Chemical composition and fatty acids profile of Argentine anchovy Northern population according to fish size and fishing area
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(2) 162. REV. INVEST. DESARR. PESQ. Nº 23: 161-174 (2013). longitud total). Los resultados muestran que, dependiendo del área de captura y del tamaño de los ejemplares, varía el contenido lipídico y el perfil de ácidos grasos. Esas variaciones podrían estar asociadas a la condición fisiológica de los ejemplares y a factores bióticos y abióticos presentes en las áreas de captura estudiadas. Tecnológicamente, los resultados obtenidos resultan esenciales cuando se investiga la elaboración de nuevos productos comerciales derivados de esta especie subexplotada como alternativa válida para el futuro desarrollo de la industria pesquera regional. Key words: Engraulis anchoita, Northern population, proximate analysis, fatty acids profile. Palabras clave: Engraulis anchoita, población bonaerense, análisis proximal, perfil de ácidos grasos.. INTRODUCCIÓN. La proyección de la industria pesquera en la Argentina se ve comprometida debido a que muchas de sus pesquerías tradicionales se hallan sometidas a altos niveles de explotación. Frente a esto, el aprovechamiento de recursos subexplotados constituye una alternativa viable para el desarrollo futuro de esta actividad. Actualmente, con desembarques inferiores a los valores de capturas biológicamente aceptables, la anchoíta (Engraulis anchoita) es la especie pelágica de mayor abundancia y más amplia distribución geográfica del Atlántico Sudoccidental, abarcando desde los 24° S hasta los 48° S (PastousMadureira et al., 2009; Hansen et al., 2010 b). En el Mar Argentino se distinguen dos grupos poblacionales mediante distintas características morfométricas, los cuales han sido denominados bonaerense y patagónico, separados aproximadamente hacia el paralelo 41° S (Hansen et al., 1984, Hansen, 2000). La explotación comercial de la anchoíta se realiza casi exclusivamente sobre la población bonaerense con una marcada estacionalidad. Los desembarques son casi nulos desde el comienzo del año hasta julio, luego aumentan para alcanzar su máximo en septiembre y octubre (cuando los efectivos se acercan a la costa para reproducirse) y disminuyen al finalizar el año (Hansen, 2000). En 2010, las capturas de anchoíta superaron las 26.000 t (MAGyP, 2011), siendo su principal destino la industria del salado-madurado, fuertemente orientada a la exportación.. Hansen et al. (2010 a, b) estimaron para los efectivos bonaerense y patagónico capturas máximas permisibles de 120.000 y 100.000 t, respectivamente. Una de las opciones para ese excedente es la elaboración de harina de pescado. Sin embargo, esto es cuestionado por distintas organizaciones gubernamentales y no gubernamentales (Caddy y Mahon, 1995), ya que la explotación de esta especie para la industria harinera podría causar impacto en especies que se alimentan de la anchoíta, muchas de las cuales son explotadas comercialmente por la industria pesquera argentina y uruguaya (Chiodi, 1970; Angelescu, 1982; Bertolotti y Manca, 1986). Atendiendo a esto, en el ámbito de la provincia de Buenos Aires se prohíbe la captura de E. anchoita para la elaboración de harina (Resolución de la Subsecretaría de Actividades Pesqueras N° 9/2004). En este contexto, el estudio de alternativas tecnológicas destinadas a aprovechar un eventual aumento en la explotación de este recurso se constituye en una necesidad a corto o mediano plazo. La determinación de la composición química de las especies pesqueras es importante no sólo desde el punto de vista nutricional, sino también para evaluar la aplicación de procesos tecnológicos adecuados que permitan la elaboración de productos de valor agregado (Connell, 1975; Huss, 1995; Zaboukas et al., 2006). En general, la composición química, y particularmente el contenido graso, varía entre las especies marinas. Asimismo, dentro de una misma especie existen fluctuaciones que pueden asociarse a distintos factores tales como la edad, sexo, desarrollo gonadal, fase migratoria, estado nutricional, área de captura y otros (Exler et al., 1975; Shearer,.
(3) MASSA ET AL.: COMPOSICIÓN QUÍMICA Y PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE LA ANCHOÍTA BONAERENSE. 1994; Rueda et al., 1997; Akpinar et al., 2009). Distintos estudios se han realizado sobre la composición química de E. anchoita (Chiodi, 1970; Massa et al., 2007; 2009; García-Torchelsen et al., 2009; Fernández Compás y Massa, 2010). Todos ellos indican que la anchoíta es una importante fuente de proteína y de lípidos con altos contenidos de ácidos grasos poliinsaturados omega-3. Estos ácidos son altamente valorados por los demostrados efectos benéficos que produce su consumo tanto en la salud humana como animal (Hibbeln et al., 2006; Valenzuela y Sanhueza, 2009). Variaciones significativas en la composición química de la anchoíta, principalmente en el contenido de lípidos, se encontraron en ejemplares capturados en distintas áreas geográficas (Massa et al., 2009; Fernández Compás y Massa, 2010). Asimismo, diferencias interanuales fueron descriptas por Fernández Compás y Massa (2010). Otros estudios verificaron un menor porcentaje graso en individuos juveniles, no demostrándose diferencias significativas entre ejemplares de anchoítas machos y hembras (Aizpún et al., 1979; Massa et al., 2009). Desde el punto de vista biológico, los lípidos juegan roles fisiológicos fundamentales en los peces. Generalmente, estos organismos se apoyan en las proteínas y lípidos para cubrir las demandas de energía para el crecimiento y la reproducción. Además, los ácidos grasos presentes en las especies marinas han sido estudiados con distintos enfoques; la importancia de ellos en la reproducción y en el desarrollo embrionario y larvario ha sido ampliamente demostrada. En los últimos años, los ácidos grasos se han utilizado satisfactoriamente como biomarcadores tróficos del ecosistema marino (Budge et al., 2001; Iverson et al., 2002, 2004; Daly et al., 2010). El objetivo del presente trabajo es estudiar la composición química y caracterizar los ácidos grasos presentes en la anchoíta bonaerense en función del tamaño de los ejemplares y evaluar las variaciones cuali-cuantitativas asociadas con la zona de captura.. 163. MATERIALES Y MÉTODOS. Las muestras se obtuvieron en la campaña de investigación para la evaluación del stock bonaerense de anchoíta realizada a bordo del BIP “Capitán Oca Balda” en la primavera de 2008 (OB-02/2008). Los lances donde se capturaron ejemplares de anchoíta se efectuaron entre los 34° 35’ S y 40° 19’ S, en profundidades que variaron entre los 18 y 108 m. Se realizaron 28 lances, de los cuales se seleccionaron 12, seis en cada zona, considerando que cada uno presentara un amplio rango de tallas. De cada lance de pesca se extrajo una muestra representativa y se agruparon ejemplares por rango de tallas, en clases de 1 cm (de 10 hasta 18 cm de longitud total). Las muestras (20 ejemplares de la misma clase de talla provenientes de un lance) se colocaron en bolsas de polietileno que fueron cerradas al vacío y posteriormente congeladas a -20 °C hasta su posterior análisis en el laboratorio. A fin de caracterizar químicamente la anchoíta en función de la zona de captura se dividió el área de muestreo en dos sectores: la zona norte entre los 34° S y 38° S, fuertemente influenciada por el Río de la Plata y la zona sur entre 38° S-41° S, que incluyó el área de “El Rincón” (Figura 1). Asimismo y con el fin de simplificar los resultados, se agruparon los tamaños de los ejemplares en menores y mayores a 13 cm largo total (LT), longitud correspondiente al tamaño mínimo comercializable. En el laboratorio, las muestras fueron descongeladas, trituradas y homogeneizadas. Posteriormente, de esa masa homogénea se pesaron las cantidades requeridas para los distintos análisis que se detallan a continuación. Análisis químicos Las proteínas se determinaron por el método Kjeldahl; para la transformación del nitrógeno en.
(4) 164. REV. INVEST. DESARR. PESQ. Nº 23: 161-174 (2013). S 1. 11 13 14. 9. 6 8 7. 5 3. 2. 10. 36°. 12. 15 17 20. 19. 35°. 4. 37°. 16. 38° 24 25 27. 22. 21. 39°. 23. 26. 29. 40°. 28. Zona norte (34° S-38° S) Zona sur (38° S-41° S) W. 62°. 61°. 60°. 59°. 58°. 57°. 56°. 55°. 54°. 41°. 53°. Figura 1. Posición de los lances de pesca realizados durante la Campaña de Investigación OB- 02/2008. Los círculos indican los lances considerados en el presente estudio. Figure 1. Position of fishing trawls performed during the (OB-02/2008) research cruise. The circles indicate the trawls considered in this study.. proteína bruta, se utilizó el factor 6,25 (AOAC, 1995). Las cenizas se valoraron mediante calcinación en mufla a 550 °C, durante 6 h (AOAC, 1995). El contenido de agua se calculó por diferencia de peso al evaporarse el agua de la muestra mediante convección natural de aire caliente a 105 °C hasta peso constante (AOAC, 1995). Los lípidos se extrajeron con éter de petróleo según el método Randall (Randall, 1974). Todos los análisis se realizaron por duplicado.. Análisis estadísticos. Determinación de ácidos grasos Para estudiar el perfil de ácidos grasos se extrajeron los lípidos totales según el método de extracción directa con solventes en frío propuesto por Bligh y Dyer (1959). Los ácidos grasos fueron metilados y posteriormente separados y cuantificados en un cromatógrafo de gases Shimadzu GC-17A, equipado con un inyector split, con una columna capilar de sílica fundida Omegawax Supelco 320 (30 m x 0,32 mm ID, 0,25 μm) y un detector de ionización a la llama (FID).. Relación entre el tamaño de la anchoíta y la composición química. Los datos se analizaron mediante test de Student y ANOVA multifactorial utilizando el paquete estadístico RCommander 2.9.1 con un nivel de significación del 0,05.. RESULTADOS Y DISCUSIÓN. Ha sido ampliamente documentado que los organismos marinos presentan cambios químicos apreciables durante su ciclo vital. Dichas variaciones se ponen de manifiesto al realizar el análisis proximal de los individuos (contenido de agua, lípidos, proteínas y cenizas). En este contexto, uno de los objetivos del presente trabajo fue relacionar la composición química de la.
(5) MASSA ET AL.: COMPOSICIÓN QUÍMICA Y PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE LA ANCHOÍTA BONAERENSE. anchoíta bonaerense con la talla de los ejemplares capturados. A modo de ejemplo y generalizando lo observado en los distintos lances estudiados, se exponen gráficamente los resultados de cuatro lances, dos al norte y dos al sur de 38° S, donde estuvieron representadas casi todas las clases de tallas (Figura 2). En los 12 lances analizados, el contenido proteico no presentó diferencias estadísticamente significativas entre organismos de diferentes tallas, aunque se observó una leve tendencia a valores superiores en organismos de tamaño medio, 12-13 cm (Figura 2). En general, el porcentaje proteico en las anchoítas analizadas se mantuvo dentro de un estrecho rango (16-20 g de proteínas cada 100 g de muestra húmeda) comparables con lo descripto en otros estudios realizados en esta especie (Yeannes y Casales, 1995; Cabrer et al., 2002; Massa et al., 2007; 2009, García-Torchelsen et al., 2009). Las cenizas tampoco mostraron diferencias significativas entre individuos de distintas tallas, P < 0,05 (Figura 2). Comparativamente, el porcentaje graso fue significativamente superior en anchoítas de mayor tamaño que en organismo pequeños (3,71 versus 1,87 g 100 g-1, respectivamente). Inversamente, el contenido de agua fue superior en ejemplares de menor tamaño. En general, las especies marinas tienen una relación inversa y dinámica entre el contenido de lípidos y agua en los tejidos musculares (Love, 1970; Yeannes y Almandos, 2003). Esto es particularmente evidente en especies como E. anchoita, que almacena la energía en el músculo en forma de lípidos. Las diferencias observadas en el contenido lipídico entre anchoítas de distintos tamaños podrían asociarse a cambios fisiológicos relacionados con el ciclo vital de los organismos. En ejemplares de menor tamaño (aún en crecimiento), los lípidos son fundamentalmente oxidados con fines energéticos y además, aportan los ácidos grasos esenciales que son necesarios para su normal desarrollo. Una vez que el pez alcanza la talla adulta, su tasa de crecimiento es nula y la. 165. energía que anteriormente era destinada al crecimiento ahora es dirigida hacia la reconstrucción de tejidos dañados, la renovación de estructuras corporales, la reproducción y la acumulación de energía en forma de tejido graso (triglicéridos) que es utilizada cuando el organismo, por factores intrínsecos o extrínsecos, no puede alimentarse correctamente (Lucas, 1996; Pennisi Forell et al., 2009). En la Tabla 1, se muestra el perfil de ácidos grasos presentes en ejemplares de anchoítas juveniles y adultas capturadas en lances de pesca realizados al norte y al sur del paralelo 38° S. Este análisis se realizó teniendo en cuenta las zonas de captura debido a que la composición de los lípidos en los peces es fluctuante, varía con factores ambientales (porcentaje de sal, temperatura, composición y disponibilidad del alimento) y, aunque pueden producirse ciertas variaciones en el metabolismo intermedio, en general, el perfil de ácidos grasos presentes en los tejidos es reflejo de la composición lipídica del alimento. En este estudio se observó un mayor contenido de ácidos grasos saturados (AGS) en ejemplares juveniles que en organismos adultos en ambas áreas. Los ácidos grasos predominantes de este grupo fueron el ácido palmítico (C16:0), seguido del mirístico (C14:0) y del esteárico (C18:0). La función de estos ácidos grasos es energética y pueden ser sintetizados de novo si es necesario. Los ácidos grasos monoinsaturados (AGMI) fueron significativamente superiores en ejemplares adultos. El ácido graso predominante fue el ácido oleico (OA, C18:1 n9) seguido por el ácido palmitoleico (C16:1); estos provienen de la dieta y además pueden ser sintetizados mediante la acción de enzimas desaturasas a partir del ácido esteárico y palmítico, respectivamente. Los ácidos grasos de esta fracción cumplen principalmente un papel estructural. Los ácidos gadoleico (C20:1) y cetoleico (C22:1) están presentes en la dietas zooplanctónicas de la mayoría de las especies de peces carnívoros y son almacenados con fines energéticos como triglicéridos. Un conteni-.
(6) 166. REV. INVEST. DESARR. PESQ. Nº 23: 161-174 (2013). Talla (cm). A (lance 14, 36° 25’ S-56° 19’ W) 16 15 14 13 12 11 10. 2,63. 16,74 16,26. 0. 5 10 15 -1 Proteínas (g 100 g ). 2,99. 76,61. 1,33. 0. 2,99. 77,53. 0,69. 20. 3,36. 78,61 77,51. 1,07. 16,44 16,51. 3,44. 77,00. 0,76. 17,27. 3,63. 77,00 3,30. 15,55. 3,63. 77,22. 2,41. 16,74. 2 4 6 -1 Lípidos (g 100 g ). 0. 20. 40 60 80 -1 Agua (g 100 g ). 2,85. 100 0. 1 2 3 Cenizas (g 100 g-1). 4. Talla (cm). B (lance 16, 37° 33’ S-56° 01’ W) 17 16 15 14 13 12 11 10. 3,17. 19,13 19,75 19,13 18,40 18,58. 3,24. 20,37 18,63 18,05. 0. 5 10 15 -1 Proteínas (g 100 g ). 20. 0,45 1,19 2,22. 0. 3,14. 74,08 72,70 74,30 74,65 75,33 76,04 77,17 77,15. 4,22 4,27 4,18. 2 4 6 -1 Lípidos (g 100 g ). 0. 20. 40 60 80 -1 Agua (g 100 g ). 2,87 3,16 2,97 2,88 3,14 3,02 2,93. 100 0. 1 2 3 Cenizas (g 100 g-1). 4. Talla (cm). C (lance 22, 38° 42’ S-58° 28’ W) 16 15 14 13 12 11 10. 4,14. 18,90. 5,31 0,82. 19,02. 5 10 15 -1 Proteínas (g 100 g ). 20. 0. 3,22 2,93. 75,69. 3,04 3,01. 77,05 77,50. 0,16 0,01. 19,33. 0. 71,97 73,16. 1,76. 19,62 19,09. 3,17 3,01. 73,52 5,66. 19,36 18,31. 3,25. 77,72. 2 4 6 -1 Lípidos (g 100 g ). 0. 20. 40 60 80 -1 Agua (g 100 g ). 100 0. 1 2 3 Cenizas (g 100 g-1). 4. Talla (cm). D (lance 25, 39° 06’ S-59° 17’ W) 18 17 16 15 14 13 12 11 10. 0. 5 10 15 -1 Proteínas (g 100 g ). 20. 75,04 75,29 74,05 74,24 75,93 75,53 75,54 76,43 77,22. 4,26 3,72. 17,19 17,54 16,89 17,37 17,80 17,78 18,09 17,97 18,05. 2,90 3,79 2,15 2,44 2,23 1,94 1,89. 0. 2 4 6 -1 Lípidos (g 100 g ). 0. 20. 40 60 80 -1 Agua (g 100 g ). 3,02 2,90 2,99 3,09 3,09 2,83 2,80 2,86 2,84. 100 0. 1 2 3 Cenizas (g 100 g-1). 4. Figura 2. Composición química de Engraulis anchoita de distintas tallas capturadas en cuatro lances de pesca. A y B) Zona norte (34° S-38° S). C y D) Zona sur (38° S-41° S). Figure 2. Chemical composition of Engraulis anchoita of different sizes caught in four fishing trawls. A and B) Northern area (34° S-38° S). C and D) Southern area (38° S-41° S)..
(7) 167. MASSA ET AL.: COMPOSICIÓN QUÍMICA Y PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE LA ANCHOÍTA BONAERENSE. Tabla 1. Perfil medio de ácidos grasos (g 100 g-1) en los lípidos totales de Engraulis anchoita en función del tamaño de los ejemplares y la zona de captura. Table 1. Mean fatty acids profile (g 100 g-1) in total lipids of Engraulis anchoita as a function of specimens size and fishing area.. Zona de captura 34° S-38° S Ácidos grasos. 38° S-41° S. < 13 cm. > 13 cm. < 13 cm. > 13 cm. 8,91 19,94 2,01 8,28 11,29 6,77 11,50 2,95 1,22 2,60 1,31 4,71 12,03 30,86 37,84 24,83 4,26 20,58. 8,09 23,34 3,62 10,37 13,86 3,91 3,56 2,01 0,93 2,19 0,48 5,29 15,73 35,05 31,71 26,63 2,49 24,14. 6,13 20,01 2,14 6,85 10,75 4,97 16,51 2,30 0,82 2,16 0,55 5,22 15,52 28,27 39,08 26,57 2,85 23,73. 7,96 22,69 3,35 10,53 11,35 4,80 8,22 1,26 0,78 2,05 0,43 5,66 16,23 34,00 34,89 26,40 1,68 24,71. Ácido mirístico C14:0 Ácido palmítico C16:0 Ácido esteárico C18:0 Ácido palmitoleico C16:1 Ácido oleico (OA) C18:1 n-9 Ácido gadoleico C20:1 Ácido cetoleico C22:1 Ácido linoleico (LN) C18:2 n-6 Ácido linolénico (LNA) C18:3 n-3 Ácido estearidónico C18:4 n-3 Ácido araquidónico (ARA) C20:4 n-6 Ácido eicosapentaenoico (EPA) C20:5 n-3 Ácido docosahexaenoico (DHA) C22:6 n-3 ΣAGS* ΣAGMI* ΣAGPI* ΣAGPIn-6* ΣAGPIn-3*. *Estos valores comprenden otros ácidos grasos presentes en los lípidos totales en pequeñas proporciones que no fueron incluidos en la tabla.. do significativamente menor de C20:1 y C22:1 se determinó en individuos juveniles, lo que podría indicar la utilización energética de estos ácidos para funciones fisiológicas relacionadas con el crecimiento. Los ácidos grasos polinsaturados (AGPI) no presentaron diferencias significativas entre individuos de distinto tamaño. Analizando individualmente los ácidos grasos pertenecientes a este grupo, se verificaron contenidos superiores de ácido linoleico (LN, C18:2 n-6), ácido linoleico (LNA, C18:3 n-3) y araquidónico (ARA, C20:4 n-. 6) en animales de menor tamaño. Mientras que los ácidos eicosapentaenoico (EPA; C20:5 n-3), y docohexanopentaenoico (DHA; C22:6 n-3) fueron más abundantes en individuos de tallas superiores. La síntesis de ácidos grasos altamente insaturados implica reacciones de desaturación, durante la cual se introduce una doble ligadura dentro de la cadena del ácido graso. A partir del ácido oleico (OA C18:1 n-9) y mediante la acción de desaturasas se forma LN y posteriormente LNA. Estos ácidos grasos son considerados precursores del resto de los ácidos grasos de cadena larga. El.
(8) 168. ARA se forma principalmente a partir del LN y la acción de enzimas desaturasas y elongasas (adición de 2 átomos de C a la cadena) y de la misma manera, a partir de LNA se forma EPA, el cual tras dos elongaciones, una desaturación y un acortamiento de la cadena de C dará lugar al DHA. El grado de actividad de las enzimas involucradas en este proceso depende de la especie y de la composición de ácidos grasos de la dieta (Tocher, 2003). En general, los peces acumulan más DHA que C22:5 n-6 (ácido Osbond), debido a que las enzimas tienen mayor especificidad por la vía n-3 que por n-6. Los ácidos grasos LN y LNA son considerados esenciales y deben ser incorporados en la dieta debido a que los vertebrados carecen de las desaturasas que los forman (Δ12 y Δ15). Los ácidos grasos ARA, EPA y DHA son considerados esenciales fisiológicamente debido a las funciones vitales que cumplen. La mayoría de las especies marinas cubren sus requerimientos de estos ácidos grasos a través de la dieta, situación por la cual la síntesis de novo podría estar disminuida (Sargent et al., 1995; Tocher, 2003). Como se ha mencionado, una de las funciones principales de los AGPI es formar parte de los fosfolípidos de membrana, manteniendo su estructura y funcionalidad. En este contexto, los AGPI juegan un importante rol en el desarrollo de la larva, siendo el DHA fundamental en el desarrollo del tejido nervioso y del sistema visual, ya que es el principal ácido graso presente en los fotorreceptores de la retina (Izquierdo et al., 1992; Estevez y Kanazawa 1996; Sargent et al., 1999). Bell et al. (1995) demostraron que la habilidad de las larvas de arenque (Clupea harengus) para distinguir y capturar presas vivas se ve afectada por deficiencia de DHA. Otra importante función de los AGPI es la formación de compuestos eicosanoides. En los peces estas biomoléculas intervienen en una amplia gama de funciones fisiológicas tales como la reproducción, las respuestas inflamatorias e inmunológicas, los procesos de osmoregulación y el control de la res-. REV. INVEST. DESARR. PESQ. Nº 23: 161-174 (2013). puesta al stress (Sargent et al., 1999; Koven et al., 2001). Distintos estudios han demostrado que dietas deficientes en ácidos grasos esenciales disminuyen la tasa de crecimiento, además de que pueden aparecer signos patológicos tales como degeneración hepática, erosión de aletas y lesiones branquiales. En reproductores se observó una reducción significativa de la producción y de la tasa de eclosión de los huevos. Relación entre la composición química y zona de captura En este apartado, el análisis de los resultados se realizó considerando las zonas de captura, sin tener en cuenta la talla de los ejemplares. En la Figura 3 se puede observar que las proteínas presentaron diferencias significativas, obteniéndose valores medios de 17,33 ± 0,97 g 100 g-1 en organismos capturados al norte y de 18,93 ± 0,38 g 100 g-1 en anchoítas pertenecientes al sur, P = 0,06. La cantidad de cenizas fue significativamente mayor en ejemplares obtenidos en lances realizados en la zona norte que los pescados al sur de 38° S (3,34 ± 0,18 versus 2,92 ± 0,11 g 100 g-1, respectivamente; Figura 3). El contenido de agua también presentó diferencias notoriamente significativas (P < 0,001); en anchoítas del norte se obtuvieron valores superiores que en ejemplares capturados al sur, 77,19 ± 0,73 versus 73,49 ± 1,07 g 100 g-1, respectivamente (Figura 3). Inversamente, los lípidos fueron superiores en ejemplares extraídos del sur, 5,09 ± 1,64 versus 1,26 ± 0,64 g 100 g-1; P < 0,001 (Figura 3). Las variaciones mencionadas en este punto podrían explicarse, al menos en parte, por el tamaño de los ejemplares. Estudios realizados durante la campaña mostraron que las anchoítas de tallas mayores predominaron casi exclusivamente en la zona sur (Garciarena, 2008) y según los resultados descriptos anteriormente los ejemplares de mayor tamaño presentaron porcentajes lipídicos superiores. Por otro lado, y como ya se mencionó, la disponibilidad y el valor nutri-.
(9) 169. Latitud sur. MASSA ET AL.: COMPOSICIÓN QUÍMICA Y PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE LA ANCHOÍTA BONAERENSE. 40° 19’ 39° 53’ 38° 21’ 38° 42’ 38° 51’ 37° 55’ 37° 42’ 36° 25’ 35° 51’ 35° 06’ 0,0. 4,0. 8,0. 12,0. 16,0. 20,0. 0,0. 1,0. 3,0. 4,0. 5,0. 6,0. 7,0. Lípidos (g 100 g ). Proteínas (g 100 g ). Latitud sur. 2,0. -1. -1. 40° 19’ 39° 53’ 38° 21’ 38° 42’ 38° 51’ 37° 55’ 37° 42’ 36° 25’ 35° 51’ 35° 06’ 0,0. 0,5. 1,0. 1,5. 2,0. 2,5. 3,0. 3,5. 4,0. 0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 50,0 60,0 70,0 80,0 90,0 -1. -1. Agua (g 100 g ). Cenizas (g 100 g ). Zona sur (38° S-41° S) Zona norte (34° S-38° S) Figura 3. Composición química de Engraulis anchoita según el área de captura. Figure 3. Chemical composition of Engraulis anchoita according to the fishing area.. cional del alimento también podrían ser factores determinantes (Chiodi, 1970; Massa et al., 2009). En períodos o zonas de abundancia de alimentos los peces acumulan lípidos como fuente de energía depositándolos en sus tejidos, opuestamente en período de escasez; las grasas son utilizadas para mantener un estado de homeostasis y asegurar su integridad fisiológica. En muchas especies se ha observado que el aparato digestivo es el primer sistema afectado cuando el organismo cesa o disminuye su alimen-. tación. Además, se produce una importante alteración en el principal órgano de reserva que, dependiendo de la especie, es el hígado (en peces “blancos” o no grasos) o los músculos (peces “azules” o grasos). La degradación con fines energéticos se produce tanto a partir del glucógeno y los lípidos como de las proteínas. La tasa a la que se degradan dichos componentes depende de la especie. En general, en las especies “azules”, que suelen ser muy activas y tener hábitos carnívoros como E. anchoita, son los lípidos musculares los prime-.
(10) 170. REV. INVEST. DESARR. PESQ. Nº 23: 161-174 (2013). ros en ser movilizados, provocando la hidratación de los tejidos (como se ha mencionado anteriormente, hay una relación inversa entre el contenido de lípidos y el contenido de agua). En cambio, en peces “blancos” (más lentos, sedentarios, con hábitos detritívoros, omnívoros o plantófagos) inicialmente se produce una movilización de lípidos hepáticos o mesentéricos (grasa visceral) y, posteriormente, de proteínas musculares. En este contexto, el mayor contenido de lípidos y la menor proporción de agua en los tejidos de la. anchoíta capturada en la zona de “El Rincón” (38° S-41° S) podría asociarse a mejores características abióticas y bióticas que pueden actuar como mecanismo de concentración de organismos zooplanctónicos, potencial alimento de la anchoíta (Marrari et al., 2004; Díaz, 2010). En la Tabla 2 se muestran los principales ácidos grasos presentes en ejemplares de anchoíta capturados al norte y al sur del paralelo 38° S. El contenido de AGS fue mayor en muestras de anchoítas extraídas del norte; los AGMI predomi-. Tabla 2. Perfil de ácidos grasos (g 100 g-1) en los lípidos totales extraídos de ejemplares de Engraulis anchoita capturados al norte y sur de los 38° S. DS: desviación estándar. Table 2. Fatty acids profile (g 100 g-1) in total lipids extracted from specimens of Engraulis anchoita caught north and south of 38° S. DS: standard deviation.. Zona de captura 34° S-38° S. 38° S-41° S. Ácidos grasos. Media. DS. Media. DS. Ácido mirístico C14:0 Ácido palmítico C16:0 Ácido esteárico C18:0 Ácido palmitoleico C16:1 Ácido oleico (OA) C18:1 n-9 Ácido gadoleico C20:1 Ácido cetoleico C22:1 Ácido linoleico (LN) C18:2 n-6 Ácido linolénico (LNA) C18:3 n-3 Ácido estearidónico C18:4 n-3 Ácido araquidónico (ARA) C20:4 n-6 Ácido eicosapentaenoico (EPA) C20:5 n-3 Ácido docosahexaenoico (DHA) C22:6 n-3 ΣAGS* ΣAGMI* ΣAGPI* ΣAGPIn-6* ΣAGPIn-3*. 8,131 26,173 3,491 10,589 14,771 1,943 3,834 1,974 0,879 1,903 0,362 4,644 16,332. 0,420 3,549 1,134 1,142 2,610 1,375 4,066 1,045 0,235 0,753 0,081 1,342 2,696. 6,343 19,948 2,093 9,386 11,279 4,407 15,025 1,837 0,779 1,519 0,468 4,796 15,599. 0,878 1,670 0,137 1,012 0,721 0,372 2,401 0,526 0,039 0,461 0,049 1,043 3,221. 37,795 31,138 26,095 2,336 23,759. 28,384 40,097 24,998 2,305 22,693. *Estos valores comprenden otros ácidos grasos presentes en los lípidos totales en pequeñas proporciones que no fueron incluidos en la tabla..
(11) 171. MASSA ET AL.: COMPOSICIÓN QUÍMICA Y PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE LA ANCHOÍTA BONAERENSE. naron en ejemplares del sur, y el contenido de AGPI fue similar en ambas zonas. Dentro de los AGS, el ácido palmítico fue el que presentó mayor porcentaje, seguido del ácido mirístico; los valores de ambos ácidos grasos difirieron significativamente entre zonas (P < 0,05). El OA fue el AGMI mayoritario, los valores encontrados fueron superiores en ejemplares capturados al norte (P < 0,05); el ácido palmitoleico fue el segundo en importancia y no presentó diferencia entre las áreas evaluadas. Los AGPI representaron el 26,09 y 24,99% para ejemplares extraídos del norte y del sur, respectivamente. Dentro de esta fracción, los ácidos grasos de la familia n-3 fueron los predominantes, representando, al norte, el 23,76 ± 4,66%, y al sur, el 22,95 ± 4,61% de los ácidos grasos totales. El DHA fue el ácido graso de mayor importancia seguido del EPA. Los valores encontrados son similares a los descriptos para esta especie por Massa et al. (2007). Los resultados obtenidos indican que existe una importante variación tanto en el contenido lipídico como en el perfil de ácidos grasos de la anchoíta en función de la zona de captura, esto podría estar relacionado con la disponibilidad y el valor nutricional del zooplancton (alimento de la especie).. CONCLUSIONES. Los resultados obtenidos indican que existe una importante variación de la composición química, especialmente del contenido lipídico y del perfil de ácidos grasos de la anchoíta bonaerense en función de la zona de captura y al tamaño de los ejemplares. Los resultados descriptos corresponden a una sola campaña y, por lo tanto, deberían realizarse estudios complementarios con un enfoque multidisciplinario relacionando las características bióticas y abióticas del medio ambiente que tienen influencia en las variaciones de los componentes químicos de la especie.. BIBLIOGRAFÍA. AIZPÚN, J.E., MORENO, V.J. & MALASPINA, A.M. 1979. Variaciones en la composición bioquímica proximal de la anchoíta durante tres temporadas de pesca (1975-1977). Rev. Invest. Desarr. Pesq., 1: 45-53. AKPINAR, M.A., GÖRGÜN, S.A. & AKPINAR, A. 2009. A comparative analysis of the fatty acid profiles in the liver and muscles of male and female Salmo trutta macrostigma. Food Chem., 112: 6-8. NGELESCU , V. 1982. Ecología trófica de la A anchoíta del Mar Argentino (Engraulidae, Engraulis anchoita). Parte II. Alimentación, comportamiento y relaciones tróficas en el ecosistema. Contrib. Inst. Nac. Invest. Desarr. Pesq. (Mar del Plata), Nº 409, 83 pp. AOAC (ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTRY). 1995. Official Methods of Analysis. AOAC International, Washington, 1141 pp. BELL, M.V., BATTY, R.S., DICK, J.R., FRETWELL, K., NAVARRO, J.C. & SARGENT, J.R. 1995. Dietary deficiency of docosahexaenoic acid impairs vision at low light intensities in juvenile herring (Clupea harengus L.). Lipids, 30: 443-449. ERTOLOTTI , M.I. & MANCA, E.A. 1986. ProcesaB miento y comercialización de la anchoíta (Engraulis anchoita) del Mar Argentino. Rev. Invest. Desarr. Pesq., 5: 224-246. LIGH , E.G. & DYER, W.J. 1959. A rapid method B for total lipid extraction and purification. Can. J. Biochem. Physiol., 37: 911-917. BUDGE, S.M, PARRISH, C.C. & MCKENZIE, C.H. 2001. Fatty acid composition of phytoplankton, settling particulate matter and sediments at a sheltered bivalve aquaculture site. Mar. Chem., 76: 285-303. ABRER , A.I., CASALES, M.R. & YEANNES, M.I. C 2002. Physical and chemical changes in.
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