AVANCES EN EL CONTROL BIOLÓGICO DE LA
FUSARIOSIS DEL MAÍZ EN SINALOA
Ignacio Eduardo Maldonado Mendoza
Superficie total de cultivos
1, 400, 000 Ha
Producción de maíz:
•
500-600,000 Ha
•
13, 000 MDP
29, 000 Ha en pérdidas
(costo ~780 MDP)
Fusariosis del maíz en Sinaloa (2009)
Pudrición del tallo y raíz
Pudrición en nodos e internodos
de la raíz
Macroconidio
Microconidio
Figueroa-López
Rizósfera
•
~4,000 especies de bacterias
por gr de suelo
•
Solo podemos cultivar 1-5%
de los microorganismos (MOs)
•
La planta afecta distribución
y abundancia de los MOs del
suelo
•
Entender las interacciones
MOs-planta nos ayudaría a
desarrollar
estrategias
de
control biológico
La salud de la raíz de una
planta se debe, en parte, a la
capacidad de asociarse con
los microorganismos
(Munkvold y Desjardins, 1997)
Residuos infestados
(micelio o conidiosporas)
Acarreo por
viento o lluvia
por insectos
Daño
Semilla
contaminada
9
Uso de Bacterias Promotoras del Crecimiento
Vegetal (BPCV) como antagonistas a
Fusarium
Las BPCV son usadas en biocontrol de patógenos
Alternativa amigable para el ambiente
Pueden tener muchos efectos benéficos en plantas
Bacillus
spp. ha sido ampliamente estudiado
•
Potente antagonista diversos patógenos
•
Capaz de producir compuestos antifúngicos
10
Mejora
nutricional
Producción de
Fitohormonas
Biocontrol de
patógenos
Sideróforos
Fosfatos
Fijación de
nitrógeno
Citocininas
Auxinas
Giberelinas
Antibióticos
Enzimas
hidrolíticas
Ácido
cianhídrico
Promoción del
crecimiento
vegetal
Efecto de las BPCVs sobre las plantas
Objetivo general del trabajo
Desarrollar un producto agrobiológico
en base a microorganismos de la
rizósfera del maíz
nativos de Sinaloa
para el biocontrol de
Fusarium
verticillioides
Estrategia General del Proyecto
Colección de 11,520 bacterias nativas de
Sinaloa mantenida a -70
°
C
Pruebas en medio sólido (42 antagonistas) y
hemólisis (14 antagonistas)
Ensayos en planta para seleccionar los 3
mejores antagonistas para pruebas de campo
Ensayos masivos en líquido para seleccionar
622 potenciales antagonistas a
Fv
Pruebas de validación en campo con las tres
bacterias antagonistas
Muestreo dirigido de plantas enfermas
vs. sanas en el mismo surco
Caldo Dextrosa y
Papa
Aislados bacterianos
Toma del aislado
bacteriano
el aislado bacteriano
Inoculación con
Inoculación con
Fusarium verticillioides
Bioensayo
Incubar en agitación
Cuantificación de biomasa fúngica
Tres lavados con
buffer PBS
Agregar WGA
Tres lavados con
buffer PBS
Incubar 4ºC toda la
noche
Pruebas de antagonismo en medio líquido
Placa óptica 96 pozos
Incubar en agitación
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
A
B
C
D
E
F
G
H
Formato 12 x 8 = 96 pozos
Celda con probable
antagonista
WGA ALEXA FLUOR 488nm (Wheat Germ Agglutinin Alexa Flúor 488 nm)
Fuente:Maldonado-Mendoza
Pruebas de antagonismo en medio líquido
Fusarium
Posible antagonista
Fusarium
Posible antagonista
A. Antagonista controlando
el crecimiento de
Fusarium
B.
Fusarium
crece ya que no
hay efecto antagonista
Celda de 2 ml del formato de 96
pozos con 500 µL de caldo Papa
Dextrosa con
Fusarium
y los
aislados
Se incubó 25°C,
250 rpm 30 h
Fusarium
Posible antagonista
23
6
FOR
L
236FORL
Fuente: Maldonado-Mendoza
Pruebas de antagonismo en medio líquido
Cuantificación de biomasa fúngica
622 aislados seleccionados
Prueba en líquido
42 aislados seleccionados
Prueba en sólido
20
α-hemólisis = Parcial
β-hemólisis = Total
γ-hemólisis = No hemólisis
Tipo de hemólisis
Pruebas de hemólisis
Pruebas de hemólisis como factor de selección
50 µL
sobrenadante
β
β
γ
γ
37ºC – 24hr
Aislados Identificados
Molecularmente
% INHIBICIÓN LIQUIDO
% INHIBICIÓN SOLIDO
HEMÓLISIS
2
Bacillus megaterium
88
66
α
3
Pseudomonas putida
84
67
α
4
Bacillus megaterium
89
71
γ
5
Bacillus megaterium
91
66
α
7
Bacillus megaterium
74
71
α
8
Paenibacillus polymyxa
62
85
γ
9
Bacillus cereus
62
70
γ
12
Bacillus megaterium
84
56
α
13
Bacillus subtilis
86
63
α
22
Bacillus
sp.
74
68
γ
23
Bacillus megaterium
64
63
γ
24
Bacillus cereus
72
73
γ
25
Bacillus cereus
93
52
γ
35
Bacillus
subtilis
76
73
γ
Características de los 14 mejores antagonistas
seleccionados para evaluar en planta
A
B
C
D
b b ab ab ab ab b b ab a ab ab ab ab 0,0 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 CTL B2 Ps3 B4 B5 B7 Pa8 B9 B12 B13 B23 B24 B25 B35 Roo t vo lu m e (c m 3) a a ab ab b ab ab ab ab b ab ab b ab 0 20 40 60 80 100 120 CTL B2 Ps3 B4 B5 B7 Pa8 B9 B12 B13 B23 B24 B25 B35 Se ve rity (% ) a ab ab ab b ab ab ab ab ab ab ab ab b b 0 20 40 60 80 100 120 CTL B2 Ps3 B4 B5 B7 Pa8 B9 B12 B13 B22 B23 B24 B25 B35 Se ve rity (% ) c c b c a bc d d bc c bc bc bc b a 0 0,5 1 1,5 2 2,5 CTL B2 Ps3 B4 B5 B7 Pa8 B9 B12 B13 B22 B23 B24 B25 B35 Roo t vo lu m e (c m 3)Tres antagonistas seleccionados para pruebas en campo
por disminuir la severidad de la fusariosis en plántulas de maíz
Híbrido Cebú
Características de antagonismo y de promoción del
crecimiento vegetal de los aislados
No.
Aislado
Fosfato
Auxina
Quitinasa
Sideróforos
Proteasa
Glucanasa
B2
Bacillus megaterium
-
-
-
-
-
+
Ps3
Pseudomonas putida
-
-
-
+
-
+
B4
Bacillus
sp.
+
-
-
+
+
+
B5
Bacillus
sp.
+
-
-
+
+
+
B7
Bacillus megaterium
-
-
-
+
+
+
Pa8
Paenibacillus polymyxa
+
+
-
-
-
+
B9
Bacillus cereus
-
-
-
-
-
+
B12
Bacillus subtilis
+
-
-
+
+
-
B13
Bacillus aquimaris
+
-
+
+
-
+
B22
Bacillus megaterium
-
-
-
+
+
+
B23
Bacillus
sp.
+
-
+
-
-
-
B24
Bacillus cereus
-
-
+
+
+
+
B25
Bacillus cereus
-
-
+
+
+
+
B35
Bacillus
sp.
-
-
-
-
-
+
Compatibilidad entre aislados
4 5
8
9 22 23 24 25 35
4
5
8
9
22
23
24
25
35
COMPATIBLES
NO COMPATIBLES
24
Fecha de siembra:
Primer experimento: ciclo Otoño-Invierno 2011-2012
Segundo experimento: ciclo Otoño-Invierno 2012-2013
Diseño Experimental:
Bloques completamente al azar
con tres repeticiones. Anova, Tukey P<0.05
TRATAMIENTOS
1 AISLADO A
2 AISLADO B
3 AISLADO C
4 A+B
5 A+C
6 B+C
7 A+B+C
8
CONTROL ABSOLUTO
9
CONTROL DE PATOGENICIDAD
( +
Fusarium
)
10
CONTROL INOCULANTE
BIOLÓGICO COMERCIAL
11
CONTROL CON LB
Establecimiento del experimento en campo
2 11 3 6 9 5 10 7 1 4 8
1
5
8 7 10 11 3 4 9 2 6
11 4
9 2 1 7 6 8 5 10 3
BLOQUES
Variables a medir:
Altura
Grosor de tallo
Altura
de
la
primera
mazorca
Incidencia y severidad de
pudrición de tallo
Incidencia y severidad de
pudrición de mazorca
Rendimiento de grano
Humedad de grano
Comprobación
de
esterilidad de semillas de maíz
con identificación morfológica
y
molecular
de
hongos
asociados a granos de maíz
Evaluación de fumonisinas
presentes en granos de maíz
26
Establecimiento del experimento en campo
Propagación del inóculo de
Fv
en maíz picado
Pruebas en campo (FPS El Realito. 07/05/2012)
Las bacterias antagonistas afectan la incidencia
y severidad de pudrición en mazorca
Tratamiento
Variables
% Incidencia de
pudrición
en
mazorca
% de Severidad
de pudrición en
mazorca
1
AISLADO A
6.0
c4.5
c2
AISLADO B
4.7
c3.8
c3
AISLADO C
44.6
b15.2
b4
A+B
44.6
b3.8
c5
A+C
44.6
b3.6
c6
B+C
69.2ª
13.8
b7
A+B+C
8.6
c3.8
c8
CONTROL ABSOLUTO
77.0
a15.4
b9
CONTROL (+ Fusarium)
80.2
a34.7ª
10
CONTROL CON LB
58.6
a18.3
b11
CONTROL COMERCIAL
72.9
a18.3
bTRATAMIENTOS
Rendimiento de grano
(t ha
-1
)
1
AISLADO A
11.00
a
2
AISLADO B
11.22
a
3
AISLADO C
9.66
ab
4
A+B
10.51
a
5
A+C
9.59
ab
6
B+C
9.59
ab
7
A+B+C
11.34
a
8
CONTROL ABSOLUTO
9.45
ab
9
CONTROL DE PATOGENICIDAD (+ Fv)
7.10
b
10
CONTROL CON LB
9.04
ab
11
CONTROL COMERCIAL
9.54
ab
Los antagonistas mejoran el rendimiento del grano (159 dds)
Ciclo O-I de 2012. Letras iguales en las columnas no presentan diferencias
significativas (Tukey
, α= 0.05).
Segundo experimento en campo El Realito resultados
parciales (2012-2013)
Tratamiento
Variables
% Incidencia de pudrición en tallo Nivel de severidad
de pudrición en
tallo a 159 DDS
(escala de 0 a 5)
41 dds
98 dds
1
Control absoluto híbrido Garañón
85.0
c85.0
c2.5
c2
Control de patogenicidad híbrido
Garañón
85.0
c55.0
b2.5
c3
Híbrido Garañón + Aislado (aplicado a
semilla)
10.0
a0.0
a0.0
a4
Híbrido Garañón + Aislado (aplicado a
semilla y tallo)
20.0
b10.0
a1.0
b5
Control absoluto híbrido Dekalb 2038
70.0
c60.0
bc2.5
c6
Control de patogenicidad híbrido
Dekalb 2038
85.0
c70.0
c2.5
c7
Híbrido Dekalb 2038 + Aislado (aplicado
a semilla)
25.0
bc10.0
a1.0
b8
Híbrido Dekalb 2038 + Aislado (aplicado
a semilla y tallo)
10.0
a10.0
a1.0
bSegundo Experimento en campo NO
infestado de
Fusarium
ciclo 2012-2013
•
Cosecha realizada en junio 2013
•
Helada en enero 2013
•
No incidencia, no severidad en raíz y tallo
•
Daño por cogollero
•
Probable incidencia en mazorca
Bacillus cereus
disminuye la incidencia y
severidad de pudrición en mazorca (187 dds)
Tratamiento
Variables
% incidencia en
pudrición de
mazorca
% severidad en
pudrición de
mazorca
1
Control absoluto híbrido Cebú
87.1
ab76.2
a2
Híbrido Cebú + aislado bacteriano (aplicado a semilla)
69.2
c34.1
c3
Híbrido Cebú + aislado bacteriano (aplicado a semilla y tallo)
74.3
b28.3
d4
Control absoluto híbrido Garañón
94.4
a62.7
bc5
Híbrido Garañón + aislado bacteriano (aplicado a semilla)
88.3
a34.2
c6
Híbrido Garañón + aislado bacteriano (aplicado a semilla y
tallo)
71.1
bc37.5
c7
Control absoluto híbrido Gorila
92.3
a68.2
b8
Híbrido Gorila + aislado bacteriano (aplicado a semilla)
74.5
b33.0
c9
Híbrido Gorila + aislado bacteriano (aplicado a semilla y
tallo)
Bacillus cereus
aumenta el rendimiento de
grano (187 dds)
Estandarización de la producción del inóculo en
fermentadores de 3 L
Laboratorio de Bioenergéticos
Dra. Claudia Castro Martínez
M.C. Juan Carlos Martínez Álvarez
Formulación en polvo a base de esporas de
Bacillus
spp
. nativos de Sinaloa para el control de
Fv
en maíz
Establecer y optimizar la producción de esporas de
Bacillus
sp
.
Generar una formulación en polvo a base de esporas de
Bacillus sp.
Evaluar in
vitro
el efecto de la formulación en:
a) control
F. verticillioides
b) eficiencia en el recubrimiento de las semillas de maíz
c) viabilidad y vida de anaquel de las esporas de
Bacillus spp.
d) germinación de las semillas de maíz
Evaluar el efecto de la formulación en el control de
F. verticillioides
en maíz
Factores con efectos principales
Diseño Plackett-Burman
Zona de optimización
(ascenso más pronunciado)
Optimización DCC
Selección y optimización de nutrientes del
medio de cultivo por MSR
Estandarización de la
concentración
Producción de esporas
(UFC/mL) de
aislados de
Bacillus
MEDIO
DO 24h
DO 48h
DO 72h
UFC/mL 24h
UFC/ml 72h
1X10
71X10
8DSM
0.786
0.859
0.867
1.2± 0.16
1.2± 0.14
Medio 1 DSM+ AM
0.656
0.694
0.453
1.1± 0.12
3.3± 0.21
Medio 2 DSM+ AP
1.117
1.31
1.401
2.8± 0.1
2.1± 0.24
Medio 3 DSM+ CSL
1.926
1.658
1.465
3.5± 0.8
2.1± 0.08
Medio 4 DSM+ EC
1.278
1.829
1.546
--
--
Medio 5 DSM+ GLUC
0.993
0.971
0.928
0.1± 0
1.9± 0.04
Medio 6 DSM+ MAL
1.048
0.954
0.878
1.3± 0.16
2.3± 0.37
Medio 7 DSM+ SAC
0.756
0.983
0.916
8.2± 0.2
0.8± 0.12
MEDIO A B C D E F G 1 1 1 1 -1 1 -1 -1 2 -1 1 1 1 -1 1 -1 3 -1 -1 1 1 1 -1 1 4 1 -1 -1 1 1 1 -1 5 -1 1 -1 -1 1 1 1 6 1 -1 1 -1 -1 1 1 7 1 1 -1 1 -1 -1 1 8 -1 -1 -1 -1 -1 -1 -1 Letra Componente -1 1 A PEPTONA (g/L) 2.5 7.5 B EXTRACTO DE LEVADURA (g/L) 1.5 4.5 C KCl 10% (mL/L) 5 15 D MgSO4 1.2% (mL/L) 5 15 E MnCl2 10 mM (mL/L) 0.5 1.5 F FeSO4 1 mM (mL/L) 0.5 1.5 G Ca(NO3)2 0.5M (mL/L) 1 3
Diseño factorial fraccionado (Plackett-Burman) para evaluar los 7
componentes del medio de cultivo DSM y poder identificar aquellos con
MEDIO
DO 24h
DO 48h
DO 72h
UFC/ml 72h (1X10
9)
1
1.410
2.025
1.816
1.33
2 (EL)
1.683
1.459
1.426
5.13
3
1.171
0.982
0.881
1.10
4 (Mg)
1.557
1.710
1.562
5.60
5
1.778
1.585
1.501
0.30
6
1.975
1.663
1.727
0.43
7
1.755
1.944
1.861
2.00
8
1.068
1.058
0.906
2.90
Después de aplicar el método Plackett-Burman se obtiene
producción de esporas hasta de 5.6 x 10
9
UFC/ml
El estudio de la diversidad de las bacterias cultivables en la rizósfera
del maíz nos ayuda a entender porque una planta se enferma
•
Se secuenciaron 10,000 aislados y se seleccionaron 7,000 secuencias para
agruparlas por similitud en 185 OTUs
•
El análisis de rarefacción nos indicó que el esfuerzo de muestreo para entender
la diversidad total de la muestra debe ser mayor
Composición de las poblaciones de
bacterias cultivables de la rizósfera
del maíz
Phyla
Firmicutes
Location Infection
1 B. subtilis 0.0001 0.0031 all five SYM
2 B. cereus 0.0001 0.0001 all five SYM
5 B. megaterium 0.0001 all five
6 Bacillus sp. 0.0001 all five
7 B. cereus 0.0001 0.0002 all five SYM
8 B. subtilis 0.0001 all five
12 B. subtilis 0.0001 all five
13 B. endophyticus 0.0001 all five
17 B. thuringiensis 0.0001 0.02 all five ASY
18 B. subtilus 0.0001 all five
19 B. firmus 0.0001 all five
21 B. megaterium 0.0001 all five
22 E. cloacae 0.0001 0.001 I, II, III SYM
36 P.putida 0.0049 0.0038 all five ASY
82 Pantoea sp. 0.0001 0.0001 I, V SYM
94 L. sphaericus 0.0001 0.0001 all five SYM
95 B. megaterium 0.0001 all five
114 Arthrobacter sp. 0.0001 II, IV, V
117 B. niacini 0.0001 all five
128 B. megaterium 0.0001 I, II, IV, V
169 Acinetobacter sp. 0.0016 I, V
179 B. luciferensis 0.0439 all five
239 S. maltophila 0.0015 I, II, III
375 L. sphaericus 0.0039 I, V
383 P. fluorescens 0.0001 0.0001 III, IV, V ASY
388 B. aquimaris 0.027 III, IV, V
422 Paenibacillus sp. 0.0237 I, II, III, IV
Related to infection OTU Organism Pr > Chisq OTUs present at sites
SANA ENFERMA
Poblaciones específicas de
Bacillus
y
Pseudomonas
de la rizósfera del maíz son
modificadas con la aparición de síntomas de fusariosis
OTUs associated only with asymptomatic
plant rhizospheres
OTU number Putative species Sample point 34 B. cereus I 37 P. putida I 39 P. putida I 46 P. putida I 50 P. putida I 52 Bacillus sp. I 54 B. subtilis I 75 P. putida I 79 B. subtilis I 84 B. pumilus I 313 Enterobacter sp. I 321 B. pumilus I 325 B. pumilus I 331 B. pumilus I 335 Enterobacter sp. I 453 Paenibacillus sp. I 495 B. thuringiensis I 505 B. megaterium I 251 B. pumilus II 600 Pseudomonas sp. III 607 B. cereus III 195 B. cereus IV 167 A. calcoaceticus V 381 B. thuringiensis V 151 Bacillus sp. III / V 162 B. cereus II / III / V 197 B. catenulatus I /IV 254 Bacillus sp. I / II 260 B. cereus I / II 324 B. pumilus I / III 336 B. pumilus I / III 372 B. subtilis I / V 423 B. aquimaris II / IV 464 B. subtilis II / III 494 Bacillus sp. I / II 510 B. megaterium I / II
OTUs associated only with symptomatic plant
rhizospheres
OTU number Putative species Sample point 104 C. sakazakii I 577 B. megaterium I 282 P. mendocina II 642 B. amyloliquefaciens III 650 Aeromonas media III 661 P. fluorescens III 662 B. megaterium III 433 B. subtilis IV 568 B. aquimaris IV 575 B. aquimaris IV 392 L. sphaericus V 393 L. sphaericus V 409 B. subtilis V 123 B. subtilis II / III 124 B. subtilis I / II 127 B. subtilis I / II 168 P. putida II / V 175 Bacillus sp. I / V 183 B. cereus I / V 190 B. cereus I / V 216 Enterobacter sp. I / II 220 B. subtilis II / IV 224 B. cereus II / IV 240 S. maltophila I / III 243 S. canadense II / III 274 Brevibacillus sp. II / IV 281 Paenibacillus sp. II / III / IV 288 Bacillus sp. II / IV 289 Rhizobium sp. II / III 398 Bacillus sp. I / V 401 B. thuringiensis IV / V 411 Bacillus sp. IV / V 441 Terribacillus sp. I / IV 469 B. thuringiensis I / III 490 B. subtilis I / III 592 Bacillus sp. III / IV 593 B. megaterium III / IV 523 Bacillus sp. I / V