Identificación de triatominos

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MANUAL DE

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE

PROCEDIMIENTOS DE IDENTIFICACIÓN DE

IDENTIFICACIÓN DE

TRIAT

TRIATOMINOS (HEMIPTERA:

OMINOS (HEMIPTERA: REDUVIIDAE) DEL PERÚ

REDUVIIDAE) DEL PERÚ

ELABORACIÓN:

Blgo. ABRAHAM G. CÁCERES LÁZARO Blgo. ABRAHAM G. CÁCERES LÁZARO División de Entomología.

División de Entomología.

Centro Nacional de Salud Pública Centro Nacional de Salud Pública

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Catalogación hecha por el Centro de Documentación e Información del Instituto Nacional de Salud (INS)

ISBN 9972– 857 – 26 – 3 (O.C.) ISBN 9972– 857 – 47 – 6 (N° 41) ISSN 1607– 4904

Hecho el Depósito Legal Nº 1501012005-1348 © Ministerio de Salud, 2005

Av. Salaverry, cuadra 8 s/n, Jesús María, Lima, Perú Teléfono: (511) 431-0410

Cápac Yupanqui 1400, Jesús María, Lima, Perú Teléfono: (511) 471-9920 Fax: (511) 471-0179 Correo electrónico: [email protected]

Página web: www.ins.gob.pe

Publicación aprobada con R.J. Nº 111-2005-J-OPD/INS Portada: Espécimen macho de Triatoma infestans

Se autoriza su reproducción total o parcial, siempre y cuando se cite la fuente. Cáceres Lázaro, Abraham

Manual de procedimientos de identificación de triatominos (hemiptera: reduviidae) del Perú/Elaborado por Abraham Cáceres Lázaro. -- Lima: Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud, 2005.

60 p.: 15 cm. -- (Serie de Normas Técnicas; 41)

1.TRIATOMA /crecimiento y desarrollo 2. INSECTOS VECTORES 3. CONTROL VECTORIAL 4. TÉCNICAS Y PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO 5. PERÚ

I. Cáceres Lázaro, Abraham

III. Instituto Nacional de Salud (Perú) IV. Perú. Ministerio de Salud

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CONTENIDO INTRODUCCIÓN ₅ SECCIÓN 1 1.1. Objetivo ... ... 7 1.2. Campo de aplicación ... 7 1.3. Responsabilidades ... 7 1.4. Documentos de referencia ... 8 1.5. Definiciones ... 8 SECCIÓN 2 2.1. Disposiciones ... 11

2.2. Principales medidas de bioseguridad ... 11

SECCIÓN 3 3.1. Generalidades de los triatominos ... 13

3.2. Los triatominos ... 13

3.3. Ecología de los triatominos ... 14

3.4. Ciclo biológico ... 15

3.5. Características morfológicas de los triatominos ... 19

SECCIÓN 4 4.1. Encuesta y vigilancia de triatominos... 24

4.2. Método para detectar infestaciones ... 24

4.3. Examinar los ambientes internos (intradomicilios) y externos (peridomicilios) de una vivienda ... 25

4.4. Buscar triatominos en ambientes extradomiciliarios (selváticos)... 27

4.5. Equipos para capturar triatominos... 29

4.6. Envío de triatominos ... 29

4.7. Indicadores entomológicos ... 31

SECCIÓN 5 5.1. Identificación de triatominos ... 35

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SECCIÓN 6

6.1. Montaje de ejemplares de triatominos en alfileres ... 39

SECCIÓN 7 7.1. Estudio de la infección natural ... 41

7.2. Examen de triatominos para investigarTrypanosoma cruzi o Trypanosoma rangeli ...42

SECCIÓN 8 8.1. Adaptar colonias de triatominos al laboratorio ... 45

SECCIÓN 9 9.1. Xenodiagnóstico ... 46

SECCIÓN 10 10.1. Lista de especies en el Perú ... 49

10.2.Triatoma infestans(Klug, 1834) ... 50

10.3. Panstrongylus herreri(Wygodzinsky, 1948) ... 51

10.4. Rhodnius ecuadoriensis(Lent y León, 1958) ... 52

SECCIÓN 11 11.1. Bibliografía ... 53

ANEXO A ... 57

ANEXO B ... 59

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INTRODUCCIÓN

La enfermedad de Chagas o trypanosomiasis americana es una infección ocasionada por el parásitoTrypanosoma cruzi y constituye un problema de salud pública para América Latina. La enfermedad se distribuye entre el límite de México con los Estados Unidos y el sur de Chile y Argentina lo que corres-ponde a los paralelos 42º LN y 45º LS.

La trypanosomiasis americana es una de las enfermedades prioritarias para el Programa del Banco Mundial de la OMS/UNDP. Después de la malaria, es la más seria y de amplia distribución en los seres humanos de las Américas. Su presen-cia en el continente americano data de hace más de 2000 años; pues, se ha demostrado el megacolon chagásico y posiblemente cardiopatía en momias exhumadas pertenecientes a los indios Wankarani establecidos en el interior de la Provincia de Tarapacá a 1100 msnm (norte de Chile) procedentes de Bolivia. Los vectores del agente etiológico de la trypanosomiasis americana son los insectos triatominos que se encuentran distribuidos en las regiones neotropicales y neárticas desde los 41º LN y 46º LS.

Aproximadamente, 90 millones de personas en Latinoamérica están en ries-go de infectarse con el Trypanosoma cruzi, y se estima que entre 16 y 18 millones de ellas se encuentran infectadas.

En el Perú, esta enfermedad es un problema de salud pública que afecta a la población de 15 departamentos, siendo dos las zonas más afectadas: a) Nororiente, y b) Sudoccidental. Con respecto a los triatominos, se han notifica-do en localidades de algunas provincias de 20 departamentos.

En la historia natural de esta enfermedad, uno de los eslabones que permite establecer la medida de control y vigilancia epidemiológica es, sin duda, el estudio de los triatominos transmisores y los factores determinantes para considerarlos vectores efectivos.

El control de la enfermedad de Chagas se basa en la eliminación o control de las poblaciones de los triatominos mediante diversas estrategias como el con-trol químico, el ordenamiento del medio y la educación sanitaria. Para ello, es importante también la decisión de organizar y llevar adelante un programa antitriatomínico que debe tener una base en la decisión política a largo plazo para que sustente su permanencia, su vigilancia, así como la formulación y desarrollo de investigaciones. Lo contrario, implica correr riesgos serios en la interrupción del programa, lo que significaría perder los esfuerzos y recursos invertidos, y lo más grave y peligroso, no alcanzar los objetivos.

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El presente Manual de procedimientos de identificación de triatominos (hemiptera: reduviidae) del Perú proporciona de manera sencilla y resumi-da la información de los aspectos entomológicos básicos y funresumi-damentales para apoyar la investigación y los programas de vigilancia y control de esta enfermedad.

Se agradece a todas las personas que de alguna manera han apoyado y brindado facilidades para la redacción del presente manuscrito, en especial al Dr. César Náquira Velarde y al Dr. Alfonso Zavaleta Martínez-Vargas por las sugerencias y la revisión del Manual; a la Dra. Juana Lung de Herrer, por facilitar las referencias bibliográficas, y a los Dres. Alejandro Llamoga Sánchez y Roque Fernández Vera por haber realizado algunas tomas fotográficas de los triatominos, que sirvieron para ilustrar el presente manual.

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SECCIÓN 1

GENERALIDADES

1.1. OBJETIVO

Brindar información referente a los procedimientos y técnicas de: 1) captura, 2) conservación, 3) embalaje, 4) transporte de ejemplares, 5) montaje, y 6) identificación de los triatominos, con énfasis en los que han sido incriminados como vectores del agente etiológico de la enfermedad de Chagas; asimismo, el estudio de su capacidad vectorial. Se concluye con la presentación de cla-ves para diferenciar géneros y especies de triatominos notificados en el Perú.

1.2. CAMPO DE APLICACIÓN

Para el personal de los laboratorios regionales, intermedios y locales que integran la Red Nacional de Laboratorios de Salud Pública.

1.3. RESPONSABILIDADES

1.3.1. El Centro Nacional de Salud Pública (CNSP), a través de la Dirección Ejecutiva de Enfermedades Transmisibles (DET), es responsable de autorizar la elaboración, revisión y actualización del presente manual, de acuerdo con los procedimientos aprobados por el Instituto Nacional de Salud.

1.3.2. Los directores regionales de salud y los directores o jefes de los esta-blecimientos de salud son responsables de autorizar, proporcionar los recursos necesarios y designar al personal responsable y calificado para la aplicación y la supervisión de las disposiciones contenidas en el presente manual.

1.3.3. El personal de los establecimientos de salud es responsable de plani-ficar las acciones, organizar, controlar y capacitar al personal; así como de proporcionar equipos, materiales, reactivos e instalaciones.

1.3.4. Los jefes o responsables de los laboratorios deben asegurar el control interno de la calidad.

1.3.5. Los profesionales designados para realizar el diagnóstico son respon-sables de controlar el cumplimiento de las disposiciones contenidas

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en el presente manual y, además, de mantener la confiabilidad de sus actividades e informar a las instancias superiores en caso de ocurren-cia de variaciones en las especificaciones de los procedimientos esta-blecidos.

1.3.6. El personal asignado para realizar esta actividad, descrita en el presente manual, debe estar calificado para manejar técnicas y métodos de en-sayo, aplicar medidas de bioseguridad y de buenas prácticas de labora-torio, y mantener la confiabilidad de las actividades que realiza.

1.4. DOCUMENTOS DE REFERENCIA

1.4.1. Instituto Nacional de Salud. Manual de procedimientos de laboratorio para la obtención y envío de muestras(1). Serie de Normas Técnicas

Nº 15, 2da_{ed., 1997.}

1.4.2. Instituto Nacional de Salud. Manual de normas de bioseguridad. Serie

de Normas Técnicas Nº 18, 2da_{ed., 1997.}

1.5. DEFINICIONES

1.5.1. Capacidad vectorial. Factibilidad del triatomino para transmitir los trypanosomatideos.

1.5.2. Clípeo. Borde anterior de la cabeza, compuesto de dos escleritos: uno grande posterior, denominado postclípeo y otro pequeño anterior, arti-culado flexiblemente al postclípeo.

1.5.3. Conexivo. Margen lateral saliente en el abdomen de los hemípteros. 1.5.4. Cópula. Unión física de los insectos machos y hembras.

1.5.5. Doméstico. Triatomino que desarrolla todo el ciclo evolutivo en el inte-rior de una vivienda.

1.5.6. Depredador. Un insecto que naturalmente caza y devora a otros in-sectos.

1.5.7. Escutelo. Porción posterior de la superficie dorsal del mesotórax, visi-ble en la base de las alas. Es un esclerito triangular en todos los géne-ros, excepto en el Parabelminus en el que se presenta trapezoidal. La

superficie dorsal del escutelo es rugosa, con un área central más o menos deprimida y bordeada por dos o más surcos convergentes; la

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proyección posterior del escutelo en muchos casos es cilíndrica, elongada y subhorizontal con ápice puntiagudo, redondeado o a veces truncado.

1.5.8. Estercolarios. Agrupamiento de Trypanosoma que lleva a cabo su

desarrollo en el intestino del insecto vector.

1.5.9. Exotepterigoto. Adjetivo que se deriva de exopteriota, subdivisión de

los insectos que incluye a los hemípteros y otras órdenes cuya meta-morfosis o desarrollo a través de su ciclo de vida pasa de huevo a ninfa y a adulto. A esta forma de desarrollo se le denomina también hemimetábolo o metamorfosis incompleta.

1.5.10. Exuvia. Cubierta exterior de la que se despojan los insectos cuando mudan a su próxima etapa de desarrollo.

1.5.11. Gena. Es un segmento de la cabeza ubicado lateralmente al clípeo. El ápice de éste puede ser redondeado o en punta.

1.5.12. Hemiélitro. Alas delanteras de los hemípteros con una porción basal más gruesa y otra porción distal membranosa.

1.5.13. Hábitat. Lugar donde vive en forma natural el insecto.

1.5.14. Huésped. Organismo en el cual se aloja un parásito u otros microorganismos.

1.5.15. Hemíptera. Uno de los 29 órdenes de insectos. Estos poseen alas delanteras denominadas hemiélitros y tienen piezas bucales chupadoras y perforadoras.

1.5.16. Índice de Infestación Domiciliaria (IID). Número de viviendas infesta-das sobre el número total de vivieninfesta-das encuestainfesta-das multiplicado por 100; se expresa en porcentaje. Es útil para estratificar áreas por interve-nir mediante control vectorial.

1.5.17. Índice Trypano-Triatominico (ITT). Es el número de triatominos infecta-dos naturalmente con Trypanosoma cruzi sobre el total de triatominos

examinados multiplicado por 100; se expresa en porcentaje. Es útil para estratificar áreas por intervenir mediante muestreo parasitológico para enfermedad de Chagas y para efectuar el control vectorial.

1.5.18. Metacíclico. Forma infectante del Trypanosoma presente en las heces

del vector.

1.5.19. Ocelo. Son ojos simples situados a ambos lados de la cabeza, casi detrás de los ojos compuestos.

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1.5.20. Operculado. Término que se usa para describir a los huevos que po-seen una tapa notoria.

1.5.21. Ovipostura. Postura de los huevos.

1.5.22. Peridoméstico. Insecto que vive en depósitos, corrales de aves u otros abrigos de animales cercanos a las viviendas.

1.5.23. Polimorfismo. Que presenta forma distinta, que no está relacionada con las etapas del ciclo de vida.

1.5.24. Proboscis. Piezas bucales de los hemípteros que forman un tubo en-roscado bajo la cabeza. El tubo tiene un estilete que penetra los tejidos del huésped.

1.5.25. Pronoto. Es un esclerito a manera de escudo que cubre el mesotórax de forma trapezoidal, posee dos lóbulos anteriores y dos posteriores; el lóbulo posterior puede presentar una superficie lisa o granulosa y tubérculos distales y laterales.

1.5.26. Rostrum o rostro. Es el órgano picador chupador. Se inserta debajo del lado posterior de la cabeza, a la cual se denomina gula. El rostrum en los triatominos hematófagos consta de tres segmentos; en la gran mayoría de los redúvidos entomófagos el rostrum es curvado. El se-gundo segmento generalmente es el más largo y el tercero es el más corto.

1.5.27. Surco estridulatorio. Es una depresión o surco localizado en la porción central del prosternum (porción ventral del protórax) donde descansa el ápice del rostrum cuando se encuentra replegado o doblado hacia abajo. 1.5.28. Xenodiagnóstico. Método para el diagnóstico parasitológico de la en-fermedad de Chagas, donde se permite que un triatomino no infectado se alimente con sangre del paciente, examinándose el contenido rectal del insecto a partir de los 15 días posteriores, en busca de parásitos que probablemente hayan podido multiplicarse en sus intestinos. 1.5.29. Yugo. Es una placa de la cabeza situada en la base de la gena, es de

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SECCIÓN 2

2.1. DISPOSICIONES

2.1.1. Las disposiciones contenidas en el Manual de normas de bioseguridad.

Serie de Normas Técnicas Nº 18, 2da_{ed., son aplicables para el} cumpli-miento de las disposiciones del presente manual.

2.1.2. Se debe aplicar las medidas de bioseguridad pertinentes, especial-mente las aplicables a:

2.1.2.1. El ambiente. 2.1.2.2. El equipo. 2.1.2.3. El personal.

2.1.2.4. Animales de experimentación. 2.1.2.5. Los triatominos.

2.1.2.6. Las muestras y su procesamiento. 2.1.2.7. La esterilización.

2.1.3. La bioseguridad es un conjunto de medidas preventivas para proteger la salud y la seguridad del personal que trabaja en el laboratorio, frente a diferentes riesgos producidos por agentes.

2.1.4. Es responsabilidad de la dirección del laboratorio, establecer y aplicar las normas y procedimientos de bioseguridad detalladas por escrito. 2.1.5. La dirección del establecimiento de salud debe dar las facilidades para

que las normas de bioseguridad se cumplan.

2.1.6. Los principales peligros son las exposiciones por puntura accidental con agujas de jeringas, estiletes, pinzas, etc.; por corte con bisturí, láminas y cubreobjetos contaminados y por exposición en membranas mucosas o en la piel que presenta lesión activa, laceraciones, heridas o rasguños.

2.2. PRINCIPALES MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD

2.2.1. Todos los triatominos deben ser trasladados de su ambiente natural al laboratorio en vasos colectores apropiados, para evitar que escapen. 2.2.2. A todos los triatominos se les debe tratar como potencialmente

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2.2.3. En el momento de manipular, identificar y disectar los triatominos, se debe utilizar mascarillas, guantes nuevos y guardapolvo.

2.2.4. Lavarse las manos luego de concluir el trabajo con los triatominos. 2.2.5. Si la persona que va a manipular los triatominos presenta cortaduras o

rasguños en las manos y antebrazos, éstos deben ser cubiertos y estar bien protegidos.

2.2.6. Debe utilizarse zapatos que cubran los pies, no debe usarse sandalias o zapatos abiertos.

2.2.7. El procesamiento de los triatominos debe realizarse sobre una super-ficie de trabajo protegido por papel absorbente plastificado o papel de filtro.

2.2.8. La superficie de trabajo debe ser descontaminada por el operador an-tes y después de cada actividad.

2.2.9. Informar inmediatamente cualquier accidente al jefe del laboratorio. 2.2.10. Se debe disponer de un ambiente apropiado para el lavado de los ojos

en caso de exposición accidental por salpicaduras.

2.2.11. Todos los instrumentos utilizados durante el trabajo con triatominos deben descontaminarse antes de ser eliminados, en solución desin-fectante y luego ser autoclavados (121°C durante 20 minutos) o incine-rarlos.

2.2.12. Si se trabaja con cultivo para Trypanosoma cruzi , se debe usar una

cabina de flujo laminar y mechero Bunsen o mechero de alcohol. 2.2.13. El animal infectado experimentalmente con Trypanosoma cruzi debe

ser colocado en una jaula apropiada y segura, a la que se le adherirá una etiqueta que indique ANIMAL INFECTADO CONTRYPANOSOMA CRUZI, para luego depositarla en un ambiente seguro y apropiado.

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SECCIÓN 3

3.1. GENERALIDADES DE LOS TRIATOMINOS

El orden Hemiptera se divide en cuatro subórdenes:

COLEORRHYNCHA 1 Familia Fitófagos AUCHENORRHYNCHA 28 Familias Fitófagos HETERÓPTERA 75 Familias Fitófagos y predatores STEINORRYNCHA 41 Familias Fitófagos

En el suborden Heteróptera se ubica la familia Reduviidae con 25 subfamilias, todas de ellas predatoras, excepto la subfamilia Triatominae que es hematófaga y está integrada por más de 100 especies.

3.2. LOS TRIATOMINOS

Son insectos del orden Hemiptera. Se caracterizan por poseer aparato bucal succionador; la mayoría son fitófagos, algunos predadores y unos pocos son hematófagos.

3.2.1. Su distribución abarca América y Asia, pero la mayor densidad de las especies se localiza en América.

3.2.2. A los triatominos se les denomina con diversos nombres regionales, como: “chinches hocicones” y “cacarachuelos” en México; “chinches mamones” y “chinches de monte” en Panamá; “pitos” en Colombia; en Venezuela “pitos” y “chipos”; en Bolivia “hitas”; en Ecuador “chinchorros”, “chupasangre” y “chinches de caballo”; en Argentina, Chile, Uruguay y otras partes de Sudamérica se les denomina “vinchucas”; en Perú se les conoce como: “chinches”, “chinchones” y “chirimachas”; en Brasil se les conoce como “barbeiros”.

3.2.3. Estos hemípteros son de tamaño pequeño o mediano, el cual varía considerablemente en los diferentes grupos de géneros, aunque la hembra casi siempre supera al macho en tamaño. La coloración es generalmente sencilla, no obstante, también existen especies con colores vistosos.

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3.3. ECOLOGÍA DE LOS TRIATOMINOS

3.3.1. La principal característica biológica de los triatominos, tanto de las ninfas como de los adultos de ambos sexos, es la de succionar san-gre, principalmente de aves y mamíferos.

3.3.2. Sus hábitats naturales son ecotopos silvestres que sirven de nidos, refu-gios o lugares de descanso para mamíferos, aves y reptiles; los cuales constituyen sus fuentes naturales de alimentación. Algunos triatominos tienen preferencia por cierta especie en particular, pero la mayoría de ellos se alimenta de una amplia variedad de huéspedes.

3.3.3. Generalmente los triatominos se alimentan durante la noche, pero en lugares oscuros pueden alimentarse durante el día.

3.3.4. La presencia de animales incrementa y preserva la población, pues èstos se constituyen en fuentes de alimentación; algunos animales pueden ser predadores de triatominos, y a la vez desempeñar un papel en la dispersión pasiva de los vectores, constituyéndose como hués-pedes y como reservorios de diversos patógenos. Por otro lado, los factores climáticos, principalmente la temperatura, al parecer controlan el índice de incremento de las poblaciones de los triatominos.

3.3.5. Otro factor para la colonización, proliferación y mantención de los triatominos son las condiciones de edificación de las viviendas que crean microhábitats apropiados. En las construcciones de las vivien-das se observan hendiduras, rajaduras y grietas en las paredes y te-chos de barro o cemento; asimismo, en las uniones entre los adobes y ladrillos, los espacios entre tablas de madera, también los techos de hojas de palmeras. Otros factores que favorecen la infestación son el uso de telas como cortinas, el almacenamiento de los productos de las cosechas, el depósito de adobes y el apilamiento de maderas y palos dentro de la casa, y, por último, la presencia de animales domésticos en el interior de las casas, como: cuyes, conejos, gallinas, pavos, pe-rros, gatos, etc.

3.3.6. La picadura es poco dolorosa y se puede soportar, provocando sólo a veces un ligero prurito y en algunas ocasiones una ampolla en el lugar de la picada, siendo la cara, los miembros superiores y los pies los más afectados.

3.3.7. Al momento o después de alimentarse, el triatomino hace una deyec-ción líquida que tiene dos aspectos: uno de color amarillento que se seca rápidamente al contacto del aire, y otro que se seca lentamente y es de color negro. Este comportamiento de picar y defecar se debería a

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la necesidad del triatomino de succionar más sangre y almacenarla desocupando su intestino.

3.4. CICLO BIOLÓGICO

3.4.1. Los triatominos son insectos hemimetábolos. De huevo pasan por cin-co estadios ninfales (Fig.1), en los que son muy parecidos a los adul-tos pero de menor tamaño y carecen de alas. La obtención de sangre

para los triatominos es muy necesaria para la muda y continuación de su desarrollo.

3.4.2. El ciclo de vida de los triatominos oscila entre 4 y 16 meses o más. Muchas especies de triatominos han sido adaptados a condiciones de laboratorio con temperaturas que fluctúan entre 24 ºC y 27 ºC, y a una humedad relativa entre 70% y 75%, con la finalidad de conocer el ciclo biológico de cada triatomino. Respecto de estos estudios se da a conocer lo siguiente:

3.4.3. Huevo

Los huevos son colocados entre 10 y 15 días después de la cópula. Algunas hembras no apareadas pueden poner algunos huevos, pero éstos serán infértiles. Las hembras fértiles generalmente ponen huevos una sola vez, pero en muchos casos continúan poniendo huevos durante toda su vida. El núme-ro de huevos puestos por hembra y la frecuencia de la ovipostura depende principalmente de la cantidad de sangre ingerida. En la mayoría de los casos, cada hembra pondrá entre 100 y 600 huevos durante su vida.

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Los triatominos son de hábitos terrestres, generalmente colocan sus huevos individualmente o en grupo, en cualquier lugar que encuentre la hembra. Pero las especies que habitan en los árboles –como es el caso de la mayoría de especies de Rhodnius – colocan sus huevos en grupos pequeños adheridos

al sustrato.

Los huevos son de forma oval, más o menos elípticos (Fig. 2 y 3), presentan un opérculo en uno de sus extremos, por el cual emerge la ninfa I. Al inicio, los huevos son de color blanco-perla o gris, posteriormente cambian a rosado o rojizo a medida que el embrión desarrolla, observándose por transparencia los ojos de la futura ninfa. El tiempo que transcurre desde la puesta de los huevos hasta que eclosiona la primera ninfa varía para cada especie; también varía para una misma especie cuando habitan en regiones diferentes. En algunas especies el tiempo es de entre 10 y 30 días. El corión presenta ornamentaciones que varían según las especies.

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3.4.3. Ninfa (Fig. 4)

Presenta cinco estadios ninfales. Transcurridos de dos a tres días después de emerger, las ninfas ya están listas para alimentarse; de no conseguir ali-mento pueden pasar varias semanas en ayunas.

Todas las etapas de ninfas normalmente se alimentan de la misma variedad de huéspedes que los adultos presentes en el mismo hábitat. Bajo buenas condiciones, las ninfas pueden ingerir sangre hasta nueve veces su peso, mientras que los adultos, aproximadamente, de 2 a 4 veces. Generalmente, las ninfas que están en el quinto estadio son las que absorben la mayor cantidad de sangre, esto va algunas veces de 400 a 1000 por especie asocia-da al ser humano. Todos los estadios de ninfa, así como ambos sexos, pue-den sobrevivir durante períodos largos sin ingerir alimento, llegando en algu-nos casos hasta 11 meses.

Figura 3. Huevos eclosionados de Triatoma infestans .

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3.4.4. Adulto (Fig. 5 y 6)

Los triatominos adultos se diferencian de la ninfa por sus alas anteriores y posteriores bien desarrolladas y por ser sexualmente maduros, con los genitales completamente desarrollados.

La hembra copula sólo una vez y después de ser fecundada comienza la postura, antes de los 30 días. En algunas especies pueden observarse hasta 40 posturas que sobrepasan los 200 huevos.

Los adultos tienen un par de ocelos sensibles a la luz en la parte posterior de la cabeza, justo detrás de los ojos. Las ninfas no tienen estos ocelos.

Figura 6. Triatomino macho. Figura 5. Triatomino hembra.

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3.5. CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS DE LOS TRIATOMINOS

3.5.1. Cabeza

Es de forma variada. Algunos tienen la cabeza más o menos alargada y otros algo cónica. Se inicia en un ápice simple no dividido, que les permite dar movimientos notablemente libres; además, puede ser relativamente lisa o estar provista de numerosos tubérculos.

La cabeza está divida en dos regiones: una situada delante de los ojos deno-minada región anteocular, y otra posterior llamada postocular; la región anteocular suele ser más larga que la postocular (Figs. 7, 7a). La región anteocular presenta lateralmente dos surcos longitudinales: las genas que limitan una región central estrecha y alargada a la cual se le denomina clípeo, y el epistoma; por detrás de los surcos y un poco por encima de las bases antenales se presentan dos pequeñas prominencias denominadas tubércu-los, procesos frontales.

La región postocular es relativamente corta, se estrecha hacia atrás para for-mar el cuello, y en ella se encuentran dos pequeños órganos casi redondea-dos, hialinos y transparentes que están situados lateralmente por detrás de los bordes superiores de los ojos, son los llamados ocelos, que en algunas hembras ápteras pueden ser rudimentarios o estar ausentes.

El rostro, también denominado proboscis, es recto, alargado y delgado, for-mado por tres segmentos desiguales. Puede ser lanzado hacia delante, pero en reposo se encuentra debajo de la cabeza, llegando generalmente hasta el tórax. Su inserción se hace hacia delante de la región anteocular (Fig. 7a). Las antenas están compuestas por cuatro segmentos, de los cuales el prime-ro es más corto que la cabeza. Se inician a ambos lados de la región anteocular en los llamados tubérculos anteníferos, por delante y a la mitad de los ojos, casi en la extremidad cefálica. Los ojos compuestos son prominentes y ante-ceden al par de ojos simples u ocelos que, por lo general, están colocados en protuberancias, excepto en las ninfas, las cuales carecen de ellos.

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3.5.2. Tórax

En esta sección la parte más visible es el protórax, el cual tiene una forma trapezoidal y su cara dorsal o pronoto se halla dividida en dos porciones: una anterior o lóbulo anterior y otra posterior o lóbulo posterior (Fig. 8). La línea divisoria entre los lóbulos generalmente se halla situada más próxima al ápice que a la base y, lateralmente, existen unas expansiones más o menos promi-nentes llamadas ángulos anteriores o posteriores, según su posición. En los ángulos anteriores o porciones laterales del lóbulo anterior, se encuentran unos pequeños salientes en forma de tubérculos o espinas denominadas

Figura 7. Vista dorsal de la cabeza.

Ante Clípeo Post Clípeo G e n a Yugo Tubérculo Antenífero O jo Acelo Cuello Región Anteocular Región Posocular Ocelos Tubérculo A ntenífero Yugo Clípeo G e n a Labro Rostro O jo

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tubérculos pronotales anteriores, los cuales se dividen en: a) tubérculo distal y b) tubérculo lateral. Los ángulos posteriores o porciones laterales del lóbulo posterior carecen de salientes, pero su forma puede ser redondeada o aguda. En la parte que se encuentra por detrás del pronoto existe una estructura de forma triangular llamada escutelo, que es corto, cuyo ápice es simple o mu-chas veces provisto de un proceso elevado agudo o romo (Fig. 8). Lateralmen-te, el tórax presenta las pleuras que están divididas en tres pares: pro, meso y meta pleura (Fig. 8a). Ventralmente encontramos de delante hacia atrás el pro, meso y metasterno (Fig. 8b).

Ángulo Anterolateral Tubérculo Distal Tubérculo Lateral Ángulo H umeral L bulo Anterioró Lóbulo Posterior Carena Escutelo Collar Propleura Escutelo Rostro Acetabulo Anterior _Mesopleura Metapleura Coxa Anterior Coxa Coxa Anterior Mesosterno Coxa Media

Metasterno _{Coxa Posterior} Prosterno

Acetabulo

Figura 8a. Vista lateral de la cabeza,

protórax y del escutelo. Figura 8b. Vista ventral de la cabezay el tórax. Figura 8. Vista dorsal del

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Las ninfas carecen de alas, mientras los adultos de ambos sexos general-mente son alados. Los hemiélitros o alas anteriores (Fig. 9) presentan un aspecto peculiar y cubren parcial o totalmente el abdomen, a la vez que pre-sentan diseños típicos. El corio (mitad basal) es mucho más grueso y oscuro que la membrana (mitad apical), la cual, por lo general, presenta manchas y está provista de tres venas longitudinales que incluyen cuatro celdas.

Las alas posteriores tienen cinco venas longitudinales, son membranosas y más cortas y finas que las anteriores (Fig. 9a).

Las patas caminadoras son largas y delgadas, con las márgenes internas de los fémures inermes o provistas de espinas. Las tibias anteriores y medias de los machos casi siempre tienen fosas esponjosas y sencillas. Los tarsos están formados por tres segmentos y terminan en dos uñas (Fig. 9b).

Figura 9. Ala posterior.

(27)

Vista ventral Vista ventral Espiráculo Espiráculo Respiratorio Respiratorio Esterrito VII Esterrito VII Esterrito VIII Esterrito VIII Hipopigio Hipopigio Mo

Morfrfolologogía ía exexteternrna a dedel l mamachchoo MoMorfrfolologogía ía exexteternrna a de de la la hehembmbrara

Figura 10a.

Figura 10a. Vista ventral del extremoVista ventral del extremo

posterior

posterior del del machomacho Figura 11a.Figura 11a. Vista ventral del extremo Vista ventral del extremoposterior posterior de de la la hembrahembra

Figura 10.

Figura 10. Vista dorsal del extremoVista dorsal del extremo

posterior

posterior del del machomacho Figura 11.Figura 11. Vista dorsal del extremo Vista dorsal del extremoposterior posterior de de la la hembrahembra

Extremidad Extremidad recortada de la hembra recortada de la hembra Extremidad Extremidad redondeada del macho redondeada del macho

Esterrito Esterrito VI VI Esterrito Esterrito VII VII Esterrito Esterrito VIII VIII Conapórisis Conapórisis posterior posterior Clásper

Clásper _{Tertigio IX}_{Tertigio IX} Ala anterior

Ala anterior ConexivosConexivos 3

3.5.5.3.3 AAbbddoommeenn

Es alargado, más o menos ancho, con o sin marcas en su margen lateral al

cual se le denomina

cual se le denomina conexivoconexivo. Consta de nueve segmentos en la hembra y. Consta de nueve segmentos en la hembra y

diez en el macho; el primer segmento es muy reducido, carece de cerdas y

casi siempre está desprovisto de otros apéndices abdominales. Los

casi siempre está desprovisto de otros apéndices abdominales. Los machosmachos,,

en la parte extrema del abdomen, tienen una apariencia suavemente

redon-deada, cuando se les mira desde arriba (Figs. 10 y 10a); mientras que en las

deada, cuando se les mira desde arriba (Figs. 10 y 10a); mientras que en las

hembras

hembras, la punta del abdomen tiene una apariencia lobulada o puntiaguda, la punta del abdomen tiene una apariencia lobulada o puntiaguda

(Figs. 11 y 11a). Hacia los lados y ventralmente se encuentran los

(Figs. 11 y 11a). Hacia los lados y ventralmente se encuentran los estigmasestigmas o o

espiráculos respiratorios

(28)

SECCIÓN 4

4.1. ENCUESTA Y VIGILANCIA DE TR

4.1. ENCUESTA Y VIGILANCIA DE TRIATIATOMINOSOMINOS

Procedimiento mediante el cual se determina la presencia de especímenes

vivos o muertos de triatominos, rastros de ellos como heces, restos de corión

de los huevos y

de los huevos y exuvias. Se determina también la tasa de exuvias. Se determina también la tasa de infección natural porinfección natural por

Trypanosoma cruzi Trypanosoma cruzi ..

Todos los triatominos son de origen silvestre y muchas especies aún se

encuentran en sus hábitats naturales; otras especies ya están adaptadas a

las viviendas, donde las personas y algunos animales domésticos existentes

en el interior o exterior de las viviendas les sirven de alimento; además, la

vivienda les brinda protección de las condiciones climáticas desfavorables.

Otras especies se encuentran en proceso de domiciliación. Las adaptaciones

de los triatominos mencionadas arriba, son producto del deterioro de su hábitat

natural, pues al no encontrar alimento suficiente, migran hacia los alrededores

de las viviendas o al interior de éstas, adaptándose a ellas, ya que encuentran

las condiciones favorables para obtener alimento y reproducirse.

4.2. MÉTODO PARA DETECTAR INFESTACIONES

Las infestaciones de las viviendas por los triatominos pueden ser

demostra-das por

das por el hallazgo de el hallazgo de los triatominos o los triatominos o por los residuos del por los residuos del corión (cáscara),corión (cáscara),

exuvias o huellas de heces. La secuencia normal de una inspección, ya sea

en un área endémica o no endémica, es la siguiente:

1)

1) Preguntar a laPreguntar a las personas que has personas que habitan las viviendbitan las viviendas si han visto o en-as si han visto o

en-contrado triatominos o si han sido picadas mientras descansaban en

contrado triatominos o si han sido picadas mientras descansaban en

el interior de sus viviendas. A las personas se les debe mostrar

triatominos disecados.

2)

2) ExaminaExaminar los ambientes internor los ambientes internos (intradomis (intradomicilios) y externoscilios) y externos

(peridomicilios) de la vivienda.

3)

3) Buscar triatBuscar triatominos en ambienteominos en ambientes extradomics extradomiciliarioiliarios (silvestress (silvestres).).

4.2.1.

4.2.1.Informe de las personasInforme de las personas

La persona encargada de

La persona encargada de realizar la vigilancia entomológica de los realizar la vigilancia entomológica de los triatominos,triatominos,

debe preparar una buena muestra donde figuren todos los estadios del

triatomino. Ésta debe ser mostrada a los habitantes de las viviendas y referirse

preferentemente con el nombre que se le conoce localmente. En algunas

(29)

ocasiones, las personas de las viviendas no pueden reconocer al ejemplar,

pero la mayoría de los pobladores de las zonas endémicas las reconocen

diferenciándolos con los chinches de cama. Hay que tener presente, que las

personas pueden confundir los reduvideos predadores y los fitófagos con los

hematófagos.

Se debe tener en cuenta que si la vivienda se encuentra altamente infestada,

las personas tendrán oportunidad de conocer de la existencia de los

triatominos, pero si el nivel de infestación es bajo, probablemente no se hayan

percatado de su presencia.

En otras ocasiones, los dueños de las viviendas mencionan que éstas están

infestadas, cuando en realidad no lo están, con la finalidad de que el

trata-miento con insecticidas pueda eliminar a otros insectos como cucarachas,

miento con insecticidas pueda eliminar a otros insectos como cucarachas,

pulgas, etc.

4.2.1.1.

4.2.1.1.Evidencias indirectas de infestaciónEvidencias indirectas de infestación

Las pruebas indirectas de infestación están dadas por las huellas de las

heces dejadas por los triatominos sobre paredes y artefactos tales como

cuadros, almanaques colgados sobre las paredes, etc.; esto demostrará que

los triatominos están o han estado presentes en la vivienda. Las heces de los

triatominos tienen como característica la forma de goteo de cera de las velas

y algunas veces presentan una mezcla de líneas de color negro o marrón muy

oscuro. El hallazgo de estos rastros demuestra evidentemente la presencia

de los triatominos, pero esto no significa que aún se encuentren en la

vivien-da. Sin embargo, debemos tener presente que si los rastros son encontrados

da. Sin embargo, debemos tener presente que si los rastros son encontrados

en cosas expuestas más recientemente como almanaques, por ejemplo, ellos

serán la prueba de que aún existen en la vivienda.

Un método de encuesta bastante útil es el de

Un método de encuesta bastante útil es el de colocar o clavar papeles de colorcolocar o clavar papeles de color

sobre las paredes de la vivienda, de esta manera se obtendrán los rastros de

heces de los triatominos y así podremos, según las fechas, determinar su

presencia reciente.

4.3. EXAMINAR LOS AMBIENTES INTERNOS (INTRADOM

4.3. EXAMINAR LOS AMBIENTES INTERNOS (INTRADOMICILIOS) Y ICILIOS) Y EXTER-

EXTER-NOS (PERIDOMICILIOS) DE UNA VIVIENDA

NOS (PERIDOMICILIOS) DE UNA VIVIENDA

Los triatominos que se han adaptado al interior de las viviendas deberán ser

colectados en los diferentes ambientes de la vivienda de la siguiente forma:

a) manual, b) con sustancias irritantes, y c) sin uso de sustancias irritantes.

(30)

4.3.1. Captura manual

Preferentemente, en cada vivienda, la colecta debe ser realizada por una sola persona. En cada vivienda, el colector debe buscar a los triatominos durante 15 a 30 minutos.

El colector debe buscar detenidamente los triatominos o detectar sus rastros en sus refugios, ya sea grietas y hendiduras de las paredes, techos y corrales de animales, mediante el uso de pinzas y linternas. Adicionalmente, se busca-rá en las ropas, cajas, muebles, almanaques y otros lugares sombreados. Este tipo de captura presenta la desventaja de que no refleja la estructura etaria de la población de triatominos, ya que algunos permanecen escondi-dos en grietas donde no puede llegar el hombre. Al finalizar la encuesta en todas las viviendas se realizará el conteo por estadios ninfales, adultos, por sexos y presencia de huevos, asimismo, se contabilizará el número de especímenes por vivienda. Los ejemplares capturados se colocarán en vasos colectores o también se pueden utilizar bolsas de polietileno de acuerdo con el ambiente de captura (cuyeros, dormitorios, cocina-comedor, etc.). En oca-siones son útiles las cajitas de fósforo vacías los vasos deben contener papel plegado que facilitará a los triatominos ocultarse de la luz. Esta misma meto-dología es empleada para colectar en ambientes peridomiciliarios.

El hecho de encontrar triatominos muertos, exuvias o restos de corión de los huevos, es una clara indicación de que la vivienda ha estado infestada, lo que no indica infestación actual. Por otro lado, si sólo se colecta uno o dos ejem-plares vivos y no encontramos otras evidencias de infestación, esto podría indicar sólo la presencia casual de los triatominos inmigrantes o de una ver-dadera infestación. Sin embargo, si se encuentran ninfas vivas en el interior o en los peridomicilios de las viviendas, esto será la prueba más clara de que existe infestación.

Los triatominos capturados vivos se deben contar y mantener con vida dentro de los vasos colectores; éstos deberán estar rotulados indicando los datos correspondientes a la fecha, lugar y ambiente de captura, hasta el momento que se realice la identificación y examine las heces para determinar la presen-cia de trypanosomatideos.

Para encuestar un área antes de la campaña de control, es muy importante la participación de los moradores, a quienes, luego de un entrenamiento previo a ésta, se les emplea para que realicen la actividad bajo supervisión. Antes de realizar la encuesta y la campaña de control, es necesario anotar en el croquis de la localidad, la posición de las viviendas, las casas donde se encontraron triatominos vivos y aquéllas donde se encontró evidencias indirectas. Durante

(31)

la fase de ataque de la campaña de control con insecticidas, todas las casas deberán ser rociadas, sin importar que estén infestadas o no. Por lo que posteriormente al tratamiento es necesario realizar un seguimiento para de-tectar la eficacia de los rociamientos y ver cuáles son las viviendas que conti-núan infestadas, con la finalidad de planificar y diseñar la toma de decisiones correspondientes. Si se encuentran rastros de heces sobre las paredes des-pués del control, éstos no son indicadores de que persistan los triatominos, ya que no podría determinarse si fueron dejados antes o después del trata-miento. Además, si la infestación persiste, será probablemente en un nivel bastante bajo, y los triatominos vivos no podrán ser detectados en los 15 y 30 minutos que dura la inspección de la vivienda.

4.3.2. Utilizando sustancias irritantes

Se emplea el procedimiento mencionado anteriormente y se aprovecha la acción de algunos piretroides o piretrinas. Mediante esta metodología se incrementa la captura de los triatominos, pero limita que los ejemplares cap-turados muertos sean usados en otros tipos de estudios.

Esta metodología es usada con frecuencia en localidades donde la densidad triatomínica es baja; también se usa cuando se va a programar una encuesta entomológica previa al rociamiento de una zona y transcurrido uno o dos días del rociamiento se programa una encuesta posrociado, donde se recogerá los triatominos muertos después del rociado.

4.4. BUSCAR TRIATOMINOS EN AMBIENTES EXTRADOMICILIARIOS (SELVÁTICOS)

Realizar investigaciones de triatominos en el ambiente silvestre es importante para: • Conocer los ecotopos de los triatominos.

• Conocer la interrelación trófica en el hábitat.

• Evaluar el desplazamiento de los triatominos y las tendencias de dispersión. • Evaluar la capacidad de domiciliación que tienen algunos triatominos al

invadir viviendas humanas o peridomicilios existentes en el área. • Estudiar el comportamiento de las especies en sus ecotopos. • Conocer sus enemigos naturales en el micro o macrohábitat. Para ello se emplean los siguientes procedimientos:

(32)

4.4.1. Expulsión de los ejemplares del interior de su microhábitat mediante procedimientos químicos

Para ello se emplean sustancias químicas movilizantes y repelentes, por ejem-plo las piretrinas o los piretroides; el inconveniente es que muchos ejempla-res mueren al ser capturados y esto limita el estudio posterior.

4.4.2. Disección de hábitats

Ha sido utilizado por muchos investigadores. Puede comprender desde des-hacer un pequeño nido de aves hasta la disección de una palmera o arbustos. La disección de nidos se emplea para el estudio del área poblacional, del ciclo biológico en el hábitat natural, y además para conocer el hábitat de los triatominos silvestres; asimismo, nos permite determinar los refugios de al-gunos vertebrados que favorecen la presencia de triatominos.

4.4.3. Trampas sin cebo animal

Se basa en el uso de cajas de cartón o madera con agujeros de entrada y con trozos de papel para impedir su salida, o también se puede emplear cañas de bambú que serán colocadas en ambientes como bosques o cuevas. Las trampas son utilizadas con éxito cuando se propone realizar encuestas domi-ciliarias posrociado.

4.4.4. Trampas con cebo animal

Es uno de los métodos más utilizados por sus excelentes resultados. Una de ellas consiste en una caja de madera con dos compartimentos, en uno de los extremos se coloca un animal de sangre caliente (conejo, gato, perro, gallina o rata) y en el otro extremo se colocan embudos pequeños hacia adentro que facilitarán la entrada de los triatominos, pero impedirán la salida. Los vertebrados deberán estar separados de los triatominos capturados median-te el uso de una median-tela metálica con orificios pequeños.

4.4.4.1. Otro tipo de trampa consiste en una simple jaula rodeada de papel o tela adhesiva, donde quedan adheridos los triatominos que se aproximan a los vertebrados para alimentarse.

4.4.5. Atracción mediante fuente luminosa

Se han empleado lámparas que emiten luz ultravioleta. Éstas son de utilidad restringida, pues generalmente atraen triatominos adultos machos.

(33)

4.4.6. Marcación, suelta y recaptura

Esta técnica nos brinda información cuantitativa. Para el marcado de los in-sectos se pueden emplear polvos fosforescentes de diversos colores e isótopos radioactivos, éstos sólo son aplicados a triatominos adultos y tienen una duración aproximada de 40 días.

4.5. EQUIPOS PARA CAPTURAR TRIATOMINOS

Cada laboratorio que pretende realizar o está desarrollando vigilancia entomológica en triatominos o intenta realizar trabajos de investigación con triatominos debe tener o adquirir los siguientes instrumentos:

• Pinzas rectas, largas y metálicas de 20 cm. • Alambre grueso de 80 cm de largo.

• Linterna.

• Cajas de “tecnoport” (poliestireno) .

• Vasos colectores.

• Bolsas plásticas medianas. • Papel periódico plegado.

• Cinta “maskingtape” (cinta adhesiva).

• Ficha de encuesta.

4.6. ENVÍO DE TRIATOMINOS

Los triatominos capturados en las localidades de muestreo deben llegar vivos al establecimiento de salud o al lugar donde se realizará la identificación y determinación si están o no infectados con trypanosomatideos, para ello se usarán los vasos colectores.

4.6.1. Vasos colectores

Estos vasos deben ser de preferencia de plástico y de boca ancha de 13 cm de largo x 12 cm de diámetro. La tapa del vaso debe ser a presión. Ésta se debe hacer una abertura de 8 cm de diámetro, la cual debe estar cubierta por una organza. Es recomendable que se coloque papel filtro, periódico o cartulina

(34)

Si sólo se capturan adultos, en el vaso se colocará de 10 a 12 ejemplares, pero si los ejemplares capturados corresponden a estadios inmaduros (nin-fas) en cada vaso el número será de entre 15 y 20 ejemplares.

La tapa se debe colocar a presión, y además debe asegurarse con cinta adhesiva la parte superior del vaso con parte de la tapa; esto se hace con la finalidad de que los vasos no logren destaparse con el movimiento y evitar que los triatominos puedan salir.

Cada vaso deberá rotularse con los siguientes datos de captura: localidad, distrito, provincia, departamento, ambiente de captura (peri, intra o extradomicilio, especificando el lugar, por ejemplo corral de aves, dormitorio, cuyero, etc.), área rural o urbana, altitud, hora y fecha de captura y nombre (s) de la (s) persona (s) que realizó la captura. Estos datos deben ser escritos con lápiz en papel o sobre una cinta adhesiva, para luego ser adherida en la parte externa del vaso.

con dobleces en el interior de los vasos, los cuales le brindarán mayor área de reposo, permanecerán más frescos y tendrán oscuridad (Fig. 12).

(35)

Los vasos deben ser colocados de costado, unos sobre otros, colocando papel higiénico, servilletas u otro material entre ellos para que les sirva de “colchón”. Éstos serán colocados de costado con la finalidad que los triatominos tengan mayor espacio para desplazarse; también, se pueden colocar en cajas de cartón.

La caja de “tecnopor ” o de cartón debe ser colocada en el interior de otra caja

grande que la protegerá de los golpes, en la tapa externa de ésta se debe rotular la dirección del establecimiento de salud o la del laboratorio referencial regional o del Instituto Nacional de Salud; además, se escribirá en los costados y lugares visibles: FRÁGIL, MATERIAL BIOLÓGICO SIN VALOR COMERCIAL.

4.7. INDICADORES ENTOMOLÓGICOS

Las condiciones de riesgo de transmisión vectorial domiciliaria de la enferme-dad de Chagas son:

a) Que el vector esté presente. b) Que el vector esté infectado.

c) Que el vector colonice la habitación humana.

Estas condiciones pueden ser traducidas en indicadores que miden el riesgo, los cuales pueden ser categorizados en:

4.7.1. Indicadores Operacionales

Sirven para la toma de decisión y tipo de conducta a seguir ante la presencia del vector. Se debe tener presente que, si el objetivo es eliminar al vector, la presencia de éste es condición suficiente para intervenir una zona. Tenemos los siguientes índices:

4.7.1.1. Índice de Dispersión

Nos permite conocer el grado de concentración y la distribución del vector dentro de una determinada área o lugar:

ID % = Nº de localidades infestadas con triatominos x 100 Nº de localidades examinadas

(36)

4.7.2. Indicadores de seguimiento y evaluación. Tenemos los siguientes: 4.7.2.1. Infestación domiciliaria

En función de la limitada sensibilidad de los métodos de detección por bús-queda activa del vector (hora/hombre) en áreas en que se usa esta metodolo-gía, debe considerarse a la localidad como unidad mínima de intervención. En caso de usar métodos permanentes de detección, puede que la unidad de intervención sea la vivienda o casa.

ID % = Nº de viviendas infestadas con triatominos x 100 Nº de viviendas inspeccionadas

4.7.2.2. Índice de Infestación Intradomiciliaria

III % = Nº de intradomicilios infestados con triatominos x 100 Nº de intradomicilios inspeccionados

4.7.2.3. Índice de Infestación Peridomiciliaria

IIP % = Nº de peridomicilios infestados con triatominos x 100 Nº de peridomicilios inspeccionados

4.7.2.4. Índice de Infección Natural (porT. cruzi )

ITT % = Nº de triatominos Infectados conTrypanosoma cruzi x 100 Nº de triatominos examinados

4.7.2.5. Índice de Colonización

IC % = Nº de casas con ninfas de triatominos x 100 Nº de casas positivas con triatominos

4.7.2.6. Índice de Densidad

ID % = Nº de triatominos capturados

(37)

Estos indicadores nos informan sobre el avance y permanencia de los logros a obtener, permitiendo monitorizar indirectamente las actividades, razón por la cual deben ser usados regularmente.

4.7.3. Indicadores del sistema de vigilancia (seguimiento)

Estos indicadores serán usados en la validación del sistema de vigilancia, (evaluación del programa). Son los siguientes:

4.7.3.1. Índice de Cobertura

IC = Nº de localidades con infestación anterior por triatominos con vigilancia instalada x 100 Nº de localidades con infestación anterior por triatominos

4.7.3.2. Índice de Producción

a) Nº de unidades de notificación productivas

x 100 Nº de unidades de notificación instaladas

b) Nº de unidades con notificación negativa

x 100 Nº de unidades de notificación instalada

4.7.3.3. Calidad de la Producción

a) Nº de localidades positivas por vestigios de triatominos

x 100 N° de localidades con notificación positiva

b) Nº de localidades positivas por captura o captura de triatominos

x 100 Nº de localidades con notificación positiva

c) N.º de local. posit. con captura de triatom. de una especie particular

x 100 N.º de localidades con notificación positiva

(38)

d) Nº de localidades tratadas

x 100 Nº de localidades notificadas positivas

e) Nº de viviendas tratadas

x 100 Nº de viviendas notificadas positivas

(39)

SECCIÓN 5

5.1. IDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS

La persona que se encargará de la identificación de los triatominos debe estar capacitada. Él o ella debe obtener referencias bibliográficas de las descripcio-nes originales u obtener buenas copias; asimismo, debe tener especímedescripcio-nes notificados para su jurisdicción, los cuales deben estar montados en alfileres y conservados en cajas entomológicas que servirán para compararlas con los recién obtenidos.

A continuación se adjunta una clave para los triatominos del Perú.

5.2. CLAVE TAXONÓMICA PARA TRIATOMINOS DEL PERÚ

La clave taxonómica que se presenta fue elaborada por Elliot A., Guillén Z., Nakashima I., investigadores del Instituto de Medicina Tropical “Daniel A. Carrión” de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos, y publicada en la Rev Per Ent 1988, 31:18-20, con el título de: “Identificación de los Chinches Triatominos (Hemíptera, Reduviidae) conocidos del Perú”. Dicha clave es prác-tica y didácprác-tica para personas que se inician en los estudios de los triatominos del Perú.

1. Ocelos en elevaciones bien destacadas en la región postocular de la cabeza ... 4 Ocelos no elevados ………... 2

2. Cabeza alargada, no muy convexa, vista de perfil, genas que se extienden más allá del clípeo, tubérculos anteníferos lejos de los ojos ... 3 Cabeza ovalada, pilosa, muy convexa; genas que no sobrepasan el clípeo; tubérculos anteníferos próximos a los ojos …...Cavernícola pilosa Barber, 1937.

3. Primer segmento del rostro tan largo como el segundo, escutelo con pro-cesos triangulares en su base, segmentos dorsales del conexivo con plie-gue longitudinal ...Belminus peruvianus Herrer, Lent, Wygodzinsky, 1954.

(40)

Primer segmento del rostro más corto que el segundo, escutelo triangular; sin procesos laterales en su base, conexivo dorsal sin pliegue longitudinal. Fémur sin espina, tarsos muy cortos: 1/5 de la tibia ...

Microtriatoma tridinadensis Lent, 1951.

4. Cabeza cilíndrica mayor que el doble del ancho, antenas implantadas próxi-mas al ápice de la cabeza ... 5 Cabeza con antenas implantadas lejos del ápice de la cabeza ... 7

5. Cabeza y patas con manchitas irregulares dándoles aspecto jaspea-d o ... 6 Cabeza y patas sin manchitas y con escasos dibujos regulares, banda longitudinal clara que se extiende desde el clípeo al cuello ………….…..

Rhodnius robustus Larrousse, 1927.

6. Conexivo con manchas grandes oscuras que distalmente terminan en pun-tas longitud 15 - 22 mm ……...……… Rhodnius pictipes Stal,

1872.

Conexivo con manchas oscuras basales sin puntas, longitud de 12-15 mm ...Rhodnius ecuadoriensis Lent y León,

1958.

7. Cabeza relativamente corta y ancha, tubérculos anteníferos insertados cer-ca del borde anterior de los ojos, cer-cabeza y cuerpo lampiños ... 8 Cabeza cilíndrica, tubérculos anteníferos no cercanos a los ojos, el rostro alcanza el prosterno que presenta surco estridulatorio ... 12

8. Apéndice posterior del escutelo alargado, subcilíndrico, estrechado axialmente ... 9 Apéndice posterior del escutelo corto, redondeado, cónico o truncado apical mente ... 10

(41)

9. Especímenes casi totalmente negros, conexivo con pequeña mancha roja en los ángulos póstero laterales... Panstrongylus chinai Del Ponte, 1929.

Especímenes de color claro, conexivo con manchas en el tercio anterior, vientre con mancha central y 2 laterales ... Panstrongylus geniculatus Latreille,1811.

10.Yugo romo, conexivo con mancha en forma de una “F”...

Panstrongylus rufotuberculatus Champion, 1899.

Yugo en punta ... 11

11. Tibias negras con manchita amarilla subbasal ... Panstrongylus lignariusWalker,1873.

Tibias totalmente negras …...……... Panstrongylus herreri

Wygodzinsky, 1948.

12. Apéndice posterior del escutelo en forma de espina fuerte, larga de punta afilada; primer segmento del rostro tan largo como el segundo ... 13 Apéndice posterior del escutelo diferente, primer segmento del rostro más corto que el segundo ... 14

13.Lóbulo anterior del pronoto con dos espinas, ángulo humeral espi-noso...……... Eratyrus mucronatus Stal, 1859.

Lóbulo anterior del pronoto con dos tubérculos, ángulo humeral terminado en tubérculo ……..………... Eratyrus cuspidatus

Stal, 1859.

14. Pronoto negro uniforme ... 15 Pronoto oscuro con manchas ... 16

15. Patas oscuras, conexivo con manchas oscuras en el tercio anterior, corión amarillo y mancha central negra ... Triatoma dimidiata Latreille, 1811.

(42)

Patas oscuras, trocánter, base del fémur y base de la tibia, amarillos, manchas del conexivo, incluyen la sutura ...…………... Triatoma infestans Klug, 1834.

16. Patas oscuras uniformes ... 17 Patas negras con el ápice del fémur y base de la tibia con estrecho anillo amarillo, conexivo con mancha central oscura... Triatoma nigromaculata Stal, 1859.

17. Cabeza oscura, pronoto anterior con margen lateral rojo. Conexivo con una banda central oscura …...………... Triatoma carrioni Larrousse,

1926.

Cabeza marrón rojiza con dos bandas longitudinales centrales de color negro, que parten de los tubérculos anteníferos hasta el surco postocular, pronoto anterior con una banda rojiza central y dos sublaterales cortas. Mancha del conexivo no cubre todo el segmento ………...…….. Hermanlentia matsunoi Fernández, 1988.

Véase Anexo C, para diferenciar las estructuras de algunas especies (Figu-ras. 13-21).

(43)

SECCIÓN 6

6.1. MONTAJE DE EJEMPLARES DE TRIATOMINOS EN ALFILERES

Una vez identificados los triatominos (adultos y estadios inmaduros), es nece-sario que dichos ejemplares sean conservados ya que servirán de referencia. Para el montaje de los triatominos se debe seguir los siguientes pasos: 1° Colocar los triatominos vivos en un envase de vidrio de boca ancha con tapa

de rosca hermético (15 cm de alto x 10 cm de ancho), agregar una pequeña porción de algodón embebido con acetato de etilo, el cual permanecerá entre 15 y 30 minutos.

2° Transcurrido el tiempo, retirar el algodón; asimismo, cada ejemplar debe ser colocado en el tablero ajustable para insectos, con la finalidad de exten-der adecuadamente las patas, la probóscide y las antenas; permanecien-do en ella aproximadamente 12 horas.

3° Se debe seleccionar el número apropiado de los alfileres entomológicos (preferentemente para los adultos de los géneros:Triatoma yPanstrongylus )

que pueden ser el número 2 ó 4; mientras que para los del género Rhodnius ,

como para los otros géneros existentes y para los estadios inmaduros (ninfas) serían los números 0, 1 ó 2.

4° El triatomino será colocado sobre un bloque de “tecnopor” pequeño y al

nivel del extremo inferior derecho del pronoto se debe introducir el alfiler seleccionado hasta la tercera parte. Realizado esto, se retira el alfiler del

«tecnopor» y se introduce nuevamente en el centro del bloque de cartulina

de 10 mm x 5 mm, donde deben estar escritos con tinta china el nombre científico de la especie y el sexo; seguidamente se introduce el alfiler en otro bloque de cartulina de 6 mm x 15 mm, donde se escribe el código de registro del ejemplar para el laboratorio o la institución respectiva; y finalmente, introducir a otro bloque de cartulina de 10 mm x 20 mm, donde se consignarán los datos de captura del triatomino. La distancia entre el ejemplar y el primer bloque de cartulina debe ser de aproximadamente 4 mm, y así sucesivamente del primer bloque de cartulina con el segundo y el segundo con el tercero (Fig. 22).

(44)

(45)

SECCIÓN 7

7.1. ESTUDIO DE INFECCIÓN NATURAL

Para determinar si un triatomino está infectado por trypanosomatideos, se deben seguir los siguientes pasos:

7.1.1. La persona que va a manipular el triatomino debe usar guantes, mascarillas y guardapolvo. La manipulación se tiene que realizar en una cabi-na de flujo lamicabi-nar y si no se tiene, es necesario adaptar un mechero Bunsen o de alcohol. Además, se debe tener un envase con lejía al 5%.

7.1.2. Separar todos los triatominos muertos encontrados en los vasos colec-tores, después identificar la especie a la que pertenece, dividir por sexo y estadios, y luego continuar con los ejemplares vivos.

7.1.3. Al ejemplar seleccionado se le coge del tórax con una pinza, luego frotar la parte dorsal y ventral del abdomen con un hisopo humedecido en solución salina con antibiótico y colocarlo en posición dorsoventral sobre una lámina portaobjeto limpia, a unos 0,5 cm de la parte final del abdomen, después dejar caer dos gotas de solución salina. Luego, con otra pinza limpia presionar en el octavo y noveno segmento abdominal con la finalidad de que expulse las heces. Con otra pinza limpia, realizando movimientos suaves en un solo sen-tido, homogeneizar las heces expulsadas con la solución salina.

7.1.4. Sobre la muestra se coloca un cubre objeto limpio, para ser observado al microscopio con aumento de 10X, depués se pasa a 40X. La observación debe iniciarse en uno de los extremos de la muestra, luego seguir en una sola dirección ya sea en forma longitudinal u horizontal; una vez llegada a la parte final de la muestra se avanza al campo siguiente y se retrocede, siguiendo de la misma forma hasta observar toda la muestra.

7.1.5. Terminada la observación se retira el cubreobjeto. Si la muestra es positiva se deja secar al medio ambiente, luego es enumerada y rotulada con los datos del triatomino capturado incluyendo la fecha de la observación. 7.1.6. Una vez que la muestra ha secado, es necesario cubrirla con unas gotas de alcohol metílico y secar al medio ambiente. Si la observación se realiza en el campo, es necesario fijar la muestra y luego depositarla en los lamineros. Para posteriormente colorearlas en el puesto o centro de salud más próximo.

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7.1.7. Es recomendable que la fijación y la coloración de la muestra se realice en el mismo día. Si no es posible colorearla el mismo día, la lámina será colocada en una caja pequeña de “tecnopor” para ser coloreada al día

siguiente.

7.1.8. La coloración de la muestra se realizará de dos maneras, según el nivel del laboratorio: a) Cubrir toda la muestra con el colorante Giemsa durante 20 minutos; b) La lámina debe ser introducida en un Koplin conteniendo el

colo-rante Giemsa que cubrirá toda la muestra ducolo-rante 20 minutos.

7.1.9. Transcurrido el tiempo se debe lavar la lámina coloreada, con la finali-dad de eliminar el exceso de colorante. Dejar secar al medio ambiente. 7.1.10. La muestra debe observarse primeramente a 10X, con la finalidad de observar el campo, después a 40X y finalmente a 100X, previamente se debe añadir aceite de inmersión.

7.1.11. Anotar todos los datos en la ficha respectiva adjunta.

7.1.12. Las pinzas y los cubreobjetos utilizados deben ser colocados en el envase que contenga lejía al 5%, en caso contrario pasados por el fuego del mechero.

7.1.13. Todos los triatominos donde se han observado trypanosomatideos deben ser depositados en un envase para posteriormente ser incinerados; mientras que los negativos, si permanecen en buenas condiciones, dejar-los en el insectario para posteriormente ser revisados por segunda vez. Y si continúan siendo negativos, se les da muerte colocando todos los ejem-plares en un envase de vidrio de boca ancha y dejando caer algodón embe-bido con cloroformo.

7.2 EXAMEN DE TRIATOMINOS PARA INVESTIGARTRYPANOSOMA CRUZI O TRYPANOSOMA RANGELI

7.2.1. El examen individual y completo de los triatominos comprende el exa-men sucesivo de:

1. Hemolinfa.

2. Glándulas salivales. 3. Intestino posterior.