3.2. GENEROS Y/O ESPECIES DE BACILLARIOPHYTA PRESENTES EN LA
3.4.9. OXIGENO DISUELTO (OD)
El oxígeno disuelto (OD) es la cantidad de oxígeno que esta disuelta en el agua que es esencial para los riachuelos y lagos saludables. El nivel de oxígeno disuelto puede ser un indicador de cuan contaminada está el agua. En la Figura 19 se observa los valores de Oxígeno disuelto por estación de monitoreo para la Temporada de Estiaje; la cual se observa que los valores oscilan de 2.83 – 7.59 mg/L. El OD más bajo se registra en la estación E-001 con 2.83 mg/L seguido de la estación E-003 con 3.68 mg/L, la estación E-002 con 3.78 mg/L. y por último la estación E-004 con mayor valor registrado 7.59 mg/L.
2,98 3,78 3,68 7,59 2637 4343 5771 8491
E-001 E-002 E-003 E-004
2 4 6 8
OD (Temporada Estiaje Abundancia (Temporada Estiaje)
Estaciones de Monitoreo OD (T em po ra da Estiaje (mg /L) 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 Abun da ncia (T em po ra da Estiaje) (Ce l/mm2 )
Figura 19: Valores de OD por estaciones de monitoreo para Temporada de Estiaje
En la figura 20 se observa los valores de OD para la temporada Húmeda, las cuales oscilan de 8.59 a 8.68 mg/L. Los valores para la estación E-001 es de 8.61 mg/L, para E-002 es de 8.59 mg/L, para E-003 es de 8.68 mg/L y para E-004 es de 8.64 mg/L.
28 8 8,83 8,46 8,44 1044 1124 1742 650
E-001 E-002 E-003 E-004
8,0 8,2 8,4 8,6 8,8 OD (Temporada Creciente) Abundancia (Temporada Creciente)
Estaciones de Monitoreo OD (T em po ra da Cre cient e) (m g/L ) 600 800 1000 1200 1400 1600 1800 Abun da ncia (T em po ra da Cre cient e) (Ce l/mm2 )
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DISCUSIÓN
En la presente investigación, se registraron un total de 47 Géneros y/o Especies de Bacillariophytas representadas en 2 clases, 12 órdenes, 18 familias; para ambas épocas registrándose para la temporada de Estiaje un total de 41 especies y para la temporada de creciente de 32 morfo/especies; De la evaluación por épocas estacionales, la temporada de estiaje correspondió la mayor parte de esta riqueza, y principalmente en la parte baja de la cuenca, Estación E-001 con 29 morfo/especies en comparación con la parte alta, estación E-004 con 27 morfo/especies. Este resultado puede estar asociado a una variable de orden físico, pues de acuerdo a Valcárcel (2011), en los períodos secos un ambiente más estable proporciona una mejor estructura de la comunidad. Analizando este aspecto desde la variable altitudinal, puede constatarse lo que Jacobsen (2003) encontró en ríos de Ecuador en los cuales la mayor riqueza estaba en las zonas bajas (400 m de altitud). Según Yucra H (2015) Menciona que el periodo seco se caracteriza por presentar un ambiente sedimentario más estable con reducción de procesos de re suspensión y de transporte de material particulado, con un incremento de nutrientes en columna de agua producto de una difusión pasiva proveniente del sedimento, favoreciendo así el micro hábitat sedimentario permitiendo el desarrollo de una mayor diversidad y abundancia de diatomeas bénticas así como también facilitando una mejor preservación de sus valvas en el sedimento.
En relación a la abundancia, donde se puede observar que la temporada Estiaje presento una mayor abundancia de 21242 cel/mm2 en comparación a la temporada
Creciente presento una menor abundancia de 4560 cel/mm2; lo que corrobora lo
propuesto por Jacobsen (2003). Para la temporada de estiaje se registró que la estación con mayor abundancia fue E-001 (2637 cel/mm2), seguida de E-002 (4343
cel/mm2), la E-003 (5771 cel/mm2) y E-004 (8491 cel/mm2). En la temporada de
Creciente se registró que la estación con mayor abundancia fue E-003 (1742 cel/mm2),
seguida de E-002 (1124 cel/mm2), la E-001 (1044 cel/mm2) y E-004 (650 cel/mm2) la
gran diferencia que se producen en relación a la abundancia, temporada y estación de monitoreo, se debe la que como se mencionó anteriormente un factor que influye es la estabilidad que presenta el rio, siendo este mayor en la época de Estiaje que la de Creciente, en conjunto con otros factores fisicoquímicos que determinan las especies presentes en cada temporada. Se puede llegar a la conclusión que las variaciones causadas por el régimen hídrico ocasionan cambios en las condiciones ambientales
30
las cual influyeron significativamente en la abundancia de diatomeas en columna de agua.
Los géneros con mayor número de especies fueron Nitzschia (6), Navicula (4) y Cymbella (3). La especie Ulnaria ulna presentaron la mayor abundancia den la temporada de estiaje (1490 – 5655 cel/mm2) seguida de la especie y Nitzschia
amphibia (655 – 2565 cel/mm2), Estudios realizados por Segura-García, V. (2012) en
los ríos Laja y Querétaro en México, menciona que la especie Nitzschia amphibia está presente aguas con presencia de materia orgánica. En la temporada creciente la especie Nitzschia sp3 presentó mayor abundancia (208 – 610 cel/mm2), seguida de la
especie Surirella brebissonii (65 – 189 cel/mm2). Además, se reportaron especies
como Nitzschia hungarica y Entomoneis paludosa, especies de ambiente con características salobres y poco perturbados con materia orgánica (Ayala, W. et al. 2016). Se reportó la especie Gomphonema parvulum para ambas temporadas en concentraciones máximas de 25 -45 cel/mm2; según Levkon. (2019), menciona que
esta especie es cosmopolita y se encuentra frecuentemente en ambientes con medio y alto grado de eutrofia.
En la aplicación del Índice de Shannon-H se observó que el rango de los valores para la temporada de Creciente oscila 1.537 – 2.07 bit cel-1; y para la temporada de Estiaje
0.9732 – 1.457 bit cel-1. Según Lobo & Kobayasi (1990), que relaciona la calidad del
agua en relación al Índice de Shannon-H, la calidad del agua de la cuenca baja del rio tambo oscila Contaminación severa a Contaminación moderada. En la temporada de Creciente todas las estaciones se encontraban en una calidad del agua moderada, para E-001 con 1.646 bit cel-1, E-002 con 1.693 bit cel-1, E-003 con 1.537 bit cel-1 y E-
004 con 2.07 bit cel-1 la temporada de Estiaje presento una contaminación moderada
para las estaciones E-001 con 1.457 bit cel-1, E-002 con 1.22 bit cel-1 y E-004 bit cel-1
con 1.002 bit cel-1; la estación E-003 con un valor del Índice de Shannon de 0.9732 bit
cel-1 una calidad de agua severa. El índice de Shannon-H es considerado un buen
indicador del impacto que ejerce el ambiente sobre las diatomeas. Sin embargo, ha sido criticado debido a que no considera aspectos importantes como el tipo de organismo, su nivel de tolerancia, sensibilidad y capacidad de adaptarse cambios en el medio ambiente (Lobo E.& Kobayashi H. 1990; Melcalfe 1989).
Se hallaron formas teratológicas en pequeñas proporciones, posiblemente afectados por metales pesados, debido a la presencia de metales pesados producto de la actividad agrícola (riego, fertilizantes inorgánicos, pesticidas, estiércol, enmiendas calizas) y la minería ilegal presente en la zona aguas arriba. La contaminación por
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metales pesados hace que las diatomeas responden mediante cambios en la estructura de la comunidad (disminución de la diversidad e incremento en la abundancia de los taxones más tolerantes) y también mediante alteraciones morfológicas (teratologías) (Mora, D., et al. 2015).
La temperatura mínima presentes en la cuenca baja del rio tambo se registró en temporada de creciente (20.9 – 23.2 ºC) y las temperaturas máximas en la Temporada de Estiaje (23.66 – 29.63 ºC). Según Romero C. (2018) la temperatura del agua superficial está ligada a la radiación solar que recibe; por ende, esta gran diferencia de temperaturas registradas por temporadas de monitoreo; está ligada radiación registrada a la época de verano, fecha en la cual se realizó monitoreo temporada de estiaje (diciembre); del mismo modo en la temporada de creciente, ligada a la época en la que se realizó dicho monitoreo (mayo).
El pH registrado para ambas temporadas fue de 7.91 – 8.68, aguas con características alcalinas, la flora diatomológica lo confirma, ya que estos taxones son característicos de aguas alcalinas, especies alcalífilas y alcalibiónticas; por ejemplo, géneros como Amphora y las especies encontradas de Nitzschia (Mora, D., et al. 2015). Según el ECA para agua en la Categoría 3 Riego de vegetales y bebida de animales del Decreto Supremo N° 004-2017-MINAM 2017; dichos datos superan el ECA en las temporadas de estiaje solo en la estación E-003 con un valor de 8.48 y para la temporada creciente supera el ECA en todas las estaciones de monitoreo (E-001 con 8.61, E-002 con 8.59, E-003 con 8.68 y E-004 con 8.64)
La Conductividad para ambas temporadas presento un valor de 2800 - 4913 µS/cm (Temporada de estiaje 3037 – 4097 µS/cm y temporada de creciente 2800-4913 µS/cm). Solidos totales disueltos presenta unos valores más estables durante todos los meses de muestreo equivalente a 1400 – 2456 mg/L (Temporada de estiaje 1518 – 2049 mg/L y temporada de creciente 2800-4913 mg/L). Los sólidos en suspensión comprenden todas aquellas sustancias que están suspendidas en el seno del agua y que no decantan de forma natural. Los sólidos suspendidos son transportados gracias a la acción de arrastre y soporte del movimiento del agua (Pérez, G. et al. 2008).
El Oxígeno disuelto oscilan entre 2.83 – 8.83 mg/L (Temporada de estiaje 2.83 – 7.59 mg/L y temporada de creciente 8.59 a 8.68 mg/L). Según la norma de estándares de calidad ambiental (ECAs) para agua, el valor tiene que ser superior a 5 mg/L en un agua destinada para consumo humano y mayor a 4 mg/L para riego de vegetales; En la temporada de estiaje las estaciones E-001 con 2.83 mg/L, E-002 con 3.78 mg/L y E- 003 con 3.68 mg/L no superan los valores lo que implica que aún el cuerpo de agua se
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encuentra en buen estado con respecto a la finalidad de uso. El oxígeno disuelto (OD) es la cantidad de oxígeno que eta disuelta en el agua que es esencial para los riachuelos y lagos saludables. El nivel de oxígeno disuelto puede ser un indicador de cuan contaminada está el agua y cuan bien puede dar soporte esta agua a la vida vegetal y animal. Generalmente, un nivel más alto de oxígeno disuelto indica agua de mejor calidad. Si los niveles de oxígeno disuelto son demasiado bajos. Algunos peces y otros organismos no pueden sobrevivir (Peña, E. 2007). Las aguas superficiales no polucionadas suelen estar bien oxigenadas, o incluso hasta sobresaturadas. Tres factores influyen en el contenido de O2 en aguas naturales: El intercambio con la atmosfera, La producción fotosintética. El consumo microbiológico o a través de procesos químicos o electroquímicos de oxidación (Peña, E. 2007).
33
CONCLUSIONES
Se logró identificar de manera cualitativa un total 47 géneros de Bacillariophytas representadas en 2 clases, 12 órdenes, 18 familias; para ambas épocas. Presentando para la temporada de estiaje un total de 41 especies y para la temporada de creciente de 32 morfo/especies.
Se determinó la abundancia total de Bacillariophytas; siendo para la para la temporada Estiaje de 21242 cel/mm2, siendo el género más abundante Ulnaria
con 12490 Cel/mm2 y seguido de Nitzchia con 7191 Cel/mm2 y para la temporada
Creciente de 4560 cel/mm2 siendo género más abundante Nitzchia con 3260
Cel/mm2 seguida del género Surirella con 548 Cel/mm2.
Se determinó los índices de Shannon-H para ambas temporadas, registrando para la temporada de Creciente el valor de 1.537 – 2.07 bits/individuo y para la temporada de Estiaje el valor de 0.932 – 1.457 bits/individuo. A su vez se determinó la contaminación del agua según los índices presentando una contaminación de severa a moderada.
Los rangos de valores fisicoquímicos obtenidos para la cuenca baja del rio tambo son: para la temperatura se registró para la temporada creciente los valores de 20.9 – 23.2 ºC y las temperaturas máximas en la Temporada de Estiaje valores de 23.66 – 29.63 ºC. El pH registrado para ambas temporadas fue de 7.91 – 8.68- La Conductividad para ambas temporadas presento un valor de 2800 - 4913 µS/cm, presentando para Temporada de estiaje los valores de 3037 – 4097 µS/cm y para temporada de creciente 2800-4913 µS/cm. Los valores de Oxígeno disuelto registraron los valores 2.83 – 8.83 mg/L, siendo para la Temporada de estiaje los valores de 2.83 – 7.59 mg/L y para la temporada de creciente los valores de 8.59 a 8.68 mg/L.
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RECOMENDACIONES
Elaborar los índices de calidad biológicos de diatomeas propios para el rio tambo en toda la cuenca (Cuenca Baja, Media y Alta); ya que cada recurso acuático se diferencia de otros por las características biológicas, fisicoquímica e inorgánicas.
Ampliar el tiempo de estudio a las principales subcuencas del rio tambo para determinar los principales aportantes de las características fisicoquímicas y biológicas del rio tambo.
Toma de más datos fisicoquímicos e inorgánicos; como nitratos, nitritos, amonio, fosfato, DBO5, DQO, metales pesados que son importantes para determinar qué factores fisicoquímicos influyen en las Bacillarophyta propias del rio tambo, esto ayudara a determinar qué tipo de contaminación presenta el rio.
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BIBLIOGRAFIA
1. ARANGO, M., ÁLVAREZ L., ARANGO G., TORRES O., Y ASMED DE JESÚS M. (2008). Calidad del agua de las quebradas la Cristalina y la Risaralda, San Luis, Antioquia. Revista EIA. 9:121-141.
2. AYALA W. & GUEVARRA M. (2016). Calidad ecológica del rio Chao usando diatomeas y algunos parámetros fisico – químicos, noviembre 2015 – mayo 2016. Tesis pregrado 2016. Universidad Nacional de Trujillo. Trujillo – Perù.
3. BEDOYA J. (2018). Composición del fitoplancton en la represa de “El Pañe” entre abril a setiembre, Arequipa – 2017. Tesis 2018. Arequipa – Perù-
4. CALIZAYA J., AVENDAÑO M. Y DELGADO L. (2013). Evaluación de la calidad Fluvial con Diatomeas (Bacillaríophyceae), una experiencia en Tacna, Perú. Revista Peruana de Medicina Experimental y Salud Pública, 30: pp. 58-63.
5. GUZMAN N, (2017). "Determinación de la calidad de agua del río chili mediante indicadores biológicos (Bacillariophyta) agosto 2015 - enero 2016" tesis 2017; Arequipa – Perú.
6. JACOBSEN, D. (2003). Altitudinal changes in diversity ofmacroivertebrate from small streams in the Ecuadorian Andes. Arch. Hydrobiol. Vol. 158, 2, p. 145-167. 7. LEVKOV, Z. (2009). Amphora sensu lato. In: Diatoms of Europe: DIatoms of the
EuropeanInland Waters an Comparable Habitats (Lange-Bertalot, H. Eds) Vol. 5, pp. 5 -916. Ruggell: A.R.G. Ganther Verlag H.G.
8. LOBO E. & H. KOBAYASI. (1990). Shannon's diversity index applied to sorne freshwater diatom assemblages in the Sakama River System (Kamagawa Pref, Japan) and its use asan indicator ofwáter quality. Jnp J phycol (Sorui) 1190; 38: 229-43.
9. LOBO, E. & KOBAYASHI, H. (1990). El índice de diversidad Shannon`s aplica a algunas asociaciones de diatomeas de agua dulce en el sistema de rio Sakawa (Kanegawa Pref. Japon) y su uso como indicador de calidad de agua. Japoner J Phycol (Souri); 38: pp. 229-43.
10. MAGRAMA. (2004). Metodología para el establecimiento del estado ecológico según la directiva marco del agua en la Confederación Hidrográfica del EBRO. Editor Jesús de la Fuente Álvaro. EBRO – ESPAÑA.
36
11. MELCALFE, J. (1989). Biological Water Quality Assessment of Running Waters Bases on Macroinvertebrate Communities: History and Present Status in Europe. Enviromental Pollution. 60(1), pp. 101-139.
12. MONTOYA-MORENO Y. & AGUIRRE N. (2013). Estado del arte del conocimiento sobre perifton en Colombia. Revista Gestion y Ambiente. Colombia.
13. MONTOYA-MORENO Y. & AGUIRRE N. (2013). Estado del arte del conocimiento sobre perifton en Colombia. Revista Gestion y Ambiente. Colombia.
14. MORA D., CARMONA J. & CANTORAL-URIZA E. (2015). Diatomeas epilíticas de la cuenca alta del río Laja, Guanajuato, México. Revista Mexicana de Biodiversidad. Vol. 86. Mexico.
15. OLIVIA-MARTINEZ M., GODINEZ-ORTEGA J. & ZUÑIGA-RAMOS C. (2014). Biodiversidad del fitoplancton de aguas continentales en México. Universidad Nacional Autónoma de MéxicoMéxico, D. F., México.
16. OLIVIA-MARTINEZ M., GODINEZ-ORTEGA J. & ZUÑIGA-RAMOS C. (2014). Biodiversidad del fitoplancton de aguas continentales en México. Universidad Nacional Autónoma de MéxicoMéxico, D. F., México.
17. PEÑA PULLA, E. (2007). Calidad de agua. Trabajo de investigacion. Oxigen disuelto. Escuela superior politecnica del litoral. Guayaquil – Ecuador.
18. PÉREZ, G. & RAMÍREZ, J. (2008). Fundamentos de limnología neotropical. Segunda edicion. Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Fisica y Naturales. Universidad Catolica de Oriente. Colombia
19. PLA, L. (2006). Biodiversidad: inferencia basada en el índice de Shannon y la riqueza. Venezuela. Revista científica Interciencia. 31: pp. 583- 590.
20. PUICANO RAMOS, ESTEFANIA ELISA MARGARITA. (2015). "Determinación taxonómica de algas y parámetros fisicoquímicos del rio chili, en las zonas de Chilina, Tingo y Uchumayo en los meses de octubre del 2013 - abril del 2014- Arequipa," Tesis. Universidad Nacional de San Agustín. Arequipa – Perú.
21. RODRIGUEZ V, (2017). Deteccion de Cianobacterias toxigenas de la represa El Pañe – Arequipa. Tesis. Universidad Nacional de San Agustín de Arequipa. Arequipa – Perú.
22. UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS (UNMSM). MUSEO DE HISTORIA NATURAL (2014). Métodos de colecta, identifcación y análisis de
37
comunidades biológicas: plancton, perifton, bentos (macroinvertebrados) y necton (peces) en aguas continentales del perú / departamento de limnología, departamento de Ictiología -- Lima: Ministerio del Ambiente.
23. VALCÁRCEL R, (2011). Evaluación de la degradación de ecosistemas dulceacuícolas en la cuenca baja del río Utcubamba mediante el uso de macroinvertebrados bentónicos. TESIS para optar el título profesional de Biólogo con mención en Hidrobiología y Pesquería. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Perú: 48 - 50.
24. VIRGINIA SEGURA-GARCÍA, ENRIQUE A. CANTORAL-URIZA, ISABEL ISRADE4 & NORA MAIDANA (2012). Diatomeas epilíticas como indicadores de la calidad del agua en la cuenca alta del río Lerma, México. Revista Hidrobiológica 2012. 22 (1): pp. 16-27.
25. WEHR, J. D. & SHEATH, R. G. (2003). Freshwater algae of Nort American, Ecology and classification. Biological Station and Department of Biological Sciences. Fordham University Armonk, New York
26. WHITTON, B. A. & POTTS, M. EDS., (2002). The Ecology of Cyanobacterias. New York: Kluwer Academic.
27. WHITTON, B. A. & POTTS, M. EDS., (2002). The Ecology of Cyanobacterias. New York: Kluwer Academic.
28. WHITTON, B. A.; DAVID M. JHON & BROOK, A. (2011). The freshwater algal flora of the british isles. an identification guide to freshwater and terrestrial algae. Second Edition (John, D.M., Whitton, B.A. & Brook, A.J. Eds),. Cambridge: Cambridge University Press.
29. YUCRA H, (2015). Estructura comunitaria de diatomeas en una gradiente de salinidad en los periodos seco (2012) y lluvioso (2013), en el Santuario Nacional los Manglares de Tumbes, Perú. Tesis 2015. Tumber – Perù.
30. ZAMORA, H. (2009). El índice BMWP y la Evaluación biológica de la calidad del agua en los ecosistemas acuáticos epicontinentales naturales de Colombia. Eco - Ambiental. Colombia. Boletín Científico-Centro de Museos de Historia Natural. 13 (2): 89-105.
39
ANEXOS 01
ESPECIES IDENTIFICADAS
Figura 21: A. Amphora sp., B. Caloneis sp, C. Navicula sp1, D. Navicula sp2 E. Navicula
lanceolata, F. Naviculacfcapitatoradiata.
A B
C D
40
Figura 22: A. Diploneis smithii, B y C. Frustulia capitata, D. Cocconeis placentula, E.
Planothidium sp1, F. Cymbella excisa.
A B
C D
41
Figura 23: A. Cymbella tumida, B. Gomphonema parvulum, C. Gomphonema truncatum, D.
Encyonema sp1, E.Encyonema sp2, F.Encyonema minutum
A B
C D
42
Figura 24: A. Diatoma moniliformis, B. Epithemia sorex, C. Rhopalodia gibba (fragmento de
valva), D.Rhopalodia musculus, E y F. Nitzschia palea.
A B
C D
43
Figura 25: A. Nitzschia amphibia, B. Nitzschia cf. gracilis, C. Tryblionella hungarica, D.
Nitzschia sp3, E. Fragilaria sp., F. Fragilaria vaucheriae. A
B
C D
44
Figura 26: A. Entomoneis paludosa,B.Surirella brebissonii,C.Surirella ovalis, D.Ulnaria ulna,
E. Cyclotella meneghiniana, F. Pleurosira sp. A
B
C D
45 Anexo 02 Estaciones de Monitoreo Estación E-001 Estación E-002 Estación E-003
46
Estación E-004
Monitoreo de Perifiton (Diatomeas) Piedra 1
Piedra 2
47
Anexo 03 Limpieza de Frústulo
Limpieza de frústulos de diatomeas Equipos y materiales
Campana extractora o sistema equivalente.
Baño de arena o baño maría.
Vasos de precipitados o tubos de ebullición (uno por muestra).
Probetas de 20 ml, 50 ml, para los agentes oxidantes.
Pipetas Pasteur limpias.
Centrifugadora (opcional) con tubos de centrífuga. Estos tubos deberían ser resistentes al ataque de agentes oxidantes o ácidos utilizados para limpiar las diatomeas.
Solución de peróxido de hidrógeno (H2O2) al 50% (100 volúmenes).
Ácido clorhídrico diluido HCl 1M.
Agua destilada.
Nota: Si no se dispone de centrifugadora, las muestras se pueden dejar sedimentar, después el sobrenadante se puede eliminar con cuidado.
Procedimiento
La oxidación de las muestras se realiza según algún método descrito en la literatura, se recomienda en este manual el explicado en Battarbee (1986).
Se toma 5 ml de muestra y se coloca en un tubo de ebullición luego se agrega 10 ml de peróxido de hidrógeno al 50%
Se lleva a baño maría o de arena a 80 ºC durante dos horas.
Se retiran los tubos de ebullición se dejan enfriar y se agrega 5 a 10 gotas de HCl al 30% para eliminar los compuestos calcáreos.
Si hubiera centrifuga, se procede a centrifugar y a decantar el pellet por al menos tres veces o hasta que el pH se encuentre en 7.
Si no se cuenta con centrifuga se llena con agua destilada se deja decantar, se realizan múltiples enjuagues con agua destilada hasta llegar a un pH neutro.
Posteriormente se almacenaron en frascos con alcohol al 30%.
48
Agua Oxigenada a 50 volúmenes Extracción de la muestra y
agregado del H2O2
49 Anexo N° 4
Formato para datos de campo: GENERALES
LOCALIDAD: CUENCA: RESPONSABLE: CODIGO ESTACIÓN: FECHA: HORA: PERSONAL CAMPO: COORDENADAS: x …………..y……… ALTITUD:
CONDICIONES METEOROLÓGICAS:
Sol ... Parcial ... Nublado ... Total nublado ...
Lluvia ... Viento ... Otro
...
Lluvias en los últimos 7 días: SI ...
NO ...
COLOR DEL AGUA Y ASPECTO:
PROFUNDIDAD DEL DISCO SECCHI NUMERO DE MUESTRAS DE FITOPLANCTON
Código de Muestra
Prof. Temp. pH Turbidez Conductividad STT Oxigeno dls
50 ANEXO N° 4