega, lombricomposta y agrolita 3:1:1 (V/V/V). Se aplicó 1Kg m-3 de azufre en el momento de realizar la mezcla de sustrato. Se tomó una muestra de sustrato y se determinaron las características químicas y contenido nutrimental en el Laboratorio de Nutrición de cultivos, IRENAT, Campus Montecillo, Colegio de Posgraduados.
Preparación de la muestra. Se tomó una muestra de 1 K de la mezcla, se llevó al laboratorio donde se colocó en una capa delgada sobre papel, se secó a temperatura ambiente por 72 h. La muestra se molió y se pasó por un tamiz de 1- 2 mm de diámetro, se colocó en una bolsa de plástico y se etiquetó. De acuerdo a
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los resultados del análisis del sustrato (Cuadro 4), se considera que es fuertemente alcalino (Lucas y Davies, 1961). La conductividad eléctrica denota la presencia de sales, ya que a valores entre 2 y 4 dS m-1, como en este caso, ocurre la disminución en el rendimiento en cultivos muy sensibles (Richards, 1982). De acuerdo al contenido de materia orgánica; es un sustrato mineral (<2 %) (Mengel y Kirkby, 1987), contenido de nitrógeno total bajo (CSTPA, 1980), también es baja la capacidad de intercambio catiónico, que es característica de suelos arenosos (Mengel y Kirkby, 1987). El contenido de sodio es bajo, de calcio se considera óptimo (+ de 200 ppm) (CSTPA, 1980) y de magnesio bajo (CSTPA, 1980). La relación Ca:Mg del sustrato es 4:1, considerada alta, ya que por lo general una relación Ca:Mg de 2:1 es óptima.
Cuadro 4. Características químicas y contenido nutrimental del sustrato utilizado para el desarrollo de plantas de portainjertos de cítricos, con diferentes grados de malformación en raíz. Cazones, Ver. 2008.
pH 7.83 z CIC 15.22 meq L-1v CE 2.94 dS m-1 y Na 117.44 ppm u MO 1.52 x Ca 506.20 ppm t Nt % 0.03 % w Mg 123.66 ppm s Tratamientos
El diseño de tratamientos fue factorial. Los factores fueron tres portainjertos y cuatro grados de malformación de raíz. Los tratamientos se muestran en el cuadro 5.
El manejo de las plantas correspondió al que es realizado por el vivero comercial. Se monitorearon las plantas para control fitosanitario.
Diseño experimental
Se utilizó un diseño de bloques completos al azar, en parcelas divididas y diez repeticiones por tratamiento. La unidad experimental consistió de una planta. Se realizó análisis de varianza, prueba de medias por Tukey (P < 0.05) y
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correlaciones entre las variables Los datos se procesaron con el Programa SAS® 9.2 (Statistical Analisis System, SAS Institute Inc.).
Cuadro 5. Tratamientos evaluados para determinar el efecto del grado de malformación de raíz, en el desarrollo y nutrición de tres portainjertos de cítricos. Cazones, Ver. 2008.
Tratamiento Portainjerto Grado de malformación de raíz Repeticiones1 1 Citra ge Carrizo 0 10 2 1 10 3 2 10 4 3 10
5 Citru elo S i gle 0 10
6 1 10 7 2 10 8 3 10 9 Li ó Volka eria o 0 10 10 1 10 11 2 10 12 3 10
1 Cada unidad experimental consistió de una planta
Variables
Altura de planta. Durante el desarrollo del experimento, cada seis semanas, se midió con una cinta métrica, desde el cuello hasta el meristemo apical del tallo principal.
Número y longitud de brotes laterales. Cada seis semanas se contaron, se midieron y eliminaron los brotes desarrollados en las plantas. Se cuantificaron estos valores para obtener el número y el tamaño promedio de brotes por tratamiento.
A los diez meses, se llevaron las plantas, al laboratorio de Nutrición del Departamento de Fitotecnia de la Universidad Autónoma de Chapingo (UACh), donde se extrajeron y lavaron con agua corriente. Enseguida se enjuagaron dos veces, una vez con agua destilada y otra con agua destilada y desionizada. Este
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manejo se requirió debido a que se obtuvieron muestras para análisis de nutrientes (N, P, K, Ca, Mg y Zn). Las plantas enjuagadas se colocaron sobre papel estraza a temperatura ambiente para eliminar el exceso de agua. Enseguida se seccionaron en tallo, brotes laterales, hojas, raíz y raíces secundarias para realizar las mediciones.
Longitud del tallo. Al término del experimento se midió la longitud desde la base del cuello, hasta el ápice, se reportó en cm.
Diámetro del tallo. Al final del experimento se midió el diámetro del tallo, 20 cm arriba del cuello de la planta, con un vernier digital, el diámetro se reportó en mm. Número de hojas. Se contaron todas las hojas por planta.
Área foliar. De cada planta se seleccionaron 10 hojas completamente maduras y expandidas y se llevaron al Laboratorio de Fisiología Vegetal del Departamento de Fitotecnia de la UACh para determinar el área foliar de cada muestra con el medidor de área foliar, Area meter LI-310 (LICOR INC., Lincon, Nebraska, USA). Longitud de la raíz. Se midió la longitud de la raíz desde el cuello hasta el ápice de la raíz principal y se reportó en cm.
Número y longitud de raíces secundarias. Se contó el número de raíces secundarias y se midió su longitud.
Volumen de raíz. El volumen se determinó colocando la raíz en una probeta de 200 mL que contenía un volumen de agua conocido, al sumergirla, elevó la columna de agua, éste exceso fue extraído con una pipeta. El volumen de agua extraído correspondió al volumen de la raíz en mL.
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Materia fresca, seca y contenido de agua en hojas, tallo y raíz. Se separó la planta en hojas, tallo y raíz. La raíz se dividió en raíz principal y raíces secundarias. Se pesaron en una balanza Sartorius de 500 g, se colocaron en bolsas de papel de estraza con perforaciones y se pusieron en estufa con circulación de aire forzado a temperatura de 70° C por 72 h, después se tomó el peso de materia seca. El contenido hídrico se obtuvo de la siguiente forma:
100 seca M ateria fresca M ateria agua de Contenido x
Relación raíz-parte aérea. Con los datos de materia seca correspondientes a los diferentes órganos de las plantas se obtuvo la relación raíz-parte aérea de la siguiente forma: aérea parte de seco Peso raíz de seco Peso aérea parte - raíz Relación
Contenido nutrimental. Se analizó el contenido nutrimental de los tres portainjertos en hoja y tallo de plantas con malformación grados 0 y 3. Una vez obtenido el peso de la materia seca, se mezclaron 3, 3 y 4 plantas para formar tres repeticiones por tratamiento. Enseguida se pulverizaron en un molino de acero inoxidable con malla del número 20. La concentración de nitrógeno se determinó por el método Microkjeldal; el K mediante emisión atómica; P, Ca, Mg y Fe se determinaron por absorción atómica (Alcántar y Sandoval, 1999), con un espectrómetro de masas ICP (ICP AES, Varian Inc.Palo Alto, Ca.) en el laboratorio de Nutrición de cultivos, IRENAT Campus Montecillo, Colegio de Posgraduados.
Experimento 4. Estudio anatómico de plantas con diferentes grados de