TABLA DE CONTENIDO 1. RESUMEN INTRODUCCION OBJETIVOS MARCO TEÓRICO AREA DE ESTUDIO METODOLOGIA...

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TABLA DE CONTENIDO

1. RESUMEN ... 4

2. INTRODUCCION ... 5

3. OBJETIVOS ... 7

4. MARCO TEÓRICO ... 8

5. AREA DE ESTUDIO ... 12

6. METODOLOGIA ... 14

Fase De Campo ... 14

Fase De Laboratorio ... 20

7. DISCUSION Y ANALISIS DE RESULTADOS ... 23

Comunidad Zooplanctónica ... 25

Comunidad Bentónica ... 30

Comunidad de Macrófitas ... 35

Comunidad Íctica ... 36

8. CONCLUSIONES ... 37

9. RECOMENDACIONES... 38

10. REGISTROS FOTOGRAFICOS – LABORATORIO ... 39

11. BIBLIOGRAFIA ... 43

12. ANEXOS ... 48

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INDICE DE TABLAS

Tabla 1. Descripción general de los puntos. Cartagena-Bolivar. ... 12

Tabla 2. Metodologías empleadas en Campo... 15

Tabla 3. Bibliografía empleada para análisis hidrobiológico. ... 21

Tabla 4. Metodologías empleadas en Laboratorio ... 22

Tabla 5. Comunidades analizadas en la estación de muestreo. Cartagena-Bolivar. 23 Tabla 6. Clasificación taxonómica del Zooplancton – Cartagena-Bolivar. ... 26

Tabla 7. Principales características del zooplancton. Cartagena-Bolivar... 28

Tabla 8. Clasificación taxonómica del Bentos – Cartagena-Bolivar. ... 30

Tabla 9. Principales características del Bentos – Cartagena-Bolivar. ... 32

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INDICE DE FIGURAS

Figura 1. Actividades Fase de campo ... 14

Figura 2. Disposición de cuadrantes a lo largo de transepto. ... 18

Figura 4. Actividades Fase de Laboratorio. ... 20

Figura 5. Abundancia del zooplancton – Cartagena-Bolivar. ... 27

Figura 6. Riqueza del zooplancton – Cartagena-Bolivar. ... 27

Figura 7. Abundancia del Bentos – Cartagena-Bolivar ... 31

Figura 8. Riqueza del Bentos – Cartagena-Bolivar. ... 32

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1. RESUMEN

Se realizo un muestreo los días 11 y 12 de Noviembre de 2016, en cuatro sectores de la Bahia de Cartagena cerca al área de influencia de la Refineria de Cartagena con el fin de caracterizar las comunidades hidrobiológicas del Zooplancton, Organismos Bentonicos, Macrofitos acuáticos e Ictiofauna.

En términos generales se evidencio que dentro del Bentos se registró un total de cuatro (4) grupos principales conocidos como Bivalvia, Gastropoda, Malacostraca y Scaphopoda, 10 familias (Rissoidae, Dentaliidae, Littorinidae, Neritidae, Olividae, Patellidae, Penaeidae, Pyramidellidae, Tellinidae y Ungulinidae y 10 morfoespecies distribuidas entre estas, siendo los gastropodos los mas abundantes en todos los puntos. En el Zooplancton se identificaron tres (3) familias conocidas como Arcellidae, Calanidae Cyclopidae, también se ientificaron seis (6) morfoespecies en total (Morfo 1. Familia Calanidae, Morfo 2. Familia Cyclopidae, Morfo 3. Orden Harpacticoida, Morfo 4. Clase Maxillopoda - Larva Nauplio, Morfo 5. Clase Maxillopoda - Larva Mysis, Morfo 6. Clase Maxillopoda - Larva Zoea) y una (1) especie conocida como Arcella gibossa, de estos, los mas abundantes fueron los copépodos. Tanto en Ictiofauna como en Macrofitos acuaticos no se lograron obtener resultados físicos en los puntos de muestreo aunque se llevo a cabo el esfuerzo de muestreo durante una hora siguiendo todos los procedimientos establecidos.

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2. INTRODUCCION

Colombia representa una zona geográfica muy importante a nivel mundial (el 0,77%

de la superficie terrestre), no solo por su interés económico sino por la gran biodiversidad que ésta representa, posicionándolo entre los tres principales países, junto con Brasil e Indonesia, con la más espléndida y magnífica megadiversidad en el planeta, aproximadamente el 15% de la biodiversidad terrestre total (Álvarez, 2007 En: Alarcón, 2009).

Además de poseer este reconocimiento, Colombia pertenece a un grupo selecto de países con una gran riqueza en recursos hídricos (Maldonado et al., 2006), presentando dentro de su territorio, destacables e importantes ríos como el Magdalena, Cauca, Orinoco, Amazonas, cientos de riachuelos, quebradas y dos grandes océanos (Caribe o Atlántico y Pacifico). Razón por la cual es necesario y significativo ir avanzando en el campo investigativo, para lograr abarcar toda la información que representa ese 15% de la fauna y flora en nuestro país (Alarcón, 2009).

En Colombia, desde hace un par de décadas, principalmente, se ha originado un gran auge de estudios, investigaciones y exploraciones a nivel biológico y por lo tanto científico en todo lo referente a la composición estructural de ecosistemas acuáticos (dulceacuícolas, estuarinos y marinos), con el fin de analizar y evaluar diferentes aspectos como la fisiología, biología y ecología de las especies de flora y fauna que en éstos habitan.

Este movimiento de investigación en el país conformado por profesionales en Biología, Ecología, Zoología e Ingeniería ha dedicado gran parte de su tiempo en llevar a cabo monitoreos y estudios temporales, que de una u otra forma ayudan a establecer un equilibrio biológico y ecológico en un determinado ecosistema, debido a las múltiples intervenciones que ha ido provocando el hombre con el afán de explorar y descubrir nuevas alternativas económicas que favorecen a un mejor estilo de vida del mismo.

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Por esta razón, a través de la Limnología, rama de la ecología que se encarga del estudio de los ecosistemas acuáticos continentales (ríos, lagos, lagunas, quebradas, embalses y ciénagas) (Ramírez, 2000), ha surgido la necesidad de estudiar y analizar esos cuerpos de agua enfatizando en su buen funcionamiento por medio de la estructura general de las comunidades hidrobiológicas (plancton, perifiton, organismos bentónicos, macrófitos y peces), que se encuentren habitando simbióticamente en estos.

De esta manera, la hidrobiología, por medio de indicadores biológicos que se correlacionan directa o indirectamente con propiedades físicas y químicas del agua, se encarga de determinar la función que desempeñan estas comunidades en la dinámica del sistema y qué indica su presencia o ausencia en el mismo.

Este estudio se ejecutó en la cuidad de Cartagena ubicado en el Departamento del Bolivar. El muestreo se realizó desde el día 11 al 12 de noviembre del 2016 posicionando los siguientes puntos en la Bahia de Cartagena cerca al área de influencia de la Refineria: E3, E5, E7 Y E10. Estos se tomaron teniendo en cuenta las coordenadas y requerimientos del Cliente (ECOPETROL S.A.).

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3. OBJETIVOS

Realizar la caracterización de las Comunidades hidrobiológicas (Fitoplancton, Zooplancton, Perifiton, Bentos, Macrófitos Acuáticos e Ictiofauna), de acuerdo a los resultados obtenidos en abundancia de individuos y riqueza de especies dispuestas en los puntos de muestreo establecidos por el Cliente (ECOPETROL S.A.), ubicados en Cartagena - Bolivar.

Mencionar las morfo especies principales dentro de cada comunidad para poder determinar las principales características en cuanto a bioindicación se refiere.

Presentar un registro fotográfico extraido del análisis e identificación de las morfo especies reportadas en cada una de las comunidades estudiadas de los puntos muestreados en este proyecto.

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4. MARCO TEÓRICO

Los sistemas acuáticos, en términos generales, son ambientes que se encuentran en un estado dinámico, es decir, que constantemente están sujetos a cambios en sus propiedades físicas, químicas y biológicas (calidad del agua), dependiendo de las condiciones y actividades que se estén llevando a cabo en sus alrededores por factores externos a ellos como antropogénicos, climáticos y ambientales. Estas características afectan directa e indirectamente a la capacidad que tiene el agua para lograr el sustento tanto del ser humano como de las comunidades vegetales y animales a nivel macro y microscópico.

Plancton

El plancton es una comunidad acuática que se desarrolla en la columna de agua a merced de las corrientes, se compone de microalgas (fitoplancton) y microinvertebrados (zooplancton) (Ramírez y Viña, 1998). El fitoplancton en una definición completa es un ensamblaje de organismos planctónicos principalmente fotoautotróficos. En los ríos está sometido al movimiento pasivo por el viento y las corrientes que comúnmente se presentan en la superficie del agua. Asimismo, es el principal encargado de la producción primaria y es muy diverso (Ramírez y Viña, 1998; Roldan y Ramírez, 2008).

Por otra parte, el zooplancton se caracteriza por ser poco diverso en aguas continentales y está conformado por todos los organismos microscópicos de origen animal que flotan libremente en el agua, principalmente protozoos, rotíferos y microcrustáceos (Roldan y Ramírez, 2008). El uso de la comunidad planctónica como bioindicador de los sistemas lóticos, es muy limitado, debido a lo efímeros que son estos ecosistemas (Roldan y Ramírez, 2008).

La metodología utilizada en campo para la recolección del plancton, se basa en el planteamiento expuesto en bibliografía especializada como el Standard Methods (10200B), y el análisis que se realiza para su identificación en el laboratorio se basa en la propuesta de Semina (1978), presentada en el Phytoplankton manual de la UNESCO y en la propuesta de Paggi y Paggi (1995), En Lopretto, E.C & G. Tell (eds)

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expuesta en Ecosistemas de aguas Continentales, Metodología para su estudio. II.

(1995).

Bentos

Los organismos pertenecientes al Micro y Macrobentos están catalogados como excelentes bioindicadores para evaluar la calidad de un cuerpo de agua debido a que es la única comunidad que involucra a todos los organismos que habitan sobre y dentro del sustrato tanto en sistemas dulceacuícolas como marinos y estuarinos.

La estructura, morfología y desarrollo de los organismos bentónicos varían de acuerdo a la composición del sustrato donde se encuentren asentados, debido a que sus estructuras se adaptan y modifican de acuerdo al tipo de alimento que se encuentre en el sitio (Brusca & Brusca, 2005). En sí cada Familia presenta características únicas y diferenciadas que permiten que una especie habite o no en un lugar determinado (Roldan y Ramírez, 2008).

Como referencia general, los sistemas dulceacuícolas que se encuentran ubicados dentro del área neotropical, presentan como característica común dentro de la comunidad Bentónica, la distribución y asentamiento de ciertas especies bioindicadoras, como los Ephemerópteros y Simúlidos que se depositan en grandes abundancias en las partes altas, Odonatos y Hemípteros en las partes medias y Quironómidos en las partes bajas (Roldan y Ramírez, 2008).

La metodología empleada en campo para la recolección del bentos se centra en el planteamiento expuesto en el Standard Methods (10500B), y para su posterior análisis en el laboratorio la planteada en la sección 105000C.

Ictiofauna

La comunidad Íctica (Peces), generalmente responde a condiciones propias del sistema, como características geológicas (contenido de minerales y nutrientes en los suelos, sólidos, erosión), tasa de renovación del agua (velocidad, caudal) y

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características morfométricas (forma, relación área superficial: profundidad) (Ramírez y Viña, 1998). Además de condiciones biológicas (comportamientos y reproducción de especies), la época del año y factores de origen antropogénico que de una o de otra forma modifican o varían las condiciones naturales de un ecosistema.

La Ictiofauna presenta un interés biológico importante que se traduce en un continuo esfuerzo por ubicarlos y determinar sus relaciones naturales. Esta comunidad se convierte en una de las más adecuadas para realizar estudios sistemáticos debido a que son organismos que presentan una interesante y destacada abundancia en cualquier entorno acuático; además de tener múltiples características que permiten realizar análisis taxonómicos y tratamientos estadísticos (Lagler et al., 1984). Sin embargo, esto no los hace los mejores bioindicadores de un sistema (lotico), debido a que los peces son organismos que poseen la facultad de trasladarse fácil y eficazmente de un sitio a otro cuando el sistema presenta condiciones que no son favorables y/o aptas para llevar a cabo sus procesos fisiológicos (Maldonado et al., 2005).

La metodología utilizada en campo para la recolección de la Ictiofauna se centra en el planteamiento expuesto en el Standard Methods (10600D), y para su posterior análisis en el laboratorio en la sección 10600D.

Macrófitos Acuáticos

Este tipo de vegetación crece en sistemas lénticos y en orillas protegidas de ambientes lóticos (Ramírez y Viña, 1998). Su presencia y abundancia dependen de las condiciones topográficas y el estado de eutrofización de los cuerpos de agua. Por otra parte, su establecimiento provee múltiples nichos que son explotados por los macroinvertebrados, microalgas y peces, lo cual causa una alta productividad biológica. En sistemas hídricos que tienen una alta carga orgánica pueden desarrollase a tal punto que pueden convertirse en una plaga difícil de erradicar (Roldán y Ramírez, 2008), que altera radicalmente el buen funcionamiento del sistema provocando un incremento notable en materia orgánica y nutrientes que no logran ser remineralizados por tener poca capacidad de absorción por los microorganismos.

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La metodología utilizada en campo para la recolección de los macrófitos y para su posterior análisis en el laboratorio se centra en el planteamiento expuesto en el Standard Methods (10400C-D), teniendo también en cuenta las propuestas plasmadas por Ramírez 2006.

Bioindicación

El concepto de Bioindicación hace referencia a que cualquier organismo o microorganismo que se considere como un proveedor de información acerca de las condiciones del medio en el que se encuentra habitando, debido a que su establecimiento refleja e indica las adaptaciones (Roldán, 2003), que éstos tienen que originar para que exista un equilibrio significativamente bueno entre el sistema y ellos para lograr una simbiosis aceptable que les permita cumplir con el ciclo vital. Es de esta forma como la bioindicación de un organismo emplea la presencia, abundancia e incluso la ausencia para señalar algún tipo de proceso (físico, químico, biológico, ecológico), que se esté llevando a cabo en el sistema, teniendo en cuenta que cualquier clase de evento que se desarrolle provocará un cambio indeterminado en las características iniciales del organismo como tal (Pinilla, 2000), el cual se puede evidenciar de forma inmediata o incluso años después de ocurrida la perturbación, eso depende de las condiciones del sistema y de la fisiología que presente el organismo.

En términos generales, todo organismo es bioindicador del sistema donde se encuentre habitando pero solo algunos tienen la facultad de asimilar y exponer los procesos que se estén llevando a cabo determinando así el estado real del ecosistema. Es así como los organismos que verdaderamente son bioindicadores tienen la facultad de demostrar procesos (biológicos), que los parámetros físicos y químicos no alcanzan a expresar (Pinilla, 2000). También se debe tener presente que cuando las condiciones originales de un sistema cambian paulatina o radicalmente, se altera ese equilibrio ecológico existente y es por medio de las especies bioindicadoras que se logra determinar las reales causas que posiblemente origino dicho evento. Sin embargo, cuando la alteración provocada es muy fuerte puede ocurrir la extinción de los organismos presentes allí (Roldán y Ramírez, 2008).

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5. AREA DE ESTUDIO

A continuación se realiza una descripción general de los puntos muestreados dentro del área de influencia de este estudio/proyecto (Tabla 1).

Tabla 1. Descripción general de los puntos. Cartagena-Bolivar.

SITIOS DE MUESTREO E3.

(Bahia de Cartagena) Coordenadas

Geograficas 10°19’11.35’’N 75°30’50.27’’W

Planas 1633350N

842648W

E5

Geograficas 10°20’15.48’’N 75°30’53.92’’W

Planas 1635322N

842546W

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Página 13 de 53 SITIOS DE MUESTREO E7.

Geograficas 10°19’43.25’’N 75°31’53.4’’’W

Planas 1634387N 1169349W

E10.

(Bahia de Cartagena)

Coordenadas

Geograficas 10°17’39.3’’N 75°31’52.2’’W

Planas 1630577N 1169404W

Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2016.

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6. METODOLOGIA

Fase De Campo

Una vez escogidos los sitios y puntos de muestreo se realizó una descripción detallada de cada uno de ellos (Anexos – Cadenas de Custodia y Registros técnicos de campo), posteriormente se procedió a la toma y recolecta de muestras de cada una de las comunidades a evaluar y analizar empleando los métodos propuestos para llevar a cabo estos procesos (Figura 1).

Figura 1. Actividades Fase de campo Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2016.

En la siguiente tabla se exponen las metodologías que se emplearon en campo para llevar a cabo la recolección de las muestras referentes a las comunidades hidrobiológicas (Tabla 2).

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Tabla 2. Metodologías empleadas en Campo

COMUNIDAD METODOLOGIA

Zooplancton 10200 B Standard Methods (2012) Bentos 10500 B Standard Methods (2012)

Macrófitos 10400 C Standard Methods (2012); Ramírez, (2006) Ictiofauna 10600 B,C Standard Methods (2012)

Zooplancton

Estas comunidades se muestrearon por medio de redes especializadas (con una malla con ojo de luz de 29 micras para fitoplancton y de 62 micras para zooplancton), que filtran los microorganismos pertenecientes a éstas en un volumen de agua conocido y se depositan en un cono terminal donde finalmente se obtiene la muestra deseada (Fotografía 1). La metodología utilizada es la propuesta por el Standard Methods en el capítulo 10200 B (2012).

Fotografía 1. Recolección del Plancton.

Una vez obtenida la muestra en el cono terminal de la red se procedió a realizar un lavado cuidadoso de las ventanillas de éste con agua limpia y un frasco lavador, después se depositó la muestra en un frasco de plástico (o de vidrio), de 250 ml, se tiñó con Lugol de Gram (3-5 gotas) y se preservó con solución Transeau (1:1).

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Finalmente se rotuló, se registró en la cadena de custodia y se almacenó en una nevera de icopor para su traslado al laboratorio. El Volumen total filtrado fue de 10 Litros.

Posteriormente el material raspado se dispuso en un frasco de ámbar de vidrio o plástico de 60 ml en donde previamente se llenó con un poco de agua limpia. Una vez obtenida la muestra, se tiñó con Lugol de Gram (3-5 gotas), y se preservó con solución Transeau (1:1). Finalmente se rotuló, se registró en la cadena de custodia y se almacenó en nevera de icopor para su traslado al laboratorio. El área total raspada fue de 45 cm².

Bentos

Para muestreo en cuerpos de agua profundos (ríos, lagunas, lagos), la muestra es recolectada utilizando la red-D (d-frame), la cual consta de un cuadrante con un área de 0,09 m² unido a una malla con ojo de luz de 180 micras, realizando arrastres de manera aleatoria en un área determinada sobre el sustrato del sistema generalmente hacia las orillas, de esta forma van quedando atrapados los macro invertebrados en la red. Para cuerpos de agua poco profundos o someros (quebradas, riachuelos, lagunas, esteros, morichales), se emplea la red Surber la cual consta de un cuadrante con un área de 0,09 m² unido a una malla en forma de embudo con ojo de luz de 180 micras que es en donde finalmente quedan atrapados los sedimentos removidos.

La forma de recolectar dicha muestra se basa en la metodología de colocar la red en contra de la corriente (en cuerpos Lóticos), sobre el sustrato, removiéndolo pausadamente con los pies o manos para lograr suspenderlo y por acción del movimiento del agua éste quede atrapado dentro de la red. Para efectos y buenos resultados de este estudio, el bentos se muestreó por medio de la red Surber pescar (Fotografía 2).

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Fotografía 2. Recolección del Bentos.

Una vez obtenida la muestra se depositó en bolsas zip-lock y se preservó con solución Transeau (aproximadamente de 50ml a 100 ml). Posteriormente se rotuló, se registró en la cadena de custodia y se almacenó en neveras de icopor para su traslado al laboratorio. La metodología utilizada es la propuesta por el capítulo 10500 B Standard Methods, 2012. El área total muestreada fue de 0,45 m².

Ictiofauna (Peces)

La Ictiofauna generalmente se muestrea por medio de artes de pesca conocidos como atarrayas y redes de arrastre en cuerpos de agua grandes y profundos (ríos, lagunas, ciénagas, embalses) y/o jamas artesanales y anzuelos en sistemas pequeños y someros (quebradas, arroyos, lagunas, caños). En esta ocasión, el muestreo se realizó empleando atarraya de ½ pulgada y caña de pescar.

El método empleado se basó en estandarizar los datos a una hora de muestreo, realizando un total de 10 lances con atarraya y 10 arrastres con jama durante el lapso de tiempo establecido (1 hora). La metodología se rige por la expuesta en el capítulo 10600 B,C del Standard Methods, 2012.

Una vez obtenidas las muestras los ejemplares se pueden o no anestesiar (con 3-5 gotas de esencia de clavo), dependiendo de la reacción del pez. Posteriormente se

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miden (Longitud Total y Estándar), se fotografían lo mejor que se pueda desde varios ángulos haciendo énfasis en las aletas y cabeza, si es posible se identifican sino, se registran como morfoespecies. El pez o individuo se devuelve a su hábitat.

Si se desea capturar y colectar peces se debe solicitar previamente un permiso de investigación científica a las autoridades competentes. Solo en este caso, se debe recolectar un ejemplar por especie encontrada. Para esto se toma el (os) pez (es) y se deposita (n) en un frasco de vidrio o de plástico (250 ml), o en una bolsa zip-lock, se preserva (n) con solución Transeau agregando la cantidad necesaria hasta cubrirlos totalmente. Posteriormente se rotula y se almacena en nevera de icopor para su traslado al laboratorio. En caso de no capturar se puede realizar entrevistas a lugareños o habitantes de la zona para poder conocer que especies se encuentran en la región.

Macrófitos

Para los macrófitos que se encuentren asentados en manera de parche (aleatoriamente), se dispone sobre éste un transepto con cabo metrado de (x) metros de longitud (depende de la dimensión del parche). Luego se coloca un cuadrante parcelado de 0,5 m² al inicio del transepto para comenzar a registrar el porcentaje de cobertura de cada una de las especies que se encuentren dentro del área del cuadrante. Este proceso se repite hasta terminar la longitud total del parche (Figura 2).

Figura 2. Disposición de cuadrantes a lo largo de transepto.

Fuente: Instituto de Higiene Ambiental

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Para muestrear macrófitos que se sitúen a la orilla del sistema en forma lineal, se maneja el método de transepto lineal de muestreo, el cual consiste en colocar un cabo metrado de (x) metros a lo largo de los macrófitos (depende de la distancia que ocupe la disposición de las plantas), tomando a los centímetros como medida porcentual (ejemplo: un metro equivaldría al 100% y cada 1cm al 1%), es así como se va observando las diferentes especies que se encuentren cerca del cabo metrado y su porcentaje de cobertura (Figura 3).

Figura 3. Disposición transepto lineal metrado.

Fuente: Instituto de Higiene Ambiental

La metodología utilizada en ambos casos se basa en las propuestas del capítulo 10400 C del Standard Methods (2012) y en la de Ramírez (2006).

Una vez se obtengan los datos, se procede a extraer un ejemplar de cada especie observada, si el macrófito es flotante se colecta un pequeño monto o, si está anclado al sustrato o sumergido se desprende totalmente y se limpia cuidadosamente desde las raíces hasta las hojas. En cualquiera de los casos, una vez extraído el ejemplar se dispone sobre papel periódico o cartón, se rocía con solución Transeau o alcohol empleando un atomizador y se prensa con papel absorbente en el medio.

Posteriormente se introducen en una bolsa zip-lock, se rotula, se registra en la cadena de custodia y se almacena en nevera de icopor para su posterior traslado al laboratorio. Para efectos y buenos resultados de este estudio, los macrófitos acuáticos se muestrearon por medio del método de transecto lineal.

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Fase De Laboratorio

Esta fase hace referencia al análisis e identificación de las muestras recolectadas en campo exponiendo la clasificación taxonómica de cada una de las especies o morfoespecies que se observen durante el desarrollo de esta interpretación. A continuación se expone un diagrama general de las principales actividades y procesos que se realizan en esta etapa (Figura 4)

Figura 4. Actividades Fase de Laboratorio.

Para el análisis e identificación de especies de las comunidades hidrobiológicas, se tomó como referencia bibliográfica textos, artículos, atlas ilustrados y páginas en línea, registrados dentro de la base datos del laboratorio (Tabla 3).

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Tabla 3. Bibliografía empleada para análisis hidrobiológico.

En la siguiente tabla se exponen las metodologías que se emplearon en el laboratorio para llevar a cabo la identificación taxonómica de las especies y/o morfoespecies pertenecientes a cada una de las comunidades hidrobiológicas analizadas (Tabla 4).

COMUNIDAD AUTOR (ES)

Streble y Krauter (1987) Whitford y Schumacher (1969)

Schumacher (1969) Cox. Eileen J. (1996) Diaz y Maidana (2005) Parra et.al (1982)

ORGANISMOS Parra et.al (1982)

DEL Ramírez (2000)

FITOPLANCTON Mejia R. (2011)

PERIFITON Prygiel, J., Coste, M. (2000)

ZOOPLANCTON Guevara C, G. et al. (2003)

Suthers I, M. & Rissik D. (2009) Ramires F. (1981) Bao, R. et al. (1989) Vidal (2010) Alvarez et.al (2009)

Pinilla (2000) Gonzalez de I, A. (1988)

Internet Internet Internet Medio Ambiente, Andalucía (2010) http://www.humboldt.org.co/

Atlas de Microorganismos Planctónicos Presentes en los Humedales Andaluces Plankton - A Guide To Their Ecology And Monitoring For Water Quality

Atlas Digital del Fitoplancton

Integrated Taxonomy Information System (ITIS) www.itis.gov El plancton de las Aguas Continentales

www.algaebase.org

BIBLIOGRAFIA ESPECIALIZADA PARA IDENTIFICACION - HIDROBIOLOGIA TEXTOS - ARTICULOS - PAGINAS WEB

Atlas de Microorganismos de Agua Dulce A manual of the fresh-water algae in North Carolina Algae of the Susquehanna River Basin in New York Identification of Freshwater Diatoms from Live Material

Atlas Del Zooplancton Del Atlantlco Sudoccidental - Cladocera Comunidad de Invertebrados del Perifiton del Rio Combeima (Tolima, Colombia)

Diatomeas de los Salares Atacama y Punta Negra Manual Taxonomico del Fitoplancton de Aguas Continentales I Manual Taxonomico del Fitoplancton de Aguas Continentales II Fitoplancton de Agua Dulce Bases Ecologicas, Taxonomicas y Sanitarias

Manual del Fitoplancton hallado en la Cienaga Grande de Sta. Marta y Cuerpos Aledaños Guide Methodologique L´indice Biologique Diatomées

Diatomeas perifíticas y características limnológicas de un humedal urbano en la sabana de Bogotá

Las Diotomeas como Indicadores paleoecologicos en las costas de Galicia.

Indicadores Biologicos en Ecosistema Acuaticos Continentales de Colombia

COMUNIDAD AUTOR (ES)

Roldan (1988) Diaz y Puyana (1994)

Lecroy (1991) Lecroy (1995) Lecroy (1997) Epler (1996) Oscoz J., Galicia D., Miranda R. (2009)

ORGANISMOS Heckman, C.W. (2006)

DEL Heckman, C.W. (2008)

BENTOS Oceguera & Pacheco (2012)

G.G.E. Scudder & R.A. Cannings (2006) Concha D, L. et al. (2011)

Gaviria (1993) Moreno y Torres (2000)

Prat et.al (2011) Carrera y Fierro (2001) Brusca y Brusca (2005)

Internet Internet Internet Internet http://bugguide.net

http://www.humboldt.org.co/

Integrated Taxonomy Information System (ITIS) www.itis.gov Moluscos del Caribe Colombiano

An Ilustrated Identifation Guide to the Nearshore Marine & Estuarine Gammaridean 2 An Ilustrated Identifation Guide to the Nearshore Marine & Estuarine Gammaridean 3

Clave Dicotómica Para La Identificación De Macroinvertebrados De La Cuenca Del Ebro The Diptera Families of British Columbia

Macroinvertebrados de la Cuenca del Ebro: descripción de taxones y guía de identificación

Encyclopedia of South American Aquatic Insects: Odonata - Zygoptera Registros de sanguijuelas de Costa Rica y clave para la identificación de Cylicobdella costaricae

Encyclopedia of South American Aquatic Insects: Odonata - Anisoptera Guía para el Estudio de los Macroinvertebrados acuaticos (antioquia)

An Ilustrated Identifation Guide to the Nearshore Marine & Estuarine Gammaridean 4 Identification Manual for the Water Beetles of Florida

Guía para la Identificacion Generica de Larvas de Quironomidos (diptera) Guía para el Reconocimiento de Larvas de Chironomidae en los rios altoandinos de Ecuador y Peru

Los Macroinvertebrados Acuaticos como Indicadores de la Calidad del Agua Invertebrados

Claves Para Las Especies Colombianas De Familias Naididae y Tubificidae (Oligochaeta, Annellda)

http://sunsite.ualberta.ca/Projects/Aquatic_Invertebrates/index.php

BIBLIOGRAFIA ESPECIALIZADA PARA IDENTIFICACION - HIDROBIOLOGIA TEXTOS - ARTICULOS - PAGINAS WEB

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Tabla 4. Metodologías empleadas en Laboratorio

COMUNIDAD METODOLOGIA

Zooplancton Paggi y Paggi, 1995 En: Lopretto y Tell, 1995 Bentos 10500 C Standard Methods 2012

Zooplancton

Como se mencionó anteriormente, la metodología utilizada para el análisis e identificación del fitoplancton en el laboratorio se basa en la propuesta de Semina (1978), presentada en el Phytoplankton manual de la UNESCO y para el zooplancton Paggi y Paggi (1995) En Lopretto, E.C & G. Tell (eds), expuesta en Ecosistemas de aguas Continentales, Metodología para su estudio. II. (1995). Para la taxonomía de cada especie identificada, se utiliza la base más completa y actualizada en línea conocida como Integrated Taxonomic Information System (ITIS).

 Pasos generales

1. Homogenización de la muestra

2. Extracción de submuestras o alícuotas 3. Conteo e identificación de especies 4. Determinación del volumen de la muestra 5. Obtención y organización de resultados

Bentos

La metodología utilizada en el análisis del bentos en el laboratorio se centra en el planteamiento expuesto en el Standard Methods (10500C, 2012). Para la taxonomía de cada especie identificada, se utiliza la base más completa y actualizada en línea conocida como Integrated Taxonomic Information System (ITIS).

 Pasos generales 1. Lavado de la Muestra 2. Tinción de la Muestra 3. Separación de Individuos

4. Observación e Identificación de especies.

5. Obtención de resultados

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7. DISCUSION Y ANALISIS DE RESULTADOS

Los reportes de los resultados finales provenientes del análisis en el laboratorio (riqueza y abundancia), de todas las comunidades muestreadas y analizadas se encuentran disponibles en los anexos (al final del documento).

La presente caracterización se basa en determinar la composición y abundancia de las comunidades del Zooplancton, Bentos, Macrófitos Acuáticos e Ictiofauna de los puntos muestreados en este proyecto.

NOTA. Según los requerimientos del cliente para este muestreo, se debía muestrear Perifiton en los puntos establecidos para ello. Esta comunidad se descarto porque no se encontraron sustratos fijos para poder realizar los raspados de las algas perifíticas que se adhieren a ellos. También es importante mencionar que para muestreos marinos NO es representativo muestrear esta comunidad debido a que las microalgas se destacan dentro del fitoplancton al ser microorganismos que habitan principalmente a merced de la corriente del agua.

En la siguiente tabla (5) se exponen las comunidades que fueron muestreadas en cada uno de los puntos situados dentro del área de influencia del proyecto/estudio.

Tabla 5. Comunidades analizadas en la estación de muestreo. Cartagena-Bolivar.

Punto

COMUNIDADES HIDROBIOLÓGICAS

Fitoplancton Zooplancton Perifiton Bentos Macrófitos Ictiofauna

E3 X  X  X X

E5 X  X  X X

E7 X  X  X X

E10 X  X  X X

SE DESCARTA MUESTREO DE PERIFITON, NO SE CAPTURAN PECES Y NO HAY PRESENCIA DE MACROFITOS ACUATICOS.

En términos generales los cuerpos de agua con características lenticas son sistemas cerrados donde sus aguas se encuentran estancadas sin presencia de corriente alguna, lo que favorece a la proliferación de microalgas y a originar micro hábitats

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específicos para las comunidades de micro y macro invertebrados bentónicos además de la ictiofauna. Estos ecosistemas generalmente presentan aguas poco turbias, con concentraciones medias – bajas de oxígeno y pH con tendencia a la acidez o alcalinidad, dependiendo de cómo se estén generando las demás condiciones.

Los sistemas con características loticas hacen referencia a sistemas abiertos donde sus aguas se encuentran en un movimiento continuo (corriente), viajando de un sitio a otro en una sola dirección (Roldan, 2003). Generalmente estos cuerpos de agua poseen sedimentos y diferentes tipos de materiales en suspensión lo que los hace presentar un alto nivel de turbidez en sus aguas. Comúnmente, estos ambientes no presentan condiciones que favorezcan a una tendencia hacia la eutrofia debido a que existe una re oxigenación del agua constante por no encontrarse estancada, sin embargo estas condiciones pueden variar si se interviene artificialmente y/o naturalmente el sistema como tal.

La eutrofización es un proceso que se puede originar de manera completamente natural pero también por causas antrópicas, acá se llevan a cabo actividades que favorecen al enriquecimiento de las aguas con una alta concentración de nutrientes los cuales presentan un crecimiento a manera exponencial, factor que no puede ser compensado por un proceso de mineralización, es decir que prácticamente, los nutrientes exceden a los minerales (Navarro, 2002).

La mayoría de las microalgas se establecen como productores primarios debido a que responden fácilmente a casi todas las variaciones que se originan en la concentraciones de los nutrientes, como el fosforo y nitrógeno principalmente.

Cuando esto sucede y la concentración de estos son elevadas o se van incrementando poco a poco, ocurre una disminución en la diversidad y un aumento en la biomasa originando un proceso de eutrofización en un determinado cuerpo de agua (Cambra, et al., 2005).

La composición y abundancia de las comunidades fitoplanctónica y perifítica en cuerpos de agua dependen principalmente de factores o condiciones físicas e hidrológicas (luz, turbulencia, temperatura, estabilidad del agua), condiciones

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químicas (nutrientes, materia orgánica, mineralización, pH) y condiciones biológicas (depredación, relaciones entre especies, parasitismo fúngico). En cuanto a indicador trófico, tanto el fitoplancton como el perifiton son adecuados y muy importantes como bioindicadores para determinar contaminaciones térmicas, cambios en la mineralización del agua, procesos de eutrofización y contaminaciones de origen orgánico (Vicente, et al., 2005).

Dentro de los índices biológicos, los que más se utilizan dentro del análisis de macroinvertebrados bentónicos son los insectos, debido a que son susceptibles a modificaciones o perturbaciones en los diferentes hábitats acuáticos, tienen una muy amplia variedad en cuanto a repuestas al estrés ambiental, generalmente son sedentarios y permiten llevar a cabo una evaluación especial de dichas perturbaciones. Sin embargo es necesario tener en cuenta que en el momento de utilizar un índice, debe hacerse a nivel local y si se usa índices de otras regiones se debe procurar que cumplan con las mimas condiciones del sitio de referencia (Rosenberg y Resh, 1993 En: Enríquez et al., 2006).

La diversidad y abundancia se determinan de acuerdo a la velocidad de la corriente, es decir, cuando hay corrientes moderadamente bajas o nulas las densidades algales se promueven y la diversidad de la comunidad se mantiene, todo lo contrario ocurre cuando las condiciones son contrarias a estas (Zapata y Donato, 2005).

Comunidad Zooplanctónica

En la comunidad zooplanctónica se se identificaron tres (3) familias conocidas como Arcellidae, Calanidae y Cyclopidae, también se ientificaron seis (6) morfoespecies en total (Morfo 1. Familia Calanidae, Morfo 2. Familia Cyclopidae, Morfo 3. Orden Harpacticoida, Morfo 4. Clase Maxillopoda - Larva Nauplio, Morfo 5. Clase Maxillopoda - Larva Mysis, Morfo 6. Clase Maxillopoda - Larva Zoea) y una (1) especie conocida como Arcella gibossa, de estos, los mas abundantes fueron los copépodos (Tabla 6).

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Tabla 6. Clasificación taxonómica del Zooplancton – Cartagena-Bolivar.

ZOOPLANCTON E3

PHYLUM CLASE ORDEN FAMILIA MORFOESPECIE

Protozoa Lobosa Arcellinida Arcellidae Arcella gibossa

Arthropoda Maxillopoda Calanoida Calanidae Morfo 1

Arthropoda Maxillopoda Cyclopoida Cyclopidae Morfo 2

Arthropoda Maxillopoda --- --- Morfo 4

ZOOPLANCTON E5

Protozoa Lobosa Arcellinida Arcellidae Arcella gibossa

Arthropoda Maxillopoda Harpacticoida --- Morfo 3

ZOOPLANCTON E7

Arthropoda Maxillopoda Harpacticoida --- Morfo 3

ZOOPLANCTON E10

En la comunidad zooplanctonica se observó que los representantes mas abundantes en todos los puntos fueron los maxilopodos reportando resultados de 53 Ind/ml en el punto E3, de 53 Ind/ml en el E5, de 61 Ind/ml en el E7 y de 65 Ind/ml en E10. La clase Lobosa estuvo presente solo en los puntos E3 con 15 Ind/ml y en E5 con 12 Ind/ml (Figura 5).

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Figura 5. Abundancia del zooplancton – Cartagena-Bolivar.

En los resultados de riqueza de especies se evidencio que los maxilopodos en el punto E3 estuvieron representados por 4 especies diferentes, en el E5 por 5 especies, en el E7 por 6 y en el E10 por 4. La clase lobosa solo estuvo representada por una sola especie en los puntos donde se presentó (Figura 6).

Figura 6. Riqueza del zooplancton – Cartagena-Bolivar.

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Tabla 7. Principales características del zooplancton. Cartagena-Bolivar.

Clase/Phylum Características Fotografía

Lobosa (Protozoa y Ciliophora)

La Clase Lobosa se caracteriza por la presencia de microorganismos que pertenecen a aguas tropicales, generalmente estancadas y con presencia de fango o material lodoso en su sustrato. Son especies que se establecen en lugares donde se está llevando a cabo procesos de nitrificación y donde existe un aporte masivo de nutrientes, limitando el crecimiento de biomasa de muchas otras especies

(Beyens et al., 1995). Arcella discoides

Maxillopoda (Arthropoda)

En general, los organismos de este phylum están representados por crustáceos microscópicos como copépodos y pulgas de agua. La mayoría de especies viven en aguas poco profundas, cerca de la orilla, en la zona cubierta por vegetación. Juegan un papel importante en la cadena trófica, se alimentan básicamente del fitoplancton y desempeñan un papel importante en la alimentación de los peces.

Familia Cyclopidae Fuente: Instituto de Higiene Ambiental. 2016.

Bioindicacion

En cuanto a bioindicación de morfoespecies, la presencia de Arcella sp. perteneciente indica aguas en donde se están llevando a cabo procesos de nitrificación, es decir, que existe una oxidación biológica de amonio con oxígeno en nitrito que llevará en una eutrofización segura dentro del sistema (Pinilla, 2000). Los copépodos (Cyclopoida), marcan una tendencia general a la eutrofia con lecturas de pH alcalino, estos son tolerantes a la hipoxia (Pinilla, 2000).

Los copépodos son especies herbívoras, carnívoras, detritívoras, se alimentan de pequeños invertebrados, fitoplancton y otros microorganismos. Se les considera los metazoarios más abundantes del planeta, incluso por encima de los insectos y de los

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nemátodos. Generalmente, son cuatro los ordenes principales de copépodos de vida libre (Calanoida, Cyclopoida, Harpacticoida y el recientemente descrito Gelyelloida, propio de aguas intersticiales profundas).

Los copépodos no solo son importantes ecológicamente por ser el principal alimento de numerosas especies de peces de importancia económica; además de que varias especies de copépodos detritívoros (consumidores de materia orgánica en descomposición) han sido identificados como consumidores del petróleo, siendo considerados en lagunas regiones como un factor importante en la limpieza de la contaminación por este producto durante los derrames (Björnberg, 1981) presentándose como ejemplo de estas situaciones la especie Temora longicornis , que ha sido caracterizada como una especie que tiene la capacidad de metabolizar (sintetizar) los hidrocarburos liberando los restos al fondo del mar en partículas diminutas (Palomares et al., 1998).

Los copépodos al ser organismos planctónicos y ser transportados por los movimientos de las masas de agua y de las corrientes sirven como indicadores de la presencia de masas de agua o corrientes (indican los cambios de temperatura de ambas) (Björnberg, 1963, 1981). En algunas especies del Orden Calanoida, se ha observado que son indicadoras de masas de agua, surgencias (enriquecimiento del agua por nutrientes) o bien de zonas de eutroficación (Björnberg, 1981).

Por otro lado se ha comprobado que algunas especies de copépodos pueden transmitir toxinas del medio ambiente a las cadenas alimentarias o niveles tróficos superiores. White (1967), indica que el comportamiento de algunos copépodos pelágicos durante los fenómenos de “marea roja” (aflromientos algales, principalmente causadas por dinoflagelados), se han encontrado algunas especies del género Acartia que son capaces de acumular y retener en sus tejidos las toxinas de los dinoflagelados que provocan la marea roja y al ser ingeridos por los peces, causarles la muerte por intoxicación. Otro aspecto de recién consideración es el hecho de que se ha asociado la abundancia de ciertos copépodos planctónicos con los brotes del cólera en zonas tropicales de alta productividad, encontrándose que el agente responsable de esta enfermedad (vibrio del cólera), se aglutina en ciertas partes de los copépodos tales como: bases de las antenas y patas natatorias,

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funcionando como vectores de la enfermedad al ser consumidos por los peces, afectando al ser humano (Palomares et al., 1998).

Comunidad Bentónica

Dentro de esta comunidad se registró un total de cuatro (4) grupos principales conocidos como Bivalvia, Gastropoda, Malacostraca y Scaphopoda, 10 familias (Rissoidae, Dentaliidae, Littorinidae, Neritidae, Olividae, Patellidae, Penaeidae, Pyramidellidae, Tellinidae y Ungulinidae) y 10 morfoespecies distribuidas entre estas (Diplodonta sp., Littorina sp., Morfo 1. Familia Dentaliidae, Morfo 2. Familia Olividae, Nerita fulgurans, Patella sp., Penaeus sp., Rissoina sp., Tellina sp. y Turbonilla sp.), siendo los gastropodos los mas abundantes en todos los puntos. A continuación se expone la taxonomía general identificada en cada uno de los puntos muestreados (Tabla 8).

Tabla 8. Clasificación taxonómica del Bentos – Cartagena-Bolivar.

BENTOS E3

Mollusca Bivalvia Veneroida Ungulinidae Diplodonta sp.

Mollusca Gastropoda Neotaenioglossa Littorinidae Littorina sp.

Mollusca Gastropoda Neritopsina Neritidae Nerita fulgurans

Arthropoda Malacostraca Decapoda Penaeidae Penaeus sp.

Mollusca Gastropoda Neotaenioglossa Rissoidae Rissoina sp.

Mollusca Bivalvia Veneroida Tellinidae Tellina sp.

BENTOS E5

Mollusca Gastropoda Neogastropoda Olividae Morfo 2

BENTOS E7

Mollusca Scaphopoda Dentaliida Dentaliidae Morfo 1

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Mollusca Gastropoda Archaeogastropoda Patellidae Patella sp.

BENTOS E10

Mollusca Gastropoda Heterostropha Pyramidellidae Turbonilla sp.

En abundancia de individuos los bivalvos obtuvieron los siguientes resultados: en E3 reportaron 27 Ind/m², en E5 registraron 29 Ind/m², en E7 un total de 16 Ind/m² y en E10, 20 Ind/m². Los gastropodos fueron los mas abundantes exponiendo valores desde 74 Ind/m² en el E10 hasta 37 Ind/m² en el E7. Los organismos pertenecientes a Malacostraca evidenciaron 6 Ind/m², 9 Ind/m², 17 Ind/m² y 11 Ind/m² en cada uno de los puntos respectivamente (E3, E5, E7 y E10). Finalmente los escafopodos solo estuvieron presentes en el punto E7 con un total de 5 Ind/m² (Figura 7)

Figura 7. Abundancia del Bentos – Cartagena-Bolivar.

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En riqueza de especies los bivalvos estuvieron representados por dos (2) especies diferentes en cada uno de los puntos donde se identificaron. Los gastropodos por cinco (5) en E7 y E10, por cuatro (4) en E5 y por tres (3) en E3. Los organismos pertenecientes a Malacostraca y Scaphopoda solamente por una (1) especie en cada uno de los puntos (Figura 8).

Figura 8. Riqueza del Bentos – Cartagena-Bolivar.

Tabla 9. Principales características del Bentos – Cartagena-Bolivar.

Clase Características Fotografía

Bivalvia

Entre los bivalvos están las almejas y mejillones.

Se caracterizan por tener el cuerpo aplando lateralmente y tener dos conchas unidas en el dorso y que cubren por completo el cuerpo del animal. El pie también está aplanado y tiene forma de hacha que emplean para excavar generalmente en fondos arenosos o fangosos donde viven enterradas la mayor parte de las especies. La cabeza está poco desarrollada, al contrario de la cavidad paleal, que es la más grande y espaciosa de todos los molúscos; en

ella están las branquias. Diplodonta sp.

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Malacostraca

Grupo de los cangrejos, cigalas, cochinillas de la humedad, galeras, gambas y langostas entre otros. El cuerpo de los malacostráceos está formado por 19 segmentos (excepto en las 36 especies de leptostráceos, que tienen 20), distribuidos en tres regiones o tagmas. El céfalon o cabeza con 5 segmentos, posee dos anténulas y dos antenas, así como el aparato bucal.

Generalmente poseen un par de ojos compuestos, muchas veces pedunculados. El tórax con 8 segmentos en los cuales los segmentos primero, segundo y tercero pueden fusionarse con la cabeza y sus apéndices respectivos estar modificados en maxilípedos, los segmentos restantes forman el pereion y poseen cada uno un par de patas marchadoras (pereiópodos). En muchos malacostráceos, el pereion está cubierto en su totalidad o en parte por un caparazón. El pleon o abdomen tiene 6 (7 en leptostráceos) segmentos y sus apéndices se denominan pleópodos. Poseen un ciclo de vida con la fase larvaria muy reducida o incluso inexistente, pero en las especies en las que existe esta suele ser planctónica y sufre una metamorfosis para trasformarse en adulto.

Penaeus sp.

Scaphopoda

Moluscos que sólo incluyen unas 350 especies.

Concha en forma de tubo abierto por delante y por detrás. Alcanzan entre 2.5 y 12 cm de largo.

La superficie de la concha suele ser blanca y lisa, o estar dotada de costillas longitudinales, y su sección transversal es generalmente circular. El lado interior de la concha está revestido por el manto, que deja libre del lado ventral, una cavidad paleal tubular que puede estrecharse en ambos extremos por la presencia de músculos anulares que actúan como diafragmas. Unas crestas ciliadas producen en ese tubo una corriente continua de agua, que entra por el extremo anterior y sale y sale de la cavidad paleal por posterior. Su pie catiloforme le sirve para excavar en las capas arenosas del fondo del mar, que constituyen su hábitat. Sobre el pie aparece una especie de cabeza reducida a un tubo bucal, en cuya base se sitúan los captáculos, unos delgados tentáculos viscosos, mazudos en sus extremos, que le sirven para capturar sus pequeñas presas.

Familia Dentaliidae

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Gastropoda

La presencia de Gasterópodos, está indicando o establece que, efectivamente, existe una acumulación en la concentración de materia orgánica que se acumula o entra al sistema, teniendo en cuenta que son microorganismos que acostumbran a vivir en ambientes tranquilos y poco profundos (Pinilla, 2000).

Rissoina sp.

Bioindicacion

Los decápodos en términos generales, en este caso con su único representante (Penaeus sp.), son fieles indicadores de aguas limpias o medianamente contaminadas por concentraciones relativamente elevadas de materia orgánica originada por procesos netamente naturales dentro de un sistema en específico (Pinilla, 2000). El grupo de los gastrópodos, habitan principalmente aguas limpias a medianamente contaminadas, pero siempre ricas en carbonato de calcio y materia orgánica. También son frecuentes en aguas tranquilas y poco profundas (Pinilla, 2000). Los bivalvos son indicadores de aguas limpias con un grado relativamente estable de materia organica y de igual forma que los gastropodos, son propios de aguas con muy buenas concentraciones de carbonato de calcio. Los escafópodos son marinos y bentónicos en su totalidad, viven en aguas poco profundas hasta profundidades de 4.500 metros, se hallan enterrados parcialmente, en la arena o el barro, se conoce su preferencia por sedimentos como arena gruesa, escombros finos de coral o barro arcilloso. Son porganismos propios de aguas donde existen altas concentraciones de Carbonato de Calcio y pH con tendencia a la acidez.

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Comunidad de Macrófitas

En estos puntos de muestreo se realizó una exhaustiva búsqueda de macrófitas durante el lapso de una hora, pero NO se logro obtener ni resultados físicos ni visuales, debido a que en el caso de las macro plantas, la geomorfología del sistema pero principalmente el tipo de sustrato y la fuerza de la corriente, definitivamente influyen en el anclaje y/o establecimiento de éstas en el sitio (Cirujano, 2005).

También es indispensable tener en cuenta que es una zona donde predominan arbustos y pastizales estableciéndose como especies predominantes e invasivas, lo que no permite el asentamiento de otras.

El establecimiento y desarrollo de las macrófitos acuáticas tienen una relación directamente proporcional a muchos factores que en ciertas ocasiones impiden o favorecen su crecimiento y perduración en el tiempo. Entre estos, se puede hacer mención a la geomorfología del sistema pero principalmente el tipo de sustrato y la fuerza de la corriente (cuerpos de agua loticos), que definitivamente influyen en el anclaje de éstas en un sitio determinado (Cirujano, 2005).

Esta comunidad también depende de algunos parámetros de posición como la presencia de oleaje, corriente, algunos depredadores y concentración de nutrientes la cual debe estar, preferiblemente, en una alto nivel (Kiersch et al., 2003), para que las macrófitos logren un condición adecuada para poder mantenerse. Sin embargo, se debe tener en cuenta, que esta disposición de nutrientes afectan directamente a la calidad del agua y la productividad primaria originando efectos importantes sobre estas, debido a que una elevada cantidad genera una sobresaturación lo que conllevaría finalmente a un proceso de eutrofización y un bajo nivel (oligotrofia), conllevaría a una escases que evita el desarrollo adecuado de las comunidades hidrobiológicas en general. Además de una disminución o aumento en las concentraciones de CO2, pH y oxígeno disuelto, como también de los sedimentos aeróbicos y anaeróbicos, respecto al contenido de materia orgánica (Kiersch et al., 2003).

También existen factores externos que de una u otra forma afectan el establecimiento de las especies de plantas, como las condiciones ambientales que se estén llevando

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a cabo en la zona (época seca y/o época de lluvias), la presencia o acción directa del viento el cual puede contribuir a la dispersión de semillas, a su asentamiento sobre las "islas flotantes" o a su transporte aguas abajo (Aldereguia y Nuñez, 1993) y finalmente la diferentes clases de intervención que pueden ser originadas por el hombre al desarrollar sus actividades cotidianas.

Comunidad Íctica

NO se logro obtener resultados en la comunidad íctica en los puntos muestreados aunque se realizó el esfuerzo de muestreo durante una (1) hora, por lo tanto no fue posible conseguir capturas de ejemplares de las supuestas especies que podrían estar habitando allí.

Dentro de las razones que podrían explicar más detalladamente por qué no se obtuvieron capturas de peces podrían mencionarse las siguientes; posiblemente a condiciones propias del sistema, como características geológicas (contenido de minerales y nutrientes en los suelos, sólidos, erosión), tasa de renovación del agua (velocidad, caudal) y características morfométricas (forma, relación área superficial:

profundidad) (Ramírez y Viña, 1998). Además de condiciones biológicas (comportamientos y reproducción de especies), la época del año (lluvia y sequia), y factores de origen antropogénico que de una o de otra forma modifican o varían las condiciones naturales de un ecosistema. En este caso en particular el alto nivel de sedimentación, la velocidad de la corriente y la época climática fueron factores fundamentales para no lograr resultados de capturas de peces.

Los peces constituyen uno de los grupos más diversificados y abundantes de los vertebrados. Son organismos acuáticos que poseen estructuras más complejas y una serie de adaptaciones que les permiten vivir en todas partes del mundo. Representan un recurso muy importante dentro de los cuerpos de agua, tanto por sus interrelaciones ecológicas, como por poseer importancia comercial.

Dentro de los cuerpos de agua, esta comunidad representa un nivel superior dentro de la cadena trófica. En Suramérica se estima que existen más de 3000 especies, aunque el número definitivo parece ser mayor (Uribe, 1996). Colombia por su parte, resulta ser uno de los países más diversos del neotrópico en cuanto a la Ictiofauna de agua dulce se refiere.

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8. CONCLUSIONES

En términos generales, según la bioindiccion de especies principales identificadas dentro de cada una de las comunidades, el sistema muestreado en sus cuatro puntos, sugiere que el sistema contiene niveles destacados de material organico y por ende de nutrientes. Sin embargo es importante mencionar que estas concentraciones se deben seguramente a procesos naturales que ocurren dentro del cuerpo de agua, procesos como remineralizacion de nutrientes que permiten que por medio de la oxigenación y oxidación del agua se formen esta clase de condiciones que de una u otra forma fomentan el crecimiento y desarrollo de ciertos microorganismos.

Dentro del bentos se registraron cuatro grupos principales (Malacostraca, Gastropoda, Bivalvia y Scaphopoda), de los cuales los gastropodos presentaron los valores mas significativos en cuanto a abundancia de individuos y riqueza de especies. En términos generales la presencia del bentos según los grupos encontrados indica que las aguas contienen un destacado nivel de materia organica de origen natural que probablemente fomentaría una fase hacia una eutrofización del sistema y altos niveles de carbonato de calcio. Los organismos zooplanctonicos, tomando en cuenta los resultados obtenidos, sugieren procesos de mesotrofía a eutrofia en los puntos muestreados.

En términos biológicos, en el momento del muestreo, se encuentran procesos biológicos, fisiológicos y ecológicos de esa simbiosis existente entre los organismos que allí habitan y las condiciones propias del agua del sistema, completamente naturales y normales, pues no se detectaron niveles destacados de elementos o sustacias que corroboren alguna clase de alteración en ciclo de vida normal de las especies identificadas.