La conversión alimenticia se utiliza para medir la eficiencia con que un alimento está siendo utilizado por el animal y se calcula dividiendo el consumo de alimento entre la ganancia de peso (Campabadal, 2002). A continuación se analiza los valores obtenidos en la conversión alimenticia de los tratamientos en investigación.
Dónde: AC= Alimento consumido GP= Ganancia de peso
Respecto a los resultados de la conversión alimenticia obtenido, una de las explicaciones que se puede dar es que; la conversión alimenticia es influenciada por una serie de factores como la temperatura de la zona (29°C), ya que para eliminar el exceso de temperatura, tendrá un aumento de la frecuencia respiratoria, porque el animal intenta mantener su temperatura corporal, y este es extraído de la energía del alimento que deja de ser usado para producir carne (Campabadal, 2002).
A nivel general los valores reportados en este ensayo no demostraron ser más eficientes que los relacionados con los trabajos de Cajamarca (2006) que evaluó sin la adición de harina de lombriz encontraron respuestas de 5,55 y 5,64 respectivamente;
pudiendo indicarse que las diferencias puede ser efecto de las condiciones ambientales, periodo de evaluación, aprovechamiento del alimento, por lo que el rastrojo de la quinua puede ser utilizada en la alimentación de los animales, por cuanto promueve el crecimiento del animal, previene enfermedades y realza los índices productivos.
C. A =A. C. (Alimento proporcionado − Alimento rechazado)
GP
Tabla 15: Consumo de alimento, peso del animal, ganancia de peso y conversión alimenticia por tratamientos
Sem.
T0 (0%) T1 (10%) T2 (15%) T3 (20%)
AP AR PA GP CA AP AR PA GP CA AP AR PA GP CA AP AR PA GP CA 0 360 20 287 31 10.9 360 15 298,3 20 17.2 360 20 296.6 30 11.3 360 20 297 8.3 40.9 1 390 10 318 23.3 16.3 380 13 318,3 33.3 11 390 18 326.6 18.3 20.3 368 15 305 25 14.1 2 414 8 342 35 11.6 414 10 352 40.3 10 408 15 345 15 26.2 376 15 330 20 18 3 449 5 377 18.3 24.2 454 10 392 20.6 21.6 423 13 360 20 20.5 396 15 350 29.6 12.9 4 467 3 395 19.6 23.6 475 8 413 39.3 11.9 443 12 380 18 24 426 13 380 28.3 14.6 5 485 3 415 19 25.3 514 8 452 25.3 20 461 10 398 70.3 6.4 449 13 403 29.3 14.9 6 504 3 434 70.3 7.1 539 8 477 82.6 6.4 481 10 418 85 5.5 478 10 432 34.3 13.6 7 574 3 504 89.3 6.4 622 5 560 107 0.1 551 8 488.3 85 6.4 513 8 467 46.6 10.8 8 663 2 593 30 22 729 5 667 30 24.1 636 8 573.3 43.3 14.5 559 5 513 13.3 41.6 9 693 2 623 33.8 20.4 759 5 697 31.2 24.2 680 8 616.6 37.4 17.9 573 0 527 23 24.9 10 727 2 657 26 27.8 790 0 728 24.6 32.1 717 5 654.1 13.3 53.5 596 0 550 47.1 12.6 11 753 0 683 16 47 815 0 753 49.6 16.4 730 5 667.4 23.4 30.9 643 0 597 17.2 37.3 12 769 0 699 36 21.3 864 0 802 69.6 12.4 754 0 690.9 43.4 17.4 660 0 614 37.1 17.7 13 805 0 735 46 17.5 934 0 872 44.5 20.9 797 0 734.3 63.4 12.6 697 0 651 52.1 13.3 14 850 0 781 35.5 24 978 0 916 44.3 22 861 0 797.8 40.4 21.3 749 0 703 29.4 25.4 Fuente: Elaboración propia
Leyenda:
AP = Alimento proporcionado AR = Alimento rechazado PA = Peso del animal GP = Ganancia de peso CA = Conversión alimenticia
A continuación en la tabla 16; se observa el resumen de los valores de conversión alimenticia por tratamientos.
Tabla 16: Resumen de valores de conversión alimenticia por semana (g) en cuyes
Semanas Tratamientos
T0 T1 T2 T3
1 16.3 11 11.3 14.1
2 11.6 10 20.3 18
3 24.2 21.6 26.2 12.9
4 23.6 11.9 20.5 14.6
5 25.3 20 24 14.9
6 7.1 6.4 6.4 13.6
7 6.4 0.1 5.5 10.8
8 22 24.1 6.4 41.6
9 20.4 24.2 14.5 24.9
10 27.8 32.1 17.9 12.6
11 47 16.4 53.5 37.3
12 21.3 12.4 30.9 17.7
13 17.5 20.9 17.4 13.3
14 24 22 12.6 25.4
Promedio 21 16.7 19.8 19.4
Fuente: Elaboración propia
Según la tabla 16, se observa que el T1 (10 % residuo de quinua) con 16,66 g, obtiene el mejor promedio en conversión alimenticia versus los tratamientos T2 y T3 con 15 y 20 % de residuos de quinua (19,83 y 19,46 g respectivamente).
Gráfico 9
Promedio de conversión alimenticia por tratamiento de cuyes en crecimiento.
Fuente: Elaboración propia
De la gráfico 9, se observa que el T3 (20 %) obtuvo valores altos de conversión alimenticia con 19,4 g y el índice más bajo obtuvo el T1 (10 %) con 16,7 g, detectándose que las mejores conversiones corresponden al T1 (10 %) superando al testigo, como al T2 (15 %).
A continuación en la tabla 17; se observa análisis de varianza para la conversión alimenticia de cuyes.
Tabla 17: Análisis de varianza para la conversión alimenticia de cuyes
F.V. G.L. SCM CM Fc Ft
Tratamientos Error
3 32
11634,76 93960,40
3878,25 2936,26
1,32 2,92
Total 35 105595,168
Fuente: Elaboración Propia 21
16.7
19.8 19.4
0 5 10 15 20 25
T0 T1 T2 T3
Promedio de conversion alimenticia (g.)
Tratamiento
Según la tabla 17, se observa que no existen diferencias significativas al 95 % de probabilidad entre los promedios de los tratamientos respecto a conversión alimenticia. Pero según el gráfico 12 se demuestra que la inclusión de esta materia prima en el balanceado tiene una acción favorable sobre la conversión alimenticia, ya que a menor conversión alimenticia mayor es la eficiencia en la digestibilidad, absorción y calidad de nutrientes y por consiguiente se espera que se incremente la ganancia de peso.
4.2 Evaluación económica
Para la evaluación económica se tomó en cuenta el costo unitario de producción en cada uno de los tratamientos y efectivamente en función de los niveles de rastrojos de quinua para la alimentación de cuyes criollos, como se puede apreciar en el presente trabajo de investigación, el gasto o inversión para el proceso de producción en los diferentes tratamientos se distribuyó a razón de: s/. 74.42 en los distintos tratamientos de residuo de quinua. Además se comercializó el abono producido por los mismos, encontrándose un ingreso bruto por s/.15.00 en los diversos tratamientos.
La mejor relación beneficio/costo de los 4 tratamientos es el tratamiento 1 que indica un beneficio del 117% indicando un beneficio del 17%, en comparación con los demás tratamientos en estudio. En otras palabras del 100 % invertido obtengo una ganancia del 17 % (Ver tabla 18).
Cabe resaltar que los costos de venta de cuy para la venta se consideraron el peso del animal, el cual fue considerado como sigue:
- cuy con peso ≤ 800 g = s/.22.00 - cuy con peso > 800 g = s/.24.00
La relación beneficio/costo toma los ingresos y egresos, para determinar cuáles son los beneficios por cada sol (S/.) que se sacrifica en el proyecto.
Relacionbeneficio
costo =Ingresos neto Egresos netox100
Tabla 18: Evaluación económica del comportamiento de cuyes alimentados con residuos de quinua en la etapa de crecimiento (14 semanas)
Tratamientos en estudio
Rubros Unidad T0
(0%) T1 (10%) T2 (15%) T3 (20%) Total Precio
unitario(S/) T0 (0%) T1 (10%)
T2 (15%)
T3 (20%)
Total (S/) I. EGRESOS
1.Mano de obra horas 12,25 12,25 12,25 12,25 49,00 1,00 12,25 12,25 12,25 12,25 49,00
2. Gastos de alimentación -Consumo de residuos de quinua
-Consumo de balanceado(60 g) Kg 5.88 5.88 5.88 5.88 23.52 2,20 12,94 12,94 12,94 12,94 51,76
-Consumo de alfalfa
(0,3;0,26;0,24;0,22) Kg 29.4 25.48 23.52 21.56 99.96 0,80 23,52 20,38 18,82 17,25 79,97
3. Compra de cuyes unidad 3 3 3 3 12 9,00 27,00 27,00 27,00 27,00 108,00
4. Sanidad, dosis aplicada g 6.25 6.25 6.25 6.25 25 0,12 0,75 0,75 0,75 0,75 3,00
5. Construcción de pozas ,valor
depreciado * unidad 1 1 1 1 4 2,50 0,37 0,37 0,37 0,37 1,46
6. Comederos, valor depreciado * unidad 1 1 1 1 4 3,00 0,44 0,44 0,44 0,44 1,75
7. Bebederos, valor depreciado * unidad 1 1 1 1 4 3,00 0,44 0,44 0,44 0,44 1,75
Costos de producción 77,70 74,56 73,00 71,43 296,69
II: INGRESOS
Venta de cuyes (≤ 800 g = s/.22.00
> 800 g = s/.24.00) unidad
(3) (3) (3) (3) (3) S/.22,00 a
S/.24,00
66,00 72,00 66,00 66,00 270,00 781.5 916.33 797.8 703.38 9596.88
Venta de estiércol kg 12.5 12.5 12.5 12.5 50 1,20 15,00 15,00 15,00 15,00 60,00
Total ingresos 81,00 87,00 81,00 81,00 330,00
Evaluación económica
Relación beneficio/costo 104% 117% 111% 113%
Fuente: Elaboración propia.
*Valor depreciado en 2 años, se evaluó de la siguiente forma
Precio unitario
Tiempo util =Años vida util
Meses año = (Valor vida util meses) (Tiempo del proyecto) = Depreciación
CONCLUSIONES
PRIMERA Al evaluar la alimentación de los cuyes se confirma la hipótesis en la cual se menciona que la incorporación de residuos de cosecha permite mejorar la ganancia de peso y conversión alimenticia durante el crecimiento. Por ello es necesario aprovechar estos residuos en la alimentación de animales que permita mejorar el nivel nutricional de los cuyes.
SEGUNDA Se concluyó que respecto a ganancia de peso fue el T1 el que tuvo mejor valor (44,35 g), el análisis de varianza demuestra que no existen diferencias significativas al 95 % de probabilidad entre los promedios de los tratamientos. Respecto a la conversión alimenticia el T1 con 16,7 g reporta el mejor valor, según el análisis de varianza se demuestra que no existen diferencias significativas entre los promedios de los tratamientos.
TERCERA La evaluación económica tuvo una relación beneficio/costo correspondiente al T1 indicando un beneficio del 117% siendo el mejor respecto a los demás tratamientos y una alternativa de inclusión en el balanceado de la alimentación del cuy por el aporte nutritivo de este subproducto.
RECOMENDACIONES
PRIMERA Incorporar los residuos de quinua con panochas tiernas, para apreciar la verdadera acción del mismo en la alimentación de cuyes, ya que el animal rechaza los palos y hojas secas, ya que a su vez mejora el nivel nutricional y resulta menos costoso.
SEGUNDA Realizar investigaciones con alimento balanceado en base a pepas de aceituna deshuesada, que contienen antioxidantes que aportarían en el valor nutricional y ganancia de peso.
TERCERA Se sugiere que en otras investigaciones complementar los rastrojos de quinua con otros granos para ver el efecto de estos en la especie y mejorar su aprovechamiento. También en los tratamientos se debe considerar una población mayor a 100 animales para que se pueda apreciar utilidades mayores.
VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Acosta, C. (2006). Manual Agropecuario 2° edición. Fundación Hogares juveniles campesinos. pp. 454 – 460. Bogotá – Colombia.
Acosta C. (2002). Manual agropecuario 1ª EDI. Bogotá, Colombia. Editorial Universitaria.
P: 455.
Bacigalupo, A. & Tapia, M. (1990). Agroindustria. En: Cultivos andinos sub explotados y su aporte a la alimentación. FAO. Santiago de Chile.
Barrera, A. (2010). Evaluación de las características productivas y reproductivas de cuyes negros manejados en jaulas versus pozas. ESPOCH- Facultad de Ciencias pecuarias. Riobamba-Ecuador.
Bustamante J. (2003). Foro de balanceados. Alimento balanceado a base de harina de pescado. http.//www.Ergomix,com.
Cajamarca, P. (2006). Utilización de la harina de lombriz y residuos de quinua en la alimentación de cuyes mejorados en la etapa de crecimiento y engorde. Tesis de grado. Facultad de Ciencias pecuarias, ESPOCH. Riobamba- Ecuador pp. 38-50.
Campabadal, C. (2002). Alimentación de los cuyes en condiciones tropicales. Asociación americana de soya. 3era edición. P. 279.
Cardoso, E. & Offset A. (2006). Manual Agropecuario. Medellín, Colombia.
Cardoso, (2006). Vademécum veterinario.
Castellanos, W. (2010). Comercialización y crianza de cobayos. Wasi Cuy Perú. Lima, Perú.
Castro, T. (1994). Evaluación del valor nutricional de la Puya llatensis en la alimentación del cuy (Cavia porcellus). Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú.
Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Facultad de Medicina Veterinaria.
Castro H. (2002). Avances en Nutrición y Alimentación de cuyes. Crianza de cuyes.
Huancayo. Perú. pp: 136-146.
Caycedo, A. 2006. Situación y perspectivas de la producción de cuyes en el departamento de Nariño. IICA-OEA. Serie de Conferencias y Reuniones. Pp. 120, 78-97.
Cabrera, R. (2000). Determinación del rendimiento productivo de cuyes con alimento balanceado peletizado y diferentes fuentes de vitamina C. Tesis Ingeniero agrónomo. Cochabamba, Bolivia Universidad Mayor de San Simón, Facultad de Ciencias Agrícolas y Pecuarias. Departamento de zootecnia. 95 p.
Cardona N. (2005). Mecanismos de interacción de Salmonella con la mucosa intestinal.
Infectio-Asociación colombiana de infectología 7: 22-29.
CENTRO DE INVESTIGACIONES, EDUCACIÓN YDESARROLLO (2000). Quinua (Chenopodium quinua Willdenow).Lima.
Cerna, A. (1997) “Evaluación de cuatro nivele de residuo de cervecería seco en el crecimiento y engorde de cuyes”. Universidad Nacional Agraria La Molina.
Resúmenes de investigación en alimentación mixta. 82 p.
Ceron, L. (2000) Cultivo de quinua. Boletín 01. Pasto. Universidad de Nariño y Ministerio de Agricultura PRONATTA.
Ceron, L. (2001) Investigación aplicada sobre quinua en el departamento de Nariño.
Facultad de Ciencias Agrícolas. Ministerio de Agricultura. PRONATTA. Pasto.
Universidad de Nariño.
Ceron, E. (2002). La quinua. Un cultivo para el desarrollo de la zona andina. Boletín01.
Pasto. Universidad de Nariño y Ministerio de Agricultura PRONATTA.
Chauca, L. (1997). Producción de cuyes (Cavia porcellus). Roma: Organización de las Naciones Unidas para la agricultura y la alimentación (FAO). 78 Págs.
Chirinos, P. (1994). Alimentación de cobayos con sub productos de zapallo. Universidad Daniel Alcides Carrión. Cerro de Pasco- Perú.
Diaz, H. (2010). Texto Básico de Producción de Cuyes. Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Facultad de Ciencias Pecuarias. Escuela de Ingeniería Zootécnica.
Enriquez, M. (2004) Normas generales para la crianza de cuyes. Volumen1. Huancayo- Perú.
Ensminger, M. (1978) Alimentos y nutrición de los animales. Editorial “El Ateneo”.
Buenos Aires. Pág. 27-29.
Espinoza, R. (2006). Evaluación de tres niveles de lisina y aminoácidos azufrados en dietas de crecimiento para cuyes (Cavia porcellus) mejorados. Instituto Nacional de Investigación y Extensión Agraria – Universidad Nacional Agraria La Molina. Perú.
FAO. (2008). Producción de cuyes (Cavia porcellus). Editorial de la FAO. Espósito de documentos de la FAO. Departamento de Agricultura.
Fundación Mujer y Familia Andina (FUNDAMYF). (2010). Información empresarial.
Riobamba, Ecuador.
Gandarillas, C. (1992). Niveles de coronta molida en el crecimiento de cuyes. Perú- Cajamarca. Asociación Peruana de Producción animal. Reunión científica anual.
Garcés, S. (2003) Efecto del uso de la Cuyinaza más melaza en el balanceado en la alimentación de cuyes. Tesis de grado. Facultad de Ciencias pecuarias, ESPOCH.
Riobamba- Ecuador. Pp. 47-69.
Gonzalo K. & Aldaz J. (2012). “Evaluación de diferentes niveles, 0%, 10%, 20% y 30%
de polvillo fino de arroz en la alimentación de cuyes de la línea peruano mejorado en la etapa de crecimiento engorde en la parroquia Tumbaco, provincia de Pichincha”. 2012, de Universidad Estatal de Bolívar Sitio web:
http://dspace.ueb.edu.ec/bitstream/123456789/807/1/075.pdf.
Guevara, P. 2010. Laboratorio de Nutrición Animal y Bromatología. FCP. ESPOCH.
Riobamba, Ecuador.
Herrera, H. (2012) Comportamiento productivo de cuyes alimentados con forraje más balanceado con diferentes niveles de Saccharina más aditivos para la etapa de gestación-lactancia. Facultad de ciencias pecuarias. Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Riobamba-Ecuador.
Hidalgo, V. (1994). Crianza de cuyes. Universidad Nacional Agraria la Molina. Lima, Perú. Pág. 128.
Instituto Nacional de Investigación Agraria (INIA). (1995). Investigaciones en cuyes.
Informe técnico N° 6. Lima, Perú. Pág. 197
Jiménez, Y. (2007). Valoración energética de diferentes tipos de maíz (Zea mays) utilizado en la alimentación de cuyes (Cavia porcellus). Tesis de Ing. Zootecnista.
ESPOCH. Facultad de Zootecnia. Riobamba- Ecuador.
López, C. (2005). Efectos de la molienda conjunta y textura de la ración sobre la digestibilidad de nutrientes.
Lozano, M (2008). Estudios para el aprovechamiento de los residuos de exportación de quinua. III Congreso mundial de la quinua. Oruro. Bolivia.
Lucas, E. 2010. El cuy, su cría y explotación. Actividades productivas.
Disponible en http://www.monografias.com.
Mikros, A. (2010). Levante y engorde de cuyes mejorados en Bolivia. Agropecuaria CERGAMSAC. Santa Cruz, Bolivia.
Mora, I. (2002). Nutrición animal. Edit EUNED. Zaragoza, España.
Morrison, F. (1980). Alimentos y alimentación del ganado. Ed. UTEHA. Tomos I y II. 1347 p.
Remigio, R. y Vergara, V. 2006. Evaluación de tres niveles de Lisina y Aminoácidos azufrados en dietas de crecimiento para cuyes. Instituto Nacional de Investigación y Extensión Agraria – Universidad Nacional Agraria La Molina. Perú.
Rivas, D. (1995). Pruebas de crecimiento en cuyes con restricción del suministro de forraje en cantidad y/o frecuencia. UNA La Molina, Perú. 86 Pág. (Tesis).
Sánchez, K. (2015). Evaluación de cuatro raciones alimenticias en el crecimiento y engorde de cuyes mejorados (Cavia porcellus) en el centro académico Miraflores de la UNSM, Región San Martín. 88 p. (Tesis).
Sandoval, C. (2006). Manual de manejo post-cosecha de granos a nivel rural. Oficina regional de la FAO para América Latina y el Caribe. Santiago de Chile.
Shimada, M. (2005). Nutrición animal. Ed. Trillas. México.pp: 18-35.
Silva, D. (2013). Crianza de cuyes. Curso producción de animales menores. EAP. MV- FCA. UNSM- Tarapoto - Perú.
NATIONAL RESEARCH COUNCIL (NRC). (1995). Valor nutritivo y usos de la quinua.
En: Quinua. Cultivos andinos versión1.1. FAO. Santiago de Chile.
Saravia (1994). Concentrado ofrecido al inicio y/o acabado y su efecto en el engorde de cuyes híbridos. Universidad Nacional del Centro. Huancayo-Perú.
Sandoval C. (2006). Producción de cuyes en Venezuela. Maracibo.90 p.
Tapia, M. (2000). Agronomía de los cultivos andinos. En cultivos andinos subexplotados.
FAO. Santiago de Chile.
Terebinto, C. (2008).Curso alimentos para rumiantes. Maestría en ciencias agrarias.
ANEXOS
Anexo 1: Tablas de muestra patrón de 0, 10, 15 y 20 % de residuos de cosecha de quinua para alimentación de cuyes
Tabla 19: Muestra patrón al 0, 10, 15 y 20 % residuos de cosecha de quinua
Alimento 0% 10 % 15 % 20 %
Alfalfa 300 g 264,24 g 246,24 g 228,24 g
Residuos de cosecha de quinua - 36 g 54 g 72 g
agua Ad libitum Ad libitum Ad libitum Ad libitum
concentrado 60 g 60 g 60 g 60 g
Fuente: Elaboración propia
Anexo 2: Reporte de análisis de tratamientos para cuyes (UNJBG)
Anexo 3: Determinaciones analíticas
a. Determinación de proteínas
El método para determinar las proteínas fue el método de KJELDAHL, Metodología AOAC, 1 984
Determinación:
- Realizar la muestra en duplicado.
- Efectuar un ensayo en blanco usando una sustancia orgánica sin nitrógeno (sacarosa) que sea capaz de provocar la reducción de los derivados nítricos y nitrosos eventualmente presentes en los reactivos.
- Pesar al 0.1 mg. alrededor de 1 g de muestra homogeneizada (m) en un matraz de digestión Kjeldahl.
- Agregar 3 perlas de vidrio, 10 g de sulfato de potasio o sulfato de sodio, 0.5 g de sulfato cúprico y 20 ml de ácido sulfúrico conc.
- Conectar el matraz a la trampa de absorción que contiene 250 ml de hidróxido de sodio al 15 %. El disco poroso produce la división de los humos en finas burbujas con el fin de facilitar la absorción y para que tenga una duración prolongada debe ser limpiado con regularidad antes del uso. Los depósitos de sulfito sódico se eliminan con ácido clorhídrico. Cuando la solución de hidróxido de sodio al 15 % adicionada de fenolftaleína contenida en la trampa de absorción permanece incolora debe ser cambiada (aprox. 3 análisis).
- Calentar en manta calefactora y una vez que la solución esté transparente, dejar en ebullición 15 a 20 min. Más. Si la muestra tiende a formar espuma agregar ácido esteárico o gotas de silicona antiespumante y comenzar el calentamiento lentamente.
- Enfriar y agregar 200 ml de agua.
- Conectar el matraz al aparato de destilación, agregar lentamente 100 ml de NaOH al 30 % por el embudo, y cerrar la llave.
- Destilar no menos de 150 ml en un matraz que lleve sumergido el extremo del refrigerante o tubo colector en: a) 50 ml de una solución de ácido sulfúrico 0.1 N, 4 a 5 gotas de rojo de metilo y 50 ml de agua destilada. Asegurar un exceso de H2SO4 para que se pueda realizar la retro titulación.
-Titular el exceso de ácido con NaOH 0.1 N hasta color amarillo o b) 50 ml. de ácido bórico al 3 %. Titular con ácido clorhídrico 0.1 N hasta pH 4.6 mediante un medidor de pH calibrado con soluciones tampón pH 4 y pH 7, o en presencia del indicador de Tashiro hasta pH 4.6.
Cada cierto tiempo es necesario verificar la hermeticidad del equipo de destilación usando 10 ml. de una solución de sulfato de amonio 0.1 N (6.6077 g/L), 100 ml de agua destilada y 1 a 2 gotas de hidróxido de sodio al 30 % para liberar el amoníaco, así como también verificar la recuperación destruyendo la materia orgánica de 0.25 g Tirosina. El contenido teórico en nitrógeno de este producto es de 7.73 %. Debe recuperarse un 99.7 %.
Donde:
V: 50 ml de H2sO4 0.1 N - gasto NaOH 0.1 N ó gasto de HCl 0.1 N M: masa de la muestra, en gramos.
% Proteina =14 x N x V x 100 x factor M x 1000
% N =14 x N x V x 100 M x 1000
Factor: 6.25 para carne, pescado, huevo, leguminosas y proteínas en general.
Repetibilidad del método: La diferencia entre los resultados de dos determinaciones efectuadas una después de otra, por el mismo analista, no debe exceder 0.06 % de Nitrógeno o 0.38 % de proteína.
b. Determinación de humedad. PRT 701.02-023
Se tomó una muestra representativa de los alimentos de los tratamientos homogenizados, la que se pesó (muestra húmeda), luego se colocó en una estufa 80°C por tres días, para luego pesar la muestra seca.
El porcentaje de la humedad se calcula con la siguiente fórmula, teniendo en cuenta que para obtener PMH y PMS se debe restar el peso de la caja.
Donde:
%H: es la humedad en %.
PMH: es el peso de la muestra húmeda, en g.
PMS: es el peso de la muestra seca, en g.
c. Determinación de cenizas
Se tomó muestras representativas de los alimentos de los tratamientos en estudio, y con el fin de lograr una mejor homogenización, se procedió a picar los residuos que tenían tamaños grandes como, tallos, panojas, y otros.
Las muestras luego de ser pesadas fueron colocadas en crisoles, para ser introducidas en una mufla a 600°C.
Cuando ya se obtuvo la ceniza y peso se procedió a determinar el % de ceniza.
% de ceniza = Peso de ceniza Peso de muestrax100
% H =PMH − PMS PMH x100
d. Determinación de fibra cruda (método gravimétrico)
Preparación de la muestra
- Homogeneizar, secar 103 + 2 °C en estufa de aire o a 70 °C al vacío, de acuerdo a las técnicas indicadas en la referencia, considerando el tipo de muestra. Moler la muestra.
- Pasar por un tamiz de malla de 1 mm. 7.1.3. Extraer con éter de petróleo sí el contenido de grasa es superior al 1.
Determinación
-Realizar el análisis en duplicado.
-Pesar a 0.1 mg alrededor de 2 g de muestra preparada y transferir en al matraz del aparato de calentamiento a reflujo.
- Agregar 1.5 a 2.0 g de fibra cerámica preparada.
- Agregar 200 ml de H2SO4 0.255 N, hirviente, gotas de antiespumante y perlas de vidrio.
- Conectar el aparato de calentamiento a reflujo y hervir exactamente durante 30 minutos, rotando el matraz periódicamente.
-Desmontar el equipo y filtrar a través del embudo Büchner tipo California o sus alternativas.
- Lavar con 50 a 75 ml de agua hirviente, repetir el lavado con 3 porciones de 50 ml de agua o hasta que cese la reacción ácida.
- Retornar el residuo al aparato de calentamiento a reflujo y hervir exactamente durante 30 minutos, rotando el matraz periódicamente.
- Lavar con 25 ml de H2SO4 0.255 N, hirviente, con 3 porciones de 50 ml de agua hirviente y con 25 ml de etanol al 95%.
- Remover el residuo y transferir al crisol.
- Secar en estufa a 130 + 2 °C por 2 horas, enfriar en desecador y pesar. 7.3.11.
Incinerar 30 minutos a 600 + 15 °C, enfriar en desecador y pesar.
- Determinar un blanco en las mismas condiciones que la muestra.
La expresión de los resultados:
e. Determinación de energía. AOAC 1984
La muestra del material al cual se le va a determinar la energía (E) se pesa (1 g), se coloca en una cápsula de combustión que se deposita en la bomba debajo de un fusible de alambre (10 cm de largo) colocado entre los electrodos y en contacto con la muestra. La bomba se llena con Oxígeno a 25 - 30 atmósferas, y se coloca en el recipiente del calorímetro y se cubre con 2.000 cc de agua. Se ajustan manual o automática mente la bomba y el calorímetro a la misma temperatura. Se lee y registra la temperatura inicial antes de incinerar la muestra; después de encender el fusible por un segundo se quema la muestra, se registra el aumento de temperatura producido, procurando mantener temperaturas iguales tanto en la cámara exterior como en el interior del calorímetro que contiene el balde con la bomba.
% Fibra cruda(base húmeda) =C x 100 − %Humedad muestraoriginal 100