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Enfermedades de las abejas adultas

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(1)

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE ZACATECAS

UNIDAD ACADÉMICA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

Enfermedades de las abejas adultas

(2)

Producción de miel Condiciones ambientales Laboriosidad de las abejas Población de la colonia Genética Buena ubicación

Distancia entre apiarios

Número de colonias por apiario Reforestar

Lluvia, viento, heladas

Enfermedades Reina Manejo Alimentación Varroosis Enf. de la cría

(3)

• Las abejas melíferas se ven afectadas por más de 20

enfermedades y plagas.

• Solo Varroasis, loque americana, nosemiasis, cría

calcárea, loque europea, polilla, entre otras son de

importancia económica.

• Se estima que en los EU, las pérdidas económicas a

causa de enfermedades es de 3 dólares por colonia.

• Por lo que en México las pérdidas podrían ser de 5.4

millones de dólares

(1.8 millones de colmenas X 3 dólares).

(4)

La varroosis

Es el principal problema sanitario para la apicultura en el mundo.

Causada por Varroa destructor (antes V. jacobsoni Oud;

Anderson y Trueman, 2000), es original Apis cerana, quién vive en

equilibrio con el ácaro debido los mecanismos de defensa desarrollados como el CH y de acicalamiento (Boecking y Ritter, 1994; Harbo y Hoopingarner, 1997; Boecking y Spivak, 1999).

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V. destructor al ser transferido a A. mellifera se encontró con un

huésped ideal para su multiplicación, tanto en la cría de zánganos como de obreras, lo que ocasiona un incremento en su población de hasta 100 veces en un año (Harbo y Hoopingarner, 1997).

En A. mellifera los mecanismos de defensa se expresan en menor grado, por lo que los daños son más severos y generalmente ocasionan la muerte de las colonias infestadas dentro de 2-4 años de iniciada la infestación (Boecking y Ritter, 1994).

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Distribución de ácaro

Primer contacto de Varroa con A. mellifera: Japón, China y este de Rusia 1953-1960 1971 Importación de reinas infestadas a Paraguay de Japón Se reportó en los EU. 1987 Se reportó en Canadá. 1990 1992 Reino Unido y Veracruz, México de reinas o enjambres de los EU Solo en Australia no existe reporte de Varroa 2014

(7)

Distribución de ácaro

En México, la dispersión fue rápida, en 1993, se reportó en Tamaulipas, Puebla, Oaxaca, Tlaxcala, México, Hidalgo y Baja California norte, cubriendo casi la totalidad del país.

Lo anterior debido a la apicultura migratoria, durante el aprovechamiento de los recursos florísticos y los servicios de polinización de los cultivos agrícolas.

En los estados fronterizos la presencia de V. destructor fue debido a la migración de enjambres silvestres provenientes de los estados de Texas y California (Cajero, 1993; Vázquez, 1997).

(8)

Ciclo Biológico de

Varroa destructor

El ciclo biológico de V. destructor involucra dos aspectos importantes que acontecen dentro de la colonia las cuales son:

1) Fase forética

(9)

Fase forética

En esta fase las hembras adultas del ácaro se encuentran sobre las abejas adultas, alimentándose de hemolinfa.

Su duración depende de:

Disponibilidad de abejas nodrizas.

Cantidad de cría próxima a opercularse.

Cantidad de ácaros jóvenes que aún no se han reproducido y que permanecen mayor tiempo sobre las abejas en comparación con los ácaros adultos que han producido progenie (4 a 11 días; Fries 1993b; Fries et al., 1994).

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Fase forética

Los ácaros se ubican en diferentes partes el cuerpo de la abeja.

En verano, el 51% están sobre la región dorsal del abdomen y tórax, el 35% se encuentran en la zona entre el tórax y abdomen, y el 14% sobre la región ventral del abdomen.

Invierno en las regiones frías, el ácaro se encuentra exclusivamente sobre el abdomen de la abeja y más del 98% de su tiempo se encuentra en la región ventral (Fernández et al., 1993).

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Fase forética

En las regiones tropicales con altas temperaturas ambientales, menos del 3.5% de los ácaros se localizan sobre el tórax, ya que es un órgano generador de calor en las abejas obreras.

En climas fríos el número de ácaros sobre el tórax es siete veces mayor que en el trópico (Fernández et al., 1993).

(12)

Fase reproductiva

60 horas después de la operculación de la celda, la Varroa pone un huevo que da origen a un macho, y posteriormente con intervalos de 25-30 horas, la hembra pone huevos que se desarrollarán en hembras (Fries, 1993; Martin, 1997). El tiempo que tarda un individuo de sexo femenino del ácaro en

alcanzar la etapa adulta es de 5.9 días mientras que el macho tarda 6.5 días (Martin, 1997, 1998).

El proceso de fecundación y reproducción se lleva a cabo en el interior de la celda de cría operculada y una Varroa puede llegar a producir en promedio 1.8 hembras viables en la cría de obreras y 2.7 hembras viables en cría de zánganos (Martin, 1998), y las hembras pueden tener 1.5 a 2 ciclos

(13)

Fase reproductiva.

60 h después de entrar a la celda, la varroa pone un huevo que será macho, después en cada 30 h, durante 3 ocasiones pone un huevo que dará origen a una hembra.

El desarrollo sexual del macho se alcanza a 7-8 días mientras que las hembras de 6-7 días.

Fase larval Cría desoperculada

Fase de pupa

Cría operculada

Fase de pupa

Los ácaros emergen con la abeja o mueren

Emergencia de la abeja Ovoposición Fase de huevo

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Daños causados por

Varroa

.

El impacto depende del grado de infestación de las colonias y del haplotipo (combinación de alelos en una determinada región del cromosoma; Cobey, 2001) en

Brasil: Japonés/Tailandés y México: Coreano.

 Reduce el peso de las abejas al emerger (6 a 10%).

 Reduce el periodo de vida de las abejas (19 hasta 5 días).  Disminución de la población.

 Daños físicos (deformación de alas, patas, tórax y abdomen).  Transmite y/o predispone la presencia de enfermedades.

 Disminuyen la producción de miel.

 Altos niveles de infestación en la cría y en las abejas adultas

ocasionan que las colonias alcancen el colapso y muerte después de 2 a 4 años de haber iniciada la infestación.

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(18)

Diagnostico y determinación del nivel de infestación

(De Jong, 1982)

% de infestación = # de ácaros encontrados X 100 # de abejas analizadas

(19)

Métodos de control: químicos

• Fluvalinato (Apistan®)

dos tiras de pvc por colmena y se retiran en 6 a 8 semanas.

• Flumetrina (Bayvarol®), tiras de se colocan cuatro tiras por

colmena y se retiran en 6 a 8 semanas.

• Amitraz (Colmesan®) COLMESAN –

(20)

Ventajas:

1. Aplicación menos laboriosa

2. Presentan una mayor eficacia.

Desventajas:

1. Presentan problemas de residuos en los productos de la colonia.

2. Generan resistencia durante la utilización prolongada del producto

3. Costo elevado (Fries, 1997).

• La resistencia a acaricidas químicos se debe a la amplia utilización

del producto y a la administración inadecuada (bajas o altas

concentraciones; Hillesherm et al., 1996; Milani, 1999).

(21)

Remoción de la cría de zánganos.

• Este método de control se basa en que el ácaro tiene mayor preferencia hacia la cría de zángano (Ritter, 1993; Barbattini y Greatti, 1996; Dung et al., 1997).

• Consiste en insertar un panal zánganero durante el periodo de mayor producción de cría.

• Después de haber sido operculado el panal es removido para su

desoperculación y eliminación de los ácaros y es reintroducido a la colonia para volver a producir cría de zángano y eliminar nuevamente a otros

ácaros (Dung et al., 1997; Delaplane, 1997).

Desventajas:

1. Solo es eficiente en colonias con bajos niveles de infestación

2. La repetida remoción de grandes cantidades de crías de zánganos,

representa para la colonia un gasto energético que puede manifestarse en una reducción en la población de obreras.

(22)

La remoción de cría de zánganos no reemplaza los

tratamientos químicos, pero reduce el número de tratamientos

y el riesgo de contaminación de los productos de la colmena y la adquisición de resistencia de los ácaros (Delaplane, 1997).

El cambio anual de reinas reduce el crecimiento del ácaro debido a que una reina en su primer año pone un número limitado de huevos de zánganos (Barbattini y Greatti, 1996).

(23)

Sustancias Orgánicas

Las sustancias orgánicas como el ácido fórmico y oxálico a

diferencia de las químicas generalmente no presentan

mejor eficacia y sus resultados son variables.

La evaporación de las sustancias orgánicas dependen

principalmente de dos factores:

1.- Temperatura ambiente.

(24)

• El ácido fórmico es un producto natural que se encuentra en la miel, en las frutas, en la picadura de hormigas.

• Es el único tratamiento autorizado contra Varroa en la producción de miel orgánica.

• Api-Plus. Bolsas (80 ml de ácido fórmico) con dispositivo para su evaporación, se aplican cuatro, cada cuatro días cada una.

• Artesanalmente se han ensayado diferentes métodos de administración de ácido fórmico obteniendo resultados variables. Entre ellos está la aplicación directa mediante esponjas impregnadas, se han diseñado evaporadores de diferentes características.

(25)

Ácido fórmico

• Es un producto inestable, eficacia: 50 y 90%

• Es cáustico, puede matar abejas y provocar que la reina deje de poner por un tiempo o que sea desconocida y eliminada.

• Requiere de altas temperaturas para evaporarse y elevar su eficacia.

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Se prepara una dilución al 5% en jarabe de azúcar (1:1). Por ejemplo, se diluyen 50 g de ácido oxálico en 1 L. Se derrama la solución sobre las abejas y/o se administra en alimentador.

Revuelto en azúcar y aplicarlo sobre cabezales de bastidores. Eficacia 50 a 85% (variable).

Efectivo en periodos donde no hay cría por lo que funciona en otoño en países de clima templado.

No está autorizado por la SAGARPA

Requiere de más investigación sobre sus efectos secundarios y métodos de tratamiento.

(27)

Aceites esenciales

Más de 150 aceites esenciales han mostrado cierta

eficacia contra Varroa entre estos están; aceites de

menta, orégano, mejorana, clavo, etc.

Sin embargo poco se sabe de las concentraciones

que mejor funcionan, sobre los métodos de

aplicación y sobre sus efectos colaterales en las

abejas.

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Timol:

Eficacia del 50 al 95%,

Happy-Varr: 20 a 25 ml en cartón sobre la cámara de

cría, son 3 aplicaciones cada 8 días.

En el Edo. de México se probó el Apiguard

®

alcanzando un control del 92%, sin embargo redujo

la cría y la producción de miel, algunas colonias

(29)

Biocontrol

Enemigos naturales del ácaro como varias especies

de hongos;

A nivel de laboratorio los siguientes géneros han

probado eficacia contra Varroa: Hirsutella,

Metarhizium, Beauveria y Verticillium.

Sin embargo, faltan muchos estudios de campo para

determinar como se distribuyen en la colonia, como

pueden mantenerse en ellas sin perecer, su grado de

eficacia y sus efectos colaterales.

(30)

Desarrollo de abejas tolerantes

La solución a largo plazo es el desarrollo de abejas tolerantes, sin embargo esto no es fácil.

Existen varios mecanismos de tolerancia que no en todas las poblaciones de abejas son efectivos.

Los factores ambientales pueden confundir la expresión de la tolerancia (templado y tropical; las mismas colonias).

La virulencia del ácaro (genotipos).

Existen varios criadores e investigadores que afirman tener abejas tolerantes a Varroa, sin embargo esto no ha sido demostrado eficientemente.

(31)

Conclusiones

El desarrollo de abejas tolerantes será la solución a

largo plazo.

La apicultura necesita medidas efectivas contra

Varroa que sean seguras y sanas para las abejas,

consumidores y apicultores.

Se requiere de mucha investigación sobre el

desarrollo de abejas tolerantes a Varroa y sobre

tratamientos efectivos, sanos y baratos.

(32)

Nosemiosis.

Enfermedad

de

las

abejas

adultas

de

mayor

diseminación en el mundo.

Sus

signos

clínicos

son

confundibles

con:

envenenamiento con pesticidas, parálisis, inanición y

diarrea.

Por lo general está latente todo el año y aparece

después de largos periodos de encierro de las abejas o

cuando hay un mayor hacinamiento por causa de lluvias,

fríos o vientos

(Ritter, 2001).

(33)

Triada epidemiológica

Agente causal:

Nosema apis.

Produce esporas.

Las esporas germinan en el intestino, en condiciones

óptimas en un plazo de dos o tres días se forman

nuevas esporas y por medio de las heces son

eliminadas (Ritter, 1993; 2001).

(34)

Hospedero:

las abejas de aproximadamente del 15 días de edad

son las más susceptibles

(Lampeitl,1991).

Ambiente:

Los apiarios en lugares húmedos, fríos o con mucha

sombra.

La transmisión se favorece cuando se emplea

equipo contaminado.

Pillaje.

Introducción de reinas.

(35)

Cadena epidemiológica

Las obreras ingieren las esporas cuando realizan sus

actividades de limpieza en los panales.

Las reinas se infectan a través de la jalea real proporcionada

por las abejas nodrizas enfermas.

Los zánganos se contagian cuando reciben alimento de las

obreras

(Calderón y Ortis, 2000).

Las esporas son ingeridas por las abejas y pasan

rápidamente a su intestino

(Sepúlveda, 1980).

Ahí el parásito se

desarrolla y se multiplica en el citoplasma de las células.

(36)

Cadena epidemiológica

Se forman nuevamente muchas esporas que pasan hasta el

recto donde se acumulan para ser liberada con las heces

(Fries, 1993).

Si la infección no es detenida, las funciones digestivas cesan

al cabo de dos o tres semanas y la abejas se debilita y muere

(Sepúlveda, 1980).

Las obreras nodrizas infectadas producen poca jalea real o

dejan de producirla, la reina reduce la postura y la población

de la colonia se reduce, lo que puede acarrear la pérdida de

la colonia

(Calderón y Ortis, 2000).

(37)

Identificación en el campo:

En la mayoría de los casos no se manifiesta clínicamente.

Abejas que no pueden volar, con el abdomen hinchado, abejas muertas o moribundas frente a la colmena y algunas veces se ven trepando en las hojas del pasto.

Se observan heces dentro de la colonia

(Sepúlveda, 1980).

Las reinas enfermas son reemplazadas por las abejas (Calderón y Ortis, 2000).

(38)

Identificación en laboratorio

Macerado del abdomen de 20 o 30 abejas, agregando dos o tres ml de agua (Zander/Bottcher, 1984), se coloca una gota del

producto obtenido sobre un porta objetos y se coloca encima de un cubreobjetos.

Al observarse al microscopio a 400 aumentos se advierte claramente los esporos de nosema como formaciones ovoides, aunque algo alargadas, claras e incoloras (Lampeitl, 1991).

(39)

Tratamiento y control:

a).- Manejo:

Cambio de reinas. Ubicación del apiario.

Alimentar a las colonias en época de escasez

b).- Esterilización térmica:

49ºC por 24 horas destruye las esporas Calderón y Ortis (2000).

c).- Quimioterapia:

100 mg de Fumagilina (Fumidil-B) en 4 litros de jarabe a cada colonia.

(40)

Acariosis traqueal

(41)

Acariosis

INTRODUCCIÓN.

 La acariosis, acariasis, traqueitis acariana o enfermedad de la Isla

de Wight es una parasitosis de las tráqueas de las abejas adultas, causada por el ácaro Acarapis woodi (Rennie).

 Identificada por vez primera en abejas procedentes de la Isla de

Wight en el canal de la mancha en 1905 (Molina 1999 y Ritter 2001).

 En México, se presentó como un problema serio, sin embargo

varios autores no consideran a la enfermedad muy importante.

(42)

DISTRIBUCIÓN:

 El primer reporte de la enfermedad en Norte América fue en 1980

en Jalisco México y posteriormente fue encontrado el Acarapis woodi por Zozaya et al en otros 16 estados del país en mayo de 1982 (Wilson y Nunamaker 1982).

 Posteriormente Guzmán Novoa y Zozaya Rubio en 1984 reportaron

que la enfermedad esta presente en todo el país a excepción de la península de Baja California (Wilson y Nunamaker 1985).

(43)

TRIADA EPIDEMIOLOGICA.

ETIOLOGÍA:  Acarapis woodi

 Hembra 120 a 150 micras de largo

por 60 a 80 de ancho.

 Macho 80 a 100 micras de largo por

40 a 60 micras de ancho.

 Vellosidades táctiles que le permiten

localizar los espiráculos y a trasladarse en distintas regiones anatómicas de la abeja.

(44)

AMBIENTE.

 Presentes todo el año.

 La tendencia de traslados es máxima en primavera y otoño.

 En verano tiene poca oportunidad debido al tiempo relativamente

largo que requiere el desarrollo desde huevo a ácaro adulto (casi 3 semanas) y a la corta duración de la vida de las abejas de verano

(Ritter 2001).

HOSPEDADOR.

 La acariosis afecta tanto a obreras, reinas y zánganos de abeja

melífera adultos.

(45)

FACTORES DE RIESGO.

 Pillaje.

 Introducción de enjambres y de reinas enfermas (Wilson y Nunamaker 1985).

 Largos periodos sin reina.

 Largos periodos de confinamiento: lluvias, vientos, heladas, épocas

de escasez de alimento(Molina et al 2000).

(46)

46

Transmisión: contacto directo entre

(47)

47

A. woodi pasa por las vellosidades del

tórax de la abeja enferma a la abeja susceptible y guiándose por corrientes de aire, el ácaro encuentra el espiráculo de una traquea del protórax, donde penetra (Ritter 2001).

Tráquea sana

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PATRON DE LA ENFERMEDAD.

 La hembra ovoposita (5-7 huevos),

convirtiéndose en adultos entre 13 y 16 días en hembras y en machos a los 11- 12 días de puestos los huevos.

 La copula de la descendencia puede

copular en el interior o salen de la tráquea, para infestar a otras abejas.

 Solo pueden sobrevivir un día fuera de

la abeja (Ritter 2001).

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PATRON DE LA ENFERMEDAD.

 Los ácaros se alimentan de la hemolinfa que succiona de las

paredes de las tráqueas, las cuales perforan por medio de sus ganchos mandibulares, lo que provoca lesiones de queratinización y melanización que se consideran patognomónicas, para el diagnóstico en el laboratorio (Guzmán-Novoa y Espinosa 2012).

 La insuficiente provisión de oxígeno a los músculos de vuelo a

consecuencia de la obstrucción de las tráqueas, explica la perdida en la habilidad para volar.

 Debilitamiento por la hemolinfa perdida y por la presencia de

toxinas liberadas.

 El tiempo de vida se reduce en un 30%.

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Diagnostico de campo.

 Los signos clínicos pueden se visibles cuando los niveles de

infestación superan el 50%.

 Se puede confundir con: hambre, envenenamiento por insecticidas,

alimentos fermentados, cambios de temperatura, nosemiosis, amebiosis y parálisis.

 Alas dislocadas, sin conseguir volar.  Abdomen distendido.

 Abejas muertas o moribundas en la piquera, en ocasiones se

observan abejas trepando las hojas del pasto.

 Tórax desprovisto de pelillos por lo que se ve negro y brilloso.  Pierden el instinto de picar.

 Este síndrome aparece en días con bajas temperaturas, en colonias

altamente infestadas que han pasado por un largo período de encierro (Ritter 2001 y Molina 2000).

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Diagnostico de laboratorio.

 Observar al microscopio el tórax

separando la musculatura existente sobre las tráqueas.

 Con la ayuda de una lupa, se

observaran de color entre amarillas y negras diferenciándose claramente de las tráqueas sanas ya que estas aparecen transparentes.

 La muestra debe estar constituida por

lo menos con 30 abejas.

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ESTRATEGIAS DE PREVENCIÓN, CONTROL Y

ERRADICACIÓN.

Acido fórmico: Igual que para Varroa. Timol: igual que para Varroa.

Mentol sintético o natural: 30g dentro de una bolsa de nylon a la que se

pincha para permitir que salga la evaporación.

 400 g de cristales de mentol en 1 litro de alcohol etílico al 70 %, remojando

material absorbente, repetir por 4 ocasiones cada semana.

 Desventajas: mantiene los niveles de infestación por debajo del 15%, es

costoso y en ocasiones las abejas abandonan la colonia.

(53)

Síndrome del colapso o

despoblamiento de la colonia

Se caracteriza porque las abejas obreras desaparecen de una colmena sin dejar rastro.

CCD (Colony Collapse Disorder), se reportó en 2006 en EU, y en los 50’s se reportó algo similar llamado enfermedad de mayo, colapso de primavera y enfermedad de la desaparición expontánea.

Distribución: España, Alemania, Bélgica, Francia, Polonia, Grecia, Italia, Portugal, Suiza, Austria, Reino Unido, Canadá, India, Brasil y Taiwán, es en Estados Unidos, España y Alemania donde se documentan más casos que coinciden con el síndrome.

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El colapso de la colonia

Aproximadamente 30 estados de los EU están afectados, 600,000 colmenas de las 2.4 millones han colapsado (25%).

Algunos estados de los EU han reportado pérdidas del 90%.

Efectos negativos importantes ha traído sobre la polinización, y por lo tanto en un desequilibrio ecológico.

(55)

El colapso de la colonia

CAUSAS:

Inadecuada nutrición (inanición).

coincide en la mayoría

de los reportes.

Uso de jarabe de maíz con alto contenido en fructuosa derivado de cultivos transgénicos de maíz.

Pero también se presenta en colonias que no son alimentadas con este sustituto energético.

Una inadecuada nutrición es más frecuente en abejas destinadas a la polinización donde tienen polen disponible de una sola especie vegetal, lo que provoca deficiencias nutricionales.

(56)

Pesticidas (insecticidas).

Es difícil asegurar que esta es la causa ya que son muchos productos que se aplican.

Sin embargo, los contaminantes o toxinas actúan vía el néctar por lo que las abejas adultas pueden morir repentinamente en el campo, esto a diferencia de lo que ocurriría si el polen estuviera contaminado,

donde las crías morirían también, situación que no ocurre en el síndrome.

Se ha sugerido que el imidacloprid y el clothianidin (Neonicotinoides) daña el sistema inmune y en su sentido de orientación y altera su

memoria olfativa, reclutamiento, pecoreo, vuelo, coordinación motriz; por tal motivo este insecticida y otros más fueron en varios países de Europa.

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Acaricidas y antibióticos.

Los medicamentos sintéticos que se usan para el control de

enfermedades en las colonias, pueden acumularse en la cera de los panales y liberarse lentamente provocando en las abejas reducción del periodo de vida, disminución de la postura y inhibición del sistema

inmune de las abejas.

Apicultura migratoria.

La movilización de colonias por largas distancia puede provocar estrés y el debilitamiento del sistema inmune de las abejas, haciendo más susceptibles a las abejas al embate de agentes infecciosos y tóxicos.

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Patógenos e inmunosupresión.

Varroa destructor (virus de las alas deformes, virus israelí, virus de la parálisis aguda, virus Cachemira)

En Canadá se ha asociado al 85% de las muertes de colonias en invierno.

Nosema apis y Nosema ceranae.

Cultivos genéticamente modificados.

El polen y néctar colectado de cultivos genéticamente modificados, en estos cultivos se produce Bacillus thuringiensis cuya toxina puede estar suprimiendo el sistema inmune de las abejas.

El síndrome también se presenta en áreas que no tienen este tipo de sembradíos o por el contrario, áreas donde se tienen cultivos

transgénicos donde no se presentan casos de CCD.

(59)

Apicultura migratoria.

Esta actividad dispersa patógenos o debilita a las colonias por el estrés, que a su vez puede ocasionar una inmunodepresión o inmunosupresión, haciendo susceptibles a las abejas de padecer cualquier enfermedad o efecto tóxico.

Mal manejo.

Al dividir las colonias en exceso, no cambiar reinas, no alimentar, no controlar enfermedades, las colonias se debilitan y mueren.

Cambios climáticos.

Calentamiento global, sequías y huracanes se vinculan con la escasez de recursos nectar-poliníferos, que implican en definitiva un déficit de nutrientes para las abejas, y por lo tanto las hace susceptibles a cualquier amenaza por más simple que sea.

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Otras causas.

Radiación electromagnética de teléfonos celulares Microorganismos desconocidos

Bioterrorismo

La atracción que ejercen las algas marinas. Cambio en la inclinación del globo terrestre.

Cualquier causa requiere comprobarse científicamente, y se requiere mucha investigación.

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Signos

1. Insuficiente número de abejas para mantener a las crías 2. La reina se mantiene en la colonia

3. Las abejas dejan de consumir el alimento suministrado

4. Ausencia completa de abejas adultas vivas y de cadáveres.

5. No se observan abejas muertas dentro o en los alrededores de las

colmenas

6. Presencia de crías operculadas (en condiciones normales las abejas

no abandonan a sus crías antes de que todas emerjan)

7. Presencia de reservas (miel y polen). Estas reservas no son pilladas

inmediatamente por otras abejas

8. El ataque de plagas (polilla y Aethina tumida) se retrasa

notoriamente

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Recomendaciones

En México es una enfermedad exótica.

 Mantener una revisión quincenal de las colonias

 Controlar varroa y otros patógenos con productos autorizados  No introducir material biológico de manera ilegal sobretodo de

localidades con reportes positivos al síndrome

 Reportar inmediatamente a SAGARPA (Delegaciones Estatales o

Coordinaciones del Programa de Abeja Africana) cuando se

presenten características anormales o signos similares de CCD en los apiarios

 Cambio annual de reinas procedentes de criaderos certificados,

diagnóstico y control de enfermedades, alimentación adecuada, remplazo de panales viejos.

Referencias

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