3.2.3 L IBRES DE LESIONES Y ENFERMEDADES

Se valoraron por un lado las lesiones y por otro las enfermedades. Dentro de las lesiones se analizó por separado la pérdida de pelo, tomando como base la guía de Fulwider y col. (2005).

3.2.3.1.-Pérdida de pelo

Las regiones corporales evaluadas en vacas y terneras fueron el corvejón, la tuberosidad coxal, la tuberosidad isquiática, el costillar y la cola.

Los niveles de valoración fueron:

Ninguna (1): Sin pérdida de pelo

Poca (2): Zonas sin pelo de < 2.0 cm de diámetro.

Media (3): Zonas sin pelo de 2 a 8 cm de diámetro.

Severa (4): Zonas sin pelo de > 8 cm de diámetro

3.2.3.2.-Lesiones

Las regiones corporales evaluadas en vacas fueron el corvejón, la tuberosidad coxal, la tuberosidad isquiática, el costillar, la cola, la articulación del carpo y los pezones y en terneras el corvejón, la tuberosidad isquiática, la cola y la articulación del carpo. El protocolo usado para su evaluación fue:

Ninguna (1): No hay heridas

Poca (2): Heridas menores de 2.0 cm de diámetro.

Media (3): Heridas entre 2 y 8 cm de diámetro

Severa (4): Heridas > 8 cm de diámetro, sanguinolentas o purulentas.

3.2.3.3.-Enfermedades parasitarias

Para valorar el grado de parasitación de los animales se recogieron muestras de heces, en la pradera, cuando los animales defecaban voluntariamente. Se obtuvieron muestras de 15 animales por visita, promediando al azar entre vacas y terneras. Las muestras se mantenían en refrigeración mientras eran llevadas al laboratorio de Corpoica-Ceisa, analizándose el día siguiente de su recogida. Se valoraron parásitos gastrointestinales, pulmonares y hepáticos, realizando las pruebas de McMaster, Baermann y Dennis respectivamente. En cada explotación se realizó el recuento de

moscas, de 20 vacas, 5 novillas y 16 terneras elegidas al azar, para la determinación del grado de infestación por moscas de los animales.

3.2.3.3.1.-Parásitos gastrointestinales

Se utilizó la Prueba de McMaster (Ueno y Gonçalves, 1998) para el recuento de huevos de los nematodos gastrointestinales comunes en vacas, novillas y terneras en pastoreo (Cooperia spp., Nematodirus spp., Haemonchus spp., Cooperia spp.,

Ostertagia spp., etc.), y para el recuento de ooquistes de Coccidios del género Eimeria comunes en Colombia (Eimeria bovis y Eimeria zuerni) en vacas, novillas y terneras. La metodología utilizada fue la siguiente:

 Pesar 3 g de materia fecal

 Agregar agua hasta obtener una suspensión homogénea

 Filtrar a través de una tela metálica, angeo de cobre # 100 y descartar el residuo

 Centrifugar el filtrado, descartar el sobrenadante y agitar el sedimento con vortex

 Agregar solución salina saturada al pellet

 Montar en cámara de McMaster

 Contar huevos de Nemátodos y ooquistes de Coccidios

 Dar el resultado de ooquistes o huevos por gramo de materia fecal

 Se realizaron recuentos, por un lado de ooquistes de coccidios eiméridos por gramo de materia fecal (ooquistes/g) y por otro de los restantes huevos de parásitos gastrointestinales por gramo (PGI/g) de materia fecal

3.2.3.3.2.-Parásitos pulmonares

Se utilizó la prueba de Baermann (Ueno y Gonçalves, 1998) para la identificación de estróngilos pulmonares, en concreto larvas de Dyctiocaulus viviparus en heces de terneras. Se enfocó este estudio solo en animales jóvenes (terneras) por ser las más afectadas (Waruiru y cols., 2000). La metodología utilizada fue el siguiente:

 Pesar 3 g de materia fecal

 Colocar la materia fecal en un filtro y este dentro de un embudo, completando con agua hasta que la materia fecal quede completamente cubierta

 Dejar en reposo 24 horas

 Recolectar el liquido obtenido, ya que este contienen las larvas que migraron

 Centrifugar, descartar sobrenadante

 Llevar al microscopio y realizar el recuento de larvas por gramo de materia fecal

3.2.3.3.3.-Parásitos hepáticos

Se usó la prueba de Dennis (Dennis y col., 1954) para el diagnóstico de huevos de trematodos (Fasciola hepática) en vacas, y no en novillas ni terneras por ser particularmente importantes los daños que produce en individuos adultos (Urquhart y col., 1999). La prueba de Dennis consiste en:

 Pesar 2 g de materia fecal

 Agregar 25 ml de solución detergente (5 ml de detergente líquido, 95 ml de agua destilada y 8 gotas de sulfato de aluminio y potasio al 1 %)

 Mezclar con agitación suave sin formar espuma

 Filtrar a través de una tela metálica, angeo de cobre # 100 y descartar el residuo

 Lavar el recipiente con solución detergente y filtrar

 Dejar el filtrado reposar durante 15 min

 Agregar una o dos gotas de lugol

 Dejar reposar durante 5 min

 Leer en el estereomicroscopio los huevos de Fasciola

3.2.3.3.4.-Parásitos externos

Para la captura de las moscas que presentaban los animales se emplearon jaulas entomológicas. Se realizaron capturas una sola vez en cada explotación, de 10 animales

por explotación (4 vacas, 3 novillas y 3 terneras). Las moscas se llevaron en cajas entomológicas hasta el laboratorio de Corpoica-Ceisa para su identificación. Además, en cada visita y en cada explotación se realizo el recuento de moscas, de 20 vacas, 5 novillas y 16 terneras elegidas al azar, siguiendo el método de Steelman y cols. (1993). El recuento se realizaba a una distancia igual o inferior a 2 metros y por un solo flanco del animal a estudiar, el resultado se multiplicaba por 2, obteniéndose así las moscas por animal. Las moscas observadas fueron la mosca de los cuernos (Haematobia irritans) y la mosca de los establos (Stomoxys calcitrans).

Figura 3.7.- Infestación por moscas en vacas

3.2.3.4.-Enfermedades no parasitarias

Se obtuvieron datos por un lado sobre mastitis de las vacas en producción láctea y por otro lado sobre otras enfermedades no parasitarias tanto de las vacas como de las terneras.

3.2.3.4.1.-Mastitis de las vacas

Se realizó la prueba de California para mastitis (CMT) a 20 vacas en producción, escogidas al azar, en cada visita y explotación.

Prueba de California para Mastitis (CMT) consistió en la mezcla de partes iguales de una solución al 3 % de alquil lauril sulfato de sodio y leche en una paleta plástica con un compartimiento para cada cuarto de la ubre. Los resultados de la prueba fueron interpretados subjetivamente como negativo, trazas, 1, 2, 3, según la viscosidad del gel formado por la mezcla del reactivo con la leche, según Blowey y Edmonton (1995). Los valores 2 y 3 corresponden a mastitis subclínica y los valores 4 y 5 se asignaron a mastitis clínica y cuartos perdidos, respectivamente.

3.2.3.4.2.-Otras enfermedades

La información sobre ésta variable fue facilitada por el administrador de cada explotación en cada visita a las explotaciones. Disponiendo de datos sobre abortos, neoplasias oculares, retención de placenta, abscesos, dermatitis, cojeras y síndrome de vacas caídas en vacas y de colibacilosis, neumonía y procesos fúngicos en terneras