P RÓLOGO
La dinámica y la importancia de las partículas y la materia orgánica disuelta son particularmente importantes en los sistemas de cabeceras forestales. Se incluyen los más importantes como caudales, tiempo de asimilación de nutrientes, producción, etc.
C APÍTULO
Presentación: importancia de los ríos
- Introducción
- Estructura y funcionamiento del ecosistema fluvial
- Los ríos y la humanidad
- Los servicios de los ecosistemas fluviales
- Bibliografía
La larga supervivencia y la estructura dendrítica de los ríos tienen implicaciones interesantes para la biota de los ecosistemas fluviales. La caracterización ecológica de los ríos se puede realizar en función de su estructura y funcionamiento (Allan y Castillo 2007).
El río como ecosistema
- Introducción
- El río, sistema dinámico y complejo
- La biota de los ecosistemas fluviales
- P ECES
- Ensamblar los componentes: funcionamiento de los ecosistemas fluvialesde los ecosistemas fluviales
- Los problemas que afrontan los sistemas acuáticos continentalescontinentales
- Bibliografía
La energía del viento y las corrientes retira estos nutrientes del lago, poniéndolos a disposición de los productores. Tanto las orillas como la llanura aluvial son componentes esenciales de los ecosistemas fluviales.
El marco físico: la cuenca
- Introducción
- Factores, procesos y causas de variabilidad en la cuenca
- Alteraciones de las relaciones tierra-agua
- Estudio morfométrico de cuencas
- Bibliografía
El uso de la cuenca implica siempre cambiar la estructura y funcionamiento de los ecosistemas que se utilizan. Calcula la densidad de drenaje dividiendo la longitud total de los ríos por el área de la cuenca.
El caudal circulante
- Introducción
- El régimen hidrológico
- Retentividad hidráulica
- Análisis de frecuencia de avenidas
- Bibliografía
En el punto de adición debe haber turbulencia para promover la mezcla inmediata entre la solución y el agua del río. Ingrese el valor de conductividad (debe ser tres órdenes de magnitud mayor que la conductividad del río).
La estructura física de los cauces fluviales
- Introducción
- Cauce y transporte de sedimentos
- Clasificación de los tipos de río
- Aplicaciones de la geomorfología fluvial
- Determinación de la morfología del cauce
- Degradación/agradación del cauce
- Bibliografía
El tipo de canal formado depende del caudal, pendiente y erosibilidad del sustrato. Existen numerosos métodos para clasificar la morfología fluvial, pero uno de los más populares es el de Rosgen (1996), que se basa fundamentalmente en la forma del canal, el nivel de empotramiento, el tipo de sustrato y la pendiente (Fig. 5.7). ). ). Coloque el nivel láser en el trípode inmediatamente aguas abajo de la cuerda del primer transecto y apuntando aguas arriba.
El transporte de los materiales inorgánicos disueltos y particulados
- Introducción
- Variaciones en los materiales transportados
- Carga disuelta y carga en suspensión
- Determinación de la hidrología hiporreica
- Bibliografía
Gráficos de dispersión de la concentración de nitratos en tres pequeños ríos de cabecera en cuencas boscosas. En la carga de partículas, la carga suspendida se puede distinguir de la carga de lecho. La concentración de sólidos volátiles se calcula a partir de la diferencia entre el segundo pesaje (a 105 °C) y el tercero (a 500 °C).
La química de las aguas. Los nutrientes
Introducción
Las sustancias disueltas en el agua
Además de las sustancias inorgánicas que hemos mencionado, en las aguas de los ríos se encuentra una gran cantidad de sustancias orgánicas disueltas. La principal fuente de sustancias disueltas en las aguas de los ríos es el sustrato litológico por el que discurre el agua antes de entrar al cauce. El clima es un factor importante para determinar la química de las aguas en circulación.
Variaciones en el quimismo de los ríos
Por ejemplo, los cambios en el uso del suelo, debido a las actividades humanas, pueden provocar cambios en la concentración de HCO3. Método de oxidación PTD de fósforo total Adaptado de Koroleff 1983 Método de molibdato PRS inorgánico Murphy y Riley 1962. Las técnicas descritas no pretenden cubrir el universo de la química analítica.
Muestreo, almacenamiento y conservación de las muestras
Si las condiciones lo permiten, se recomienda encarecidamente filtrar inmediatamente las muestras en el campo. La filtración es un paso fundamental en la fase de muestreo y almacenamiento de muestras. La acidificación de muestras a pH = 2 es también otra solución parcial obligatoria para el análisis de DQO.
Material de laboratorio indispensable
Determinación del carbono inorgánico disuelto (CID)
La solución de H2SO4 se coloca en una botella de vidrio de 1000 ml con un dosificador de precisión que indica el volumen de ácido añadido. Agregue dos gotas más de ácido y registre el pH de la muestra y el volumen de ácido utilizado. La solución de H2SO4 se coloca en un matraz de vidrio de 1000 ml con un dosificador de precisión que indica el volumen de ácido añadido.
Materia orgánica disuelta (MOD)
Si se conoce la DQO de la muestra, también se puede calcular el porcentaje de CODB y el porcentaje complementario de CODR (carbono orgánico disuelto recalcitrante). Es un índice desarrollado para agua dulce que permite indicar el origen de la MOD: terrestre (con mayor contenido de anillos aromáticos en compuestos húmicos) o microbiano. Mida la fluorescencia en una cubeta de cuarzo de la muestra y blanco a 370 nm de excitación y 450 y 500 nm de emisión (si el fluorómetro lo permite, escanee la emisión de fluorescencia entre 400-700 nm y ajuste la excitación a 370 nm para verificar que la fluorescencia máxima ocurre en aproximadamente 450 nm de emisión).
Nitrógeno inorgánico disuelto
Mezcle cadmio con acetona para eliminar las partículas orgánicas adheridas a la superficie del metal. Introducir el cadmio puro en 25 ml de una solución diluida de cloruro de amonio. Para este análisis se necesita concretamente: una espátula para retirar el cadmio durante el proceso de activación y una bureta de vidrio de 50 ml en la que se coloca el cadmio activado sumergido en una solución diluida de cloruro de amonio.
Fósforo
- Bibliografía
Pesar sucesivamente 11,2 g de molibdato de amonio tetrahidrato [(NH4)6Mo7O24.4H2O] y diluirlos poco a poco en la solución. Se puede conservar en la oscuridad, en el frigorífico, hasta que adquiera un color rosado. Durante la digestión, todo el PTD se oxida a fosfatos y posteriormente se cuantifica su contenido mediante el método del molibdato descrito anteriormente (técnica 12a).
Retención de nutrientes en ecosistemas fluviales
Introducción
Existen varias métricas para expresar la retención de nutrientes en los ríos, pero todas derivan de la distancia de asimilación (Stream Solute Workshop 1990). Esquema del montaje de la sección experimental para realizar una adición continua de nutrientes. La concentración estimada de nutrientes en la solución depende del caudal y de la concentración basal de nutrientes en la corriente en el momento de la adición.
Bibliografía
Una vez obtenidos estos parámetros e incluidos en el modelo, se reparametriza el modelo para obtener las tasas de retención en función del tiempo en el canal principal (λ, en s–1) y en la zona de retención temporal (λS, en s–1 ), utilizando los datos de variación de la concentración de nutrientes durante la adición. Una vez conocidos λ y λS, la suma de ambas velocidades es igual a Kto obtenido de la ecuación 8.9. Más detalles sobre la aplicación de este modelo y el posterior desarrollo de los cálculos se pueden encontrar en Runkel (2007).
Otros factores físicos de importancia para los seres vivos: luz, temperatura, corriente
- Introducción
- La temperatura del agua
- La disponibilidad de la luz
- La velocidad de la corriente
- Estima de la luz disponible en un tramo
- Medición de la corriente
- Bibliografía
Otro factor que más determina la distribución de organismos en los ecosistemas lóticos es la velocidad de la corriente. La velocidad de la corriente se puede medir en muchas escalas diferentes, dependiendo de los objetivos del trabajo. Corrija los datos de irradiancia obtenidos de la estación meteorológica (como se describe anteriormente) para la cobertura.
Dinámica y relevancia de la materia orgánica
Introducción
Desde el punto de vista de la persistencia, se puede distinguir entre dos grupos de sustancias en la materia orgánica (Wetzel 2001). El origen alóctono de la mayor parte de la materia orgánica en ciertos tramos o ríos determina la naturaleza heterótrofa de estos sistemas (Vannote et al. 1980), que tienen una base energética para consumidores y descomponedores mucho más amplia que la proporcionada por la fotosíntesis dentro del río. Se puede encontrar información adicional sobre técnicas relacionadas con el estudio de la materia orgánica en los ríos en Hauer y Lamberti (2007).
Entradas de materia orgánica particulada gruesa al río
Selecciona aleatoriamente, a lo largo de ambas orillas del canal, los puntos donde colocarás trampas para atrapar las entradas laterales y alinealas con el marco inferior de la boca a nivel del suelo (fig. 10.8). Con ayuda de una cinta métrica, una regla y un correntímetro, se determina la sección superior del segmento del río, así como el caudal (técnica 3). Calcule el volumen de agua filtrada por cada malla en movimiento multiplicando la sección transversal de la malla por la velocidad del agua que la atraviesa.
Retención de hojarasca
Una hora después de soltar las hojas, recoja y cuente las hojas que quedan en la red. Para ajustar los datos al modelo, calcule la regresión entre el logaritmo natural del número de hojas transportadas y la distancia. Para calcular la eficiencia de retención relativa de cada tipo de estructura, divida el porcentaje de hojas que retiene una estructura por el porcentaje de lecho húmedo que cubre esa estructura.
Materia orgánica particulada bentónica
En el caso de una muestra, ésta podrá recogerse en la misma bolsa que el material aquí recogido. Para estimar el MOPG bentónico, se deben muestrear canales tanto húmedos como secos. Si no puedes procesarlos inmediatamente, congélalos hasta que sean analizados.
Cantidad de madera en el cauce
Si el estudio implica varios muestreos a lo largo del tiempo, se pueden realizar mensualmente, incrementándolo (por ejemplo, a dos veces al mes) en los momentos de mayores flujos. Medición de peso de ceniza (PC): colocar los recipientes en estufa y calcinar a 500 ºC durante 4 horas, enfriar en desecador y pesar. Además de cuantificar la cantidad de madera en el canal, es de interés observar la dinámica temporal de su movimiento en el canal, especialmente desde el punto de vista de su gestión.
Descomposición de la hojarasca
La tasa de descomposición de la materia orgánica aumenta con la temperatura, por lo que cambia según la estación (Figura 10.13). Pérdida de masa en función del tiempo (izquierda) y grados día (derecha) de follaje de aliso en un arroyo del norte de España. Si se utilizan bolsas con diferentes tamaños de poro se puede estudiar el efecto de excluir algunos invertebrados, variando según su tamaño.
Balances de materia orgánica particulada gruesa en sistemas fluvialesen sistemas fluviales
- Bibliografía
La Tabla 10.2 muestra las tasas de recuperación de MOPG en varios ríos en todo el mundo. Tasas de recuperación (aportes terrestres/acumulación en lecho) de materia orgánica (excluyendo grandes restos leñosos) en diferentes ríos. Determine las tasas de degradación, k, de los componentes MOPG utilizando la técnica 20.
La biota de los ríos
Introducción
El modo de vida de los hongos acuáticos es muy diferente al de las bacterias, ya que forman filamentos (hifas) y se reproducen mediante esporas. Desempeña un papel fundamental en la descomposición de la materia orgánica en los ríos (Pascoal y Cássio 2008). Las ramas de los conidios de los hifomicetos acuáticos producen moco que facilita la adhesión a los sustratos que colonizan y descomponen, especialmente las hojas de la vegetación ribereña (Gessner et al. 2007).
Toma de muestras de microorganismos heterotróficos fluvialesfluviales
Como medida de la actividad de estos microorganismos y su papel en el ecosistema fluvial se incluyó la tasa de esporulación en hongos (técnica 26) y mediciones de actividades enzimáticas extracelulares (técnica 27). Sin embargo, otras técnicas no se incluyen en este capítulo, como la medición de la producción microbiana mediante la incorporación de acetato, glucosa, timidina o leucina radiomarcados (técnicas que se encuentran en muchos manuales específicos), ni técnicas microscópicas. técnicas que permiten el análisis de la arquitectura de la comunidad microbiana bentónica, como el uso de microscopía confocal o de barrido.
Densidad y biomasa de bacterias fluviales
El raspado se puede combinar con sonicación para una correcta extracción de la muestra del sustrato. Es importante utilizar siempre el mismo método para extraer la muestra de sustrato para un estudio. Es recomendable tomar un volumen de la suspensión y diluirlo hasta un volumen final de 5 ml.
Biomasa de hongos
Las muestras deben protegerse de la luz, ya que el ergosterol puede sufrir degradación fotoquímica. La concentración de ergosterol en cada muestra se calculó a partir del volumen final del extracto y el peso seco o peso seco libre de cenizas de la muestra de hoja o madera (por ejemplo, μg de ergosterol/g de peso seco). La concentración de ergosterol también se puede expresar en función de la superficie (cm2) del sustrato analizado.
Comunidad microbiana: métodos moleculares de estudio de la diversidadde estudio de la diversidad
Añadir 750 l de la solución de CI (cloroformo: alcohol isoamílico) y homogeneizar bien agitando, emulsionando los dos medios. Añadir 750 l de la solución de PCI (fenol:cloroformo:alcohol isoamílico) y homogeneizar bien agitando, emulsionando los dos medios. Al tubo Falcon 2, añadir 4 ml de la solución PCI (fenol:cloroformo:alcohol isoamílico) y homogeneizar bien agitando.
