GUÍA PRÁCTICA PARA LA APLICACIÓN DE ANESTESIA LOCAL EN RUMIANTES

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22 2017

Documentos de docencia | Course Work Coursework.ucc.edu.co N° 22, diciembre de 2017 doi: https://doi.org/10.16925/greylit.2258

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GUÍA PRÁCTICA PARA

LA APLICACIÓN DE

ANESTESIA LOCAL

EN RUMIANTES

Avigdor Roberto Guerrero García

Universidad Cooperativa de Colombia

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LA APLICACIÓN DE

ANESTESIA LOCAL

EN RUMIANTES

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Acerca del autor

Avigdor Roberto Guerrero-García., Médico veterina-rio especialista. Docente tiempo completo, Facul-tad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universi-dad Cooperativa de Colombia, sede Bucaramanga.

Correo electrónico: [email protected]

Cómo citar este documento

Guerrero-García AR. Guía práctica para la aplica-ción de anestesia local en rumiantes. (Documento de docencia N° 22). Bogotá: Ediciones Universidad Cooperativa de Colombia, 2017. Doi: https://doi. org/10.16925/greylit.2258

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Reglamento 8

IntRoduccIón 9

Propósito de la práctica 9

Recomendaciones prácticas sobre la guía 9

1. anestesIalocal yRegIonal enRumIantes 10

1.1 Anestesia del nervio infraorbitario 10

1.2 Bloqueo de la rama cornual del nervio cigomático temporal 11

1.3 Anestesia local del pie 11

1.4 Anestesia por infiltración en l invertida 11

1.5 Anestesia paravertebral distal

(técnica de Magda modificada por Cakala) 11

1.6 Anestesia extradural (epidural caudal o posterior) 12

2. objetIvos 12

3. mateRIales necesaRIos 13

4. descRIpcIónde actIvIdadesypRocedImIentos delapRáctIca 14

4.1 Preparación de la práctica 14

4.2 Bloqueo del nervio infraorbitario 15

4.3 Bloqueo de la rama cornual del nervio cigomático temporal 16 4.4 Anestesia local del pie (metacarpiana dorsal común) 17

4.5 Anestesia por infiltración en l invertida 19

4.6 Anestesia paravertebral distal

(técnica de Magda modificada por Cakala) 20

4.7 Anestesia extradural (epidural posterior sacrococcígea) 23

5. conclusIones 26

6. paRámetRospaRa laelaboRacIónypResentacIón

delInfoRme depRáctIca 27

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ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1. Tipos de procedimientos anestésicos locales y regionales 10 Figura 2. Sitios de aplicación más frecuentes de anestesia local

en rumiantes 14

Figura 3. Mesa auxiliar para materiales a utilizar 14 Figura 4. Materiales para limpieza y curación de pie 15

Figura 5. Brete de manejo de bovinos 15

Figura 6. Ubicación del agujero infraorbitario 15

Figura 7. Sitio para el bloqueo del nervio infraorbitario 15 Figura 8. Bloqueo del nervio infraorbitario. Paso 1 16 Figura 9. Bloqueo del nervio infraorbitario. Paso 2 16

Figura 10. Ubicación de la fosa temporal 16

Figura 11. Sitio de inyección para el bloqueo de la rama cornual

del nervio cigomático temporal 16

Figura 12. Bloqueo de la rama cornual del nervio cigomático temporal.

Paso 1 17

Paso 2 17

Paso 3 17

Figura 15. Ubicación del espacio interdigital 17

Figura 16. Sitio de inyección para el bloqueo interdigital 18 Figura 17. Anestesia local del pie (metacarpiana dorsal común) 18 Figura 18. Anestesia local del pie colocación de torniquete. Paso 1 18 Figura 19. Anestesia local del pie colocación de torniquete. Paso 2 18 Figura 20. Anestesia local del pie colocación de torniquete. Paso 3 19 Figura 21. Anestesia local del pie colocación de torniquete. Paso 4 19 Figura 22. Anestesia local del pie colocación de torniquete. Paso 5 19 Figura 23. Anestesia local del pie colocación de torniquete. Paso 6 19 Figura 24. Ubicación de la zona de anestesia por infiltración

en l invertida 20

Figura 25. Ubicación de la zona de anestesia por infiltración

en l invertida (modelo anatómico) 20

Figura 26. Anestesia por infiltración en l invertida. Paso 1 20 Figura 27. Anestesia por infiltración en l invertida. Paso 2 20 Figura 28. Ubicación de la zona de anestesia paravertebral distal-apófisis transversas de las vértebras lumbares (esqueleto) 21

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Figura 30. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal, apófisis transversas de las vértebras lumbares (esqueleto) 21 Figura 31. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal,

apófisis transversas de las vértebras lumbares (raquis) rama dorsal 21 Figura 32. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal,

apófisis transversas de las vértebras lumbares (raquis) rama ventral 22 Figura 33. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal.

Paso 1 22

Figura 34. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal.

Paso 2 22

Paso 3 22

Paso 4 23

Figura 37. Ubicación de la zona de anestesia extradural (epidural posterior sacrococcígea) articulación sacrococcígea (modelo anatómico) 23 Figura 38. Ubicación de la zona de anestesia extradural (epidural posterior sacrococcígea), articulación sacrococcígea (pieza anatómica) 23 Figura 39. Aplicación de anestesia extradural (epidural posterior

sacrococcígea). Paso 1 23

Figura 40. Aplicación de anestesia extradural (epidural posterior

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GUÍA PRÁCTICA PARA LA

APLICACIÓN DE ANESTESIA

LOCAL EN RUMIANTES

Avigdor Roberto Guerrero García

22

Resumen

A través de esta práctica se pretende que el es-tudiante de clínica recuerde las técnicas básicas de anestesia local o regional, así como de bloqueos anestésicos en rumiantes. Asimismo, que las ejecu-te de manera técnica, aséptica y con seguridad tan-to para el paciente como para él mismo. La práctica incluye los bloqueos del nervio infraorbitario y cor-nual, anestesia paravertebral distal, anestesia por infiltración en l invertida y anestesia extradural. Los procedimientos de anestesia local y regional son poco costosos, seguros y permiten una recupe-ración relativamente rápida del paciente.

Palabras clave: anestesia local, anestesia regional,

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R

eglamento

1. Recolección de los animales:

a. Debe hacerse veinte minutos antes de la hora de inicio de la práctica. Los animales deben traerse del potrero al brete de manejo lentamente, sin gritos, si golpearlos, evitando al máximo las fuentes de estrés.

b. Debe disponerse de agua de bebida para el consumo de los animales du-rante la práctica.

c. No se requiere ayuno previo de los ani-males.

2. Solicitud de insumos:

a. Se realizará quince minutos antes del inicio de la práctica al auxiliar de in-ventarios de la finca. El estudiante mo-nitor de la práctica llevará a cabo su recolección.

b. Deben ubicarse al lado del brete de manejo en una mesa plástica dispues-ta para dispues-tal fin cubierdispues-ta con una tela de campo.

3. Indumentaria: los estudiantes se presen-tarán con overol institucional y botas al sitio de la práctica, y con los elementos de bioseguridad necesarios para su desarro-llo.

4. Examen físico de los animales a utilizar: se realizará examen físico a todos los ani-males que se van a usar en la práctica; se realizará la valoración de sus constantes fisiológicas y de su estado general con el fin de verificar que se pueden utilizar en la práctica.

5. Una vez concluida la práctica debe verifi-carse que todos los animales están en óp-timas condiciones y que no hay sangrado en los sitios de punción. En todos los casos debe realizarse limpieza y desinfección de los sitios de punción.

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Guías de prácticas ·

9

al estudiante en las técnicas de anestesia lo-cal o regional más comunes en la práctica de bovinos. Se van a tratar las técnicas de bloqueo del nervio infraorbitario, bloqueo del nervio cornual (rama cornual del nervio cigomático temporal), anestesia local del pie, anestesia paravertebral distal (técnica de Magda modificada por Cakala), aneste-sia por infiltración (bloqueo en l invertida) y anestesia extradural (anestesia epidural caudal sacrococcígea).

RECOMENDACIONES PRÁCTICAS SOBRE LA

GUÍA

Antes de proceder a la ejecución práctica se debe leer completamente la guía, así como las lecturas recomendadas. Se sugiere recor-dar los métodos de manejo y sujeción para rumiantes [3, p. 49; 4, p. 551] a fin de generar seguridad en el desarrollo de la práctica tan-to para el estudiante como para los animales1

[5]. Todos los materiales usados durante la práctica deben disponerse de manera definiti-va de acuerdo con su clasificación.

1 Véase el video “Nudos y métodos de sujeción” disponible en: ht-tps://www.youtube.com/watch?v=ueLF6SwdI_ c&index=10&lis-t=PL1372A0D654874F4F

I

ntRoduccIón

PROPÓSITO DE LA PRÁCTICA

En el ámbito de la Clínica de Rumiantes los procesos quirúrgicos más usuales como, por ejemplo, descorne estético, cesáreas, rumino-tomías, etc.,

Se pueden realizar de manera segura y humana en rumiantes usando una com-binación de restricción física, sedación leve y anestesia local, regional o espinal. Las técnicas de anestesia local se usan comúnmente porque, por lo general, son simples y de bajo costo, y proporcio-nan una pérdida reversible de sensación en un área del cuerpo relativamente bien definida. [1]

Las aplicaciones de agentes anestésicos locales se utilizan para producir anestesia local y regional (pérdida completa de la sen-sibilidad de una parte del cuerpo o región) [2]. El propósito de esta práctica es entrenar

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1. ANESTESIA LOCAL Y REGIONAL EN RUMIANTES

De acuerdo con Edmondson:

Aunque la anestesia general se utiliza comúnmente en rumiantes, hay algunos riesgos asociados con el uso de aneste-sia general como timpanismo ruminal y regurgitación y salivación excesiva, blo-queo de las vías aéreas etc. (7). Una alter-nativa en algunos casos puede incluir el uso de anestesia local, regional o espinal, que son procedimientos seguros, eficaces y frecuentemente más deseables. [1]

En esta práctica se van a ejecutar unas técnicas de anestesia local de uso común en procedimientos de campo; a continuación, se realiza una breve revisión de ellas.

FIGURA 1. Tipos de procedimientos anestésicos locales y regionales. Fuente: Adaptado de [4]

1.1. ANESTESIA DEL NERVIO

INFRAORBITARIO

El bloqueo nervioso infraorbitario se puede utilizar en la reparación de laceraciones nasa-les y la colocación de un anillo de nariz para el ganado. El nervio infraorbitario es la continua-ción de la rama maxilar del nervio trigémino después de entrar en el canal infraorbitario. El nervio infraorbitario tiene solo función sen-sorial y emerge en la cara como una banda plana a través del agujero infraorbitario, en

el que está cubierto por el músculo elevador nasolabial. El nervio se bloquea a medida que emerge del conducto infraorbitario. El nervio es difícil de palpar, pero se localiza por encima del primer premolar un centímetro rostral a la cresta facial. Un total de 20 a 30 ml de agente anestésico local se inyecta profundamente en el músculo elevador nasolabial con una agu-ja de calibre 18 de 3,8 cm. La inyección debe repetirse en el lado opuesto [1] (véanse las fi-guras 6 a 14).

Según el concepto de Muir iii, Hubbel, Bedna-rrski y Skarda en el Manual de anestesia veteri-naria, “la anestesia local es la pérdida total de

las sensaciones en un área orgánica, inducida por un fármaco que deprime la actividad del tejido nervioso localmente”; de manera que podemos clasificar la anestesia en anestesia local o anestesia regional, dependiendo de qué tan grande es el área por anestesiar y el tipo de rama nerviosa que se bloquea [6]. Otra manera de clasificar la anestesia es según la vía de administración del anestésico: aneste-sia subcutánea, intravenosa, intramuscular, por infiltración y epidural (véase la figura 1); también existen las vía subaracnoidea, con-juntival, tópica, etc., pero se mencionan aquí solo las que se van a ejecutar en la práctica.

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11 1.2. BLOQUEO DE LA RAMA CORNUAL DEL

NERVIO CIGOMÁTICO TEMPORAL

El bloqueo del nervio cornual se utiliza para producir anestesia cuando se va a descornar del ganado bovino. El cuerno y la piel alrede-dor de la base del cuerno son inervados por la rama cornual del nervio lagrimal o cigomático temporal, que es parte de la rama oftálmica del nervio trigémino. El nervio cornual pasa a través de los tejidos periorbitarios dorsalmen-te y corre a lo largo de la cresta frontal hasta la base de los cuernos [5]. Aproximadamente, 5 a 10 ml de un agente anestésico local se de-posita subcutáneamente y relativamente su-perficialmente a medio camino entre el canto lateral del ojo y la base del cuerno a lo largo del proceso cigomático. El efecto anestésico completo puede tardar 10 minutos después de la aplicación. El ganado grande con cuer-nos bien desarrollados requiere una infiltra-ción anestésica adicional a lo largo del aspec-to caudal del cuerno, en forma de infiltración anular, a fin de desensibilizar las ramas sub-cutáneas del segundo nervio cervical [8].

1.3. ANESTESIA LOCAL DEL PIE

La anestesia regional intravenosa es la técni-ca preferida para la cirugía del pie. Se realiza un torniquete proximal al gran metacarpiano a fin de distender la vena y proceder a la in-yección del anestésico. En el miembro toráci-co la analgesia regional intravenosa se puede realizar usando la vena metacarpiana dorsal, la vena metacarpiana plantar y la vena radial. En la extremidad pélvica la vena safena late-ral o la vena digital plantar latelate-ral pueden uti-lizarse para inyección [8]. Aproximadamen-te 20 ml de anestésico local se inyectan por vía intravenosa tan cerca del sitio quirúrgico como sea posible usando una aguja de calibre 20 de 3,3 cm o un catéter de mariposa de ca-libre 21. Solo es necesario administrar aneste-sia en una vena para proporcionar anesteaneste-sia a toda la zona distal al torniquete. El torniquete se puede dejar de forma segura durante un

máximo de una hora para proporcionar la he-mostasia durante los procedimientos quirúr-gicos del pie. La anestesia del pie ocurre en un rango de cinco a 10 minutos. Una vez comple-tado el procedimiento quirúrgico, se libera el torniquete [5, 8]. Es un procedimiento fácil y barato que provee anestesia y hemostasia de la zona a intervenir; se debe tener la precau-ción de no dejar el torniquete por más de una hora (véanse las figuras 15 a 23).

1.4 ANESTESIA POR INFILTRACIÓN EN l

INVERTIDA

El bloqueo en l Invertida es un tipo de técni-ca anestésitécni-ca usado, principalmente, para la ejecución de laparotomías con el animal en pie. El anestésico se deposita dibujando una l en los planos subcutáneo e intramuscular en el flanco (pared abdominal, por detrás del borde caudal de la última costilla), y siempre craneal y dorsalmente al sitio en el que se rea-lizará la incisión quirúrgica. En esta técnica se administran grandes cantidades de anestési-co local —lidocaína 2 %– (hasta 100 ml en un animal grande). Se debe dejar actuar al me-nos por 10 minutos antes de iniciar el procedi-miento anestésico [3].

• Ventajas. Muy fácil de administrar; se usan

agujas de tamaño estándar y en general es de bajo costo.

• Desventajas. Se requiere un gran volumen

anestésico, no causa relajación muscular, se da bloqueo incompleto de capas pro-fundas de la pared abdominal, causa for-mación de hematoma en los sitios de pun-ción [5] (véanse las figuras 24 a 27).

1.5 ANESTESIA PARAVERTEBRAL DISTAL

(TÉCNICA DE MAGDA MODIFICADA POR

CAKALA)

Con esta técnica se anestesian las ramas dor-sales y ventrales de los nervios espinales t13, l1 y l2 a su salida cerca de la porción distal de las apófisis transversas de las vértebras

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lumbares l1, l2 y l4, respectivamente [8]. Esta técnica se usa en laparotomías, pues desensi-biliza el flanco y así permite el abordaje qui-rúrgico. Por lo general se usa acompañada de un bloqueo por infiltración en l invertida y con una anestesia epidural posterior; la com-binación de estas tres técnicas provee anes-tesia y relajación muscular de la zona abdo-minal lateral por detrás del borde caudal de la última costilla, lo que puede incluir la piel, así como los músculos oblicuos y el transver-so abdominal [1]. Para cada nervio (t13, l1 y l2) debe realizarse una infiltración en abanico por la parte dorsal de las apófisis transversas de las vértebras l1, l2 y l4, respectivamen-te, y una infiltración por la parte ventral con aproximadamente 10 ml de anestésico por in-yección, es decir, 20 ml por nervio y 60 ml en total. Es una técnica muy segura y no causa escoliosis, como si puede ocurrir en la anes-tesia paravertebral proximal; su desventaja es el uso de grandes cantidades de anestésico [5] (véanse las figuras 28 a 36).

1.6 ANESTESIA EXTRADURAL (EPIDURAL

CAUDAL O POSTERIOR)

La anestesia epidural caudal es un método fácil y barato que se utiliza comúnmente en el ganado en procesos asociados a reproduc-ción asistida, o bien como complemento de la anestesia en una laparotomía o cesárea [8]. Se puede inyectar en el espacio sacrococcígeo (s5-co1) —desensibiliza los nervios sacros s2, s3, s4 y s5—, y se puede inyectar en el primer espacio coccígeo (co1-co2) —desensibiliza los

nervios sacros s3, s4 y s5—. A medida que au-menta la dosis de anestésico los nervios cra-neales de s2 también pueden verse afectados. Si es posible, el pelo debe recortarse, así como lavar la piel y desinfectarla. Para ubicar el sitio de inyección se debe mover la cola hacia arri-ba y hacia aarri-bajo a fin de localizar la fosa entre la última vértebra sacra y la primera vértebra coccígea, o entre la primera y la segunda vér-tebra coccígea [1]. La dosis de anestésico local a utilizar es de 0,5 ml por 45 kg de peso corpo-ral, hasta 2 ml por 45 kg de peso corporal. Los animales que han tenido múltiples epidurales pueden tener abundante tejido cicatricial dor-sal al espacio sacrococcígeo, lo que puede im-pedir la aspiración espontánea del anestésico local [5] (véanse las figuras 37 a 44).

2. OBJETIVOS

Objetivo general

Seleccionar y usar la técnica anestésica más indicada en rumiantes según el procedimien-to quirúrgico a realizar.

Objetivos específicos

• Adquirir destrezas en la aplicación de di-ferentes técnicas de anestesia local y re-gional.

• Adquirir destrezas en la elección de la me-jor técnica anestésica, de acuerdo con las necesidades del paciente.

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13 3. MATERIALES NECESARIOS

Tabla 1. Materiales

Elemento Presentación Cantidad/estudiante

Jeringas de 10 ml Jeringas de 5 ml Agujas 18* 1 ½ Agujas 18* ½ Cuchillas de afeitar Algodón Alcohol Esparadrapo Guantes de examen Torniquete Lazos Nariguera Lidocaína al 2 % Crema alfa 3® Curagán l®

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4. DESCRIPCIÓN DE ACTIVIDADES Y PROCEDIMIENTOS

DE LA PRÁCTICA

sitios usuales de anestesia local, tal como se observa en la figura 2.

Inicialmente, debemos reconocer en el pa-ciente los sitios anatómicos de referencia y los

FIGURA 2. Sitios de aplicación más frecuente de anestesia local en rumiantes. Fuente: Guerrero-García, A.R. 2016. Modelo Anatómico Inanimado caprino. Bucaramanga: ucc.

El procedimiento se explica en el flujogra-ma que se presenta a continuación con el apo-yo de imágenes.

4.1. PREPARACIÓN DE LA PRÁCTICA

Para comenzar se deben disponer todos los in-sumos necesarios para la práctica —es decir, medicamentos, desinfectantes y agujas—, en una mesa auxiliar preparada con un campo quirúrgico limpio (véanse las figuras 3 a 4). Luego se deben ubicar los animales de mane-ra segumane-ra y tmane-ranquila en el brete de manejo (véase la figura 5).

1. Para el desarrollo de toda la práctica lo primero que debe hacerse es preparar una mesa auxiliar con un campo estéril, en el cual se disponen los materiales a utilizar

FIGURA 3. Mesa auxiliar para materiales a utilizar. Fuente: elaboración propia

2. Debe garantizarse la disposición de algo-dón y alcohol al 70 % para realizar los pro-cesos de limpieza de la piel y pelaje, así

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15

como medicamentos para la curación de las heridas que se puedan causar (crema Alfa 3®_{, Curagán l}®_).

FIGURA 4. Materiales para limpieza y curación de piel. Fuente: elaboración propia

3. Realizar un manejo adecuado del pacien-te con una correcta restricción física para la prevención de accidentes2_.

FIGURA 5. Brete de manejo de bovinos. Fuente: elaboración propia

4.2 BLOQUEO DEL NERVIO INFRAORBITARIO

1. Lo primero es ubicar el agujero

Infraorbi-tario que se localiza “por encima del pri-mer premolar, un centímetro arriba de la cresta facial”. Por allí emerge el nervio in-fraorbitario.

2 Véase el video diponible en: https://www.youtube.com/watch?-v=ueLF6SwdI_c&index=10&list=PL1372A0D654874F4F

FIGURA 6. Ubicación del agujero infraorbitario. Fuente: elaboración propia

2. Es importante recordar que en esta zona se encuentra el músculo elevador naso-labial, es decir, se realiza una inyección intramuscular en la zona. Se deben usar agujas calibre 21*1 ½, preferiblemente.

FIGURA 7. Sitio para el bloqueo del nervio infraorbitario. Pieza anatómica.

Fuente: elaboración propia

3. Se inyecta la zona sin introducir la aguja dentro del agujero Infraorbitario. Se reali-za la inyección al lado del mismo.

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FIGURA 8. Bloqueo del nervio infraorbitario. Paso 1. Fuente: elaboración propia

4. Se depositan entre 5 y 10 ml de anestésico como una burbuja en la zona. El procedi-miento debe repetirse en ambos lados (de-recho e izquierdo).

FIGURA 9. Bloqueo del nervio infraorbitario. Paso 2 Fuente: elaboración propia

4.3 BLOQUEO DE LA RAMA CORNUAL DEL

NERVIO CIGOMÁTICO TEMPORAL

1. El nervio se ubica al lado de la cresta tem-poral aproximadamente a un centímetro de profundidad. Es necesario ubicar la cresta y la zona de inyección en la mitad del trayecto entre el canto externo del ojo y la base del cuerno en la fosa temporal.

FIGURA 10. Ubicación de la fosa temporal Fuente: elaboración propia

2. Se realiza una inyección intramuscular en esta zona (músculo temporal), y la infil-tración se hace en abaníco y en diferentes niveles de profundidad.

FIGURA 11. Sitio de inyección para el bloqueo de la rama cornual del nervio cigomático temporal. Pieza anatómica

3. Se sujeta firmemente la aguja entre los dedos; con un movimiento seco y rápido se perfora la piel y se introduce la aguja dentro del músculo. La aguja debe aplicar-se en un ángulo de 90° con respecto a la piel.

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FIGURA 12. Bloqueo de la rama cornual del nervio cigomático temporal. Pieza anatómica. Paso 1

4. Para aplicar el anestésico se monta la je-ringa que lo contiene con la aguja pues-ta. Una vez realizo la administración del medicamento, retiro la aguja y hago nue-vamente limpieza y desinfección con al-cohol a 70 %.

5. Debe procurarse infiltrar todas las posi-bles ramas del nervio. La anestesia ocurre aproximadamente 10 minutos después de la administración del anestésico.

4.4 ANESTESIA LOCAL DEL PIE

(METACARPIANA DORSAL COMÚN)

1. La vena metacarpiana dorsal se encuentra por encima del espacio interdigital en la cara dorsal del miembro anterior.

FIGURA 15. Ubicación del espacio interdigital Fuente: elaboración propia

2. Debe ubicarse la línea media por encima del espacio interdigital.

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FIGURA 16. Sitio de inyección para el bloqueo interdigital. Pieza anatómica

3. Se debe depilar con cuidado de no lasti-mar la piel y dejar una forma regular en la depilación. Esto facilita la observación del vaso cuando se distienda.

FIGURA 17. Anestesia local del pie (metacarpiana dorsal común) depilación de la zona

4. Se pone un vendaje de protección en la zona del metacarpiano.

FIGURA 18. Anestesia local del pie (metacarpiana dorsal común) colocación de torniquete. Paso 1

5. Luego se hace un torniquete con una cuer-da o con una manguera elástica que pue-de pue-dejarse hasta por una hora.

6. Una vez se localiza la vena porque se ha distendido, se aplica alcohol al 70 % para hacer limpieza y desinfección de la zona y se procede a hacer punción de esta con una aguja calibre 21*1 ½ preferiblemente, pero puede usarse hasta un calibre 18* 1 ½.

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7. Una vez localizada la vena que se ha dis-tendido por efecto del torniquete, se pro-cede a hacer punción de la misma con la aguja en un ángulo de 45°, aproximada-mente.

FIGURA 21. Anestesia local del pie (metacarpiana dorsal común) infiltración anestésica. Paso 4

8. Luego se ejerce presión negativa sobre el vaso para verificar que la aguja esté en el lugar correcto.

9. Una vez el verificado, se inyecta el anesté-sico. El torniquete debe mantenerse has-ta terminar el procedimiento quirúrgico, aunque se recomienta no dejerlo más de una hora.

4.5 ANESTESIA POR INFILTRACIÓN EN l

INVERTIDA

1. Para este procedimiento se va a realizar una infiltración subcutánea e intramus-cular en forma de l invertida por detrás del borde caudal de la última costilla y por debajo de las apófisis transversas de las vértebras lumbares.

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FIGURA 24. Ubicación de la zona de anestesia por infiltración en l invertida (esqueleto)

2. Se puede usar una aguja de calibre de 21* 1 ½ hasta una de 18 * 1 ½, y realizar varios sitios de inyección hasta completar la fi-gura, como se ha demarcado en el modelo anatómico.

FIGURA 25. Ubicación de la zona de anestesia por infiltración en l invertida (modelo anatómico inanimado Manbo-ucc)

3. La infiltración se hace lineal y se va re-tirando la aguja para cubrir el recorrido. Esto se lleva a cabo de manera dorsoven-tral y una línea craneocaudal. La infiltra-ción es subcutánea e intramuscular por lo que debe irse variando el ángulo con que ingresa la aguja.

FIGURA 26. Anestesia por infiltración en l invertida. Paso 1 Fuente: elaboración propia

4. Esta técnica generalmente se usa acompa-ñada de la anestesia paravertebral distal y la epidural posterior en las laparotomías y cesáreas.

FIGURA 27. Anestesia por infiltración en l invertida. Paso 2 Fuente: elaboración propia

4.6 ANESTESIA PARAVERTEBRAL DISTAL

(TÉCNICA DE MAGDA MODIFICADA POR

CAKALA)

1. El primer paso es ubicar las apófisis trans-versas de las vértebras lumbares l1, l2 y l4 por las que emergen los nervios espina-les t13, l1 y l2.

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FIGURA 28. Ubicación de la zona de anestesia paravertebral distal-apófisis transversas de las vértebras lumbares

(esqueleto) Fuente: elaboración propia

2. En el modelo anatómico se observa una ubicación aproximada de las apófisis.

FIGURA 29. Ubicación de la zona de anestesia paravertebral distal, apófisis transversas de las vértebras lumbares

(modelo anatómico inanimado Manbo-ucc) Fuente: elaboración propia

3. Los nervios emergen por el borde distal de las apófisis y tienen una rama dorsal y una ventral, por lo tanto, la inyección debe rea-lizarse por encima y debajo de la apófisis.

FIGURA 30. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal, apófisis transversas de las vértebras

lumbares (esqueleto) Fuente: elaboración propia

4. En la pieza se observa el sitio por donde pasan los nervios espinales.

FIGURA 31. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal, apófisis transversas de las vértebras lumbares

(raquis) rama dorsal Fuente: elaboración propia

5. Hay que recordar que cada nervio tiene una rama dorsal y una ventral.

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FIGURA 32. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal, apófisis transversas de las vértebras lumbares

(raquis) rama ventral Fuente: elaboración propia

6. Se ubican las apófisis en el animal y se procede a hacer depilación y desinfección de la zona.

FIGURA 33. Sitios de aplicación de la anestesia paravertebral distal. Paso 1

7. Luego se hace realiza una inyección intra-muscular profunda dorsalmente a la apó-fisis transversa.

8. Se realiza infiltración en abanico para ase-gurarse de bloquear el nervio.

9. Sin retirar la aguja se cambia de posición, es decir, por debajo de las apófisis trans-versas y se realiza también infiltración en abanico. Para cada nervio se infiltran apro-ximadamente 20 ml, 10 dorsalmente y 10 ventralmente. Este proceso se repite en los tres sitios de inyección l1, l2 y l4.

(23)

23 4.7 ANESTESIA EXTRADURAL (EPIDURAL

POSTERIOR SACROCOCCÍGEA)

1. Se deben ubicar las articulaciones sacro-coccígea e intersacro-coccígea proximal que son los sitios de inyección. Para ello se debe mover la cola del animal y verificar la ar-ticulación.

FIGURA 37. Ubicación de la zona de anestesia extradural (epidural posterior sacrococcígea), articulación sacrococcígea (modelo anatómico inanimado Manbo-ucc)

2. La aguja debe ubicarse en la línea media dorsal en el espacio intervertebral.

FIGURA 38. Ubicación de la zona de anestesia extradural (epidural posterior sacrococcígea), articulación

sacrococcígea (pieza anatómica) Fuente: elaboración propia

3. Se hace depilación, limpieza y desinfec-ción del sitio de inyecdesinfec-ción.

FIGURA 39. Aplicación de anestesia extradural (epidural posterior sacrococcígea). Paso 1

4. Se inserta una aguja de calibre 18 de 3,8 cm (sin jeringa) en la línea media dorsal y se dirige perpendicularmente a la superfi-cie de la piel.

(24)

5. A veces dirigir la aguja ligeramente cra-nealmente facilitará el paso a través del espacio sacrococcígeo. Se levanta la cola del animal y se inyecta en un ángulo apro-ximado de 45°.

6. Pueden usarse agujas desde el calibre 21* 1 ½ hasta el 18* 1 ½.

7. Una vez se penetra la piel, coloque una gota de solución anestésica local en el cen-tro de la aguja (técnica de caída colgante). La aguja debe entonces avanzar lenta-mente hasta que la solución anestésica es atraída hacia el espacio epidural por pre-sión negativa. La jeringa se puede unir en-tonces a la aguja, y la solución anestésica se inyecta lentamente sin resistencia.

(25)

25

8. Se pueden inyectar hasta 30 ml de anes-tésico en total. No es bueno superar esa cantidad, pues cuando el animal tiene pérdida de la sensibilidad de una parte de su cuerpo esto le genera angustia y es-trés, y puede infligirse daño. En estos ca-sos es necesario realizar tranquilización del animal.

(26)

5. c

onclusIones

Las técnicas de anestesia local en rumiantes son de gran utilidad, ya que restringen la sen-sibilidad del animal y evitan el dolor y el su-frimiento, innecesarios en los procedimientos clínicos más usuales en la práctica médica.

Son además técnicas seguras para el animal que controlan eficazmente el dolor

garantizando que los procedimientos se reali-cen de manera ética.

Finalmente, son técnicas de bajo costo, pues los requerimientos en insumos son míni-mos: no se necesitan más que jeringas y agu-jas comunes; por su parte, el medicamento no es costoso.

(27)

27 6. p

aRámetRos paRa la

elaboRacIón y pResentacIón del InfoRme de pRáctIca

• Portada. Es la primera página del informe.

En esta se incluye el nombre de la univer-sidad, la facultad, la materia, el grupo, el título de la práctica, el nombre del estu-diante y la fecha.

• Introducción. En la introducción el

estudian-te debe describir los fundamentos estudian-teóricos de la práctica y los objetivos del experi-mento. Debe haber correlación entre unos y otros y, además, los objetivos deben ser reales y medibles, así como proporcionales con los resultados que se espera obtener en la práctica.

• Materiales y métodos experimentales. En esta

sección el estudiante explica los materia-les utilizados y realiza una descripción breve de las técnicas de disección utiliza-das para el desarrollo de la práctica de la presente guía.

• Resultados. En este apartado se realiza una

descripción de los resultados obtenidos a través de la construcción de mapas con-ceptuales y diagramas en los que el

estu-diante expone la información de manera clara, descriptiva y estructurada. Aparte de los datos, son importantes también las observaciones que se toman, las cuales pueden retroalimentar al docente acerca de la práctica de laboratorio.

• Discusión. En la discusión se presentará, en

primer lugar, el análisis de los resultados, y luego se realizará un análisis acerca de si se cumplen las expectativas. Se trata de de-mostrar que la práctica de la presente guía se realizó de forma correcta. Posteriormen-te, las conclusiones analizan el desarrollo de la práctica y de los resultados obtenidos que deben estar en correlación con los ob-jetivos planteados. Además de conocer la percepción del estudiante frente a la acti-vidad realizada y las ideas que sirvan para mejorar los resultados y procesos. También el estudiante puede sugerir modificaciones que permitan mejorar la práctica.

• Referencias bibliográficas. En esta parte el

es-tudiante registra las referencias y fuentes que utilizó como apoyo en la realización del informe. Solo se incluirán las referen-cias consultadas en la práctica y durante el desarrollo del informe. Usar normas Vancouver.

(28)

R

efeRencIas

[1] Edmondson MA. Local, regional, and spinal anesthesia in ruminants. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2016;32(3):535-52.

[2] Cornick-Seahorn JL. Veterinary anesthesia-The practical veterinarian series. 1a_{edición. Woburn, MA:}

But-terworth-Heinemann; 2001. 318 p. Disponible en: http://www.bh.com

[3] Holtgrew-Bohling K. Large animal clinical procedures for veterinary technicians. 2 a_{edición. St. Louis,}

Mis-souri: Elsevier Mosby; 2012. 575 p.

[4] Sirois M. Principles and practice of veterinary technology. 3 a_{edición. Elsevier Science; 2010. 816 p.}

[5] Guerrero-García AR. Nudos y métodos de sujeción. Colombia; 2015.

[6] Muir iii WW, Hubbel JAE, Bednarrski RM y Skarda RT. Manual de anestesia veterinaria. 4a_{edición. Madrid:}

Elsevier Inc.; 2007. 643 p.

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