INVESTIGACION USO DE ENTOMOPATÖGENOS.pd
17
0
0
Texto completo
(2) animales homeotermos e insectos beneficiosos. En la práctica, los microorganismos aislados en la naturaleza y vueltos a introducir en su ambiente natural, en forma de insecticidas, permiten evitar cambios indeseables en la biocenosis, manteniendo así los niveles de densidad de insectos entomófagos y otros organismos útiles, así como eliminar el peligro de contaminación ambiental (aire, suelo, agua y plantas) por el uso de compuestos tóxicos estables. 2. Uso de bacterias entomopatógenas. Por su importancia, uso generalizado y posibilidades de reproducción artesanal e industrial, las bacterias formadoras de esporas y cristales, agrupadas como variedades de Bacillus thuringiensis Berlíner, acapararán nuestra atención en el presente tema. Bacillus thuringiensis es una bacteria formadora de esporas cristalíferas (Figura 1). Las endosporas le permiten persistir en estado latente fuera del hospedante. Además de formar endosporas, produce dos clases de toxinas, ambas actúan como venenos estomacales después de la ingestión por el insecto durante la alimentación. La primera la delta- endotoxina (cristal) es una proteína capaz de paralizar el intestino de la mayoría de las larvas de lepidópteros. La segunda sustancia ha sido identificada como beta-exotoxina y es una sustancia no proteica secretada por la célula vegetativa durante la propagación. Figura 1. Bacillus thuringiensis. Esporas y cristales. De izquierda a derecha: células con esporas y cristales; esporas y cristales libres.. Los biopreparados producidos a base de B. thuringiensis (Bt) actúan como un insecticida de ingestión, o lo que es lo mismo, los insectos que se alimentan de las hojas asperjadas con el biopreparado ingieren las esporas y cristales del entomopatógenos, que son los causante de su muerte. Durante el proceso de infección, los insectos susceptibles son o muertos por los cristales (delta-endotoxina) o tan debilitados que la bacteria puede invadir rápidamente el hemocelo desde el intestino y producir una septicemia letal. Los insectos más susceptibles son aquellas larvas de lepidópteros que tienen contenidos intestinales alcalinos (pH 10,5) y enzimas capaces de hidrolizar los cristales y liberar la endotoxina. El desarrollo de métodos de reproducción por cultivo sólido y por fermentación, así como los estudios de efectividad en laboratorio y campo permitieron introducir rápidamente los biopreparados a base de Bt, que aunque no se pueden almacenar por más de 6 meses a temperaturas frescas bajo techo, han constituido un arma eficaz para los agricultores en la lucha contra las plagas de lepidópteros y otros insectos, nematodos y ácaros.. 2.
(3) La muerte de los insectos producidos por Bt se manifiesta como sigue: • • • •. Los insectos pierden el apetito, son lentos y perezosos. Mueren con secreciones bucales y por el ano (exudado lechoso). Se tornan de color carmelita, pardo oscuro llegando hasta color negro en ocasiones y se presentan blandos y frágiles. Otras veces pierden su contenido líquido dejando una mancha oscura sobre las hojas (Figura 2).. Figura 2. Larva de H. virescens muerta por la acción del Bt.. En Cuba en los centros productores del Programa Nacional de Lucha Biológica, se producen varias cepas de Bt (Tabla 1) capaces de controlar diferentes tipos de plagas. Tabla 1. Características generales de las cepas de Bt que se producen en Cuba. Cepa LBT 3 LBT 13 LBT 21, 24, 26. Producen Esporas y cristales. Tipos de plagas que controlan Nematodos en plátanos Lepidópteros en hortalizas y pastos. Esporas, cristales y exotoxinas. Acaros en varios cultivos. Esporas y cristales. Spodopteras, Plutella y otros lepidópteros en tabaco, hortalizas, papa, maíz y otros cultivos.. Los biopreparados de B. thuringiensis poseen acción sobre lepidópteros, coleópteros, dípteros, ácaros y nematodos en diferentes cultivos (Tabla 2). Tabla 2. Cultivos y plagas en que se emplean cepas de B.thuringiensis Cultivos tratados Col - Berro Pastizales Maíz Hortalizas. Plagas bajo control Nombre común Nombre científico Polilla dorso diamante Plutella xylostella Gusano medidor Trichoplusia ni Medidor de la col Pieris phileta Falso medidor de los pastos Mocis latipes, prodenias Spodoptera spp Palomilla del maíz Spodoptera frugiperda Gusano de la mazorca Helicoverpa zea prodenias Spodoptera spp 3.
(4) Cucurbitáceas Viandas tropicales Tabaco Papa Plátanos Cítricos Arroz. Trip de los melones Mosca minadora Gusano de los melones Trip de los melones prodenias Primavera de la yuca Cogollero del tabaco Primavera del tabaco prodenias Mosca minadora Acaro blanco Gusano de la col Acaro o araña roja nematodos Acaro del moho Minador de los cítricos Acaro blanco Palomilla del maíz. Thrips palmi Liriomyza trifolii Diaphania spp. Thrips palmi Spodoptera spp., Erynnis ello. Heliothis virescens, Manduca sexta Spodoptera spp Liriomyza trifolii, P. latus, Trichoplusia brasicae, Tetranychus tumidus Meloidogyne spp. P. oleivora, Phyllocnistis citrella Poliphagotarsonemus latus Spodoptera frugiperda. 3. Uso de hongos entomopatógenos El uso masivo de hongos entomopatógenos en el control de insectos plagas, debe tener en cuenta los requerimientos específicos que estos microorganismos exigen para poder actuar como medios efectivos de control, entre ellos se destacan: Modo de acción sobre el hospedante: se realiza principalmente a través de la cutícula directamente, esto a su vez, impone tolerancias más bien rígidas en las condiciones de humedad, que permitan la inducción de la enfermedad, debido a que las esporas germinan fuera de sus presas y deben penetrar a través de las partes menos quitinizadas de la cutícula para provocar la parálisis y muerte. Por esta razón las tolerancias ambientales son más estrictas que con otros microorganismos entomopatógenos, que generalmente actúan por ingestión con los alimentos. La incidencia de las enfermedades por hongos varía considerablemente en diferentes grupos de insectos. Las micosis son comunes en ciertos grupos taxonómicos: lepidópteros (polillas y mariposas, particularmente larvas), hemípteras (áfidos, moscas blancas y cóccidos), coleópteros (escarabajos, picudos), Thrips y dípteros (moscas y mosquitos). Entre las especies de hongos entomopatógenos más comúnmente usados en Programas de Control Biológico de plagas se encuentran: • • • • •. Beauveria bassiana Bals. (Vuill) Metarhizium anisopliae Sorok Lecanicillium (=Verticillium) lecanii. (Zimm.) Paecilomyces lilacinus. (Thom) Samson Hirsutella thompsoni. F. 4.
(5) • •. Paecilomyces fumoso-roseus. (Wize) Nomuraea rileyi. (Farlow). Formas de utilización. Aunque la colonización es la forma más económica y menos laboriosa del control microbiológico con hongos, no siempre es efectivo. La mayoría de las introducciones y colonizaciones han sido restringidas a la redistribución de grupos nativos, o a aquellos casos en que el hongo haya sido introducido junto con el insecto hospedante, tales métodos no siempre representan un beneficio económico inmediato en la protección de las cosechas. Siempre que se utilicen los bioproductos a base de hongos entomopatógenos con el objetivo de obtener reducciones significativas de las poblaciones de una plaga, minimizar los daños al cultivo y lograr la rentabilidad económica de sus aplicaciones, estos deben hacerse con los criterios siguientes: Primero: La reducción de la población por debajo del umbral económico, lo que se logra a través de la utilización de productos con la calidad requerida, a las dosis apropiadas y la repetición de los tratamientos cuando los niveles de la plaga rebasen el nivel poblacional crítico. Segundo: Aplicar la mayor dosis al más amplio espectro de plaga que se pueda presentar. La humedad en ambos casos es considerada como un factor limitante, debiendo ser superior al 90%, en condiciones de humedad por debajo de este índice, será requerido una gran cantidad de esporas del hongo. Las preparaciones con hongos entomopatógenos se aplican en forma de líquidos pulverizados, polvos, o en gránulos. Las aplicaciones en forma de aspersiones líquidas se realizan acompañadas con humectantes cuando se aplican sobre el follaje de las plantas y estas tienen superficies serosas (cafeto, col, otras), y resulta indispensable evaluar el efecto de estas sustancias sobre la viabilidad de las esporas u otras estructuras del hongo. Los polvos ofrecen cierta ventaja, ya que pueden persistir sobre la planta por un período de tiempo mayor, y además cuando son espolvoreados tienden a adherirse con mayor facilidad, tanto a las superficies inferiores, como a las superiores, del follaje de la planta. Las aplicaciones de formulaciones conteniendo hongos entomopatógenos no requieren de equipos especiales, ya que pueden ser usados los más comunes medios de aplicación de insecticidas químicos. Un factor importante a tener en cuenta es cerciorarse de que el insecto objeto de control resulta susceptible; también debe exigirse las condiciones climáticas óptimas, prefiriéndose las aplicaciones inmediatamente después de la lluvia o la irrigación, por ser la humedad un factor limitante en la eficiencia de estos microorganismos. Es preferible realizar los tratamientos en horas de la tarde, teniendo las ventajas de la reducción de la radiación UV por un período mayor y de la humedad ofrecida por el rocío. Muerte de insectos producidos por hongos: 5.
(6) • • • • •. Se presentan fijos a una superficie con las patas rígidas y se le observa la presencia de una cubierta filamentosa. Los insectos pierden el apetito, son lentos y perezosos. Generalmente se endurecen. Presentan un aspecto polvoriento y/o algodonoso observando colores blanco, crema, verde en dependencia del hongo en cuestión y sale entre sus articulaciones o sobre todo el cuerpo del insecto, en dependencia del grado de enfermedad. En otras ocasiones este polvo o algodón no aparece en la superficie hasta que se coloca por 3 – 5 días en un lugar o frasco limpio y húmedo. Tabla 3. Coloraciones del insecto cuando se enferma Microorganismo Beauveria bassiana Metarhizium anisopliae Lecanicillium lecanii Nomuraea. rileyi Paecilomyces. fumosoroseus. Colores que toma Blanco – crema – amarillo. Blanco – verde claro – Verde oscuro. Blanco algodonoso. Blanco – verde limón – Verde botella. Blanco – gris claro –gris oscuro.. 3.1. Beauveria bassiana. En los últimos años Beauveria bassiana (Bals.) Viull. ha cobrado mucha importancia en los países Latinoamericanos por su efectividad como controlador biológico de la broca del cafeto Hypothenemus hampei. En Venezuela, Colombia y Brasil se esta aplicando masivamente del hongo para el control de esta plaga del cafeto, con resultados altamente positivos. Similares resultados se reportan en Méjico, donde se aplica este hongo como parte de un programa de manejo integrado. Beauveria bassiana es un hongo entomopatógeno que se encuentra naturalmente en algunas plantas y en el suelo. Las epizootias son favorecidas por climas templados y húmedos. Las larvas infectadas se tornan de color blanco o gris. Beauveria es utilizada como bioinsecticida en varios países. Tiene una lista extensa de hospederos que incluye a moscas blancas, áfidos, saltamontes, termitas, escarabajos, gorgojos, chinches, hormigas y mariposas. Incluso se ha encontrado infectando los pulmones de roedores silvestres y en los orificios nasales del ser humano. Desafortunadamente, enemigos naturales como las mariquitas o cotorritas también son susceptibles. Un método de aplicación que evite el daño a enemigos naturales puede ser el uso de trampas de feromonas y tratamiento alrededor de la trampa o cebos contaminados con el hongo. Existen diferentes cepas de Beauveria que exhiben una considerable variación en cuanto a su virulencia, patogenicidad y rango de hospederos. En el suelo se desempeña como saprofito. 6.
(7) 3.2. Lecanicillium lecanii Lecanicillium (=Verticillium) lecanii. (Zimm.) Viegás, es un hongo entomopatógeno controlador biológico de plagas dentro de las cuales los áfidos, moscas blancas y las escamas son las más importantes. Sin embargo, con menor frecuencia se reportan coleópteros, dípteros y collembolas y algunas veces controlan fitonematodos y también hiperparasita hongos fitopatógenos como royas. Figura 2. Adultos de insectos micosados por L. lecanii. De izquierda a derecha: mosca blanca, bibijagua.. Caracterización. El hongo entomopatógeno L. lecanii, tiene una amplia distribución y que produce epizootias espectaculares en áfidos y escamas en regiones tropicales y subtropicales pero no en zonas templadas. Los cadáveres de insectos atacados por este hongo, presentan un aspecto algodonoso de color blanco crema o amarillo. Visto al microscopio presenta unas estructuras con apariencia de ramas y son células conidiógenas o estructuras adonde se forman los conidios. Estas fiálides son alargadas y se estrechan desde la base, presentándose en verticilos de 2-6, apareados o solitarios sobre hifas o apicalmente sobre cortas ramas. Los conidios son hialinos, aseptados, son producidos dentro de gotas de mucus en los ápices de las fiálides. Plagas que controla: Las principales plagas que controla este hongo son los áfidos y las escamas. Sin embargo, con menor frecuencia se reportan coleópteros, dípteros y collembolas y algunas veces también hiperparasita hongos fitopatógenos como royas. Entre las especies de áfidos que controla están: Myzus persicae, Aphis gossypii, Macrosiphum euphorbiae y Myzus nicotinae, las moscas blancas: Trialeurodes vaporariorum y Bemisia tabaci y escamas, Coccus virides. Forma de utilización: La aplicación inoculativa, esto es una sola aplicación de L lecanii en concentraciones bajas, puede ser tan efectiva como la liberación inundativa en grandes cantidades, gracias a que el contacto entre insectos sanos y enfermos es eficiente para diseminar la enfermedad. Para afidos y mosca blanca en pepino y otras hortalizas, se hace necesario realizar más de una aplicación. Efectividad. Una sola aplicación en aspersión para control de Myzus persicae es suficiente y da un control hasta por 3 meses. Para A.gossypii el control permanece menos tiempo y hay que repetir la aplicación para el control de nuevas poblaciones que se desarrollan sobre las hojas que van emergiendo. En todos los casos la señalización de los niveles de la plaga es un requisito para obtener resultados económicos y las primeras aplicaciones deben 7.
(8) hacerle ante la presencia de la plaga y las siguientes aplicaciones según los índices de insectos detectados. Productos comercialmente disponibles. En Cuba se producen dos productos comerciales basados en este hongo (100 t anuales), uno que se obtiene por el método sólido en los CREE sobre granos de arroz, con una concentración media entre 6-8 x 108 hasta 1-3 x 109 conidios / gramo, que requiere remojar el producto en agua para obtener la suspensión de conidios, generalmente su utiliza en dosis de 1 – 2 kg / Ha, en dependencia del indice de plagas. El otro producto se obtiene por fermentación, fundamentalmente en la planta de bioplaguicidas de Matanzas, con una concentración de 1-3 x 109 conidios / ml, con la característica, que tanto el sobrenadante como la biomasa presentan actividad insecticida, este producto se recomienda a dosis de 1 – 2 litros / ha, siempre en presencia de la plaga en campo.. 3.3. Metarhizium anisopliae Metarhizium anisopliae, fue también conocido como Entomophthora anisopliae (Basionym), es un hongo que crece en forma natural en los suelos y causa enfermedades en varios insectos y actúa como un parasito, pertenece a los hongos entomopatógenos. Es conocido que infecta más de 200 especies de insectos, incluyendo termitas. En la actualidad se usa como insecticida biológico para el control de varias plagas, tales como coleópteros, lepidópteros, salta hojas, langostas, termitas, thrips y también para el control de mosquitos vectores de la malaria. La enfermedad causada por este hongo es llamada muscardina verde, debido al color verde de sus esporas. Cuando estas esporas mitoliticas (asexuales), tambien llamadas conidia, del hongo se ponen en contacto con el cuerpo del insecto hospedante, ellas germinan y las hifas que emergen penetran la cutícula. El hongo entonces se desarrolla en el interior matando al insecto en unos pocos días; este efecto letal es acrecentado por la producción de peptidos ciclicos de acción insecticida (destruxinas). La cutícula del cadáver a menudo se enrojece y si las condiciones de humedad es adecuada un moho blanco se desarrolla sobre el insecto y se torna de color verde debido a las esporas producidas, se conocen diferentes aislados que se adaptan a ciertos grupos de insectos. Este microorganismo puede controlar gran cantidad de insectos entre los que se pueden mencionar larvas de mariposas, picudos en caña de azúcar y banano, barrenadores, chinches, chicharritas en caña y otros. Tiene una apariencia verde oliva, es muy polvoriento y se desarrolla bien a temperaturas de 25 a 27°C y humedad relativa de 90%. M. anisopliae no causa infección en humanos u otros animales y es considerado seguro como insecticida cuando las esporas microscópicas son asperjadas sobre las áreas afectadas por la plaga Modo de acción: Los conidias del hongo en contacto con el insecto entran en competencia con la microflora 8.
(9) cuticular produciendo un tubo germinativo que tiene la capacidad de atravesar el tegumento del insecto, se ramifica dentro de su cuerpo y provoca la muerte del hospedante debido a las toxinas secretadas, momificándolo y apareciendo posteriormente una esporulación verde sobre el cuerpo del mismo en condiciones de humedad. Estudios con Metarhizium anisopliae demostraron claramente que la proteasa es el factor clave en la penetración la cutícula del insecto por el hongo. La cutícula esta formada en un 70% aproximadamente de proteínas, lo que explica que sean las proteasas más importantes que las quitinasas. Después de la muerte del insecto, el hongo crece dentro del cadáver y todos 1os tejidos internos son penetrados por hifas filamentosas.. Figura. Insectos micosados por M. anisopliae.. 4. Conservación de los hongos Refrigerar a una temperatura de 1 oC a 10oC. A esta temperatura los productos se puede conservar hasta 4 meses, tanto en forma granulada como en polvos. 5. ¿Como es la preparación de la mezcla? 1) La mezcla se puede preparar para una mochila de 16 litros o para el área total a aplicar en cada día. Para una mochila de 16 litros se utilizarán, en dependencia de la dosis a usar entre 80-160-240 g / mochila, equivalente a 1-3 kg / hectárea. 2). Abrir la bolsa y depositar en un cubo, poner un tercio del agua y agitar hasta que las esporas del hongo se mezclen bien, y cuele para separar las esporas del arroz, posteriormente agregué el resto del agua a través de la malla de la asperjadora, asegurase que el arroz quede bien lavado, este procedimiento se realiza con todas las bolsas a usar. 3) Utilice el sobrante del arroz para dispersarlo en forma granulada al pie de las plantas. 4) La suspensión de esporas obtenida se diluye con agua y se pone en el equipo de aplicación terrestre o aérea por cada 200 litros de mezcla a aplicar. 5) El agua a utilizar debe tener un pH de 5 a 7 preferiblemente. 9.
(10) Dosis y frecuencia de aplicación: Las dosis recomendadas son de 1-3 Kg por hectárea. Cuando el producto tiene una concentración de esporas mínima de 108 esporas por gramo de sustrato (El sustrato con el arroz tiene estar bien colonizado, que significa que el hongo ha esporulado abundantemente). La frecuencia de aplicaciones varia dependiendo de las plagas a controlar. En el caso de plagas de follaje la frecuencia varía de 15 a 30 días. Cuando las plagas son subterráneas es preferible hacer aplicaciones semanales o quincenales. Es importante realizar la aplicación de modo uniforme. Para aumentar el poder del hongo se recomienda mezclar con Beauveria bassiana en proporción 60% Lecanicillium y 40% Beauveria o Bien con Paecilomyces en una proporción 90:10%. En algunos casos es conveniente aplicar asociado con un insecticida al 10% de la dosis usual. Con el fin de bajar las defensas del insecto y que el hongo lo parasite con mayor facilidad. 6. Evaluación de vehículos de aplicación Los tratamientos donde se utilizan vehículos de aplicación causan porcentajes superiores de mortalidad respecto al tratamiento testigo. Los aceites tienen un efecto sinergético cuando se combinan con microorganismos patógenos, incrementando su eficacia contra el insecto plaga en comparación con aplicaciones en agua (Womack et al., 1996; Prior et al., 1988). Esto se confirma, ya que cuando la cepa AMBAS1 de P. fumosoroseus se aplicó con aceite mineral como vehículo, la mortalidad sobre el T. citricida fue de 95%, mientras que cuando esta misma cepa se aplicó solo con agua, como vehículo, la mortalidad fue de 80 %. Poprawski et al. (1999) al evaluar en campo la cepa GHA de B. bassiana (Mycotrol) preparada en una suspensión (5 x 103 conidias/ml) de aceite emulsificable, obtuvo 89% de mortalidad sobre T. citricida a los cinco días de la aplicación, mientras que cuando se aplicó con polvo humectable bajo condiciones de laboratorio, la mortalidad que registró a los 10 días fue de 70%. Las formulaciones con aceites emulsificables protegen a las conidias de la radiación UV y contra la desecación en condiciones de baja humedad relativa (Alatorre, 2006), durante y después de la aplicación en campo, lo cual es elemental para el éxito de los hongos entomopatógenos en el control de plagas (Daoust et al., 1983; Bateman et al., 1993; Geden et al., 1995; Inglis et al., 1995; Carballo, 1998; Ibrahim et al., 1999; Lacey et al., 2001; Kassa, 2003), sobre todo en las condiciones imperantes de las regiones secas de México (Milner, 1997; Carballo, 1998; Lacey et al., 2001; Shah y Pell, 2003). Además, el aceite asperjado fluye y se extiende sobre la cutícula del insecto, a diferencia de la aspersión en agua donde el hongo permanece en forma de gotas (Ibrahim et al., 1999), permitiendo que las conidias del hongo sean depositadas en sitios donde se favorece su germinación e infección, lo que posteriormente se reflejará en una mayor mortalidad del insecto (Geden et al., 1995; Inglis et al., 1995; Ibrahim et al., 1999; Kassa, 2003). En el presente estudio, 10.
(11) aunque se careció de observaciones sobre la supervivencia o el depósito de las conidias sobre la cutícula del insecto, se considera que el aceite mineral influyó en el incremento de mortalidad. Por otro lado, el aceite mineral “citrolina” provee un medio económico para la aspersión de hongos entomopatógenos. Entre todos los micoinsecticidas que se aplican en el país, se pueden destacar el control que ejerce B. bassiana sobre el picudo negro del banano (C. sordidus). Su producción anual supera las 315 Tm. de producto sólido. y el área tratada alcanza cada año alrededor de 129 462 hectáreas. También se destaca por su efectividad y mayor rango de hospedantes, los resultados logrados con M. anisopliae, donde se logran controlar las principales plagas del arroz y Thrips palmi en varios cultivos, con un significativo decrecimiento en la utilización de insecticidas químicos. Los niveles de producción están en el orden de 163 ton. anuales, con un área tratada de alrededor de 87 763 hectáreas de cultivos. La experiencia acumulada en la utilización de hongos, se enriquece cada año con nuevas especies a partir de los resultados que aportan las diferentes instituciones de investigación. En la actualidad se reproducen y aplican como micoinsecticidas los hongos siguientes: HONGO ENTOMOPATOGENO Beauveria bassiana. CULTIVO Plátanos Boniato Arroz Cítricos. PLAGA QUE CONTROLA NOMBRE NOMBRE CIENTIFICO COMUN Picudo negro Cosmopolites sordidus Tetuán del boniato Cylas formicarius Picudito acuático Lissorhoptrus brevirostris picudos Pachnaeus litus, Lachnopus spp. Taladrador o bórer Diatraea saccharalis Bibijagua Atta insularis. Caña de azúcar Cultivos varios, jardines Papa, frijol, Trip de los melone Thrips palmi pepino, pimiento, otros Metarhizium anisopliae Arroz Arroz-maíz Pastos Papa, pimiento, cucurbitáceas, frijol, otros Cítricos picudos. Lisorhoptrus brevirostris Tagosodes oryzicola Oebalus insularis Tibraca sp Spodoptera spp Monephora bicincta fr Mocis latipes Thrips palmi. Pachnaeus. litus. y 11.
(12) Lachnopus spp. Lecanicillium lecanii. Tomate, frijol, Moscas blancas papa, pimiento, pepino y otros Tomate, frijol, Afidos papa, pimiento, pepino y otros. Bemisia tabaci y otras. Myzus persicae, A. gossypii, Macrosiphum euphorbiae. Anexo 1 Procedimiento de muestreo para evaluar los entomopatógenos en diferentes cultivos Entomopatógen especie o Hongos Metarhizium anisopliae. Beauveria bassiana. Lecanicillium lecanii. Cultivo y plaga Plátanos: (Cosmopolites sordidus). Arroz: (Lyssorhoptrus oryzophilus) Otros cultivos. Plátanos: (Cosmopolites sordidus) Boniato: ( Cylas formicarius). Procedimiento Se colocarán 5 trampas de pseudotallos/ campo Colectar 25 insectos/ campo. 10 plantas dañadas / campo y en caso de insectos que viven en colonias 1 hoja/planta. Se colocarán 5 trampas de seudotallos/ campo. Campos con trampas de feromonas: Colectarlos insectos a los 7 dias alrededor de las trampas. Evaluar 5 trampas de feromonas / campo. Campos sin trampas de feromonas: Evaluar 10 plantas en diagonal, colectando los insectos observados a los 7 días después de la aplicación. Para cultivos en Recorrer el campo en diagonal y campos observar presencia de la plaga. Evaluar 10 plantas por campo. Para cultivos en Presencia de una mosca en el canaletas cultivo. Se toman 3 plantas por cada canaleta hasta un total de 10. 12.
(13) Bacterias. Bacillus thuringiensis. Diferentes Evaluar 10 plantas en 5 puntos cultivos (maíz, (plantas / punto) en campo, col, colectar o contar las larvas vivas Cucurbitaceas y y hago un muestreo a los 3 –5 otras hortalizas) días de aplicado el producto para evaluar E. Técnica contando larvas afectadas vivas o muertas.. Anexo 2 Métodos sencillos para los productores evaluar la efectividad de los entomopatógenos. 1- Se realizará un muestreo antes y después de 7 días de aplicado el producto, para conocer la cantidad de insectos plagas en el cultivo en dependencia del biopreparado. 2- El productor exigirá el certificado de calidad del producto en el CREE cumpliendo con sus respectivos requisitos: Pureza- 100 % Concentración de conidios: 1-6 x 109 /g Viabilidad (% germinación de conidios) > 90 % Humedad < 20 % Almacenar: 3 meses - 6 meses a temp. 10-20 0 C 3- Aplicar el biopreparado con presencia de la plaga. 4. Después de los 5 – 7 días en dependencia de la plaga y el biopreparado, realizar la efectividad técnica. Son aceptables valores mayores al 60 %, sobre todo de hongos entomopatógenos.. 5- Colectar los insectos y ponerlos en condiciones de humedad (papel humedecido) para poder observar el crecimiento del hongo, si es de interés del productor. 6- Aplicar los biopreparados preferentemente con humedad en el suelo (riego o lluvia) se debe repetir las aplicaciones en caso que se produzca lluvia.. 13.
(14) Bibliografía -Adang, M. J. Bacillus thuringiensis insecticidal crystal proteins: gene structure, action and utilization, In: Biotechnology for Biological Control of Pests and Vectors, Karl Maramorosch, Boca Raton: CRC, 1991, 278p. -Alatorre R., Raquel. Potencial de los bioinsecticidas microbianos. 2001. p.129 En: MEMORIA, IV Seminario Científico Internacional de Sanidad Vegetal: II Congreso Latinoamericano de la Sección regional Neotropical de la IOBC, Varadero, Cuba, 11-15 de junio 2001. - Alatorre R., R. 2006. Insecticidas microbianos en el manejo de insectos plaga. In: Memorias del Taller de Hongos entomopatógenos (Ascomycetes anamórficos (Deuteromycota), Entomophthorales): Control de calidad. SMCB. Manzanillo, Colima, México. pp. 1-9. -Almaguel, Lerida., Mayra Ramos., R. Pérez., y otros.... . Manejo Integrado del ácaro rojo (Tetranychus tumidus Banks) , en el cultivo del plátano. II Encuentro Nacional de Bioplaguicidas, 25-27 Oct., INISAV, La Habana, Cuba, p: 85, 1994. -Aronson, A. I., W. Beckman, and P. Dunn. Bacillus thuringiensis and related insect pathogens. Microbial Rev., 50: 1-24, 1986. - Arredondo B., C. y J. P. Martínez Soriano. Control biológico y por incremento en México. Resúmenes [ B-6]. P. 134-135, 2001. II Congreso Latinoamericano de la Sección regional Neotropical de la IOBC, Varadero, Cuba, 11-15 de junio 2001. -Batista Filho, A.; L.G. Leite; A. Raga; M.E. Sato & J.A. Oliveira. Utilizaçāo de Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. no manejo de Comopolites sordidus Germar, 1824, em Miarcatu, SP. O Biológico vol.57, no. 1-2, p.17-19, jan-dez, 1995. Brasil. - Batista Filho, A. O Instituto Biológico e sua contribuiçāo ao controle biológico de pragas. Divulgaçāo Técnica. O. Biológico, Vol. 57, Nos 1-2, jan-dez, 1995, Brasil. - Bateman, R.P., M. Carey, D. Moore, and C. Prior. 1993. The enhanced infectivity of Metarhizium flavoviride in oil formulations to desert locusts at low humidities. Annals of Applied Biology 122: 145-152. - Berlanga P., A.M. y Carrillo A.,M. 2006. Producción masiva de hongos entomopatógenos. Centro Nacional de Referencia de Control Biológico, DGSV-SAGAR. pp 6. Sin publicar. - Berlanga-Padilla, A. y J.I. López-Arroyo. 2006. Efecto de hongos entomopatógenos en depredadores del pulgón café de los cítricos (Homoptera: Aphididae). XXIX Congreso Nacional de Control Biológico. Manzanillo, Colima, México. pp. 384-388. - Berlanga P., A.M. y M.C. Núñez C. 2006. Susceptibilidad de Toxoptera citricida (Homoptera: Aphididae) a hongos entomopatógenos. XXIX Congreso Nacional de Control Biológico. Manzanillo, Colima, México. Pp 349-352. - Borges, M. & W. Bettiol. Normas para Agricultura Organica. Informativo CNPMA, Jaguariuna, Vol. 5, No. 18, p. 2-3, abril-junio, 1997. -Borgonie, G.; R. Van Driessche; F. Leyns; G. Arnaut; D. De Waele & A. Coomans. Germination of Bacillus thuringiensis spore in bacteriophagous nematodes (Namatoda: Rhabditida). J. Invertebr. Pathol., Vol. 65, p. 61-67, 1995. -Bucher, G.E.. Definition and identification of insect pathogens. Ann. N. Y. Acad. Sci., 217, 8-17, 1973. 14.
(15) - Bucher, G.E. 1964. The regulation and control of insects by fungi. Ann. Soc. Entomol. Quebec. 9: 30-42. - Bustillo P., A. E., J. Orozco H. y F. J. Posada. El papel del Control biológico en un programa de Manejo Integrado de la broca del cafeto. [B-7]. Colombia, P. 135, 2001. En: MEMORIA, IV Seminario Científico Internacional de Sanidad Vegetal: II Congreso Latinoamericano de la Sección regional Neotropical de la IOBC, Varadero, Cuba, 11-15 de junio 2001. -CNRCB. Consideraciones ecológicas para la evaluación de entomopatógenos. Curso de Evaluación de Agentes de Control Biológico, Tecomán, Colima México, 4-6 agosto de 1998. <[email protected] > - CNRCB. Evaluación de bacillus thuringiensis sobre larvas de lepidópteros en hortalizas. Curso de Evaluación de Agentes de Control Biológico, Tecomán, Colima México, 4-6 agosto de 1998. [email protected] - Carballo, M. y F. Guharay. 2004. Control biológico de plagas agrícolas. CATIE (Costa Rica). 224p. - Carballo, M. 1998. Formulación de hongos entomopatógenos. Rev. Manejo Integrado de Plagas 47: 1-4 - Companioni, N., Y. Ojeda, E. Paez y C. Murphy. La agricultura urbana en Cuba. En: Transformando el campo cubano. Avances de la agricultura sostenible. ACTAF. Ciudad de La Habana. pp. 93-109. 2001. -Cunningham, J. C. Baculoviruses: their status compared to Bacillus thuringiensis as microbial insecticides. Outlook Agric., 17: 10-17., 1988. - Daoust, R.A., M.G. Ward, and D.W. Roberts. 1983. Effect of formulation on the viability of Metarhizium anisopliae conidia. J. Invertebrate Pathology 41: 151-160. - Denmark, H.A. 1978. The brown citrus aphid Toxoptera citricida (Kirkaldy). Entomology Circular No. 194. Florida Departmet of Agriculture & Consummer Services. Division of Plant Industry. Gainesville, Fl. - Donegan, K. and B. Lighthart. 1989. Effect of several stress factors on the susceptibility of the predatory insect Chrysoperla carnea (Neuroptera: Chrysopidae), to the fungal pathogen Beauveria bassiana. J. Invertebr. Pathol. 54(1): 79-84. -De Bach, P. Control Biológico de las Plagas de Insectos y Malas Hierbas. Edición Revolucionaria. Instituto del Libro. La Habana. Cuba. 1968. 949p. -Fernández-Larrea, Orietta., Alina Pérez., A. Calderon y J. Jimenez. Thurisav, Biopesticida de Bacillus thuringiensis Berl.. IX FORUN NACIONAL DE CIENCIA Y TECNICA, LA HABANA, CUBA, 27pp., 1994. -Freimoser, F. M., Screen, S., Bagga, S., Hu, G. and St. Leger, R.J. (2003). "EST analysis of two subspecies of Metarhizium anisopliae reveals a plethora of secreted proteins with potential activity in insect hosts". Microbiology 149: 239-247. -Hajek, A.E., Soper, R.S., Roberts, D.W., Anderson, T.E., Biever, K.D., Ferro, D.N., Lebrun, R.A. and Storch, R.H. Foliar applications of Beauveria bassiana and Balsamo vuillemin for control of colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata Say (Coleóptera: Chrysomelidae): an overview of pilot test results from the northern USA. Can. Entomol., 119 959-974.,1987. - Herrero S., J. González-Cabrera, B. E.Tabashnik, and J. Ferré. 2002. Shared binding sites in Lepidoptera for Bacillus thuringiensis Cry1A and Cry1J toxins. Appl. Environ. Microbiol. 67: 174-192 15.
(16) -Jiménez, J., A. Calderón. Efectividad de Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae en el combate de Cosmopilites sordidus en banano. Informe Final del Resultado 518.04.08 Problema Ramal MINAG. (1986-1990), INISAV, La Habana, Cuba, 19 p., 1990 -Jiménez, J., A. Calzado y M. Vazquez. Control Microbiológico con Virus de la Poliedrosis Nuclear y Bacillus thuringiensis Berl. contra larvas de Heliothis virescens F. en tabaco. Informe de etapa 511.04.06, Problema Ramal Tabaco 1991-95, INISAV, LA HABANA, CUBA, 14p., 1994. -Jiménez, J. y J. Gil. Control Microbiológico de Trichoplusia ni Hubner con Bacillus thuringiensis Berl. Res. 10 Años de Trabajo en Lucha Biológica. INISAV, La Habana, Cuba, 48p., 1978., 1972. -Jiménez, J. y M. Vazquez. Efectividad de Bacillus thuringiensis Berl. contra Mocis latipes (Guenee), en áreas de pastos. Informe de etapa 518.11.08, Problema Ramal de Pastos 198690, INISAV, La Habana, Cuba, 22p., 1990. - Jiménez R., J. y R. González. Uso de Bioplaguicidas y su impacto en el Manejo Agroecológico de plagas, p. 132-133, 2001.[B-3] En: MEMORIA, IV Seminario Científico Internacional de Sanidad Vegetal: II Congreso Latinoamericano de la Sección regional Neotropical de la IOBC, Varadero, Cuba, 11-15 de junio 2001. - Kassa, A. 2003. Development and testing of mycoinsecticides based on submerged spores and aerial conidia of entomopathogenic fungi Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana (Deuteromycotina: Hyphomycetes) for control of locusts, grasshoppers and stored product insect pests. Ph.D. dissertation. Georg-August-University. Göttingen. 171 pp -Lazo, R.L. Central American strains of Beauveria bassiana with fungicide tolerance and pathogenicity the coffee berry borer, Hypothenemus hampei (Coleoptera: Curculionidae). Workshop: Important Arthropod Pest of the Caribean Basin Amenable to Biological Control. Orlando, Florida. April, 8-9., 1991. -Maxwell, F.G. Use of insect resistant plant in intergrated pest management programmes. Boletin Fitosanitario FAO. Vol. 39 ( 4 ): 139-148., 1991. -McNeil, Donald G. Jr. (10 June 2005). "Fungus Fatal to Mosquito May Aid Global War on Malaria". The New York Times 104: 135-151, http://www.nytimes.com/2005/06/10/science/10mosquito.html. -Murguido, C. Control Biológico dentro del M.I.P. en solanáceas, Conferencia Curso Internacional CISAV-96, INISAV, La Habana, Cuba, 1996, 11p. - Nágera R., M. B. Control microbial y manejo de la “gallina ciega”Phyllophaga spp. (Col: Scarabeidae) en cultivos de maíz del centro occidente de Mexico. P.130 2001. En: MEMORIA, IV Seminario Científico Internacional de Sanidad Vegetal: II Congreso Latinoamericano de la Sección regional Neotropical de la IOBC, Varadero, Cuba, 11-15 de junio 2001. - Nicholls, Clara I., Nilda Pérez, Luis L. Vázquez y Miguel A. Altieri. The development and status of biologically based integrated pest management in Cuba. Integrated Pest Management Reviews 7: 1-16. 2002. -Pérez, E., Felicia Piedra., Maria A. Zayas y otros... Manejo Integrado de la palomilla del maíz (Spodoptera frugiperda, J.E.Smith) en el cultivo de Maíz. II Encuentro Nacional de Bioplaguicidas, 25-27 Oct., INISAV, La Habana, Cuba, p: 87, 1994. -Pérez, T., Tesesa Vazquez y A. García. Efectividad de entomófagos y entomopatógenos para el control de plagas del arroz. Informe Final del Resultado 518-10, 1986-90, INISAV, La Habana, Cuba, 31p., 1990a. 16.
(17) -Roberts, D.W. and , R.A.Humber. Entomogenous fungi. In G.T. Cole & B. Kendrick, eds. Biology of conidial fungi, p. 201-236. New York, Academic Press., 1981. -Roberts, D.W. and S.P. Wraight. Current status on the use of insect pathogens as biocontrol agents in agriculture: fungi. In R.A. Samson, J.M. Vlak & D. Peter, eds. Fundamental and applied aspects of invertebrate pathology. 4th Int. Colloq. Invetebr. Pathol., 510-513. Wageningen, the Netherlands., 1986. -Rosset, P. y M.A. Altieri. Agricultura en Cuba: una experiencia nacional de conversión orgánica. Agroecología y Desarrollo. CLADES. (7): 29-31, Agosto 1994. - Sauka, D. y Benintende, G. 2008. Bacillus thuringiensis: generalidades. Un acercamiento a su empleo en el biocontrol de insectos lepidópteros que son plagas agrícolas.. Rev. Arg. Microbiol., 40 (2): 124-140. -Sebesta, K., T. Farkas, & K. Horska. Thuringiensin, the beta-exotoxin of Bacillus thuringiensis. In: H.D. Burges, ed. Microbiol control of pests and plant diseases 1970-1980, p. 249-281. London, Academic Press., 1981. - Tsunechiro, A & F.A.S. Menezes. Pronóstico Agrícola 1997/98: Algodão, arroz, feijão, milho e soja. Informações Económicas, Vol. 27, No. 8, p. 25-85, ago 1998. Brasil. - Vázquez, L. L. 2004. El Manejo Agroecólogico de la Finca. Una estrategia para la prevención y disminución de afectaciones por plagas agrarias. Ed. ACTAF (La Habana).121p. - Vazquez, L., E. Fernández; Lausardo, R. J.; Tais García; Janet Alfonso y Rebeca Ramírez. 2005. Manejo Agroecológico de plagas en fincas de la agricultura urbana. Resultados del proyecto INISAV, MINAG, 62p. - Galón, M.E. and B.A. Wingerd. 2003. Bt: mode of action and use. Arch. Insect Biochem. Physiol. 54(4) 200-11 -Zambrano, P.C. Control microbiano de insectos. Conferencia: X Congreso Venezolano de Entomología, Maracay, Julio 12-17, 15p., 1987. -Zambrano, P.C., M. Sosa y N. Molina. Hongos entomopatógenos de Venezuela: Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok., caracterización, formulación, producción y aplicación. III Mesa Latinoamericana de Fitosanidad de la Caña de Azúcar. Barquisimeto, 13-17 noviembre. 32p., 1989. -Zambrano, P.C., M. Sosa y N. Molina. Metarhizium anisopliae: pasado, presente y futuro en Venezuela. VII Reunión Técnica PICANTA. Acarigua, 22-23 abril. 29p., (1993).. 17.
(18)
Documento similar
Desde la publicación del RALES: incremento de la incidencia de hiperpotasemia grave debido fundamentalmente al uso indebido de altas dosis, sin tener en cuenta otros
Para corregir este problema, MDA promueve el uso de marcas (Marks), las cuales indican aspectos específicos para tener en cuenta en cada transformación. Un PIM
La informática y su uso en la escuela. Rol del profesorado en la selección y evaluación de software educativo. Requerimientos a tener en cuenta. Impacto de un software
Como requerimientos a tener en cuenta se encuentran: la compatibilidad con los proto- colos de encaminamiento en uso, la compati- bilidad con todas las tecnologías de red, la
OBJETIVO 1: Construir los requerimientos tanto técnicos, de uso y funcionales a tener en cuenta para el diseño del laboratorio móvil, mediante el reconocimiento y
Otro aspecto a tener en cuenta es la Calidad, ya que el agua necesaria para cada uso personal o doméstico debe ser salubre, libre de microorganismos o
Ha de tenerse en cuenta, además, a aquellos organismos que sin tener diseñado como tal un plan de uso del euskera, han dado pasos para la normalización del uso de esa lengua:
Los controladores de plagas que elijan el uso de insecticidas para el control de chinches de cama deben tener en cuenta qué insecticidas se pueden utilizar para tratamiento
