UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ
FACULTAD DE AGRONOMÍA
MULTIPLICACIÓN RÁPIDA DE CLONES (G
1) PARA LA PRODUCCIÓN DE TUBÉRCULOS DE PAPA (G
2) EN LA
E.E.A. EL MANTARO-U.N.C.P.
TESIS
PRESENTADA POR EL BACHILLER :
JORGE RENZO MOMEDIANO CUELLAR
PARA OPTAR EL TÍTULO PROFESIONAL DE:
INGENIERO AGRÓNOMO
EL MANTARO-PERÚ
2023
ASESOR:
ING. GUSTAVO S. OSORIO PAGÁN
A mis padres Jorge y Frela, por ser pilares importantes en mi vida consagrando mi formación vocacional para poder ser un hombre de bien para la sociedad y para dar mi apoyo en sí a los agricultores con las experiencias que aprendí y aprenderé durante mi vida.
A la papa; tubérculo sagrado y humilde, atesorado por nuestros campesinos.
AGRADECIMIENTO
Primeramente; elogiar a mi asesor Ing. Gustavo Osorio Pagán y al Centro de investigación de Cultivos Agrícolas (CICA), por haber tenido para conmigo su apoyo y paciencia por poder guiarme en este capítulo vocacional de mi vida.
Hago mención particular a mi respetada Facultad de Agronomía por educarme en los años de mi estancia en sus instalaciones.
Por su estima, vivencia y sostén prestado; a mis consanguíneos y compañeros para el apogeo de mi vocación.
ÍNDICE
RESUMEN ... I INTRODUCCIÓN ... II
1. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA ... 1
1.1 MARCOCONCEPTUAL ... 1
1.1.1 Brote ... 1
1.1.2 Tubérculo... 1
1.1.3 Ácido giberélico ... 1
1.1.4 Cápsula de enraizamiento ... 1
1.1.5 Trasplante ... 1
1.1.6 Maceta ... 1
1.1.7 Producción ... 2
1.1.8 Variedad ... 2
1.1.9 Cultivar ... 2
1.1.10 Multiplicación de brotes... 2
1.1.11 Reposo ... 2
1.1.12 Brotamiento apical ... 2
1.1.13 Brotamiento múltiple ... 2
1.1.14 Almacenamiento en luz difusa ... 3
1.1.15 Almacenamiento en oscuridad ... 3
1.2 MARCOTEÓRICO ... 3
1.2.1 Importancia del cultivo ... 3
1.2.2 Producción nacional ... 4
1.2.3 Características generales ... 4
1.2.4 Composición nutricional ... 4
1.2.5 Almacenamiento ... 5
1.2.5.1 Almacenamiento a luz difusa ... 5
1.2.5.2 Almacenamiento en oscuridad ... 6
1.2.6 Conducción del cultivo ... 7
1.2.6.1 Desinfección de la semilla ... 7
1.2.6.2 Siembra ... 7
1.2.6.3 Preparación de suelo ... 7
1.2.6.4 Preparación de los surcos ... 8
1.2.6.5 Trasplante ... 8
1.2.6.6 Nutrición y fertilización ... 8
1.2.6.7 Abonamiento ... 8
1.2.6.8 Riegos ... 9
1.2.6.9 Manejo de malezas ... 9
1.2.6.10 Aporque ... 10
1.2.6.11 Cosecha ... 10
1.2.7 Requerimiento del cultivo ... 11
1.2.7.1 Temperatura ... 11
1.2.7.2 Agua ... 11
1.2.7.3 Heladas ... 11
1.2.7.4 Humedad ... 11
1.2.7.5 Suelo... 12
1.2.7.6 Luz ... 12
1.2.8 Desarrollo fisiológico ... 12
1.2.9 Tubérculo... 13
1.2.10 Ojos ... 13
1.2.11 Yemas ... 14
1.2.12 Brotes ... 15
1.2.13 Multiplicación rápida ... 15
1.2.14 Multiplicación por brotes ... 16
1.2.15 Obtención y uso de brotes ... 17
1.2.16 Ventajas del uso de brotes mediante la multiplicación rápida ... 17
1.2.17 Desventajas del uso de brotes ... 17
1.2.18 Tuberización ... 18
1.3 MARCOREFERENCIAL ... 18
2. MATERIALES Y MÉTODOS ... 20
2.1 LUGARDEEJECUCIÓN ... 20
2.1.1 Ubicación política ... 20
2.1.2 Ubicación geográfica ... 20
2.1.3 Inicio y Finalización del experimento ... 20
2.2 METODOLOGÍA ... 20
2.2.1 Métodos de la investigación ... 20
2.2.2 Diseño metodológico ... 21
2.2.2.1 Población y muestra ... 21
2.2.3 Diseño experimental ... 21
2.2.4 Croquis experimental ... 22
2.3 CONDUCCIÓNDELEXPERIMENTO ... 23
2.3.1 Primera fase ... 23
2.3.1.1 Selección de tubérculos para el experimento ... 23
2.3.1.2 Desinfección del tubérculo semilla ... 23
2.3.1.3 Inducción al brotamiento ... 23
2.3.1.4 Tipo de almacenamiento ... 23
2.3.1.5 Siembra de los tubérculos semilla en tápers. ... 23
2.3.1.6 Preparación de cápsulas de enraizamiento ... 24
2.3.1.7 Trasplante a las cápsulas de enraizamiento ... 24
2.3.2 Segunda fase ... 24
2.3.2.1 Preparación del terreno ... 24
2.3.2.2 Trasplante al campo definitivo ... 24
2.3.2.3 Fertilización ... 25
2.3.3 Labores culturales ... 25
2.3.3.1 Riegos ... 25
2.3.3.2 Deshierbos ... 25
2.3.3.3 Aporques ... 25
2.3.3.4 Control fitosanitario ... 26
2.3.3.5 Cosecha ... 26
2.4 EVALUACIONESREGISTRADAS ... 26
2.4.1 Número de plántulas por brote ... 26
2.4.2 Porcentaje de establecimiento en cápsulas de enraizamiento ... 26
2.4.3 Porcentaje de establecimiento en el campo ... 26
2.4.4 Altura de planta... 27
2.4.5 Vigor de tallo ... 27
2.4.6 Inicio de floración ... 27
2.4.7 Inicio de fructificación... 27
2.4.8 Número de tubérculos por planta ... 28
2.4.9 Peso de tubérculos por planta ... 28
2.5 PROCESAMIENTODELOSDATOS ... 28
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ... 29
3.1 NÚMERODEPLÁNTULASPORTUBÉRCULO ... 29
3.2 ESTABLECIMIENTO ... 29
3.3 ALTURADEPLANTA ... 30
3.4 NÚMERODETUBÉRCULOSPORPLANTA ... 31
3.5 PESODETUBÉRCULOSPORPLANTA ... 33
CONCLUSIONES ... 35
RECOMENDACIONES ... 36
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ... 37
ANEXOS ... 42
ÍNDICE DE FIGURAS Figura 1. Taxones en los que se encuadra la papa. ... 4
Figura 2. Brotes desarrollados a luz difusa los cuales tienen una forma más definida y coloración más intensa. ... 6
Figura 3. Brotes con ausencia de luz sin un color intenso (a) y largos presentando raíces (b). ... 6
Figura 4. Etapas del desarrollo fisiológico en el tubérculo semilla………...12
Figura 5. Partes del tubérculo de papa; donde a) ojos, b) yemas, c) cejas, d) lenticelas. .. 13
Figura 6. Ojo con su respectiva ceja donde su color define a la variedad o cultivar, con yemas en letargo. ... 14
Figura 7. Yema en pleno desarrollo creando un brote. ... 14
Figura 8. Partes del brote de papa. ... 15
Figura 9. Brotamiento múltiple, donde cada brote genera una planta independiente que forma un conglomerado de plantas a lo cual los agricultores le llaman una “mata” de planta. ... 16
Figura 10. Tratamientos en estudio. ... 21
Figura 11. Croquis del experimento. ... 22
Figura 12. Escala de establecimiento. ... 27
ÍNDICE DE TABLAS Tabla1. Número promedio de plántulas por tubérculo en la fase de invernadero ... 29
Tabla 2. Establecimiento en las cápsulas de enraizamiento (48 horas después de la plantación de plántulas). ... 29
Tabla 3. Establecimiento en campo definitivo después del trasplante. ... 30 Tabla 4. Análisis de varianza de la altura de la planta a los 90 días después del trasplante.
... 30 Tabla 5. Prueba de significación de los promedios de los tratamientos de la altura de planta a los 90 días después del trasplante, según Tukey. ... 31 Tabla 6. Análisis de varianza del número de tubérculos por planta. ... 31 Tabla 7. Prueba de significación de los promedios de los tratamientos del número de los tubérculos por planta, según Tukey. ... 32 Tabla 8. Análisis de varianza del peso de tubérculos por planta. ... 33 Tabla 9. Prueba de significación de los promedios de los tratamientos del peso de los tubérculos por planta, según Tukey ... 34
I
RESUMEN
Este trabajo se realizó en la E.E.A El Mantaro-UNCP, en la campaña 2019-2020; ya que la problemática resaltante de la papa se da en la ausencia de tubérculos semilla de calidad genética, dando origen al presente trabajo con la finalidad de resolver en cierto grado este problema. Los objetivos fueron: a) determinar la influencia de la multiplicación rápida de los clones (G1) en la producción de tubérculos papa (G2), b) determinar el número de plántulas que se obtienen de cada tubérculo de papa (G1) en la fase de multiplicación rápida y c) comparar los clones de acuerdo al número y peso de tubérculos por planta. Se utilizó, el diseño de BCR con 5 tratamientos (clones) y 3 repeticiones. Los resultados fueron: Con la multiplicación rápida de clones (G1) se obtuvo una eficiencia en la obtención de plántulas y en la producción de tubérculos (G2). En las cápsulas de enraizamiento se obtuvo un 100
% de establecimiento; mientras que, en la fase de campo el establecimiento osciló desde 96 a 99 %. Se obtuvo un promedio de 27.92 plántulas por tubérculo. El número de plántulas por tubérculo de papa (G1) oscilaron desde 23.4 hasta 33.6. Los clones (GOP-031734.6) y (GOP-031712.5) produjeron promedios de tubérculos por planta de 20.333 y 17.667 respectivamente. En el peso de tubérculos sobresale el clon (GOP-031734.6) con un promedio de 1.005 kilogramos por planta. En la altura de planta los clones (GOP-031734.6) y (GOP-031724.5) sobresalen con los promedios 66.583 y 59.417 metros.
II
INTRODUCCIÓN
“La papa es el cuarto producto más importante, detrás del maíz, el arroz y las hortalizas; es un componente del sistema alimentario mundial y en Perú enfrenta importantes desafíos para alcanzar su máximo potencial”. (MINAGRI,2020, p.5).
Siendo así, “las plantas derivadas de semillas con buenas cualidades genéticas, fisiológicas, higiénicas y físicas, con buen crecimiento foliar y vigor, son superiores en cuanto a tolerancia y/o resistencia a la aparición de plagas y enfermedades”. (Arcos et. al, 2020, p.20).
Además, citando a Zenón (2014) nos menciona que “en nuestro país, existe una dificultad de conseguir tubérculo semilla de calidad y se tiene poco control sobre el ambiente de producción (heladas, sequías, plagas y enfermedades); con ello, además de tener poca diversidad genética en cultivares y variedades, también manejan inadecuadamente la semilla en sus almacenes tradicionales , creando campos de mala calidad con rendimientos muy bajos”. (p.5).
Complementando lo anterior, “como su tasa de multiplicación aumenta, nos damos cuenta que, de 8 brotes de un tubérculo de 60 a 80 gramos, se obtienen en 2 cosechas de brotes aproximadamente 108 tubérculos. Este método de uso de brotes para multiplicar tubérculos semilla produce un resultado efectivo, logrando que se beneficien a lo largo de muchos períodos difíciles”. (INIAP, 2006, p.1).
El siguiente trabajo de tesis ha sido creado como una de las alternativas de solución, utilizando la inducción de brotación para la obtención de plántulas mediante la multiplicación rápida de clones (G1), con lo cual ayudaremos a incrementar la cantidad suficiente de tubérculos - semilla aprovechando su potencial productivo así como incrementar la variabilidad genética de los cultivares, ya que uno de los factores más limitantes para la producción de estos tubérculos a partir de cultivares comerciales es su baja tasa de multiplicación. Como resultado, trabajamos para garantizar que nuestros agricultores sean bien recibidos por su producción de alta calidad en el mercado peruano y que tengan un mejor
III
acceso a semillas de tubérculos de alta calidad, lo que aumentará sus beneficios económicos.
Para lo cual se tuvo en cuenta los siguientes objetivos:
a) Determinar la influencia de la multiplicación rápida de los clones (G1) en la producción de tubérculos papa (G2).
b) Determinar el número de plántulas que se obtienen de cada tubérculo de papa (G1) en la fase de multiplicación rápida.
c) Comparar los clones de acuerdo al número y peso de tubérculos por planta.
1
1. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA
1.1 MARCO CONCEPTUAL
1.1.1 Brote
“Tallo del ojo del tubérculo. Donde su apariencia y tamaño cambian según las condiciones de almacenamiento del tubérculo; donde, cada brote dará lugar a un tallo”. (Otiniano, 2017, p.7).
1.1.2 Tubérculo
“Parte comestible donde se almacenan los almidones, es el fruto agrícola”. (Otiniano, 2017, p.8).
1.1.3 Ácido giberélico
“Extiende las células, intensificando la dominancia apical, incentivando y dando mucho beneficio al brotamiento apical y múltiple”. (Bayer, 2021, párrafo 2).
1.1.4 Cápsula de enraizamiento
“Recipiente pequeño de papel que almacena la mezcla de musgo y tierra a una proporción 1:2 facilitando el trasplante al campo definitivo”. (Osorio, 2008).
1.1.5 Trasplante
“Traslado de las plántulas de origen sexual o vegetativo desde su obtención en el cobertor hasta el campo definitivo al estar disponibles teniendo una altura adecuada ”. (Osorio, 2008).
1.1.6 Maceta
“Contenedor que se utiliza tanto para el cultivo de plantas de interior como de exterior”.
(Boletín agrario, 2006, párrafo 5).
2
1.1.7 Producción“Referido sobre un bien o servicio y su capacidad para satisfacer las necesidades del cliente”.
(Nicholson, 2011, p.47).
1.1.8 Variedad
“Son plantas nativas conservadas dentro de un banco de germoplasma”. (Osorio, 2013).
1.1.9 Cultivar
“Es creado por el hombre mediante el mejoramiento genético y se cultiva en grandes extensiones”.
(Osorio, 2013).
1.1.10 Multiplicación de brotes
“Plantación de brotes producidos por dominancia apicalhasta llegar al punto del brotamiento múltiple en los tubérculos semilla”. (Méndez y Sotomayor, 2009, p.107).
1.1.11 Reposo
“Los tubérculos semilla no liberan brotes durante esta etapa, a pesar de estar comprometidos a circunstancias espléndidas para su desarrollo.” (Orena y Rojas, 2012, p.3).
1.1.12 Brotamiento apical
“Origen y desarrollo de un brote en el tercio apical del tubérculo semilla que debe ser almacenado en luz difusa”. (Orena y Rojas, 2012, p.3).
1.1.13 Brotamiento múltiple
“Etapa en la cual la dominancia apical se extiende desde el tercio apical hacia el tercio basal y tercio medio del tubérculo semilla”. (Orena y Rojas, 2012, p.3).
3
1.1.14 Almacenamiento en luz difusa“Con la ayuda de cajones de madera se colocan las semillas, de 3 a 4 niveles con separación entre ellos para facilitar el ingreso de luz y se protegen con un techo de paja, de las lluvias y heladas”. (INIA, 2008, p.5).
1.1.15 Almacenamiento en oscuridad
“Es un almacenamiento que se usa tradicionalmente como son los pilones, taques y trojas en los cuales no ingresa la luz, pero tienen ductos o chimeneas para la circulación del aire”.
(INIA, 2008, pp.4-5).
1.2 MARCO TEÓRICO
1.2.1 Importancia del cultivo
Según MINAGRI (2015) afirma que“siendo una gran aportación en la región andina de nuestro país; y para que nosotros fortalezcamos la seguridad alimentaria, este cultivo debe de ser muy consumido y apreciado”. (Sección Generalidades del producto, párrafo 4).
Asimismo, ANDINA (2012) nos menciona que “la papa tiene el fin de preservar los recursos naturales, avalar la estabilidad alimenticia, y en industrializarse a través de proyectos productivos”. (párrafos 5-7).
Y también, es importante de acuerdo a Egúsquiza y Catalán (2011) “ya que atribuye un gran valor nutricional; adecuándose a las circunstancias, tradiciones o hábitos de nuestra sierra peruana, y como los distintos implicados en su producción y distribución comprometen mucho en su economía”. (p.3).
Según Egúsquiza y Catalán (2011)
“
genera oportunidades de negocio para millones de familias del campo de bajos ingresos que vieron una gran oportunidad en este cultivo comercial recurriendo a su valor nutricional en la lucha ante el hambre y reforzar la seguridad alimentaria de los consumidores ante momentos agrestes que suscita en el mundo”. (p.3).4
1.2.2 Producción nacionalSegún lo informado en marzo por el INEI (2022) “la producción nacional es de 542 mil 47 toneladas y los departamentos que resaltan son de Ayacucho (31,0 %), La Libertad (22,9 %), Puno (21,1 %) y Huánuco (14,1%) sumando el 52,9 % de todo el Perú. Y también, se menciona que además de otros departamentos; en nuestra región Junín la producción disminuyó desde el 2020 (-29,8 %) y ahora en el 2022 (-12,2 %), todo ello por la ausencia de agua, la presencia de rancha y la situación mundial del COVID-19”. (p.1).
1.2.3 Características generales
De acuerdo a Jimenez (2008) “la procedencia de este tubérculo se encuentra en medio de las regiones de Cuzco y Puno al analizar el ADN de 261 variedades y 98 cultivares”. (p.2).
Taxonomía Figura 1.
Taxones en los que se encuadra la papa.
Fuente: (Chase & Reveal, 2009, pp.122-127).
1.2.4 Composición nutricional
Según Borba (2008) “este tallo modificado almacena nutrientes, así como proteínas, hidratos de carbono y vitamina C los cuales lo consagran con un mérito energético”. (p.2).
También, vemos que la papa de acuerdo a Jimenez (2008) está compuesto nutricionalmente por:
Reino Plantae
División Equisetophyta Clase Equisetopsida Subclase Magnoliidae Superorden Asteranae
Orden Solanales
Familia Solanaceae
Genero Solanum
Especie Solanum tuberosum L.
5
1. Carbohidratos: Se encuentra en forma de almidón y azúcares como la glucosa, fructosa y sacarosa.
2. Proteínas: Donde de 100 gramos del tubérculo se encuentra el 2%
aproximadamente.
3. Grasas: Tiene pocas calorías, aunque sí aumenta si se elaboran con insumos que contengan grasa.
4. Vitaminas y Minerales: Tiene cantidades resaltantes de vitamina C, así como de otras vitaminas hidrosolubles (tiamina, niacina y riboflavina) aunque la cantidad depende de la variedad o cultivar, así como de su color de pulpa.
En la piel del tubérculo encontramos también, cantidades de potasio, fósforo, cloro, azufre, magnesio y hierro.
5. Antioxidantes: Estos actúan ante el envejecimiento.
6. Valor energético, calorías: Donde de 100 gramos del tubérculo se obtienen alrededor de 87 kilocalorías, por lo que se sujeta a otros insumos y su modo de elaboración. (pp. 3-4).
1.2.5 Almacenamiento
“Son las condiciones óptimas que se da al tubérculo semilla, ante la disminución de materia seca y recurso hídrico, así como falta de peso ocasionada en su fisiología, morfología o por la presencia de plagas y enfermedades lo que influye en los daños y pérdidas que se puede originar dando como consecuencia a que se desperdicie y que puede ser prevenida con su uso conociendo el estado y tipo de almacén que se utilizará”. (Zenón, 2014, p.15).
1.2.5.1 Almacenamiento a luz difusa
“
Al tener luz presente en el almacén para los tubérculos semilla, se reprime transitoriamente el desarrollo y crecimiento de los brotes (etapa de reposo); y luego estos brotes crecerán pequeños, pero con vigor originando muchos tallos, elevados rendimientos y acortando la fenología del cultivo”. (Orena y Rojas, 2012, p.3).6
Figura 2.Brotes desarrollados a luz difusa los cuales tienen una forma más definida y coloración más intensa.
Fuente: (Zenón, 2014, p.11).
Además, “preserva óptimamente aportando una buena ventilación al tubérculo semilla, dando mejores condiciones fisiológicas y agronómicas. Como también el de proteger del ingreso de plagas y si existe algún tubérculo con alguna enfermedad de pudrición, solo tiende a secarse sin afectar al resto”. (Zenón, 2014, pp.18-19).
1.2.5.2 Almacenamiento en oscuridad
“Al tener ausencia de luz y ventilación evita que los tubérculos se verdeen y produzcan solanina (alcaloide tóxico); y asimismo no permitir el crecimiento favorable de sus brotes”.
(Orena y Rojas, 2012, p.3).
Figura 3.
Brotes con ausencia de luz sin un color intenso (a) y largos presentando raíces (b).
Fuente: (Zenón, 2014, p.11).
a b
7
Así mismo, de acuerdo a Zenón (2014) “se desarrollan más rápido las yemas que se encuentran en el tercio apical del tubérculo, pero se forman unos brotes largos y sin vigor hasta con presencia de raíces siendo muy susceptibles a enfermedades de pudrición”. (p.16).
1.2.6 Conducción del cultivo
1.2.6.1 Desinfección de la semilla
Según (Arysta, s.f.) nos menciona que, “para evitar cualquier enfermedad por pudrición en los tubérculos, se usa 500 gramos de Vitavax para un tanque de 100 litros de agua y se mezcla bien, luego de 1- 2 minutos se ponen en canastas introduciéndolos en el tanque de agua y luego se les deja en la sombra para que se escurran y sequen para la siembra.” (p.2).
1.2.6.2 Siembra
Según la FAO (2009) “se realiza con tubérculos semilla de 30 a 40 gramos, con brotes vigorosos sin enfermedades; introduciéndolos a 10 centímetros del suelo” (p.20), “y para facilitar el trabajo en campo los tubérculos semilla se deben de colocar al centro del surco”
(Pumisacho y Sherwood, 2002, p.80).
Además, según Zenón (2014) señala que “también existe la manera de sembrar los brotes con o sin raíces directamente al suelo viendo el tamaño del campo y la disponibilidad del recurso hídrico”. (p. 35).
1.2.6.3 Preparación de suelo
“Para facilitar el desarrollo de las plántulas, brotes o tubérculos es recomendable que sean suelos sueltos, que tengan mucha materia orgánica y con un buen paso del aire y agua” (FAO, 2009, p.20); seguidamente, “se toman en cuenta la existencia de diversos patógenos, la presencia de agregados; y la pendiente (no mayor a 20%)”. (Pumisacho y Sherwood, 2002, p.51).
8
1.2.6.4 Preparación de los surcosSegún Egúsquiza y Catalán (2011) indican que “esta labor debe de realizarse el mismo día que se realizará el trasplante o la siembra del tubérculo el cual se colocará al medio del surco introduciéndolo lo más adentro posible con la ayuda de las herramientas que se dispongan para su labor y con la disponibilidad del recurso hídrico, a una distancia de 90 centímetros a 1,60 metros entre surcos que cambiará de acuerdo al cultivar o variedad”. (p.15).
1.2.6.5 Trasplante
Para realizar el trasplante en campo de acuerdo a Zenón (2014) se recomienda “realizar al medio o en la costilla del surco y a una buena profundidad, con la disponibilidad del recurso hídrico para mantener la humedad o ya sea en temporadas de lluvia, para después con la tierra se cubra con cuidado”. (p.35).
1.2.6.6 Nutrición y fertilización
Según Inostroza y Méndez (2009), los nutrientes de mayor influencia son “altas cantidades de potasio (K), sodio (Na) o nitrógeno (N) y pequeñas dosis de cloro (Cl) ya que ayudan a contrarrestar los golpes; también se debe evitar el nitrógeno (N) en alta cantidad ya que aumenta la susceptibilidad a los patógenos, pero una mayor disposición del calcio (Ca) ayuda a la resistencia a la pudrición, ambos en su almacenamiento”.(p.73).
Para complementar; “se ve que este cultivo no necesita muchos fertilizantes y donde solo se aplica por la técnica de golpes al momento de la siembra o trasplante y cuando se realizan los aporques”. (Zenón, 2014, p.35).
1.2.6.7 Abonamiento
De acuerdo a Egúsquiza y Catalán (2011) indican que “como compost o al estar en descomposición, es un factor muy favorable para captar recurso hídrico y nutrientes para el suelo ayudando así al desarrollo del sistema radicular y de microorganismos”. (p.17).
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Además, “nutren a la planta para su desarrollo y producción para luego devolver al suelo lo que se obtiene al cosechar”. (Egúsquiza y Catalán, 2011, p.16).
“Aunque siendo cierto que nos dan mejores beneficios y querer usarlo de forma constante a comparación de la manera realizada con los fertilizantes químicos su costo para su traslado y aplicación a campo donde especialmente sean de gran extensión, son económicamente altos”. (Pumisacho y Sherwood, 2002, p.68).
1.2.6.8 Riegos
Según Zenón (2014) nos menciona que, “se debe regar un día anticipado y después de realizar el trasplante para mantener la humedad, donde el primer riego será esencial ya que ayuda a que el sistema radicular tenga una fijación favorable al suelo con abono o fertilizante aplicado”. (p.35).
Para complementar, según la FAO (2009) “la ausencia del recurso hídrico es muy significativa en cualquier etapa del ciclo fenológico del cultivo y más aún si se da desde su inicio, causando una baja producción o la pérdida en su mayoría”. (p.22).
También, es muy importante resaltar que “las etapas de floración y tuberización es donde no debe faltar agua, por lo que se debe de tener mucha precaución en periodos de su ausencia prolongada como lo es en verano”. (Pumisacho y Sherwood, 2002, p. 82).
1.2.6.9 Manejo de malezas
“Es indispensable que la cantidad de maleza sea muy baja y que lo ideal para un campo semillero es hacer todo lo posible para tener su ausencia”. (Egúsquiza y Catalán, 2011, p.18).
Además, “si las usamos controladamente como abonos verdes durante el barbecho del suelo que se da mayormente en las rotaciones del cultivo nos facilitará a suprimir su establecimiento”. (Pumisacho y Sherwood, 2002, p.149).
Para complementar, según Egúsquiza y Catalán (2011) “La mayoría de éstas malezas pueden ser hortalizas, medicinales o hasta usadas como forraje por lo que se debe de tener
10
en cuenta su impacto al cultivo viendo su nivel de competencia, el tiempo de cada cuanto aparece en la etapa fenológica de la papa y si es hospedero de patógenos”
.
(p.19).1.2.6.10 Aporque
Según Canqui y Morales (2009) “al tener el suelo húmedo se deben de efectuar en dos oportunidades, donde el primero se realiza cuando se tiene una estatura de 15 centímetros y el segundo cuando tiene una estatura de 25 centímetros, donde el aporque debe tener una buena altura y estar comprimido”. (pp.34-35).
Todo ello, “va de la mano con el control de las malezas que van a favorecer el desarrollo de los tubérculos creando un soporte y una facilidad en la obtención de los mismos”. (Pumisacho y Sherwood, 2002, p.81).
Para complementar, según Egúsquiza y Catalán (2011) nos mencionan que “el aporque tiene como fin principal el de aislar y proteger al cultivo de papa de diversos patógenos, la abundante lluvia, del verdeado y del aumento de malezas”.(p.20)
1.2.6.11 Cosecha
Según la FAO (2009) “para empezar esta labor se realiza en la etapa final de su fenología al ver un amarillamiento total de la planta, ya que es ahí donde los tubérculos a partir de los estolones se da una separación con facilidad. Y es recomendable que al momento de cosechar no se coloquen los tubérculos directamente al suelo del campo sino primeramente colocar algún objeto en donde se pueda depositarlos para protegerlos del ambiente y cualquier patógeno que los invada. (pp.22-23).
Así mismo, “al cosechar se tiene que ver que la apariencia del tubérculo ya que es importante para su comercio tanto en su forma como en su tamaño”. (Pumisacho y Sherwood, 2002, p.82).
11
1.2.7 Requerimiento del cultivo1.2.7.1 Temperatura
Según Zuñiga et al. (2017) “cuando se realiza el trasplante a campo definitivo es recomendable que la temperatura supere los 7 ºC. Aunque, si excede en temperaturas bajas genera tubérculos pequeños sin desarrollo; y a temperaturas altas afecta su forma favoreciendo el desarrollo de plagas y enfermedades” (p.142). También, de acuerdo a La Torre (2012) “se adapta a todo tipo de clima dependiendo de la variedad o cultivar donde también se debe de hacer un buen seguimiento en la conducción del cultivo a su debido tiempo”. (p.5).
El MINAGRI (2015) describe que “a una temperatura 20 °C de obtiene una óptima tuberización se tiene una mejor fotosíntesis e intercambio gaseoso desarrollando mejor así todo el cultivo”.
(Sección Generalidades del producto, párrafo 10-11).
1.2.7.2 Agua
“Se recomienda precipitaciones entre los 500 y 1 200 milímetros anuales”. (La Torre, 2008, p.5). Así mismo, “al instalar el cultivo al campo se debe de tener en cuenta la disponibilidad que cuenta la zona con respecto al recurso hídrico ya que es indispensable para su desarrollo”. (Egúsquiza, 2000, p.89).
1.2.7.3 Heladas
La papa según Zuñiga, et.al (2017) “es sensible a las heladas tempranas en la etapa de emergencia, aunque puede rebrotar y a las tardías en la etapa de floración, retrasando y disminuyendo la tuberización o causando su muerte”. (p.142).
1.2.7.4 Humedad
De acuerdo a Zuñiga, et.al (2017) “la humedad relativa no debe ser ni ausente ni excesiva en toda la etapa fenológica del cultivo ya que puede traer consecuencias negativas”. (p.142).
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1.2.7.5 SueloDe acuerdo a La Torre (2012) “crece mejor en suelos profundos con descanso, con abonamiento, con buen drenaje, viendo también que el pH esté entre 4,5 y 7,5 y si el pH no es óptimo se hace el encalado”. (p.5). Del mismo modo, “se recomienda la presencia de humedad en el suelo y en el caso de no contar con ello el sistema radicular crecerá mucho, y consecuentemente producirá muchos tubérculos pero de poco tamaño”. (Zuñiga, et.al, 2017, p.142).
1.2.7.6 Luz
Según Zuñiga, et.al (2017) nos mencionan que “las horas luz tienen mucha influencia en la fenología del cultivo siendo más relevante en las últimas etapas como la floración y llenado de tubérculos ya que contribuye al rendimiento”. (p.143).
1.2.8 Desarrollo fisiológico
Figura 4.
Etapas del desarrollo fisiológico en el tubérculo semilla.
Fuente: (Orena y Rojas, 2012, p.2).
De acuerdo a Inostroza, et.al (2009) “comprende las etapas de reposo, dominancia apical, brotamiento múltiple y envejecimiento; de los cuales el momento ideal para realizar el trabajo
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de multiplicación es cuando se da el brotamiento múltiple ya que genera muchas plántulas vigorosas en un mismo periodo de tiempo, a cambio que si se realiza en la etapa de reposo o envejecimiento los cuales demoran, tiene un crecimiento desigual, generan pocos rendimientos y hasta causan pérdidas del tubérculo semilla”. (pp.17-18).
1.2.9 Tubérculo
De acuerdo a Zenón (2014) “este tallo modificado de almacenamiento se divide en tres tercios los cuales poseen ojos, yemas, cejas y lenticelas; de los cuales el trabajo se enfoca en el tercio apical para su propagación el cual está más provisto de yemas que producirán brotes de los cuales cada uno de ellos será una plántula”
.
(p.7).Figura 5.
Partes del tubérculo de papa; donde a) ojos, b) yemas, c) cejas, d) lenticelas.
Fuente: (Zenón, 2014, p.7).
1.2.10 Ojos
Inostroza, et. al (2009) nos mencionan que “es el punto de origen para el desarrollo de la multiplicación ya que aquí es donde se generarán las yemas, teniendo una distribución espiralada encontrándose más en conjunto en el tercio apical. Y donde también cada ojo tiene provisto una ceja la cual formará las hojas”. (p.9).
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Además, “de un ojo se pueden desarrollar más de 3 yemas siendo una la principal y las demás laterales, donde son más vistosos en los que tienen una forma redonda que una alargada.”.
(Zenón, 2014, p.8).
Figura 6.
Ojo con su respectiva ceja donde su color define a la variedad o cultivar, con yemas en letargo.
Fuente: (Zenón, 2014, p.8).
1.2.11 Yemas
“Estructuras que contienen muchos meristemas encontrándose al centro de los ojos, dando origen a los brotes, el cual es la parte vegetativa de importancia para la utilizarla en la multiplicación”. (Zenón, 2014, p.9).
Figura 7.
Yema en pleno desarrollo creando un brote.
Fuente: (Zenón, 2014, p.9).
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1.2.12 Brotes“Son plantas completas en miniatura, en donde sus partes están presentes en forma de rudimentos, así como lenticelas o estolones en algunos casos”. (Zenón, 2014, p.10).
Según Inostroza et. al (2009) “su color tanto en su totalidad, en la parte basal como en la parte del ápice es una forma que facilita a identificar a la variedad que pertenece, así también vemos que la parte basal forma la parte subterránea del tallo y la parte del ápice forma la parte aérea”. (p.11).
Además, Pumisacho y Sherwood (2002) nos dicen que “para la labor de multiplicar no se debe de usar tubérculos semillas con una edad fisiológica en reposo o que lleguen al envejecimiento y que no sean ni muy pequeños o grandes en su tamaño”. (p.78).
Figura 8.
Partes del brote de papa.
Fuente: (Zenón, 2014, p.9).
1.2.13 Multiplicación rápida
Según Méndez y Sotomayor (2009) “la multiplicación rápida acorta el periodo vegetativo, aumenta la tasa de multiplicación y la producción de tubérculos semillas, lo cual ayuda a su restablecimiento de las respectivas variedades o cultivares que se trabajen”. (p.107).
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Además, de acuerdo a Ezeta (2001) “en el país la tasa multiplicación del tubérculo semilla en campo es de 1:5 y de 1:10 en condiciones óptimas. Aunque en Europa y Norteamérica es de 1:20 debido al mejor manejo tecnificado que le dan”. (p.5).
1.2.14 Multiplicación por brotes
De acuerdo a Ezeta (2001) “consiste en desarrollar brotes mediante el almacenamiento de luz difusa y recolectarlas luego de pasar la etapa de la brotación múltiple al formarse en plántulas cada una de ellas”, (p.8) “donde este proceso inicia desde el reposo pasando luego a la dominancia apical” (Méndez y Sotomayor, 2009, p.107).
Además, según Inostroza et. al (2009) ”la brotación múltiple desarrolla un crecimiento de manera igual de las plántulas originadas de los brotes de cada yema del tubérculo semilla”.
(p.17).
Citando también a Zenón (2014) “se le considera un punto fuerte para la producción ya que el número de plántulas que se produzcan de cada tubérculo semilla está regido por el mismo número de brotes que se posea en este, donde en promedio se puede obtener de un tubérculo semilla de 3 a 4 brotes y aplicando ácido giberélico se obtienen de 5 a 6 brotes”. (p.19).
Figura 9.
Brotamiento múltiple, donde cada brote genera una planta independiente que forma un conglomerado de plantas a lo cual los agricultores le llaman una “mata” de planta.
Fuente: (Zenón, 2014, p.13).
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1.2.15 Obtención y uso de brotes“Para obtener mejores brotes los tubérculos semilla deben de obtenerse de variedades o cultivares que garanticen obtener un buen rendimiento u otras características favorables que se requieran y no esperar a que lleguen a la etapa de envejecimiento. Y al usar este material vegetativo en la multiplicación rápida, sirve como una gran alternativa tecnológica para el agricultor de pasar de la forma tradicional; ya que se obtienen resultados satisfactorios aumentando la tasa de multiplicación”. (INIAP, 2006, p.1).
1.2.16 Ventajas del uso de brotes mediante la multiplicación rápida
Según INIAP (2006):
➢ Se incrementa el índice de multiplicación al usar brotes para la producción de tubérculo semilla, y reduce el tiempo de la fenología del cultivo.
➢ Resulta benéfico al realizar 2 cosechas de brotes del tubérculo semilla y utilizar este mismo para la siembra sin desperdiciarlo, lo cual es un ahorro importante conjuntamente con otros factores.
➢ Se pueden obtener niveles de producción altos de semillas o tubérculos para el consumo de buena calidad en un espacio relativamente pequeño o grande. (p.5).
Según Zenón (2014):
➢ Este trabajo es fácil y práctico para emplear, además de reducir costos y tiempo.
➢ Se obtienen en su mayoría tubérculos libres de enfermedades.
➢ Es un trabajo el cual se puede planificar desde su inicio según las necesidades que se requieran. (p.42).
1.2.17 Desventajas del uso de brotes
Según INIAP (2006):
➢ En su primera etapa los brotes son muy delicados a los factores adversos.
➢ Se tiene con respecto a la mano de obra, una alta inversión. (p.5).
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Según Zenón (2014):➢ El recurso hídrico es indispensable desde el momento del trasplante por lo que debe tenerse mucha precaución y cuidado en lugares de mayor altitud donde este recurso sea escaso. (p.42).
1.2.18 Tuberización
Zenón (2014) nos menciona que “si se quiere conseguir mayor número o peso de tubérculos por planta se deben de trabajar con tubérculos semilla que las produzcan por genética ya que en su mayoría este método de multiplicación las producirá además de ser uniformes y sanos.
Esta multiplicación rápida por brotes genera como mínimo 0,5 kilogramos de papa lo cual se traduce de 30 a 40 toneladas por hectárea”. (p.41).
1.3 MARCO REFERENCIAL
“La región Junín cuenta con 421 mil 583.4 toneladas de papa producidas durante la campaña agrícola 2020-2021 en ese sentido, de los cuales en porcentaje de siembra se tiene el 31.7
% a las papas de color en el cual se encuentra el cultivar Mariva, el 50.4 % de papas mejoradas encontrándose a los cultivares Yungay y Perricholi y el 17.8 % de papas nativas ubicándose a la variedad Huayro”. (DRA, 2021).
“La importancia que tienen como parentales, en cuanto al cultivar Mariva tiene un porte alto y un mayor tamaño de tubérculos, la variedad Huayro tiene un porte alto, alta cantidad de estolones y una alta cantidad de tubérculos por planta, (Quintana, 2018, pp.28-29) el cultivar Perricholi es dulce, llena de agua y no se oscurece por lo que es usada industrialmente, el cultivar Yungay que se usa mayormente en la cocina, dando buenos rendimientos y soporta periodos de sequía. Complementando, todos estos parentales son de mayor difusión local, regional y nacional; son de mayor rendimiento, son tolerantes a ciertas plagas y enfermedades, se adaptan a la zona sierra y tienen una gran aceptación en el mercado”.
(IDEXCAM, 2018, pp.8-9).
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“En el Perú la mayoría que labora con este cultivo usan tubérculos semilla de procedencia dudosa o que no son de calidad ya que las obtienen de su misma localidad a través de trueques, ferias o mercado; a todo ello se suma el tipo de almacenamiento que usan el cual es de oscuridad en su mayoría y sin sanidad por lo que repercute en su baja tasa de multiplicación, producción y calidad”. (Zenón,2014, p.3). Además, “el Programa de Innovación Agraria en Raíces y Tuberosas del INIA se está difundiendo esta tecnología de la multiplicación eficiente, económica, fácil de aplicar y que se da en grandes proporciones;
utilizando y aprovechando la multiplicación por brotes para obtener un tubérculo semilla de calidad. Todo ello ayuda en la capacidad de producir y aprovechar la rusticidad del potencial productivo de los brotes (mayor a 30 toneladas por hectárea)”. (Zenón,2014, p.3).
Según Ezeta (2001) “gracias al Centro Internacional de la Papa (CIP) con ayuda del proyecto de la Cooperación Técnica Suiza (COTESU), se dio a conocer en el Perú la multiplicación rápida lo cual ayudó mucho a la renovación de tubérculos semilla de cultivares antiguos ya que aumenta la tasa de multiplicación reduciendo así los costos de producción”. (p.1).
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2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LUGAR DE EJECUCIÓN
El trabajo de investigación se ejecutó en el distrito de El Mantaro-Jauja en la Estación Experimental Agronómica “El Mantaro” de la Universidad Nacional del Centro del Perú.
2.1.1 Ubicación política
Lugar : E.E.A. “El Mantaro”
Distrito : El Mantaro Provincia : Jauja Región : Junín 2.1.2 Ubicación geográfica
Altitud : 3 320 msnm
Latitud Sur : 11° 49‟ 13” del Ecuador
Longitud Oeste : 75° 23‟ 17” del Meridiano de Greenwich
2.1.3 Inicio y Finalización del experimento
Este trabajo de investigación se realizó durante la campaña 2019-2020.
2.2 METODOLOGÍA
2.2.1 Métodos de la investigación
La presente tesis elaborada de manera empírica consiste en lograr del mayor número de plántulas a partir del tubérculo madre y posteriormente su producción de campo de los cinco clones en estudio.
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Figura 10.Tratamientos en estudio.
2.2.2 Diseño metodológico
2.2.2.1 Población y muestra
Población: Compuesta por las plantas de papa en su totalidad del experimento.
Muestra: Compuesta por 5 plantas de papa por tratamiento y por repetición.
Características del experimento
➢ Número de tratamientos : 5
➢ Número de repeticiones : 3
➢ Número de plantas por tratamiento : 20
➢ Longitud de surco : 3 m
➢ Distancia entre surcos : 0,90 m
➢ Distancia entre plantas : 0,30 m
➢ Número de surcos por parcela : 2
➢ Área de parcela : 5,4 m2
➢ Área neta experimental : 81 m2
➢ Área total experimental : 143 m2
➢ Fórmula de fertilización : 180-180-180 kg.ha-1 NPK
2.2.3 Diseño experimental
En el presente trabajo de investigación se empleó el diseño de bloque completamente randomizado con 5 tratamientos (clones) con 3 repeticiones.
Tratamiento (Clon) Código CICA Parentales
1 GOP-031721.2 Perricholi x Yungay
2 GOP-031724.5 Perricholi x Huayro
3 GOP-031734.6 Mariva x Huayro
4 GOP-031721.6 Perricholi x Yungay
5 GOP-031712.5 Yungay x Perricholi
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Modelo aditivo lineal del BCR en parcelas divididas
Donde:
Xijk = Observación cualesquiera dentro del experimento.
µ = Media poblacional.
Ƭi = Efecto aleatorio del i-ésimo tratamiento.
βj = Efecto aleatorio del j-ésimo bloque o repetición.
εij = Error experimental.
i = 1, 2, 3, …, t; tratamientos.
j = 1, 2, 3, …, r; bloques o repeticiones.
2.2.4 Croquis experimental
Figura 11.
Croquis del experimento.
1.8 m
3 m
1 m
1 2 3 1 m
13 m
11 m
4 2 3 5 1
4 5
2 4 5 1 3
Xijk =µ + Ƭi + βj + εij
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2.3 CONDUCCIÓN DEL EXPERIMENTO2.3.1 Primera fase
2.3.1.1 Selección de tubérculos para el experimento
Los tubérculos semilla de los cultivares en estudio los proporcionó el Centro de Investigación de Cultivos Agrícolas (CICA).
2.3.1.2 Desinfección del tubérculo semilla
Se aplicó Vitavax con supermate a una dosis de 4 cucharadas de Vitavax por 100 ml de Supermate en 20 Litros de agua.
2.3.1.3 Inducción al brotamiento
Se aplicó la hormona simple (ácido giberélico) antes y después del brotamiento a los tubérculos semilla de los cultivares en estudio a una dosis de 60 gotas por 4 litros de agua, por 20 minutos para que con ello induzcamos al brotamiento.
2.3.1.4 Tipo de almacenamiento
Se almacenó a luz difusa a los tubérculos semillas de los cultivares, para aumentar el vigor de los brotes.
2.3.1.5 Siembra de los tubérculos semilla en tápers.
Se colocaron los tubérculos con dominancia apical y brotamiento múltiple de uno a uno en los tápers cubriéndolos con la mezcla de musgo y tierra negra a proporción 1:2;
etiquetándolos por tratamiento (clon). Y se espera hasta que aparezcan las primeras hojas en los brotes y se esperó como máximo 15 días para el trasplante en las cápsulas de enraizamiento.
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2.3.1.6 Preparación de cápsulas de enraizamientoSe usa hojas de periódico cortándolo de 5 centímetros de ancho por 20 centímetros de largo para realizar las envolturas cilíndricas las cuales estarán unidas de punta a punta con un engrudo hecho de harina, y conteniendo la mezcla de musgo con tierra negra, a una proporción 1:2.
2.3.1.7 Trasplante a las cápsulas de enraizamiento
Se trasplantaron después de seccionar cuidadosamente y con mucha sanidad; cada plántula que se produce de cada brote con su respectivo sistema radicular que se produjo de cada tubérculo, lo cual se etiquetaron por tratamiento (clon). Para que luego puedan enraizar y ser luego trasplantados al campo definitivo.
2.3.2 Segunda fase
2.3.2.1 Preparación del terreno
Se realizó en un suelo que tuvo un descanso de 3 años, y antes de preparar el terreno se realizó un riego por gravedad, después manualmente se volteó el suelo y se limpiaron los canales de riego y la periferia del campo, con ayuda de una picota. Seguidamente se realizó el roturado, el arado y el mullido del suelo lo más profundo que se pudo. Preparado el terreno cada tratamiento con ayuda de un cordel, cinta métrica y estacas fue medido y remarcado con yeso. Y se realizó luego el surcado a una distancia entre surco de 0.90 m y entre calles 1.00 m empleando un azadón.
2.3.2.2 Trasplante al campo definitivo
Se realizó el trasplante al campo definitivo, 20 días después del trasplante a las cápsulas de enraizamiento al observar que las plantas llegaron a la altura de 10 a 15 centímetros. Donde las cápsulas de enraizamiento para que no sufran de estrés tienen que estar bien húmedas al trasplantar. Seguidamente de forma manual se colocan al fondo del surco a 30 centímetros
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de distancia entre cápsulas y a 90 centímetros entre surco. Finalmente, estas cápsulas se tapan con un pico y teniendo mucho cuidado con las hojas de cada plántula.
2.3.2.3 Fertilización
Se usó la técnica de “golpes” al aplicar los fertilizantes y materia orgánica entre las cápsulas de enraizamiento al momento de realizar el trasplante al fondo del surco, al momento de fertilizar se tapa con un pico. Al momento del trasplante, la fertilización tuvo la fórmula de 180 – 180 – 180 kilogramos por hectárea de N, P2O5 y KCl respectivamente; donde se usó el 50 % del N y el 100 % del K y P, y en el aporque se aplicó el 50 % de N restante.
2.3.3 Labores culturales
2.3.3.1 Riegos
Para evitar el estrés al momento de su establecimiento del trasplantado, se riega ligeramente cada 7 días o cuando las plantas lo requieran, lo cual se verá al monitorear semanalmente.
2.3.3.2 Deshierbos
Se realizó manualmente en dos oportunidades con la ayuda de azadones y picotas para evitar la competencia de nutrientes y de luz con las plantas de papa.
2.3.3.3 Aporques
Antes del aporque, se aplicó el 50 % de nitrógeno restante, luego manualmente se realizó el aporque utilizando azadones. Se realizó el primer aporque cuando se alcanzó una altura promedio de 25 centímetros con el fin de que la planta tenga un mayor soporte; así mismo de protegerla contra el ataque de patógenos. Luego de 15 días se ejecutó el segundo aporque para facilitar el desarrollo de formación de los tubérculos con el fin de que los estolones y raíces no formen tallos aéreos.
26
2.3.3.4 Control fitosanitarioPara prevenir enfermedades y plagas como Alternaria solani, Phytophthora infestans y Epitrix sp. se aplicó fungicida e insecticida.
2.3.3.5 Cosecha
Con la ayuda de picotas se cosecharon las plantas de uno en uno, viendo que tengan un amarillamiento en las hojas y donde se trata que los tubérculos no se dañen ni se mezclen con otro tratamiento, conjuntamente se procedió a evaluar el número de tubérculos y el peso de tubérculos por planta.
2.4 EVALUACIONES REGISTRADAS
2.4.1 Número de plántulas por brote
Se extrajo brotes en buenas condiciones, registrando el número de plántulas que se obtiene de cada brote, así como el cultivar que se quiere multiplicar.
2.4.2 Porcentaje de establecimiento en cápsulas de enraizamiento
Se contabilizó el número total de plántulas que prosperan de los brotes de cada cultivar de tubérculo que se obtienen al inicio, cuando se registra el número de plántulas por brote para establecerlos en las cápsulas.
2.4.3 Porcentaje de establecimiento en el campo
Se registró la cantidad de plántulas que prosperan del total de los brotes del tubérculo de cada cultivar que se obtienen al inicio, cuando se registra el porcentaje de establecimiento en cápsulas al instalar del cobertor al campo.
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Figura 12.Escala de establecimiento.
Fuente: (Osorio, 2000).
2.4.4 Altura de planta
Se realizó con la ayuda de una regla graduada, registrando cada semana a los 90 días después del trasplante del cobertor al campo desde la base, hasta el ápice del tallo principal de cada clon.
2.4.5 Vigor de tallo
Cada semana desde la instalación en el cobertor al campo, se registró viendo si el tallo es delgado con adecuada superficie foliar (sin vigor) o si es un tallo grueso mayor a la superficie foliar (vigoroso).
2.4.6 Inicio de floración
Se registró la fecha en cada cultivar cuando aparecen las flores en cada tratamiento y repetición.
2.4.7 Inicio de fructificación
Se registró la fecha en cada cultivar cuando se producen las bayas en cada tratamiento y repetición.
Escala % Calificación
1 96-100 Excelente
2 91-95 Muy buena
3 86-90 Buena
4 81-85 Regular
5 < 81 Mala
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2.4.8 Número de tubérculos por plantaAl cosechar se toma nota de cada planta por tratamiento la cantidad de tubérculos que se recolecta de los cultivares en cada repetición. Y luego se hará un promedio.
2.4.9 Peso de tubérculos por planta
Después de cosechar se tomó nota del peso de los tubérculos de cada planta, registrando también el clon, en su respectivo tratamiento y repetición a la cual corresponden.
2.5 PROCESAMIENTO DE LOS DATOS
Al registrar los datos del presente trabajo de investigación serán procesados mediante el análisis de varianza del diseño de bloques completamente randomizado (BCR) y luego la prueba de significación de los promedios según Tukey con un nivel de significación de 0.05.
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3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 NÚMERO DE PLÁNTULAS POR TUBÉRCULO
Tabla1.
Número promedio de plántulas por tubérculo en la fase de invernadero
En la tabla 1 se muestra la instalación de los 10 tubérculos de cada clon y se obtuvieron un promedio de 3.5 hasta los 4.2 brotes por tubérculo, esta variación se debe al tamaño de tubérculo semilla y el número de yemas axilares que presentaron cada uno de ellos, de igual manera sucede con el número de plántulas por brote que oscila de 6 a 9 brotes. Obteniéndose así un total de plántulas de 234 a 336 plántulas y un promedio de plántulas por tubérculo que oscila de 23.4 a 33.6, lo que favorece obtener mayor material genético para su propagación.
3.2 ESTABLECIMIENTO Tabla 2.
Establecimiento en las cápsulas de enraizamiento (48 horas después de la plantación de las plántulas).
CLON N° de tubérculos N° promedio de brotes
N° de plántulas por brote
Total de plántulas
Promedio de plántulas por
tubérculo
GOP-031721.2 10 3.7 7 259 25.9
GOP-031724.5 10 4.2 8 336 33.6
GOP-031734.6 10 3.5 9 315 31.5
GOP-031721.6 10 3.9 6 234 23.4
GOP-031712.5 10 3.6 7 252 25.2
Trat. N° CLON % de
establecimiento
1 GOP-031721.2 100
2 GOP-031724.5 100
3 GOP-031734.6 100
4 GOP-031721.6 100
5 GOP-031712.5 100
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En la tabla 2 se observa que, en todos los clones el establecimiento de las plántulas procedente de los brotes tuvo 100 % de establecimiento, esto debido a las condiciones favorables dentro del ambiente.
Tabla 3.
Establecimiento en campo definitivo después del trasplante.
En la tabla 3 se observa que, en todos los clones el establecimiento en campo definitivo oscila del 96 % al 99 %, considerados como “excelente” (ver escala).
3.3 ALTURA DE PLANTA
Tabla 4.
Análisis de varianza de la altura de la planta a los 90 días después del trasplante.
En la tabla 4 del análisis de varianza de la altura de planta a los 90 días después del trasplante a campo definitivo; se observa que, en la fuente de repeticiones existe diferencia estadística significativa; esto debido a que, dentro del área experimental hubo influencia del medio ambiente.
En la fuente de tratamientos existe diferencia estadística altamente significativa, debido carácter genético de cada clon en estudio, dando respuestas diferentes para la variable estudiada.
Trat. N° CLON % de
establecimiento
1 GOP-031721.2 96
2 GOP-031724.5 99
3 GOP-031734.6 99
4 GOP-031721.6 97
5 GOP-031712.5 96
F de V G.L. S.C. C.M. Fc. Sig.
Repeticiones 2 114.706 57.353 6.1387
*Tratamientos 4 653.605 163.401 17.4895
* *Error 8 74.743 9.343
TOTAL 14 843.054
S = 3.057 56.872 C.V. = 5.37%
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“Las buenas estaturas están influenciadas por los nutrientes en el suelo, las condiciones ambientales, la disposición del recurso y del abono que se aporte; los cuales incrementan el crecimiento aéreo; así mismo mejora la densidad y la longitud radicular, lo que mejora el desarrollo vegetativo, la absorción de agua y de nutrientes”. (Quintana, 2018, p.46).
El coeficiente de variabilidad de 5.37 % es considerado como “muy bajo” (Osorio, 2000) lo cual indica que, dentro de cada tratamiento la altura de planta es muy homogénea.
Tabla 5.
Prueba de significación de los promedios de los tratamientos de la altura de planta a los 90 días después del trasplante, según Tukey.
A.L.S.(T)0.05 = 8.630
“La buena tuberización en el cultivar Mariva y la variedad Huayro se debe a que existe una relación directa entre el genotipo con el ambiente de la zona; lo que repercute en el desarrollo del tallo”. (Quintana, 2018, p.46).
En la tabla 5 de la prueba de significación de los promedios de los tratamientos para la altura de planta; se observa que, los tratamientos (clones) 3 y 2 con promedios de 66.583 metros y 59.417 metros ocupan los dos primeros lugares sin mostrar significación estadística entre ellos; sin embargo, el tratamiento 3 que ocupa el primer lugar supera estadísticamente a los tratamientos 1, 4 y 5, porque sus parentales tienen porte alto (Mariva x Huayro) por pertenecer a la subespecie andígena.
3.4 NÚMERO DE TUBÉRCULOS POR PLANTA
Tabla 6.
Análisis de varianza del número de tubérculos por planta.
O.M. Tratamientos Promedio
1 3 66.583 a
2 2 59.417 a b
3 1 56.417 b
4 4 55.833 b
5 5 46.111 c
Significación
32
En la tabla 6 del análisis de varianza del número de tubérculos por planta; se observa que, en la fuente de repeticiones existe diferencia estadística significativa; esto debido a que, dentro del área experimental hubo influencia del medio ambiente. En la fuente de tratamientos existe diferencia estadística altamente significativa; debido al carácter intrínseco que gobierna a cada clon en estudio, dando respuestas diferentes para la variable estudiada.
“Para obtener por planta un mayor número de tubérculos grandes y con buena se debe de contar con una buena disponibilidad del recurso hídrico para mantener una humedad en el suelo”. (Quintana, 2018, p.58).
El coeficiente de variabilidad de 7.49 % es considerado como “muy bajo” (Osorio, 2000) lo cual indica que, dentro de cada tratamiento el número promedio de tubérculos por planta es muy homogénea.
Tabla 7.
Prueba de significación de los promedios de los tratamientos del número de los tubérculos por planta, según Tukey.
A.L.S.(T)0.05 = 3.198
En la tabla 7 de la prueba de significación de los promedios de los tratamientos para el número de tubérculos por planta; se observa que, los dos primeros tratamientos 3 y 5 con promedio de 20.333 y 17.667 según el orden de mérito no muestran significación estadística entre ellos, debido a que presentan respuestas similares; sin embargo, el tratamiento 3 con
F de V G.L. S.C. C.M. Fc. Sig.
Repeticiones 2 19.733 9.867 7.6883
*Tratamientos 4 193.733 48.433 37.7403
* *Error 8 10.267 1.283
TOTAL 14 223.733
S = 1.133 15.133 C.V. = 7.49%
O.M. Tratamientos Promedio
1 3 20.333 a
2 5 17.667 a b
3 2 14.667 b
4 4 13.000 c
5 1 10.000 c
Significación
33
promedio de 20.333 tubérculos por planta, muestra significación estadística con los 3 últimos tratamientos, debido a que a mayor altura tuvo mayor cantidad de estolones y por lo tanto mayor número de tubérculos por planta debido mayormente al carácter hereditario del parental masculino Huayro que presenta mayor número de tubérculos por planta.
“La variedad Huayro y el cultivar Mariva mostraron mejores resultados en el número de tubérculos por planta, por su genotipo e indicando que tienen una buena adaptabilidad al ambiente del lugar”. (Quintana, 2018, p.58).
3.5 PESO DE TUBÉRCULOS POR PLANTA
Tabla 8.
Análisis de varianza del peso de tubérculos por planta.
En la tabla 8 del análisis de varianza de peso de tubérculos por planta; se observa que, en la fuente de repeticiones existe diferencia estadística significativa; esto debido a que, dentro del área experimental hubo influencia del medio ambiente. En la fuente de tratamientos existe diferencia estadística altamente significativa, debido al carácter intrínseco que gobierna a cada clon en estudio, dando respuestas diferentes para la variable estudiada.
“El buen peso de los tubérculos tienen una relación con la buena aplicación de abono descompuesto, y también tiene que ver la mucha interacción que existe entre el genotipo de cada cultivar o variedad con su capacidad de adaptación con el ambiente”. (Quintana, 2018, p.68).
El coeficiente de variabilidad de 4.39 % es considerado como “muy bajo” (Osorio, 2000) lo cual indica que, dentro de cada tratamiento el peso promedio de tubérculos por planta es muy homogénea.
F de V G.L. S.C. C.M. Fc. Sig.
Repeticiones 2 0.013 0.006 4.9016
*Tratamientos 4 0.173 0.043 32.9459
* *Error 8 0.011 0.001
TOTAL 14 0.197
S = 0.036 0.827 C.V. = 4.39%
34
Tabla 9.Prueba de significación de los promedios de los tratamientos del peso de los tubérculos por planta, según Tukey.
A.L.S.(T)0.05 = 0.088
En la tabla 9 de la prueba de significación de los promedios de los tratamientos para el peso de tubérculos por planta; se observa que el tratamiento (clon) 3 con promedio de 1.005 kilogramos por planta muestra significación estadística con los 4 últimos tratamientos, esto debido a que presentó mayor número de tubérculos por planta heredado por el parental femenino Mariva en el tamaño de tubérculo y el parental masculino Huayro por la cantidad de tubérculos por planta.
“Los tubérculos obtenidos de la variedad Huayro fueron grandes; y donde de 25,45 tubérculos por planta su peso fue de 1,870 kilogramos siendo así la variedad con el mayor rendimiento. Así mismo se toma en cuenta la influencia del ambiente y el suelo del lugar”.
(Quintana, 2018, p.68).
O.M. Tratamientos Promedio
1 3 1.005 a
2 2 0.850 b
3 5 0.835 b
4 4 0.768 b
5 1 0.678 c
Significación
35
CONCLUSIONES
1. Se obtuvo una producción eficiente de plántulas y los tubérculos son de buena calidad (G2) por la influencia de la multiplicación rápida de clones de papa (G1);
y con esta técnica se pueden reducir los costos de producción al ver que se aumenta la tasa de multiplicación. Así mismo, conocer el carácter genético de cada clon debido a los parentales que tienen, influye en los resultados.
2. La luz difusa y el uso de ácido giberélico son factores importantes en la multiplicación rápida, ya que es muy benéfico en las etapas fisiológicas del tubérculo semilla y más aún para llegar a la etapa de brotación múltiple.
3. En el clon 2 (GOP-031724.5) el cual resalta en tener un mayor número total de plántulas por tubérculo se tuvo en promedio 4.2 brotes de 1 tubérculo, y que al ser puestos dentro del sustrato que tiene una altura de 5 centímetros ayuda a producir estolones que luego van a tender a subir y se formarán en plántulas.
Aumentando así el número de plántulas que se obtienen por brote a 8, lo cual nos da un promedio de 33.6 plántulas por tubérculo.
4. La obtención de tubérculos de los clones trabajados es muy efectiva ya que el número de plántulas por tubérculo (G1) oscila desde 23.4 hasta 33.6, de los cuales se recaudó un promedio total de 27.92 plántulas por tubérculo.
5. Los clones 3 (GOP-031734.6) y 5 (GOP-031712.5) produjeron promedios de 20.33 y 17.67 tubérculos por planta respectivamente.
En el peso de tubérculos sobresale el clon 3 (GOP-031734.6) con un promedio de 1.005 kilogramos por planta.
En la altura de planta los clones 3 (GOP-031734.6) y 2 (GOP-031724.5) sobresalen con los promedios 66.583 y 59.417 metros.
En las cápsulas de enraizamiento se obtuvo un 100 % de establecimiento;
mientras que, en la fase de campo el establecimiento osciló desde 96 a 99 % respectivamente.
36
RECOMENDACIONES
1. Se recomienda utilizar la multiplicación rápida de plantas a partir de brotes, para incrementar la producción de tubérculos.
2. Se recomienda utilizar la multiplicación por brotes para reducir los costos de producción teniendo así mayores beneficios económicos y obtener nuestro propio tubérculo semilla para futuras producciones.
3. Se recomienda utilizar ácido giberélico en dos oportunidades antes del brotamiento y después del brotamiento para obtener o inducir un mayor número de brotes. Y luego almacenarlos en luz difusa para su vigor.
4. Se recomienda utilizar la técnica empleada en la presente tesis en nuevos cultivares ya sea para consumo como para semilla.
37
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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