CARIES DENTAL Y ENFERMEDAD PERIODONTAL
S. mutans ATCC 25175 Sobrinus
6.2 ESTUDIO QUIMICO
6.2.1 Estudio químico de los compuestos de interés.
En la tabla 8 y figura 26 se presenta el análisis químico cualitativo realizado a los compuestos de interés (C1, C2 y Fr. Activa Original), mediante cromatografía en capa fina (CCD), para investigar la presencia de metabolitos secundarios, empleándose como FE:
Compuesto No. 1 2 Fr. Activa Original DMSO AZM
S. mutans 6.5 6.2 8.5 0 15
RP-18 y FM: MeOH: CH2Cl2 (9:1) y el índice de espuma. Se evidencia la presencia de
terpenos, esteroides y saponinas.
Figura 26. Pruebas Químicas Cualitativas en CCD A) Prueba de Dragendorff. B) Prueba de Lieberman-Bürchard. C) Prueba de Börntrager D) Molibdato de Amonio. Positivas para Terpenos y Esteroides.
Prueba Resultado
Lieberman-Bürchard (Triterpenos y esteroides) Positivo Molibdato de Amonio (Diterpenos) Positivo
Börntrager (Antraquinonas) Negativo
Dragendorff (Alcaloides) Negativo
Cloruro Férrico (FeCl3) (Fenoles) Negativo
Indice de Espuma Positivo
Tabla 8. Pruebas químicas cualitativas en CCD e Índice de Espuma de los compuestos de interés.
A B C D
C1 C2 Fr. A.O. C1 C2 Fr.A.O. C1 C2 Fr.A.O. C1 C2 Fr.A.O.
7. DISCUSIÓN
Colombia es un país destacado en el mundo por sus recursos naturales, la gran variedad de flora que se encuentra en ella, ha permitido el desarrollo de la medicina artesanal. (Rojas et al., 2006).Las culturas indígenas marcaron la pauta en el uso de las plantas, basados en la experiencia y el conocimiento empírico, lograron obtener sustancias útiles para la curación y tratamiento de enfermedades. Este conocimiento que ha permanecido durante el tiempo y aun es utilizado como medicina alternativa, ha creado interés en muchos para seguir con la búsqueda de nuevas fuentes medicinales que ayuden a disminuir la incidencia y prevalencia de enfermedades que aquejan a la humanidad, y mejor aún teniendo como fuente las plantas, que por su eficacia, accesibilidad y costo, se ha establecido como la mejor opción para desarrollar medicamentos.
La caries dental aun es considerada un problema de salud pública que afecta a muchos países incluyendo Colombia. El desequilibrio entre las especies microbianas y diferentes factores externos como la alimentación, la higiene oral y el nivel socio-económico influyen en el desarrollo de esta patología. La microflora oral es un sistema complejo que contienen una gran variedad de especies bacterianas. Entre los principales microorganismos asociados a la caries dental son, en orden de importancia: S. mutans, en menor proporción S. sobrinus, y especies de Lactobacillus y Actinomyces. (Shigeyuki H. and Hutton D. 1980). Está claro que el S. mutans cumple un papel importante en la patogénesis de la caries dental, su prevención debe estar encaminada en la inhibición de la adhesión de este microorganismo a la superficie del diente y la inhibición de la glusiltransferasa para formar glucano insoluble en agua, el cual es esencial para la misma adherencia. Al tener presentes estos dos mecanismo de acción de la bacteria nos hace plantear estrategias eficaces para la disminución o eliminación de la misma en cavidad oral, ya que los tratamientos dentales usualmente son costosos y de difícil acceso, especialmente en países en desarrollo como Colombia (Napimoga et al., 2005)
Muchos estudios se han encaminado a la identificación de compuestos o metabolitos secundarios de productos naturales, contra Streptococcus mutans, gran variedad de familias de plantas han demostrado actividad inhibitoria, como las fabáceas (Katsura et al., 2001), familia Moraceae (Park et al., 2003), familia Clusiaceae (Almeida et al., 2007), familia
Theaceae (Tsai et al., 2007), familia Rubiaceae (Jayasinghe et al., 2002) , familia Vitaceae
(Rivero, et al., 2008), familia Asteraceae (Yatsuda, et al., 2005), familia Zingiberaceae ( Xiao, et al., 2006), entre otras. Una familia que en su gran mayoría encontramos en Colombia es la Rubiceae, que contienen sustancias comunes que poseen actividad biológica, especialmente del género Isertia, lo que da una razón para ampliar el estudio de este género el cual presenta un amplio espectro de inhibición, por medio de la búsqueda de técnicas asequibles y eficientes para encontrar sustancias antimicrobianas.
En este estudio se realizaron dos métodos para la obtención de fracciones y subfracciones, de las cuales se obtuvieron resultados positivos para la actividad antimicrobiana. Durante la realización del Método 1: Cromatografía en Columna al Vacío CCV, se demostró actividad inhibitoria en las fracciones de MeOH y MeOH:CH2Cl2 (1:1). La columna se eluyó con
volúmenes de 120 ml aproximadamente. Las fracciones que presentaron actividad fueron obtenidas durante los últimos volúmenes de solventes que se agregarón a la columna, es decir de MeOH y MeOH:CH2Cl2 (1:1), comparándose estos resultados con estudios
anteriores de I. laevis (Alvarado et al., 2008), las fracciones que presentaban inhibición sobre las bacterias, se encontraban en la fracción de MeOH:H2O, ya que se obtuvieron con cuatro
veces el volumen que se utilizó en el presente estudio, es decir, los mismos compuestos se lograron obtener solo al final de la marcha de la columna lo que difiere al estudio anterior.
Ahora bien, con el Método 2: Fraccionamiento líquido/líquido continuo, se logró extraer la fracción activa, sin embargo esta no se encontró en la misma fase móvil utilizada en la primera metodología, ya que se extrajo en Diclorometano (Fracción CH2:Cl2). Esto nos indica
que la fracción antimicrobiana tiene sustancias polares y no polares. Con la Cromatografía en Columna al Vacío CCV, las fracciones con actividad se extrajeron con disolventes con mayor polaridad como el Metanol y con el fraccionamiento líquido/líquido Continuo, se obtuvieron con disolventes de mediana o baja polaridad como lo es el Diclorometano. La cantidad de volúmenes utilizados influyó en que se encontrará la fracción activa en diferentes solventes, pues a diferencia del método 1, se utilizaron hasta 2000 ml de solvente, logrando una extracción más eficiente y relativamente rápida.
El fraccionamiento líquido/líquido proporcionó una técnica eficaz en la obtención de la fracción activa a mayor cantidad y debido a su bajo costo, ya que solo es necesaria la utilización de solventes y calor, esto representa una opción económica para la extracción de sustancias, lo que podrá permitir que esta técnica puede ser implementada a nivel industrial, debido a que los materiales utilizados no cambian, ni modifican las sustancias que se quieren encontrar, debido a su bajo procesamiento, contrario al método de Cromatografía en Columna al Vacío CCV, donde se obtiene poca cantidad de extracto, con materiales como el RP-18, el cual no se utiliza industrialmente, por su costo y viabilidad. Sin embargo, CCV permite obtener fracciones con un grado de mezcla menor, lo que no se puede esperar del fraccionamiento liquido/líquido donde el grado de mezcla de las sustancias extraídas es mucho mayor, lo que se logro evidenciar en el monitoreo con CCD (FE: RP-18, FM: MeOH:CH2Cl2 9:1)
Al evaluarse las fracciones obtenidas de cada método, se obtuvieron mejores resultados con la técnica Difusión en pozo, pues los extractos lograban una mayor difusión en el agar a diferencia de la técnica Difusión en disco que como lo reporta More et al., 2008, esta proporciona buenos resultados, sin embargo, al evaluarse la actividad antimicrobiana de las fracciones de este trabajo, parte del mismo aplicado al papel filtro esterilizado, no permitió su correcta difusión y es posible que el mismo papel generará interferencias en los resultados. Contrario a los presentados por el método Difusión en pozo que según autores como Galvin et al., 1999, permiten una fácil difusión y contacto completo del extracto con el agar inoculado con las bacterias en estudio.
Al obtenerse resultados positivos, similares en el porcentaje de inhibición tanto para S. mutans ATCC 25175 así como para S. sobrinus, nos hace pensar que existan compuestos presentes en las fracciones que in vitro, pueden ser los responsables de interferir en los factores de virulencia y por ende afectar la sobrevivencia de estos microorganismos, como lo confirma Almeida et al., 2007, por lo que creemos de importancia evaluar estos compuestos in vivo.
Las fracciones activas se evaluaron a concentraciones de 0,5 a 20 mg por pozo, con las fracciones del Método 1 se evidenciaron resultados positivos a 2 mg por pozo, la fracción con actividad antimicrobiana del Método 2 mostró resultado positivo a 1 mg por pozo. Las subfracciones se obtuvieron a partir de la fracción Diclorometano (CH2:Cl2) debido a la
cantidad que se tenía, contrario a las fracciones del Método 1, del cual se obtuvo poca muestra. En la evaluación de estas subfracciones se evidencio excelente inhibición en la
Subfracción 2, monitoreada por cromatografía RP-18 corrida con MeOH:CH2Cl2 (9:1) dos
compuestos que se destacaban visualmente, y adicionalmente mostraba menor grado de mezcla. La Subfracción 3 produjo inhibición en menos proporción, ya que contaba con cierta cantidad de clorofila, lo que nos hace pensar que este componente se comporta como un interferente en la acción antimicrobiana de la fracción.
Las Fracciones activas se evaluaron por medio de Bioautografías, las cuales se revelaron con Sal de tetrazolium o MTT, para permitir la visualización de zonas de inhibición, por medio de la reducción metabólica del Bromuro de 3-(4,5-dimetiltiazol-2-ilo)-2,5-difeniltetrazol por parte de las bacterias viables, produciendo formazan, el cual se caracteriza por una coloración azul-púrpura, indicándonos la presencia de crecimiento bacterial donde el extracto no produjo ninguna acción antimicrobiana. La Bioautografía es entonces un método que nos permite, saber si los compuestos que se separan por medio de la cromatografía, tienen acción por si solos o es necesaria su unión para producir un efecto inhibitorio significativo. Los resultados presentados nos demuestra que la acción antimicrobiana se da por los dos compuestos de interés sin embargo la unión de los dos produce mayor efecto inhibitorio.
El método MTT, no solo fue aplicado a las Bioautografías, sino también se implemento en la visualización de los halos de inhibición, producidos por los extractos evaluados por medio del Método de Difusión en Pozo, permitiéndonos una fácil lectura del diámetro de los halos.
Todas las fracciones activas fueran monitoreadas de la misma forma, comparadas con la subfracción activa del estudio anterior de la misma planta, en estas cromatografías se logro observar que todas las sustancias poseen en común dos compuestos con Rf de 0,42 y 0,23, confirmándose que se logró extraer los mismos compuestos del estudio anterior por dos diferentes métodos.
A partir de esto se llega a la separación de los compuestos de interés, obteniendo tanto el compuesto 1 como el compuesto 2 y su mezcla. La evaluación microbiológica de estos compuestos separados, nos demuestra que tienen la capacidad de inhibir las bacterias, la cual se aumenta con la interacción de su mezcla. Al observarse la excelente acción antimicrobiana de estas sustancias, se realizó estudio químico cualitativo, que demostraron que los compuestos separados contienen Terpenos y esteroides lo que concuerda con Murphy 1999, quien reporta la acción inhibitoria de estos metabolitos sobre bacterias, por medio de la interrupción de la formación de la pared celular de las mismas. De igual forma
bacterias Gram-positivas como bacterias Gram-Negativas según lo reportado por Sparg et al., 2004.
8. CONCLUSIONES
La planta Isertia laevis ha sido objeto de pocos estudios microbiológicos, donde se evidencia su capacidad antimicrobiana en otras enfermedades, diferentes a la caries dental, dando un razón para seguir su estudio químico y microbiológico, que permita el desarrollo de nuevos fitomedicamentos.
Se logró obtener fracciones con actividad antimicrobiana de las hojas I. laevis por medio de dos métodos diferentes: Cromatografía en Columna al Vacío CCV y Fraccionamiento Liquido/Liquido Continuo.
Al separar las fracciones activas se determinaron dos compuestos con Rf de 0,37 y 0,51, presentados también por la subfracción inhibitoria del estudio anterior de la planta (Alvarado et al., 2008), lo que permite concluir que estas contienen los metabolitos que generar el efecto antimicrobiano.
Los compuestos separados de las fracciones activas, por si solos tienen actividad inhibitoria, sin embargo, en sinergia aumentan su efecto sobre las bacterias evaluadas.
Se determinó que con la CCV se extrajeron las fracciones activas en poca cantidad pero con un menor grado de mezcla, es decir que al ser evaluadas con bajas concentraciones se obtuvieron excelentes resultados de inhibición. Con el fraccionamiento líquido/líquido la extracción de la fracción activa se obtuvo con un grado de mezcla mayor, sin embargo la cantidad de extracto comparado con la cantidad que se extrajo con el Método 1. Este grado de mezcla, interfiere en la acción antimicrobiana del mismo extracto (Presencia de clorofilas), lo cual disminuye la actividad inhibitoria, por lo tanto es necesario realizar su respectiva purificación o separación de compuestos.
La concentración mínima inhibitoria del método 1 fue 2 mg por pozo y la concentración inhibitoria del método 2 fue 1 mg por pozo.
El fraccionamiento líquido/líquido puede ser la mejor opción para extraer industrialmente extractos de plantas, debido a su bajo costo y poco procesamiento de las sustancias.
Se concluye también que el método MTT dio excelentes resultados para visualizar de manera fácil los halos de inhibición producidos por las fracciones evaluadas en el método difusión en pozo, permitiendo la lectura correcta del diámetro de los halos.
9. RECOMENDACIONES
Se recomienda realizar pruebas microbiológicas de las fracciones activas en otras cepas bacterianas (Mycobaterias) asociadas a otras patologías humanas.
Es importante evaluar el efecto tóxico en células humanas sanas de las fracciones y de igual forma evaluar el efecto farmacológico, toxicológico y realizar estudios clínicos de la fracción activa.
Se recomienda aislar, purificar e identificar algunos de los componentes de la mezcla para posteriormente cuantificar su contenido y estandarizar la fracción activa
Se sugiere buscar sustancias bioactivas que tengan efecto antimicrobiano en otras plantas de la familia Rubiaceae.
Sería de gran importancia determinar el efecto biológico de las fracciones activas sobre las bacterias en estudio y otras de importancia clínica.
Se recomienda el uso del MTT para pruebas microbiologías en la evidencia de halos de inhibición.
10. BIBLIOGRAFIA
Ahn, Sug-Joon; Ahn, Sang-Joon; Wen, Z.; Brady, J. and Burne, R. 2008. Characteristics of Biofilm Formation by Streptococcus mutans in the Presence of Saliva. Infection and Immunity. Vol. 76, no. 9: 4259–4268.
Almeida, L.; Murata, R.; Yatsuda, R.; Dos Santos, M.; Nagem T.; Alencar, S.; Koo, H. and Rosalen, P. 2007. Antimicrobial activity of Rheedia brasiliensis and 7-epiclusianone against Streptococcus mutans. Phytomedicine Journal: 12.003
Alvarado, A., Téllez, N. & Gamboa, F. 2007. Actividad antmicrobiana de extractos, fracciones y subfracciones obtenidas a partir de hojas de Isertia laevis sobre bacterias asociadas a caries dental. Tesis de Maestría. Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Ciencias. Bogotá, Colombia.
Alvarado, A., Téllez, N. & Gamboa, F. 2008. Evaluación de la actividad inhibitoria de extractos, fracciones y subfracciones obtenidas de a planta Isertia laevis sobre bacterias de importancia en caries dental. Revista de la Federación Odontológica Colombiana. Volumen 71, No. 223: 8-15.
Badet C. and Thebaud, N.B. 2008. Ecology of Lactobacilli in the Oral Cavity: A Review of Literature. The Open Microbiology Journal. Vol. 2, 38-48.
Balda, R.; Blanco, O. and Solórzano, A. 1999. Inicial lesion of caries. part i. macroscopic and microscopic characteristics. Acta Odontológica Venezolana.. Volumen 37 No. 3.
Bernas, T and Dobrucki, J. 2002. Mitochondrial and Nonmitochondrial Reduction of MTT: Interaction of MTT With TMRE, JC-1, and NAO Mitochondrial Fluorescent Probes. Cytometry 47:236–242.
Boom, B. M. 1984. A Revision of Isertia (Isertieae: Rubiaceae). Brittonia 36: 425-454.
Cannell, Richard. 1998. Natural Products Isolation. Methods in Biotechnology. Totowa, NJ; 4.
Choma, Irene. 2005. The Use of Thin-Layer Chromatography with Direct Bioautography for Antimicrobial Analysis. [en línea] www.lcgceurope.com [Consulta: 17 abr. 2009]
Cuenca, E. and Baca, P. 2005. Odontología Preventiva y Comunitaria: Principios, Métodos y Aplicaciones. 3ª. Edición. Barcelona.
Cunico, M; Lopes, A; Cocco, L; Yamamoto, C; Plocharski, R; Miguel, M; Junior, M; Auer, C and Miguel, O. 2007. Phytochemical and Antibacterial Evaluation of Essential Oils from Ottonia Martiana Miq. (Piperaceae). J. Braz. Chem. Soc. Vol. 18 No. 1, 184-188.
Cvitkovitch, D.; Li, Y. and Ellen, R. 2003. Quorum sensing and biofilm formation in Streptococcal infections. J. Clin. Invest. 112:1626–1632
Dashper, S.G. and Reynolds, E.C. 1992. pH Regulation by Streptococcus mutans. Journal Dent. Res. 71(5):1159-1165.
Dobner, M; Stefan Schwaiger, S; Jenewein, I and Stuppner, H. 2003. Antibacterial activity of Leontopodium alpinum (Edelweiss). Journal of Ethnopharmacology 89: 301–303
Erazo, S.; Gonzalez, V; Zaldivar, M. and Negrete, R. 1997. Antimicrobial Activity of Psoralea glandulosa L. Pharmaceutical Biology, 35: 5, 385 – 387.
Galvin, M., Hill, C. and Ross, R.P. 1999. Lacticin 3147 displays activity in buffer against Gram-positive bacterial pathogens which appear insensitive in standard plate assays. Letters in Applied Microbiology 28, 355–358
García B.H. 1975. Flora medicinal de Colombia. Botánica médica. Instituto de Ciencias Naturales. Universidad Nacional Colombia.
Goméz, M.; García, J.; Cantón, R.; García, J.; Martinez, L.; Rodríguez, C. and Vila J. 2001. Procedimientos en microbiologia Clínica. Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica.
Gutierrez, M.I.; Ruiz, R.E. and Benito, I.L. 2005 Recuperación de Veillonellas a partir de saliva. Revista Argentina de Microbiología 37: 22-25
Hostettmann, K. 1999. Strategy for the biological and chemical Evaluation of Plant Extracts. URL: http://www.iupac.org/symposia/proceedings/phuket97/hostettmann.html
Katsura, H.; Tsukiyama, R.; Suzuki, A. and Kobayashi, M. 2001. In vitro Antimicrobial Activities of Bakuchiol against Oral Microorganisms. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. Vol. 45, No. 11: 3009-3013.
Jayasinghe, O; Jayasooriya, C; Bandara, B.; Ekanayake, S.; Herlini, L. and Assante, G.2002. Antimicrobial Activity of Some Sri Lanka Rubiaceae and Melaceae. Fitoterapia 73: 424-427.
Jonathan, E.K., Anna, K.J. and Johannes, V.S. 2000. Zulu medicinal plants with antibacterial activity. Journal of Ethnopharmacology 69, p.241-246.
Liébana, J.; Castillo, A. and Álvarez, M. 2004. Enfermedades periodontales: Consideraciones microbiológicas. Med Oral Patol Oral Cir Bucal.
Mendoza, H.; Ramirez, B. and Jiménez, L C. 2004 Rubiaceae de Colombia, guía ilustrada de géneros. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt, Bogota Colombia. 351 p.
Ministerio de Salud Galviz RV. III Estudio Nacional de Salud Bucal – ENSAB III. II Estudio Nacional de Factores de Riesgo de Enfermedades Crónicas – ENFREC II. Tomo VII Estudio.
More, G.; Tshikalange, T.E.; Lall, N.; Botha, F. and Meyer, J.J.M. 2008. Antimicrobial Antivity of Medicinal plants against oral Microorganisms; Journal of Ethnopharmacology 5147.
Mouton, C. 1995. Bacteriología bucodental. Versión española de la obra original en lengua francesa. Masson S.A. Barcelona, España, 183 págs.
Murphy Cowan, M. 1999. Plant Products as Antimicrobial Agents. Clinical Microbiology Reviews. Vol. 12, No. 4: 564-582.
Nacional de Salud Bucal. Colombia 1999. URL disponible en:
http://servicio.cid.uc.edu.ve/odontologia/revista/v4n1/4-1-2.pdf
Napimoga M.H.; Höfling J.F.; Klein M.I.; Kamiya R.U.; Goncalves R.B.; 2005,; Transmition, Diversity and Virulence Factors of Streptococcus mutans Genotypes,; Journal of Science, Vol. 47, No 2, 59-64, 2005.
Nascimento, M; Lemos, J; Abranches, J; Goncalves, R. and. Burne, R. 2004. Adaptive Acid Tolerance Response of Streptococcus sobrinus. Journal of Bacteriology. Vol. 186, No. 19: 6383–6390
National Committee for Clinical Laboratory Standards. 1993. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests: approved standard M2-A5. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Villanova, Pa.
Niño, J.M., Morales, P.A., Batero, J., Correa, Y.M. & Mosquera, O.M. 2007. Extractos vegetales con actividad sobre cepas mutadas de Saccharomyces cerevisiae con deficiencia en el mecanismo de reparacion de ADN. Scientia et Técnica, abril año/volumen XIII, número 033. Universidad Tecnológica de Pereira. Colombia. 431-434 p.
Nishiyama, C.; Geller, D. and Francisconi, P.A. 2006. Caries Oclusal Incipiente: Un nuevo Enfoque. Rev Estomatol Herediana; 16 (2): 126 – 130.
ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE LA SALUD. Medicina Tradicional. URL disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs134/
Organización Panamericana de la Salud. SALUD ORAL. URL disponible en: http://www.paho.org/Spanish/gov/cd/doc259.pdf
Park, K.; You, J.; Lee, H.; Baek, N. and Hwang, J. 2003. Kuwanon G: an antibacterial agent from the root bark of Morus alba against oral pathogens. Journal of Ethnopharmacology, Volume 84 2-3:181-185.
Pedrozo Perez, J. 2008. Métodos Fitoquímicos. Análisis Fitoquímico. Grupo de Investigación Fitoquímica de la Universidad Javeriana.
Pinto, D.; Tomaz,a.; Tavares, T.; Tenório-Souza, F.; Dias, C.; Braz-Filho, R. and V. L. da- Cunha, E. 2008. Secondary metabolites isolated from Richardia brasiliensis Gomes (Rubiaceae). Brazilian Journal of Pharmacognosy 18(3): 367-372.
Reyes, J. 2001. Estudio del Esmalte Dental Humano por Microscopia Electrónica y Técnicas Afines. Rev. LatinAm. Met. Mat. Vol.21, no.2, p.81-85.
Rios, J.L.; Recio, M.C. and Villar, A. 1988. Screening methods for natural products with antimicrobial activity: A review of the literature. Journal of Ethnopharmacology, Volume 23: 127-149.
Rivero, J.; Zhu, M.; Kinghorn, D. and Wu, C. 2008. Antimicrobial constituents of Thompson seedless rainsins (Vistis vinifera) against selected oral pathogens. Phytochemistry letters. 34:1-4.
Rodríguez, A. & González, O.A. 2000. Fisiopatología de la caries dental. Universitas Odontológica 20 (suppl 1): 21-27.
Rojas, J.; Ochoa, V. and Ocampo, S. 2006. Screening for antimicrobial activity of ten medicinal plants used in Colombian folkloric medicine: A possible alternative in the treatment of non-nosocomial infections. BMC Complementary and Alternative Medicine 6:2
Sakanaka, S.; Kim, M.; Taniguchi, M. and Yamamoto, T. 1989. Antibacterial Substances in japanese Green Tea Extract against Streptococcus mutans, a Cariogenic Bacterium. Agricultural and Biological Chemistry Vol.53 , No.9 p.2307-2311
Shigeyuki, Hamada and Hutton, D. 1980. Biology. Immunology and Cariogenicity of Streptococcus mutans. Microbiological Reviews. Vol. 44 No. 2: 331-384.
Shoemaker, M.; Cohen, I. and Campbell, M. 2004. Reduction of MTT by aqueous herbal