Concepto: Los líquidos orgánicos, son fluidos serosos, portadores de com- puestos orgánicos e inorgánicos, así como de células leucocitarias. Son produci- dos por las membranas que recubren los diferentes órganos, por tratarse de espacios anatómicos cerrados, estos líquidos son normalmente estériles, por lo que, el aislamiento de microorganismos en cualquiera de ellos es evocador de infección.
Los líquidos orgánicos que con regularidad se investigan en los laboratorios de microbiología clínica, son los siguientes.
Cuadro 7: Localización de los líquidos orgánicos
DIFERENTES REGION ANATOMICA DONDE TOMA DE MUESTRA LIQUIDOS SE LOCALIZA (por punción) L.C.R. Canal raquídeo (espacio delimitado Lumbar
por las membranas sub aracnoideas o meníngeas, que recubren la médula espinal, la región sub - occipital y los ventrículos cerebrales
PLEURAL Delimitado dentro del espacio que Intercostal separa las dos membranas pleurales
que recubren el tejido pulmonar
SINOVIAL Se encuentra entre las sinovias Articular o membranas que recubren
los tendones
Cuadro 8. Datos para la obtención de las muestras de líquidos orgánicos y características de su aspecto.
LÍQUIDOS CANTIDAD DISTRIBUCCIÓN ASPECTO XXX
ORGÁNICOS (ml) EN TUBOS NORMAL PATOLÓGICO ESTERILES
L.C.R 3 a 10 3 Incoloro y TURBIO, transparente hemorrágico o
satocrómico (amarillento) PLEURAL 2 a 3 Uno con Incoloro y Turbio y
heparina transparente purulento SINOVIAL 2 a 3 Uno sin Amarillo claro, Turbio y
heparina transparente purulento y viscoso
ASCITICO 2 a 3 Uno con Seroso Purulento heparina
Recolección de la muestras
Serán tomadas por un especialista, previo riguroso lavado de manos y colo- cación asépticas de guantes quirúrgicos estériles.
Procedimiento:
- Desinfectar con tiomersal (timerosal) u otro desinfectante apropiado el área de la piel, donde se va a efectuar la punción.
- Realizar la punción con trocar o aguja apropiada hasta donde se encuen- tra el líquido en cuestión.
- Retirar el mandril del trocar, lo que propiciará que fluya el líquido a través de la cánula o si la punción se realiza con aguja, insertar una jeringuilla y succionar el líquido.
- Recolectar el líquido en tubos de ensayo, con y sin anticoagulante (heparina) según se trate.
Sangre
Concepto: La sangre es un líquido rojo que circula por las arterias, venas y capilares. Estando formada por elementos figurados como los hematies, leuco- cito y plaquetas, así como una parte líquida denominada plasma, que contiene diversas sustancias nutritivas e inmunológicas.
Indicaciones específicas
La toma de muestra debe realizarse cuando el paciente presente fiebre superior a 38 C, solo eventualmente se procede a tomar la muestra, en el mo- mento que presente hipotermia.
Procedimiento
- La sangre se obtendrá por venipunción, mediante jeringuilla de vidrio es- téril y seca (que no esté caliente) a la cual se le acopla una aguja No. 20 estéril, pudiendo utilizarse igualmente jeringuillas y agujas estériles desechables, después de comprobar el tiempo de caducidad, la jeringuilla acoplada a la aguja se colocan posteriormente en el interior de un tubo de ensayo de tamaño apropiado.
- Después de estar la ligadura por encima del codo del paciente, se proce- derá a verificar el pulso, para comprobar que la circulación arterial no ha sido interrumpida. Se le pedirá al paciente que abra y cierre la mano varias veces con el objetivo de inducir el aumento de la circulación y le llene las venas, palpe el área y seleccione la vena mas prominente con ayuda de la inspección visual. Desinfecte la zona a puncionar, mecánica- mente, primero con agua y jabón y químicamente después con tintura de yodo al 1 % en pacientes (no alérgicos) y posteriormente con alcohol etílico al 70 %. Deje secar el alcohol y efectúe la punción, para ello solicite al paciente cerrar la mano y extender el brazo, tome la jeringuilla de tal manera que el dedo índice quede colocado sobre el cabo de la aguja para guiarla durante su introducción en la vena. Con la mano opuesta sujete el antebrazo del paciente, unos 5cm por debajo del sitio que puncionará y estire la piel hacia abajo con el pulgar con lo cual se inmovilizará la vena. Inserte la aguja en la piel adyacente paralelamente a la vena y hágala penetrar en el lumen, un ligero cese de la resistencia indicará que la aguja ha penetrado en la vena, la sangre fluirá espontá- neamente dentro de la jeringuilla. En caso de que la presión de la vena
la ligadura y coloque una torunda o un pedazo de algodón seco sobre el sitio de la punción y saque la aguja, pídale al paciente que abra la mano y presione la torunda o algodón por espacio de 2 a 3 minutos con el brazo doblado.
Para sembrar la sangre, proceda del siguiente modo:
1. Retire el círculo central de la retapa metálica del frasco que contiene el medio de cultivo, desinfecte con alcohol etílico al 70 % la tapa perforable y flaméela.
2. Cambie la aguja utilizada por otra estéril del mismo calibre.
3. Puncione la tapa perforable del frasco y empujando el embolo de la jeringuilla vierta un 10% de sangre en relación con el volumen del medio de cultivo empleado. Retirando la jeringuilla con la aguja y el volumen de sangre so- brante.
4.Invierta el frasco inoculado, 4 o 5 veces para que el anticoagulante que con- tiene el medio impida que se formen coágulos.
Observaciones: Durante el proceso de toma de muestra, absténgase de palpar la vena seleccionada con los dedos, después de desinfectada la piel.
Linfa
Concepto: La linfa es un líquido claro, y transparente de color ligeramente amarillento, pH alcalino y salobre, que llena los vasos linfáticos. Está constituida por agua, albúmina, fibrina y sales.
Indicaciones al paciente: Las generales.
Procedimiento: La muestra de linfa se obtiene específicamente de los lóbu- los de las orejas y de los pliegues de la piel de los codos.
1. Con el empleo de torundas o motas de algodón humedecidas en alcohol al 70 %, desinfecte ambos lóbulos y los pliegues de la piel de cada codo. 2. Coloque una pinza en cada uno de los lóbulos, de manera que ejerzan la
suficiente presión para que la sangre contenida en los capilares sea excluida, lo cual se evidenciará por un aclaramiento de la zona (zona de isquémia). 3. Con un bisturí haga una incisión de unos 5mm de largo por 2 mm de ancho
y raspe la zona con su superficie, rápidamente, antes que la sangre infiltre el corte, proceda a recoger con el borde del bisturí la linfa que emane, depositándola en la lámina portaobjetos habilitada al efecto. Esta operación se debe realizar en ambos lóbulos y en los pliegues cutáneos de los dos codos.
Excreciones
Concepto: Compuestos excretados por las glándulas (saliva, sudor, lágri- mas) o producidos en el reservorio donde se han acumulado (heces, orina, etc.) Heces fecales
Concepto: Material que se forma en el intestino básicamentea partir de los residuos del material ingerido no digerido.
Indicaciones al paciente: las generales.
Procedimiento: En el caso de heces destinadas para examen parasitológico. Se indicará al paciente recoger 10 ó 20g de heces sólidas (aproximadamen- te del tamaño, equivalente a un 1/3 de un tabaco) y sí fueran sólidas unos 30 ml (una onza fluida) en un frasco limpio y seco, sin vestigios de sustancias antisép- ticas, provisto con tapa de rosca, preferentemente incoloro y transparente.
En todos los casos las heces deben ser recién emitidas.
Si el examen de una muestra resulta negativo, no correspondiéndose este resultado con el cuadro clínico, se debe realizar un examen seriado, consisten- te, en el análisis de varias muestras (6 a 8) enviadas al laboratorio en días alternos, ya que en ocasiones los resultados negativos estando el paciente parasitado debido a que diversas especies presentan las llamadas fases negati- vas, durante las cuales no aparecen sus elementos de diagnóstico, aunque exis- tan en el tracto digestivo, por lo que el examen de varias muestras en periodos de tiempo diferentes aumentan las probabilidades de localizar e identificar la especie.
La primera muestra debe recogerse por defecación espontánea y las suce- sivas; algunas mediante la inducción con laxantes y otras, al igual que la primera
Fig. 102: Toma de muestra de la linfa auricular: a) Colocación de la pinza en el lóbulo de la oreja; b) Incisión con el bisturí en la zona isquémica.
mayor frecuencia la presencia de quistes y huevos de helmintos, contrario a lo que ocurre con las heces sólidas.
En el caso de heces destinadas para coprocultivo: Indicar al paciente, que recoja la muestra en un frasco, con similares características que el empleado para el examen parasitológico, pero estéril, el cual debe ser solicitado en el laboratorio.
Orina (para urocultivo)
Concepto: La orina es un líquido secretado por los riñones, que se caracte- riza por tener un color amarillo, ser ligeramente ácida, tener un olor peculiar y un sabor salino. Está compuesta principalmente por agua en la que se encuen- tran en disolución diversos compuestos, como, urea, glucosa etc. y otros com- ponentes como, ácido urico, ácido hipúrico, etc. Además de células epiteliales leucocitos y eventualmente hematies.
Indicaciones específicas:
1. No orinar después de las doce de la noche.
2. Aseo matutino de genitales externos con agua y jabón, y enjuagar con agua previamente hervida y yodada. Para realizar con efectividad el aseo, los hom- bres se deben retirar bien el prepucio y las mujeres separar los labios.
En todos los casos la muestra debe ser recogida en frascos estériles entre- gados por el laboratorio.
Procedimiento:
1. Comenzar a orinar desechando el primer chorro. Aguantar la micción. 2. Destapar el frasco estéril y depositar con cuidado de 10 a 20ml de la porción
media, desechando el resto de la orina.
3. Tapar el frasco inmediatamente y enviar la muestra al laboratorio antes que transcurran dos horas.
Nota:
- Las mujeres deben orinar paradas y recoger la orina "al vuelo", ya que orinar senta- das, como es lo habitual, las probabilidades de contaminación con los gérmenes procedentes de la microbiota residente o transitoria aumentan.
- En los casos de niños pequeños, se emplean colectores estériles que deben ser cambiados si la misción se demora o si se contamina con heces.
Faneras
Concepto: Término general aplicado a las infecciones persistentes en la superficie de la piel, el pelo o las uñas.
Indicaciones específicas: Suspender cualquier tratamiento local, 48 horas antes de la toma de la muestra. La noche anterior a la toma de la muestra, el paciente debe asearse la zona de la lesión con agua y jabón, enjuagándose con solución salina fisiológica estéril cubriendo la lesión con apósito estéril, el cual le será retirado en el laboratorio.
Procedimiento:
a) Lesión abierta en piel. Con hisopo estéril, fino, tomar la muestra en el entorno del borde sin tocar la piel.
b) Absceso subcutáneo. En los abscesos calientes, previa desinfección de la piel, se toma la muestra, puncionando la lesión con una aguja insertada a una jeringuilla. En los accesos fríos se toma igualmente con aguja y jeringuilla, pero específicamente en el punto mas elevado de la colección purulenta. c) Lesión seca. (escamosa en piel). Previa desinfección de la zona con una
torunda estéril, humedecida en alcohol etílico al 70 %, raspar la lesión con un bisturí, recolectando la descamación en el interior de una placa de Petry estéril.
d) Lesión grasienta o purulenta. Tamponar la lesión con solución salina fi- siológica estéril, para seguidamente tomar la muestra con hisopo. e) Fístula. Desinfectar previamente el orificio y tomar la muestra con hiso-
po fino estéril en profundidad.
f) Uñas. Al igual que para la toma de muestra de la lesión seca en piel, la de muestra de la uña infectada se realiza mediante raspado de la superficie y debajo de la uña con un bisturí, recobrando el material en el interior de una placa de Petry estéril.
g) Observar la cabellera del paciente bajo la luz de una lámpara de Wood. Con una pinza de disección arrancar varios cabellos que se observen fluorescentes, y colocarlos en el interior de una placa de Petry estéril.