3.5. Grupo experimental
Se emplearon para esta investigación 24 novillas F1 (Bos taurus x Bos indicus), las cuales se dividieron en dos grupos homogéneos, de 12 animales por cada tratamiento, los factores utilizados en la selección de grupos fue: el peso vivo, tipo racial y la edad. El grupo del T1 (P. purpureum + L.
leucocephala), estaba conformado por novillas con edades promedio de 28 meses y con pesos
promedio de 289,92 ± 59,38 kg de peso vivo y 26 meses de edad y 301,50 ± 52,76 kg de peso vivo para el tratamiento T2 (P. maximum + L. leucocephala). Los animales en estudio estaban con un grupo acompañante que balanceaban la carga constante de 3,5 UGG/ha para cada uno de los tratamientos y permanecieron hasta la culminación de la fase de recolección de la información en campo, siendo necesario remover animales del sistema debido al crecimiento y aumento de la ganancia.
3.5.1. Sanidad
Los animales monitoreados al igual que los acompañantes del experimento se vermífugaron el 18 de enero de 2006, antes del iniciar la evaluación con ivermectina ERMA 1% (1 mL/50 kg P.V.) vía de administración subcutánea.
3.5.2. Suplementación mineralizada y agua
Los animales experimentales como los acompañantes (n=50) dispusieron a voluntad de sal comercial SAL M.V. (Ca 25,84%; P 12,20%; Mg 0,824; S 0,35%; Fe 0,35%; Mn 0%; Zn 0,08%; Cu 0,007%; I 0,0027%; Co 0,0004 y F máx. 0,12%), y durante todo el ensayo las novillas tenían acceso agua a voluntad.
3.5.3. Pesaje de los animales
Para el estudio de la respuesta animal en términos de producción de carne se monitoreó cada 30 días, mediante pesajes de los mismos y determinación de la condición corporal, esta evaluación se realizó después de un ayuno de 12 horas, en donde a las novillas solo se les suministraba agua a voluntad.
Durante la fase experimental se realizaron los siguientes pesajes:
• Peso inicial: El día del inicio del experimento, que sirvió para la conformación de los grupos experimentales.
• Intermedios: Se realizaron pesajes cada 29 ± 5,9 días, a todos los animales. • Final: Se realizó el día 200 del experimento.
Para el día del pesaje los animales debían recorrer un trayecto de aproximadamente 2.000 metros hasta el corral donde se tenía la báscula y la misma distancia de regreso al sistema.
La labor se iniciaba con el arribo de los animales a las 6 pm del día anterior y se efectuaba el pesaje de las novillas entre las 6 am a las 8 am del siguiente día, por lo tanto, se pesaron siempre en ayuno, calibrando la bascula siempre al inicio de cada grupo experimental (Tabla 8).
Tabla 8. Fechas de monitoreo del incremento de peso de las novillas experimentales
Pesaje FECHA DIA
1 27/02/2006 0 2 27/03/2006 28 3 27/04/2006 59 4 05/06/2006 98 5 06/07/2006 129 6 02/08/2006 156 7 25/08/2006 179 8 15/09/2006 200
3.5.4. Tiempo de pastoreo y ramoneo
El comportamiento de seis animales en pastoreo y ramoneo se monitoreó durante tres dias consecutivos, en trimestre experimental en un periodo de 12 horas por día, registrado cada cinco minutos las cinco principales actividades realizadas.
3.5.5. Consumo voluntario
La información obtenida, en la evaluación etológica, se utilizó en el cálculo del consumo voluntario de los animales, utilizando la base de datos Tropicales del modelo de predicción CNCPS (Net Carbohydrate and Protein System for Evaluating Herd Nutricion and Nutrient Excretion) v 5.0, incluyendo los parámetros por periodo de los análisis de laboratorio para cada una de las especies evaluadas en los tratamientos P. purpureum + L. leucocephala y P. maximum + L. leucocephala en el sistema silvopastoril de sombra y ramoneo, teniendo en cuenta la oferta ambiental durante cada periodo experimental, el modelo y manejo animal.
3.6. Evaluación ecográfica
El ultrasonido se utilizó como herramienta para monitorear la calidad de las canales de los animales en pie; realizadas antes de iniciar la evaluación (17 de febrero), a la mitad del experimento (17 de mayo) y al final del mismo (15 de septiembre) del 2006. Para realizar las mediciones por ultrasonido se utilizó el equipo Pie Medical AquilaVET (Figura 13, ver 1) con la sonda de 3,5 Mz, para la toma de las medidas del anca y con la almohadilla anatómica, para las medidas del lomo.
Se ajustó la calidad y brillo para la toma de la imagen y una vez obtenida la imagen deseada, se seleccionó el Software de Animal Science, mediante el cual, se procedió a evaluar los siguientes parámetros: grasa de subcutánea, área del ojo del lomo (músculo longissimus dorsi) (Figura 13, ver 2 y 3), grasa del anca y profundidad del anca (músculos bíceps femoral y glúteo medio) (Figura 13, ver 4 y 5), según la metodología descrita por Gresham (2001).
3.6.1. Determinación del espesor de grasa subcutánea y área del ojo del lomo Para la determinación del espesor de grasa subcutánea y área del ojo del lomo, el transductor se coloca a nivel del espacio intercostal de la 12 y 13 costilla, por encima del músculo Longissimus
dorsi (Houghton, 1992; Gresham, 1996). Se utiliza un transductor de 3,5 MHz, a una velocidad de 17
IPS (imágenes por segundo), acoplado a una almohadilla diseñada para adaptarse a la forma anatómica del animal (Figura 13, ver 4).
2.
1.
3.
5. 4.
Figura 13. Equipo para ecografía 1. Pie MedicalVET. 2. Almohadilla de adaptación anatómica; 3. Sonda
para evaluación de condición corporal; 4. Ubicación anatómica para medir área del ojo de lomo, profundidad del lomo y espesor de grasa dorsal; 5. Ubicación anatómica para medir profundidad y espesor de grasa del anca.
Fuente: Rios (2003).
3.6.2. Medición del Espesor de Grasa subcutánea (GD)
Para el monitoreo de espesor de grasa subcutánea, se ubicó el cursor aproximadamente en los ¾ externos del ancho del lomo (tomando el eje de medial a lateral) y perpendicular a la superficie. Se midió la distancia entre la interfase grasa-lomo y espesor del lomo, los datos obtenidos se consignaron en la base de datos (Figura 14).
3.6.3. Área de ojo del lomo (AOL)
El área del ojo de lomo se seleccionó por pantalla, posicionando el cursor en cualquier punto de los límites de dicho músculo. Así, se trazó un área siguiendo todo el borde exterior del lomo, hasta
llegar al punto inicial. El área dentro del perímetro se calculó usando el software Animal Science (Figura 14).