en 9 cepas de M bovis.
8.2 Evaluación de la actividad inhibitoria de péptido sintéticos
En varios estudios se ha demostrado que existe una alta diversidad genética de cepas de M. bovis en las poblaciones bovinas (Steck et al., 1978; Brennan, 1989; Draper, 1998 Gorocica et al., 2005), lo que respalda los resultados obtenidos en esta tesis, donde se observó variación en la sensibilidad entre cepas, como fue el caso de la cepa 5 sensible a todos los péptidos sintéticos.
Por otra parte, se sabe que la diversidad genética de las cepas no solamente ocurre entre diferentes regiones de México sino también dentro de un mismo rebaño, por lo que el brote de la tuberculosis bovina en un rebaño puede ser casada por múltiples
cepas de M. bovis (Perumaalla et al., 1996).De este modo, se entiende la importancia
de estudios epidemiológicos genéticos de M. bovis, que resultarían una herramienta de
gran utilidad en la búsqueda de un compuesto con actividad sobre esta micobacteria. El haber encontrado actividad de inhibición en el péptido sintético de anémona sobre cepas diferentes de M. bovis, es concordante con trabajos anteriores donde se comprobó actividad antifímica en extractos crudos de anémona (Munro, 2005), por lo que se sugiere continuar con esta línea de investigación.
Finalmente el hecho de haber encontrado, en la revisión de antecedentes, discrepancias entre los datos mostrados por SAGARPA y SENASICA en cuanto al grado de prevalencia de tuberculosis de ganado en México, sugiere que estos criterios deberían cotejarse cuidadosamente de manera paralela, por las implicancias prácticas que conlleva, porque según el grado se aplican diferentes requisitos más o menos rigurosos antes de movilizar los hatos.
Conclusiones
Los procedimientos seguidos con fracciones y subfracciones fueron adecuados, ya que permitieron obtener resultados que apoyan la hipótesis de que el crecimiento de Mycobacterium bovis puede ser inhibido por una o más toxinas del veneno de Conus californicus.
El empleo de péptidos sintéticos, en la medida en que estén disponibles, e independientemente de que provengan de entidades diferentes al género Conus, puede ser un recurso metodológico a tener en cuenta en futuros estudios. La variación que se mostró en la sensibilidad entre cepas refuerza la idea de que estudios epidemiológicos genéticos de M. bovis, resultarían una herramienta de gran utilidad en la búsqueda de un compuesto con actividad sobre esta micobacteria. Los datos sobre el grado de prevalencia de la tuberculosis en el ganado bovino de diferentes regiones de México, ofrecidos por parte de diferentes agencias de gobierno, deberían ser consistentes entre sí, debido a las implicancias prácticas que esto conlleva.
47 Referencias bibliográficas
Acosta R., Estrada C. y Milian F. 2009. Tipificación de cepas de Mycobacterium bovis.
Revisión. Téc. Pecu. Méx. 47(4): 389-412.
Álvarez N., Borreo R., Padron M., Martínez I., Acosta M., García M., Echemendía M., Montoso E., Mohd N., Sarmiento M. y Acosta, A. 2009. Obtención y caracterización
parcial de un extracto lipidico de la membrana externa de Mycobacterium Smegmatis.
Vaccimonitor. 18 (1): 15-19.
Antuch, W., Berndt, K., Chavez, M., Delfin, J., and K. Wuthrich. 1993. The NMR solution structure of a Kunitz-type proteinase inhibitor from the sea anemone Stichodactyla helianthus. Eur. J. Biochem. 212 (3): 675-684.
Bernáldez J. 2013. Aislamiento y caracterización de tóxinas de caracoles marinos del género Conus con actividad en Mycobacterium tuberculosis. (Tesis de Doctorado, Centro de Investigación y de Educación Superior de Ensenada, Baja California). Recuperado de: http//:www.biblioteca.cicese.mx
Böddinghaus B., Rogall T., Flohr T., Blocker H., Bottger E. 1990. Detection and identification of Mycobactera by amplification of rRNA. J. Clin. Microbiol. 28 (8): 1751- 1759.
Brennan PJ. 1989. Structure of mycobacteria: recent developments in defining cell wall carbohydrates and proteins. Rev. Infect. Dis. 11 (2): 420-430.
Brennan P. y Nikaido H. 1995. The envelope of mycobacteria. Rev. Biochem. 64: 29-
63. Recuperado de:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Brennan+P.+y++Nikaido+H.+1995.+The+en velope+of+mycobacteria.+Rev.+Biochem.+64%3A+29-63.
Brosch R., Gordon S., Marmiesse M., Brodin P., Buchrieser C., Eiglmeier K., Garnier T., Gutierrez C., Hewinson G., Kremer K., Parsons M., Pym S., Samper S., Van Soolingen, D., Cole, S. 2002. A new evolutionary scenario for the Mycobacterium- tuberculosis complex. Proc. Natl. Acad. 99(6): 3684–9.
Castañeda O., Sotolongo V., Amor A., Stockin R., Anderson A, Harvey A, Engstrom A, Wernstedt C and Karlsson E. 1995. Characterization of a potassium channel toxin from the Caribbean sea anemone Stichodactyla helianthus. Toxicon. 33 (5): 603-613.
Cervantes K. L. 2013. Aislamiento y caracterización del péptidos inmunomoduladores
presentes en el veneno de caracoles marinos del género Conus. (Tesis de Doctorado,
Universidad Autónoma de Baja California, Ensenada, Baja California). Recuperado de
48
Chag G., Spencer R., Lee A., Barclay M., and Reest D. 1998. Structure of the MscL Homolog from Mycobacterium tuberculosis: A Gated Mechanosensitive ion Channel. Sciencie. 282 (5397): 2220-6.
Clavijo A., Alfaro C., Corso M., y Rolo M. 2004. Todo lo que usted debe saber sobre la
tuberculosis bovina. Rev. CENIAP. Número especial. Recuperado de:
www.ceniap.gov.ve/ceniaphoy/articulos/ne/arti/clavijo_a/arti/clavijo_a.htm
CNOG (Confederación Nacional de Organizaciones Ganaderas). Recuperado el 18 de marzo del 2013 de: www.cnog.com.mx
Coll P. 2003. Farmacos con actividad frente a Mycobacterium tuberculsosis. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 21 (6): 299-208.
Crick D., Mahapatra S., Brennan P. 2001. Biosynthesis of the arabinogalactan peptidoglycan complex of Mycobacterium tuberculosis. Glycobiol. 11 (9): 107-118.
De Kantor I.N., Alvarez E. 1991. Current status of bovine tuberculosis in Latin America and the Caribbean. Buenos Aires: Pan Amercian Zoonoses Center. Special Publication. 10.
De Kantor I.N., Ambroggi M., Poggi S., Morcillo N., Da Silva A., Osorio M., Garzon C., Llerena C., Ribon W., Garcia V. 2008. Human Mycobacterium bovis infection in ten Latin American countries. Tuberculosis. 88 (4): 358-365.
De Kantor I., and Ritacco V. 2006. An update on bovine tuberculosis programms in Latin American and the Caribbean countries. Vet. Microbiol. 112 (2): 111-118.
De Kantor I., and Ritacco V. 1994. Bovine tuberculosis in Latin America and the Caribbean: current status, control and eradication programs. Vet. Microbiol. 40 (1) : 5– 14.
De Kantor I., LoBue P., Thoen C. 2010. Human tuberculosis caused by Mycobacterium bovis in the United States, Latin America and the Caribbean. Int. J. Tuberc. Lung dis. 14 (11): 1369- 1373
Delfin J., Gonzalez Y., Diaz J., and Chavez M. 1994. Proteinase inhibitors from Stichodactyla helianthus: purification, characterization and immobilization. Arch. Med. Res. 25 (2): 199-204.
Diaz F., Banda V., JaramilloL., Arriga C., González D y Estrada C. 2002. Identificación de bovinos portadores de Mycobacterium bovis aplicando técnicas inmunológicas y moleculares. UNAM. Vet. Mex. 34 (1): 13-26.
Draper P. 1998. The outer parts of the mycobacterial envelope as permeability barriers. Front. Biosci. 15 (3): 1253- 1261.
Escobar E., Flores L., y Rivera C. 2008. Peptidos antibacterianos de los venenos de Hadruroides mauryi y Centruroides margaritatus.Rev. Peru. Biol. 15(1): 139-142.
49
Esteban J., Robles P., Soledad J., Fernández L. 2005. Pleuroneumonary infections caused by Mycobacterium-bovis: a reemerging disease. Clin. Microbiol. Infect. 11 (10): 840-843.
Estrada C., Mancilla R., Arriaga C., Pérez R., y Diaz F. 2001. Determinación de anticuerpos anti-PPD en hatos lecheros con distintas prevalencias de tuberculosis bovina en México. Vet. Mex. 32 (3): 207-211.
Finney A., Kung C., Yoshimura K., and Meng-Chiang M. 2002. Gating the bacterial Mechanosensitive channel MscL in vivo. PNAS. 99 (8): 5643-5648.
Fröthingham R., Hilis H.O., Wilson K.H. 1994. Extensive DNA sequence conservation throughout the Mycobacterium tuberculosis complex. J. Clin. Microbiol. 32 (7):1639- 1643.
Garateix A. 2005. El mar: fuente de nuevos fármacos. BUAP. Elementos: Ciencia y cultura. 1 (58): 37-39.
Garateix A., Salceda E., Soto E., y Garcia T. 2003. Compuestos de origen marino como instrumentos para el estudio del sistema nervioso. Avicennia. 16: 6-12. Recuperado de : http://www.fisio.buap.mx/laboratorios/sensorial/pdf/2003%20Garateix%20-
%20Avicennia%206-12%20Compuestos%20marinos.pdf
Garateixa A., Castellanos M., Hernándeza J., Mása R., Menéndeza R., Romerob L., Chávez M. 1992. Effects of a high molecular weight toxin from the sea anemone Condylactis gigantea on cholinergic responses. Comparative pharmacology. 103 (2): 403-409.
Garateixa A., Garciab M., Menéndeza R., Masa R., and Chavezb M. 1990. Effects of a high molecular weight polypeptidic toxin from Physalia physalis (Portuguese man-of- war) on cholinergic responses. Comparative pharmacology. 95 (1): 63-69.
Garateix A., Vega R, Salceda E, Cebada J, Aneiros A and Soto E. 2000. BgK anemone toxine inhibits outward K currents in snail neurons. Brain research. 864 (2): 312-314. Garateix A, Flores A, García-Andrade J., Palmero A., Aneiros A., Vega R., and Soto E. 1996. Antagonism of glutamate receptors by a chromatographic fraction from the exudate of the sea anemone Phyllactis flosculifera. Toxicon. 34 (4): 443-450
Garateix A., y Rodriguez A. 2010. Las anémonas marinas como fuente para la obtención de sustancias biológicamente activas. Revista electrónica de la Agencia del Medio Ambiente. 10 (19): 1683-8904.
García R., Lado R., TúnezV., Pérez M., y Cabarcos A. 2003. Tratamiento actual de la tuberculosis. An. Med. Interna (Madrid). 2 (20) : 91-100.
Garnier T., Eiglmeier K., Camus J., Medina N., Mansoor H., Pryor M., Duthoy S., Grondin S., Lacroix C., Monsempe C., Simon S., Harris B., Atkin R., Doggett J., Mayes
50
R., Keating L., Wheeler P., Parkhill J., Barrell B., Cole S. T, Gordon S. V., and
Hewinson R. 2003. The complete genome sequence Of Mycobacterium-bovis. Proc.
Natl. Acad. Sci. 100 (13): 7877-7882.
Gibson A., Hewinson G., Goodchild T., Watt B., Story A., Inwald J., and Drobniewski F. 2004. Molecular epidemiolofy of disease due to Mycobacterium- bovis- in humans in the United Kingdom. J. Clinic. Microbiol. 4 (1): 431-434.
Gibson A., Hewinson G., Goodchild T., Watt B., Story A., Inwald J., and Drobniewski F. 2004. Molecular epidemiology of disease due to Mycobacterium bovis in humans in the United Kingdom. J. Clin. Microbiol. 42 (1): 431-43
Giménez J., y Rivera S. año 2010. La tuberculosis bovina en Venezuela: patógenesis, epidemiología, respuesta inmunitaria y nuevas alternativas para el diagnóstico.
REDVET. 11(9). Recuperado de:
http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n090910/091007.pdf
Gorocica P., Jiménez M., Garfias Y., Sada I., y Lascurain R. 2005. Componentes glicosilados de la envoltura de Mycobacterium tuberculosis que intervienen en la patogénesis de la tuberculosis. Rev. Inst. Enf. Resp. Mex. 18 (2): 142-153.
Gutiérrez M., Saper S., Jimenez M.S., VanEmbden J., Garcıa M., Martın C. 1997. Identification by spoligotyping of a caprine genotype in Mycobacterium-bovis strains. J Clin. Microbiol. 35(12): 3328- 3330.
Juarez, Karla. 2005. Caracterización electrofisiológica del veneno del caracol marino Conus californicus en canales iónicos de potasio. (Tesis de maestría, Centro de Investigación y de Educación Superior de Ensenada, Baja California). Recuperado de: http//:www.biblioteca.cicese.mx
Kartmann B., Niederweis M., and Stengler S. 1999. Porins in the cell Wall of Mycobacterium tuberculosis. J. Bacteriology. 181 (20): 6543-6546.
Kaur D., Guerin M., Skovierová H., Brennan P., and Jackson M. 2009. Biogenesis of the cell wall and other glycoconjugates of Mycobacterium-tuberculosis. Adv. Appl.
Microbio. 69: 23-78. Recuperado de::
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3066434/
Kubica T., Rüsch S., and Niemann S. 2003. Mycobacterium bovis susp. Caprae.
Causes One Third of Human M.- bovis. Associated Tuberculosis Cases. Reported in Germany between 1999 and 2001. J. Clin. Microbiol. 35 (12): 3328.
Landeros B. 2000. Desarrollo de un ensayo de diagnóstico para la detección de M. tuberculosis utilizando Nested-PCR. (Tesis de Maestría, Universidad Autónoma de Baja California, Baja California). Recuperado de : www.biblioteca.uabc.mx
Lanio M., Moreira V., Álvarez C., Tejuca M., Gómez T., Pazos F., Besada V., Martínez D., Huerta V., Padrón G., and M. Chávez. 2001. Purification and characterization of two hemolysins from Stichodactyla helianthus. Toxicon. 39 (2): 187-194.
51
Le Dain A., Saint N., Kloda A., Ghanzi A., and Martinac B. 1998. Mechanosensitive ion channels of the archaeon Haloferax volcanii. J. Biol. Chem. 273 (20): 12116-12119. LoBue P., Betacourt W., Peter C., and Moser K. 2003. Epidemiology of Mycobacterium- bovis disease in San Diego County in 1994- 2000. Int. J. Tuberc. Lung. Dis. 7 (2): 180–185.
López L. , Díaz F., VallecilloA., Esquivel H., y Gutiérrez J. 2006. Tuberculosis humana y bovina en Latinoamerica: De estudios sobre su virulencia hacia herramientas para su control. Rev. ALAM. 48 (2): 173-178
López C., Rentería T., Williams J., Licea A., Valle A., y Medina G. 2010. Field Evaluation of the protective efficacy of Mycobacterium bovis BCG vaccine against bovine tuberculosis. Research in Veterinary Sciencie, Elseiver. 88 (1): 44-49.
Marshall J., Sweedler J., Bingham J., Rubakhin S., Kelley W., and Gilly W. 2002. Anatomical Correlates of Venom Production in Conus californicus. Biol. Bull. 203 (1): 27–41.
McIntosh J., and Jones R. 2001. Cone venom-from accidental stings to deliberate injection. Toxicon. 39 (10): 1447-1451.
Medeiros M., Dos santos L., Dray C., Eustáquio E., and Walter F. 2010. Potential application of new diagnostic methods for controlling bovine tuberculosis in brazil. Brazilian Journal of Microbiology. 41 (3): 531-541.
Milián F., Pérez G., Arriaga D., y Escartín C. M. 2010. Molecular epidemiology of human cases of TB by Mycobacterium- bovis in México. Prev. Vet. Medicine. 97 (1): 37–44.
Milián F., Rubio Y., Cantó G., Olvera A., Pizano O., Pérez L., Estrada C., García L., González J., y Valdez G. (2013). La tuberculosis bovina en México: bases. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. México.
Munro D. 2005. Análisis del efecto de toxinas Anthopleura elegantisima, Conus californicus y Auronoctonus phaiodactylus en Mycobacterium tuberculosis. (Tesis de Maestría, Centro de Investigación y de Educación Superior de Ensenada, Baja California). Recuperado de: http//:www.biblioteca.cicese.mx
Niederweis M. 2008. Nutrient acquisition by mycobacteria. Microbiology. 154 (3): 679– 692.
Niederweis M., Danilchanka O., Huff J., Hoffmann C., and Engelhardt H. 2010. Trends Microbiol. 18 (3): 109-116.
Norma Oficial Mexicana NOM-031-ZOO-1995. 1995. Secretaria de Agricultura, Ganadería y Desarrollo Rural, Campaña Nacional contra la Tuberculosis Bovina. México.
52
OIE (World Organization for Animal Health). Recuperado el 12 de abril del 2004 en : www.oie.int/eng/maladies/en_alpha.htm; www.oie.int/eng/info/en_infoan.htm
OIE (World Organization for Animal Health). Recuperado el 20 julio del 2012 en : www.oie.int/eng/maladies/en_alpha.htm; www.oie.int/eng/info/en_infoan.htm
Olivera B. 1996. Conus venom peptides, receptor and ion channel targets, and drugs design: 50 million years of neuropharmacology. Mol. Biol. Cell. 8 (11): 2101–2109.
Olivera B. 1997. Conus Venom Peptides, Receptor and Ion Channel Targets, and Drug Design: 50Million Years of Neuropharmacology Essay. Molecular Biology of the Cell. 8 (11): 2101–2109.
Olivera B., and Norton R. 2006. Conotoxins down under. Toxicon. 48 (7): 780–798. Pérez L., Millán F., Arriaga C., Romero C., y Escartín M. 2008. Epidemiología molecular de las tuberculosis bovina y humana en una zona endémica de Querétaro, México. Salud pública Méx. 50 (4): 286-291 .
Perumaalla V., Adamas L., and Payeur J. 1996. Molecular epidemiology of Mycobacterium bovis in Texas and Mexico. J. Clin. Microbiol. 34 (9): 2066-2071.
Ritacco V., López B., De Cantor, Barrera I., Errico F., and Nadera. 1991. Reciprocal cellular and humoral inmune responses in bovine tuberculosis. Vet. Sci. 50 (3): 365-367. Rodwell T., Moore M., Moser K., Brodine S., and Strathdee S. 2008. Tuberculosis from Mycobacterium bovis in Binational Communities, United States. 14 (6). Recuperado de::
http://wwwnc.cdc.gov/eid/article/14/6/07-1485.htm
Romero A., Arriaga C., Estrada C., Guevara J., García J., y Torres R. 2005. Confirmación de la excreción de Mycobacterium Bovis en exudados nasales mediante PCR anidada en un hato lechero. Vet. Mex. 37 (1): 137-143.
SAGARPA (Secretaria Agricultura Ganardería Desarrollo Rural, pesca y Alimentación). Recuperado el 27 de enero del 2014: http://www.senasica.gob.mx/default.asp?id=801 SAGARPA (Secretaria Agricultura Ganardería Desarrollo Rural, pesca y Alimentación). Recuperado el 11 julio del 2013: http://www.senasica.gob.mx/default.asp?id=801
SAGARPA (Secretaria Agricultura Ganardería Desarrollo Rural, pesca y Alimentación). Recuperado el 23 de febrero del 2012: http://www.senasica.gob.mx/default.asp?id=801 SAGARPA (Secretaria Agricultura Ganardería Desarrollo Rural, pesca y Alimentación). Recuperado el 15 de agosto del 2006: http://www.senasica.gob.mx/default.asp?id=801
53
Salceda E., Garateix A., and Soto E. 2002. The sea anemone toxins BgII and BgIII prolongs the inactivation time course of the tetrodotoxin-sensitive sodium current in rat dorsal root ganglion neurons. J. Pharmacol. Exp. Ther. 303 (3): 1067-74.
Salceda E., Pérez-Castells J., López-Méndez B., Garateix A., Salazar H., López O., Aneiros A., Standker L., Béress L., Forssmann W.G., Soto E., Jimenez-Barbero J., Giménez-Gallego G. 2007. CgNa, a type I toxin from the giant Caribean sea anemone Condylactis gigantea shows structural similarities to both type I and type II toxins, as well as distinctive structural and functional properties. Biochem. J. 406 (1): 67-76.
SENASICA (Servicio nacional de Sanidad, inocuidad y calidad Agroalimentaria). Tuberculosis bovina, situación actual 2009. Recuperado el 10 julio del 2009 en :
http://www.senasica.gob.mx/?id=4369
SENASICA (Servicio nacional de Sanidad, inocuidad y calidad Agroalimentaria) Tuberculosis bovina, situación actual 2013. Recuperado en 27 julio del 2013 en :
http://www.senasica.gob.mx/?id=4369
SENASICA (Servicio nacional de Sanidad, inocuidad y calidad Agroalimentaria) Tuberculosis bovina, situación actual 2014. Recuperado en 15 enero del 2014 en :
http://www.senasica.gob.mx/?id=4369
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y pesquera). Recuperado el 20 de enero del 2013 en : http://www.campomexicano.gob.mx/portal_siap/Integracion /EstadisticaBasica/Pecuario/PoblacionGanadera/ProductoEsp ecie/bovino.pdf
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y pesquera). Recusperado el 3 de agosto del 2012 en : http://www.campomexicano.gob.mx/portal_siap/Integracion /EstadisticaBasica/Pecuario/PoblacionGanadera/ProductoEsp ecie/bovino.pdf.
Sreevatsan S., Pan X., Stockbauer K., Connell N., Kreiswirth N., Whittam T., and Musser J. 1997. Restricted structural gene polymorphism in the Mycobacterium tuberculosis complex indicates evolutionarily recent global dissemination. Proc. Natl. Acad. Sci. 94 (18): 9869–9874.
Steck P., Schwartz M., Rosendhal G., and Gray R. 1978. Mycolic acids: a reinvestigation. Biol. Chem. 253 (16): 5625- 5709.
Terlau H., and Becker S. 2008. Toxins from cone snails: properties, applications and biotechnological production. Appl. Microbiol. Biotechnol. 79 (1): 1–9.
Thoen C., Lobue P., and De Kantor I. 2006. The importance of Mycobacterium bovis as a zoonosis. Vet. Microbiol. 112 (2): 339-345.
Toledo P., Milian F., Santillán M., y Ramírez I. 1999. Aislamiento e Identificación de Mycobacterium Bovis a partir de muestras de expectoración de pacientes humanos con pacientes con problemas de respiración crónicos. Vet. Mex.30 (3): 227-229.
54
Wolfe L., Mahaffey, S., Kruh, N., Dobos, K. 2010. Proteomic definition of the cell wall of Mycobacterium tuberculosis. J. Proteome. Res. 9 (11): 5816-5826.
55 Anexos
Anexo 1. Preparación del medio liquido para M. bovis.
Se pesa 4.7g de medio deshidratado Middlebrook 7H9 sin glicerol y se disuelve en 900ml de agua destilada estéril, se transfiere a matraces Erlenmeyer y se esteriliza a 121 °C, a una presión de 1.3 bars durante 15 minutos. Cuando el medio este frío se adiciona el OADC hasta lograr una concentración final del 10 %. Finalmente se realiza el control de esterilidad incubando el medio a 37°C durante 72h, el medio debe permanecer estéril sino es el caso se debe desechar y preparar nuevo. El medio se conserva a 4°C hasta su utilización.
56
Anexo 2 . Preparación del estándar de Mc. Farland #1 A. Disolución de ácido sulfúrico 1%
Depositar aproximadamente 90mL de agua desionizada en un matraz volumétrico de 100 ml, con una pipeta volumétrica de 1mL agregar 1.0 mL de
H2SO4 concentrado. Aforar a 100ml con agua desionizada y mezclar. Almacenar
en una botella de vidrio con tapón de rosca hasta por un año. B. Disolución de cloruro de bario 1.175 %
Pesar 1.175g de cloruro de bario dihidratado y depositarlo en un matraz volumétrico de 100ml. Añadir aproximadamente 50ml de agua desionizada y mezclar bien para disolver. Aforar a 100ml Con agua desionizasa y mezclar. Almacenar en una botella de vidrio con tapón de rosca hasta por un año.
Para preparar los tubos a las concentraciones deseadas seguir las indicaciones de la tabla.
Concentración de los estándares de la escala de Mc. Farland. Estándar de Mc. Farland. Ba Cl2 1.175% (ml) H2SO4 1% (ml) Número aproximado de bacterias (x106)/ml 0.5 0.5 99.5 1 1 99 300 2 2 98 600 3 3 97 900 4 4 96 1200 5 5 95 1500 6 6 94 1800 7 7 93 2100 8 8 92 2400 9 9 91 2700 10 10 90 3000