1 Docente-Investigador facultad de Ciencias Biológicas. Departamento de Ictiología Museo de Historia Natural, UNMSM // Coordinador del Grupo Hidrobiología del Programa de Monitoreo de la Biodiversidad en Camisea [email protected]
2 Departamento de Limnología, MHN – UNMSM [email protected]
3 Departamento de Limnología, MHN - UNMSM [email protected]
INtRoDUCCIóN
Se consideran macroinvertebrados bentónicos a todos los organismos invertebrados relacionados a la superficie y/o que se encuentran dentro del sustrato del ambiente acuático y tienen un tamaño su- perior a 500 μ. constituyen el grupo dominante en los ríos, quebradas y arroyos; siendo especialmente importantes aquellos órdenes de insectos (Efemeróptera, Plecóptera y Tricópteros), y todas las familias cuya presencia masiva o consistente nos indicaría que los cuerpos de agua presentan buena, mediana o mala calidad.
Los macroinvertebrados que habitan en los ecosistemas fluviales están ampliamente representados por diferentes phila, clase, órdenes y familias, aunque la diversidad de los ambientes naturales y en condiciones normales siempre será dominada por los artrópodos, principalmente de la clase Insecta.
DIsEño MEtoDolóGICo
El principal objetivo comprende el segui- miento de la calidad de los ambientes acuáticos en función de la influencia directa o indirecta del Proyecto Camisea (PC) y en relación a la conti- nuidad de la obtención de recursos hidrobiológi- cos de subsistencia, que incluyen crustáceos y moluscos, por parte de las comunidades nativas (CCNN) del área.
El diseño metodológico incluye la cuenca baja del río Urubamba desde Sepahua hasta Timpía, considerándose dos CCNN bajo in- fluencia directa: Shivankoreni y Kirigueti, ubica- das aguas abajo de Malvinas; dos comunidades más distantes, también aguas abajo, bajo in- fluencia indirecta (Miaría y Sepahua), y una zona blanco o testigo donde el PC no tiene influencia, localizada aguas arriba de Malvinas: Timpía.
Metodología de colecta
Al igual que las anteriores comunidades la metodología de colecta se define en base a los objetivos del estudio y en base a los sustratos dis- ponibles en los diferentes ecosistemas acuáticos. Equipos y Materiales
• Protección personal (traje adecuado para agua, chalecos salvavidas, línea de vida, etc.) • Red Surber de muestreo
• Bandejas blancas (20 x 30 cm) • Pinzas entomológicas
• frascos de plástico con tapón hermético de 250 ml, como mínimo
• Viales de plástico o vidrio (para el recojo de ejemplares aislados)
• Bolígrafo o rotulador permanente (para etique- tar las muestras).
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Técnicas de Análisis
Las muestras colectadas se colocan en ban- dejas blancas, bien iluminadas; con la ayuda de pinzas de aluminio de punta fina se procede a la separación de los organismos. El sedimento se va removiendo cuidadosamente de un extremo a otro de la bandeja, hasta asegurarse de que no queden organismos. Debe tenerse en cuenta que cuando no se tiene suficiente experiencia, muchos organismos pueden pasar inadvertidos bien sea por su tamaño o por estar camuflados con los restos de vegetación o sustratos mine- rales. Este trabajo debe ser realizado o super- visado por personas debidamente capacitadas. Análisis Cualitativo: La identificación de los or- ganismos tiene que realizarse hasta el nivel taxonómico más bajo posible, pero en la mayo- ría de casos se ha identificado hasta familia y/o Género.
Análisis cuantitativo: Luego de la identificación se realiza un conteo de todos los organismos de la muestra, teniendo en cuenta el área total de la colecta.
Análisis semicuantitativo: Eventualmente se utili- zan placas con divisiones para hacer un conteo aproximado teniendo en cuenta porcentajes de abundancia relativa o la utilización de escalas subjetivas de abundancia como referencia (muy abundante, abundante, frecuente, escasa). Comprobación de la calidad en la colecta, identificación y análisis de la muestra
• Hábitat definido • Personal capacitado • Etiquetado correcto
• Manejo adecuado de muestras en el laborato- rio mediante un protocolo interno.
• Capacitación constante.
DIsCUsIóN
Los macroinvertebrados del bentos consti- tuyen una comunidad muy relacionada al sus- trato y cuerpo de agua que habitan, presentan una alta variedad de especies con sus repre- sentantes que siguen siendo muy informativos en el PMB debido a la diversidad, fluctuaciones estacionales y variaciones entre las zonas de influencia y en especial cuando se utilizan al- gunos grupos de organismos indicadores como ordenes de insectos que son característicos de
aguas limpias o de buena calidad.
Igual que el análisis de las otras comunida- des, se confirma que los macroinvertebrados registrados durante el monitoreo biológico en la zona de influencia indirecta presentan los ma- yores valores de diversidad (riqueza y abundan- cia) en comparación con lo que se registra en la zona de influencia directa y la que se considera sin influencia.
La mejor explicación estaría relacionada con la teoría del “río Continuo” expresado por Vanno- te et al. (1980), quien afirma que en la distribución longitudinal de los ríos, en las partes superiores existen menos ventajas ambientales y, por lo tanto, la diversidad y abundancia serán menores que en las partes bajas porque a menor altitud existen mejores condiciones (microhábitats, re- cursos que provienen de la vegetación ribereña y menor velocidad de corriente, etc.).
Los macroinvertebrados bentónicos son or- ganismos con alta diversidad y frecuentes en los cursos lóticos que viene evaluando el PMB. Las fluctuaciones ante su presencia podrían es- tar relacionadas a las épocas climáticas (seca y húmeda), pero siempre están presentes los prin- cipales órdenes.
La presencia y número registrados confirma que la mayoría de los cuerpos de agua evalua- dos se encuentran entre condiciones aceptables y buenas. Esto está relacionado a la presencia y abundancia de los representantes de las otras comunidades biológicas (plancton, perifiton y peces) y además, a los parámetros limnológicos registrados paralelamente.
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• Etiquetas de papel resistente a la humedad • Lápiz, tijeras, cinta aislante
• Cámara digital • Alcohol 70%
• Hojas de campo, cartografía técnicas de colecta
El objetivo fundamental del muestreo consis- te en recolectar la mayor diversidad posible de macroinvertebrados. Para ello se explora cuida- dosamente cada uno de los hábitats posibles en todos los lugares de muestreo; esto incluye el sustrato de fondo (piedra, arena, lodo, restos de vegetación), macrofitas acuáticas (flotantes, emergentes y sumergidas), raíces sumergidas de árboles y sustratos artificiales, diques, etc.).
Para obtener resultados comparables, el es- fuerzo de muestreo debe cubrir un área aproxi- mada de 100 m2 y haber empleado 20 o 30 mi-
nutos en las actividades de colecta.
Muestreo en aguas poco profundas: La red
Surber es la ideal para obtener la mayor diversi- dad posible en estos hábitats. Para las orillas es recomendable la red D-net (cualitativo).
En función de la experiencia adquirida, se proponen las siguientes consideraciones para los muestreos de la comunidad de macroinver- tebrados bentónicos:
a) No se debe muestrear después de lluvias intensas pues puede haber pérdida de organis- mos locales o encontrarse otros arrastrados por la corriente.
b) En grandes ríos debe muestrearse en am- bas orillas pues la fauna puede ser diferente de- bido a la sombra, meandros, composición del fondo y eventual contaminación.
c) No debe muestrearse en la confluencia in- mediata de dos ríos, sino más abajo de la zona de mezcla.
d) Se debe recolectar plantas flotantes o su- mergidas para posterior análisis en el laboratorio.
Métodos de recolección para análisis cuali- tativos
Red tipo D-net: Esta red se usa para hacer un
“barrido” a lo largo de las orillas o recodos de la corriente donde no es posible llegar con la red de pantalla. Tiene la ventaja de que su forma triangular se adapta bien a las superficies irre- gulares de las orillas. Su uso debe ser intensivo hasta cubrir un área representativa del lugar de
muestreo (10 m a lo largo de ambas orillas). El material recolectado se vacía sobre un cedazo, o simplemente sobre una red, para lavar el ex- ceso de lodo o arena; luego se guarda en una bolsa plástica o un recipiente de plástico con alcohol al 70% para ser examinado posterior- mente en el laboratorio.
Métodos de recolección para análisis cuan- titativos
Red Surber: consta de un marco metálico de
30 x 30 cm, al cual está sujeta una red de unos 80 cm de longitud y con una abertura de malla de aproximadamente 500 μ. El marco se coloca sobre el fondo, en contra de la corriente, y con las manos se remueve el material del fondo; de esta forma quedan atrapados los organismos en la red. Esta operación se repite al menos 3 veces en cada estación de muestreo, pudién- dose calcular el número de organismos por m2.
El material colectado se vacía luego en un reci- piente con alcohol al 70% para ser separado en el laboratorio. El material biológico recolectado también se convierte en peso seco y expresado en g/m2.
Preservación y etiquetado
Las muestras se conservan en alcohol etíli- co al 70%; la cantidad utilizada del preservan- te debe ser la suficiente para que cubra toda la muestra colectada. Los frascos se rotulan, y las etiquetas deben contener datos de localidad, cuenca, fecha, tipo de sustrato, colector.
Identificación y análisis de las muestras
Equipo y material de laboratorio
• Equipos de protección personal (guantes, mas- carilla, gafas)
• Bandejas blancas de plástico (mínimo 30 x 20 cm) • Tamices de 5 mm, 1 mm y 0,5 mm (Metodolo-
gía Multimétricos) • Placas Petri
• Pinzas entomológicas y/o aspirador entomo- lógico
• Viales de plástico y otros recipientes con tapo- nes herméticos
• Estéreo-microscopio • Rotulador resistente al agua • Etiquetas
• formularios previamente preparados para ano- tar la identificación y recuentos
• Guías de identificación: adecuadas al ámbito de estudio
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