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VACUOLAS ESPERMÁTICAS Y OVOCITARIAS

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VACUOLAS ESPERMÁTICAS Y

OVOCITARIAS

Beatriz González Soto, Fernando Vázquez Camino

VACUOLAS ESPERMÁTICAS Introducción

En las últimas décadas se han desarrollado diversos métodos para mejorar el diagnóstico de la esterilidad masculina, entre ellos, la técnica de MSOME (de las siglas en inglés Motile Sperm Organelle Morphology Examination) que consiste en la selección morfológica a gran aumento (x6600)

de espermatozoides móviles, como paso previo a la inyección

intracitoplasmática de los mismos (ICSI)1. Esta técnica ha permitido describir

algunas anomalías presentes en la cabeza de los espermatozoides,

especialmente las vacuolas espermáticas2, que pueden definirse como

concavidades desde la superficie de la cabeza espermática hasta el núcleo a

través del acrosoma3. Para que un espermatozoide sea considerado

morfológicamente normal, la región acrosomal no debe contener ninguna vacuola grande, y no más de dos vacuolas pequeñas, las cuales no pueden ocupar más del 20% de la cabeza espermática; la región post-acrosomal no

debe contener ninguna vacuola4.

Los datos publicados en la literatura sobre la incidencia de espermatozoides con vacuolas grandes respecto a la totalidad de la muestra seminal varía sustancialmente en los estudios realizados por diversos autores

(30-40%5, a 53.4%6 y 73.2%2). Esta variabilidad puede deberse a diferencias

en el tamaño muestral, a la calidad espermática de la población seleccionada, y a la gran discrepancia que existe para definir qué porcentaje del área de la cabeza espermática debe ocupar una vacuola para ser considerada grande. Con el objetivo de crear una clasificación basada en un único criterio y evitar así variabilidad, recientemente, un grupo ha propuesto una clasificación

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MSOME (basada únicamente en el área relativa de la vacuola respecto a la

cabeza espermática)7:

- Tipo 0: espermatozoides sin vacuolas.

- Tipo 1: espermatozoides con vacuolas que ocupan 0 – 5.9% del área nuclear.

- Tipo 2: espermatozoides con vacuolas que ocupan 5.9 – 12.4% del área nuclear.

- Tipo 3: espermatozoides con vacuolas que ocupan más del 12.4% del área nuclear.

Etiología

El origen de las vacuolas espermáticas y su impacto en el desarrollo

embrionario posterior es poco conocido8. Se han observado principalmente en

la región anterior y media de la cabeza espermática y se cree que tienen un

origen nuclear9. A continuación se detallan los diferentes orígenes descritos por

diversos autores.

Fragmentación del ADN

Entre las anomalías relacionadas con el daño en el ADN que han podido observarse durante la clasificación MSOME se encuentran las vacuolas espermáticas, especialmente aquellas que ocupan más del 50% del área de la

cabeza del espermatozoide10. Algunos autores describen un aumento

significativo de la incidencia de ADN fragmentado en espermatozoides con

vacuolas frente a aquellos que no presentaban vacuolas10,11 (análisis

realizados mediante la técnica de TUNEL -de las siglas en inglés Terminal dUTP Nick-End Labeling-). Sin embargo, otros autores no encuentran esta

asociación entre el daño en el ADN y la presencia de vacuolas nucleares9,12.

Esta contradicción en los resultados podría explicarse por dos hipótesis. En primer lugar, diferencias en el tamaño de las vacuolas en las distintas publicaciones (área vacuolar mayor al 50% versus área vacuolar mayor al 13%); en segundo lugar, el análisis de TUNEL con microscopio de

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Reacción acrosómica

Estudios recientes han relacionado la presencia de vacuolas en el

espermatozoide con el proceso de la reacción acrosómica (RA) mediante

técnicas de inmunofluorescencia y MSOME. Algunos autores observaron que los espermatozoides que han sufrido reacción acrosómica presentaban una forma regular de la cabeza y pocas o ninguna vacuolas, mientras que espermatozoides con RA intacta o incompleta, mostraron grandes vacuolas en la parte anterior de la cabeza. Si las vacuolas están relacionadas con el material acrosómico, la inducción de la RA debería incrementar el porcentaje de espermatozoides sin vacuolas. Esto también fue demostrado por los mismos autores mediante la inducción artificial de la RA y el consecuente aumento de

espermatozoides libres de vacuolas13. Estas mismas observaciones fueron

descritas por otro grupo de investigación que evaluó de forma precisa la morfología del acrosoma y del núcleo mediante microscopio de deconvolución,

técnica que permite visualizar estructuras tridimensionales12. Todo lo descrito

anteriormente sugiere que las vacuolas tienen su origen en el acrosoma.

Condensación de la cromatina

El correcto empaquetamiento de la cromatina espermática protege al ADN de daños físicos y químicos. Varios estudios han encontrado fallos en la condensación de la cromatina en presencia de espermatozoides con vacuolas grandes en comparación con espermatozoides sin vacuolas que presentaron una tasa de cromatina condensada mayor (estudios mediante tinción de los núcleos espermáticos con azul de anilina). Con estos resultados se sugiere que la aparición de vacuolas tiene un origen nuclear, son una huella relacionada

con fallos en la condensación de la cromatina12.

Morfología espermática y vacuolas

Diferentes investigadores han estudiado la relación entre la morfología espermática y la presencia de vacuolas, aunque los resultados han sido controvertidos: algunos autores no encuentran ninguna asociación entre

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un porcentaje de espermatozoides anormales con vacuolas nucleares

significativamente mayor9,¡Error! Marcador no definido.,14.

Anomalías cromosómicas y vacuolas

La detección de anomalías cromosómicas mediante hibridación in situ fluorescente (FISH) para los cromosomas X, Y y 18 en un grupo de espermatozoides en ausencia de vacuolas en comparación con un grupo de

espermatozoides con vacuolas (25% de área vacuolar) no mostró diferencias

significativas en términos de tasa de aneuploidía12. Otro grupo que realizó el

mismo análisis si encontró un aumento en la incidencia de anomalías

cromosómicas en los espermatozoides vacuolados (> 13% de área vacuolar)9.

Sin embargo, los resultados de este último trabajo deberían tomarse con cautela debido al pequeño tamaño muestral. Además, la interpretación de la técnica de FISH no está exenta de determinada variabilidad entre observadores del mismo centro, y entre diferentes laboratorios.

Edad del varón y vacuolas

Evidencias epidemiológicas sugieren que existe una disminución de la calidad seminal (ej.: volumen, movilidad, y morfología) con el incremento de la edad del varón. También el aumento de la edad paterna se ha asociado con una mayor frecuencia de abortos, anomalías cromosómicas y otras

enfermedades15.

Un estudio reciente ha analizado la influencia de la edad del varón en la calidad espermática mediante MSOME en una gran muestra de varones sometidos a Técnicas de Reproducción Asistida (TRA). Los resultados demostraron que el porcentaje de espermatozoides normales decrece significativamente con el aumento de la edad del varón, al igual que la tasa de espermatozoides con vacuolas grandes (>50% de área vacuolar) aumenta

significativamente con la edad del sujeto15.

Influencia en el éxito de ICSI

Diversos estudios han correlacionado negativamente la presencia de vacuolas espermáticas con las tasas de fecundación, implantación y gestación,

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así como una disminución en la tasa de aborto cuando los espermatozoides eran seleccionados mediante MSOME evitando así microinyectar ovocitos con

espermatozoides vacuolados1,2. Sin embargo, existen otros autores que

describen que las vacuolas espermáticas no afectan a los resultados de ICSI e incluso concluyen que no debería descartarse un espermatozoide solo por el hecho de tener vacuolas en la cabeza, sino que lo realmente importante es el tamaño de éstas, debiendo evitar el uso de espermatozoides con vacuolas

grandes (>50%)3.

VACUOLAS OVOCITARIAS Introducción

Con la aplicación de la ICSI, que requiere la denudación del ovocito de las células del cúmulo, ha emergido gran cantidad de información sobre la

morfología ovocitaria16. Un ovocito de morfología óptima es aquel de forma

esférica rodeado de una zona pelúcida uniforme, con citoplasma traslúcido, homogéneo y libre de inclusiones, y un corpúsculo polar de tamaño

adecuado17. Sin embargo, la mayoría de los ovocitos (60-70%) que se

recuperan en ciclos estimulados presentan una o más características

morfológicas anormales. Estas anomalías pueden dividirse en dos grupos18:

- Anomalías extracitoplasmáticas: forma irregular de los ovocitos, anomalías en la zona pelúcida, espacio perivitelino aumentado o granuloso, y morfología anormal del primer corpúsculo polar.

- Anomalías citoplasmáticas: diferentes tipos y grados de granulación, variaciones de color, aparición de cuerpos refringentes, agregaciones de retículo endoplasmático liso y presencia de vacuolas.

La vacuolización es probablemente, el dismorfismo citoplasmático más evidente y dinámico en ovocitos humanos. Las vacuolas varían tanto en número como en tamaño, y pueden definirse como inclusiones citoplasmáticas rodeadas de membrana y rellenas de un fluido virtualmente idéntico al del

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estudios, entre el 3% y el 12%20,21, mientras que la presencia de múltiples

vacuolas en un ovocito es menos frecuente, presentándose sólo en 1%22,23.

Etiología

El origen de las vacuolas ovocitarias no está claro. Se cree que pueden aparecer espontáneamente o mediante fusión de vesículas preexistentes

derivadas del aparato de Golgi o del retículo endoplasmático liso (REL)19.

Algunos autores sugieren que las vacuolas surgen en la transición del ovocito metafase I a metafase II alrededor de la extrusión del primer corpúsculo polar, basándose en que, durante todo su estudio, tan sólo una vacuola apareció en

una vesícula germinal, en estadio de profase I24. También se ha relacionado la

vacuolización con degeneración celular y atresia ovocitaria25.

Un grupo de investigadores identificaron tres tipos de vacuolas durante su estudio: (1) aquellas que ya estaban presentes en la recuperación ovocitaria (aparecen rápidamente durante la maduración del ovocito); (2) vacuolas creadas de forma artificial por el embriólogo durante la ICSI debido a la introducción del medio; y (3) vacuolas que se acompañan de bloqueo en el

desarrollo embrionario en ciclos de ICSI y FIV24.

Anomalías cromosómicas y vacuolas

Los ovocitos con morfología anormal han sido relacionados con una

elevada frecuencia de aneuploidías19; sin embargo, no se conoce qué

dismorfismos en concreto están asociados con una alta tasa de anomalías

cromosómicas18. Además, en el caso de las vacuolas ovocitarias, éstas

aparecen agrupadas en la mayoría de los estudios como inclusiones citoplasmáticas, junto con los cuerpos refringentes y los acúmulos de REL, lo que podría suponer discrepancias en los resultados.

La anormalidad citoplasmática caracterizada por acumulación de REL ha sido relacionada, en varias publicaciones, con problemas en la descendencia cuando se han transferido embriones derivados de ovocitos con acúmulos de REL, por lo que se recomienda un cuidado prenatal riguroso cuando se

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Edad de la mujer y vacuolas

Se ha observado que la aparición de inclusiones citoplasmáticas aumenta de manera significativa en mujeres mayores de 35 años, en

comparación con aquellas menores de 35 años18.

Influencia en el éxito de ICSI

Diversos estudios han demostrado que la presencia de vacuolas en ovocitos no afecta a la tasas de fecundación e implantación ni a la calidad

embrionaria22,28; sin embargo, se ha correlacionado negativamente con la

criosupervivencia y el desarrollo embrionario tras la fecundación29. Se ha

descrito un aumento en el porcentaje de embarazo bioquímico seguido por un descenso de la tasa de gestación clínica después de transferir embriones

derivados de ovocitos con vacuolas30. Otros autores, constataron una menor

tasa de fecundación y desarrollo embrionario31. Cuando se analizaron por

separado la presencia de vacuolas, cuerpos refráctiles y acúmulos de REL, solo se encontró una leve pero estadísticamente significativa disminución en la tasa de fecundación de ovocitos vacuolados, pero ninguna de las tres

anomalías afectó a la morfología pronuclear o embrionaria32.

Una posible explicación para la divergencia de resultados es que no todos los autores tienen en cuenta el tamaño de la vacuola. Existen publicaciones que sí relacionan el tamaño de la vacuola con la tasa de fecundación, estableciendo que aquellos ovocitos con vacuolas mayores a 14 µm presentarán fallo de fecundación. Este fenómeno puede explicarse por dos hipótesis. Primero, que una vacuola grande o múltiples vacuolas produzcan en

el ovocito un deterioro mucho mayor que una vacuola de menor tamaño24.

Segundo, las vacuolas grandes pueden desplazar al huso meiótico de su

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¿SON LO MISMO LAS VACUOLAS ESPERMÁTICAS QUE LAS OVOCITARIAS?

El inicio del estudio de las vacuolas espermáticas y ovocitarias surge con la introducción de nuevas tecnologías como el MSOME y la ICSI, respectivamente. El origen de las mismas no está claro, se han presentado a lo largo del capítulo las diferentes hipótesis propuestas por los autores. La incidencia de vacuolas tanto en espermatozoides como en ovocitos se ve incrementada con el aumento de la edad del sujeto (varones mayores de 40 años y mujeres mayores de 35 años presentaron mayor porcentaje de vacuolas

en sus gametos)15,18. Ambas anomalías morfológicas se han relacionado con

un aumento en la tasa de aneuploidías, aunque algunos autores han mostrado

resultados contradictorios9,12,19. Los resultados obtenidos en TRA con

espermatozoides y ovocitos vacuolados son diversos, existen autores que encuentran una correlación negativa entre la presencia de vacuolas y tasas de fecundación, implantación, desarrollo embrionario y gestación, y por el contrario

otros no observaron esta relación1,2,3,28,31. Como se ha comentado

anteriormente, esto puede deberse a las diferencias halladas en los estudios realizados (tamaño muestral, tipo de esterilidad, tamaño de la vacuola…etc.). Lo que sí que parece estar claro, es que una vacuola de gran tamaño, ya sea en el gameto masculino o femenino, va a tener un impacto más negativo sobre los resultados de TRA que una vacuola de tamaño pequeño.

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BIBLIOGRAFÍA

1 Bartoov B, Berkovitz A, Eltes F. Selection of spermatozoa with normal nuclei to improve the pregnancy rate

with intracytoplasmatic sperm injection. N Engl J Med. 2001; 345: 1067-1068.

2 Bartoov B, Berkovitz A, Eltes F, Kogosowski A, Menezo Y, Barak Y. Real-time morphology of motile human

sperm cells is associated with IVF-ICSI outcome. J Androl. 2002; 23: 1-8.

3 Tanaka A, Nagayoshi M, Tanaka I, Kusunoki H. Human sperm head vacuoles are physiological structures

formed during the sperm development and maturation process. Fertil Steril. 2012; 98(2): 315-320.

4

WHO, World Health Organization. Laboratory Manual for the Examination of Human Semen and Semen-Cervical Mucus Interaction. 5th Ed. Cambridge (UK): Cambridge University Press; 2010.

5

Berkovitz A, Eltes F, Ellenbogen A, Peer S, Feldberg D, Bartoov B. Does the presence of nuclear vacuoles in human sperm selected for ICSI affect pregnancy outcome? Hum Reprod. 2006; 21: 1787-1790.

6

Sermondade N, Vialard F, Bergère M, Hammoud I, Cavelot P, Selva J, et al. Evaluation de l´apport de la méthode d´observation des spermatooïdes à fort grossissement en ICSI. Andrologie. 2007; 17: 212-221.

7

Perdrix A, Saïdi R, Ménard JF, Gruel E, Milazzo JP, Macé B, et al. Relationship between conventional sperm parameters and motile sperm organelle morphology examination (MSOME). Int J Androl. 2012; 35: 491-498.

8

Montjean D, Belloc S, Bankhalifa M, Dalleac A, Ménézo Y. Sperm vacuoles are linked to capacitation and acrosomal status. Hum Reprod. 2012; 27(10): 2927-2932.

9

Perdrix A, Travers A, Chelli MH, Escalier D, Do Rego JL, Milazzo JP, et al. Assesment of acrosome and nuclear abnormalities in human spermatozoa with large vacuoles. Hum Reprod. 2011; 26: 47-58.

10

Franco JG, Baruffi RL, Mauri AL, Petersen CG, Oliveira JB, Vagnini L. Significance of large nuclear vacuoles in human spermatozoa: Implications for ICSI. Reprod Biomed Online. 2008; 17: 42-45.

11 Oliveira JB, Massaro FC, Baruffi RL, Mauri AL, Petersen CG, Silva LF, et al. Correlation between semen

analysis by motile sperm organelle morphology examination and sperm DNA damage. Fertil Steril. 2010; 94: 1937-1940.

12 Boitrelle F, Ferfouri F, Petit JM, Segretain D, Tourain C, Bergere M, et al. Large human sper vacuoles

observed in motile spermatozoza under high magnification: nuclear thumbprints linked to failure of chromatin condensation. Hum Reprod. 2011; 26: 1650-1658.

13

Kacem O, Sifer C. Barraud-Lange V, Ducot B, De Ziegler D, Poirot C, et al. Sperm nuclear vacuoles, as assesed by motile sperm organellar morphological examination, are mostly of acrosomal origin. Reprod Biomed Online. 2010; 20: 132-137.

14

Falagario D, Brucculeri AM, Depalo R, Tretolli P, Cittadini E, Ruvolo G. Sperm head vacuolization affects clinical outcome in ICSI cycle. A proposal of cu-off value. J Assist Genet. 2012; 29: 1281-1287.

15

Silva L, Oliveira JB, Petersen C, Mauri AL, Massaro FC, Cavagna M, et al. The effects of male age on sperm analysis by motile sperm organelle morphology examination (MSOME). Reprod Biol Endocrinol. 2012; 10: 19.

(10)

16

Setti A, Figuiera R, Braga D, Colturato S, Iaconelli A, Borges E. Relationship between oocyte abnormal morphology and intracytoplasmic sperm injection outcomes: a meta-analysis. J Obstec Gynecol Reprod Biol. 2011; 159: 364-370.

17 Embryology ASiRMaESIGo. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an

expert meeting. Hum Reprod Update. 2011; 26: 1270-1283.

18

Balaban B, Urman B. Effect of oocyte morphology on embryo development and implantation. Reprod Biomed Online. 2006; 12: 608-615.

19

Van Blerkmon J. Occurrence and developmental consequences of aberrant celular organization in meiotically mature human oocytes after exogenous ovarian hyperstimulation. J Electron Microsc Tech. 1990; 16(4): 324-346.

20

Alikani M, Palermo G, Adler A, Bertoli M, Blake M, Cohen J. Intracytoplasmic sperm injection in dysmorphic human oocytes. Zygote. 1995; 3: 283-288.

21

Ubaldi F, Rienzi L. Morphological Selection of Gametes. Placenta. 2008; 29: S115-S120.

22 De Sutter P, Dozortsev D, Qian C, Dhont M. Oocyte morphology does not correlate with fertilization rate

and embryo quality after intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod. 1996; 11: 595-597.

23 Loutradis D, Drakakis P, Kallianidis K, Milingos S, Dendrinos S, Michalas S. Oocyte morphology correlates

with embryo quality and pregnancy rate after intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril. 1999; 72: 240-244.

24 Ebner T, Moser M, Sommergruber M, Gaiswinkler U, Shebl I, Jesacher K, et al. Occurence and

developmental consequences of vacuoles throughout preimplantation development. Fertil Steril. 2005; 83(6): 1635-1640.

25

Zamboni L, Thompson RS, Smith DM. Fine morphology of human oocyte maturation in vitro. Biol Reprod. 1972; 7(3): 425-457.

26

Fancsovits P, Murber A, Gilán Z, Rigó J, Urbancsek J. Humsn oocytes containing large cytoplasmic vacuoles can result in pregnancy and viable offspring. Reprod Biomed Online. 2011; 23: 513-516.

27

Akarsu C, Çaglar G, Vicdan K, Sözen E, Biberoglu K. Smooth endoplasmic reticulum aggregations in all retrieved oocytes causing recurrent multiple anomalies: case report. Fertil Steril. 2009; 92(4).

28

Ten J, Mendiola J, Vioque J, Bernabeu R. Donor oocyte dysmorphisms and their influence on fertilization and embryo quality. Reprod Biomed Online. 2007; 14: 40-48.

29

Balaban B, Ata B, Isiklar A, Yanki K, Urman B. Severe cyotplasmic abnormalities of the oocyte decrease cryosurvival and subsequent embryonic development of cryopreserved embryos. Hum Reprod. 2008; 23: 1778-1785.

30

Otsuki J, Okada A, Morimoto K, Nagai Y, Kubo H. The relationship between pregancy outcome and smooth endoplasmic reticulum clusters in MII human oocytes. HUm Reprod. 2004; 19: 1591-1597.

31

Otsuki J, Nagai Y, Chiba K. Lipofuscin bodies in human oocytes as an indicator of oocyte quality. J Assited Reprod Genet. 2007; 24: 263-270.

32 Rienzi L, Ubaldi FM, Iacobelli M, Minasi MG, Romano S, Ferrero S, et al. Significance of metaphase II

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Referencias

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