UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
ESCUELA PROFESIONAL DE BIOLOGÍA PESQUERA
Calidad de agua del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú
TESIS PARA OPTAR EL TÍTULO PROFESIONAL DE BIÓLOGO PESQUERO
AUTOR: Br. Asmat Marcial Sergio Alberto
ASESOR: M.Cs. Ywanaga Reh Nelson Gustavo
TRUJILLO – PERÚ
2021
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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO
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Dr. CARLOS ALBERTO VÁSQUEZ BOYER Rector
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Dr. JUAN AMARO VILLACORTA VÁSQUEZ Vicerrector Académico
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Dr. GUILLERMO ARTURO GARCÍA PÉREZ Vicerrector de Investigación
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AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
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Ms. ADALBERTO JAVIER GONZÁLES VARAS Decano (e) de la Facultad de Ciencias Biológicas
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Dr. CARLOS ALFREDO BOCANEGRA GARCÍA
Director (e) de la Escuela Profesional de Biología Pesquera
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Dra. (e) ALINA MABEL ZAFRA TRELLES
Directora del Departamento Académico de Pesquería
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PRESENTACIÓN
SEÑORES MIEMBROS DEL JURADO:
“Cumpliendo con las normas vigentes de Grados y Títulos de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Escuela Profesional de Biología Pesquera de la Universidad Nacional de Trujillo, presentam.os el presente informe de tesis titulado:
Calidad de agua del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú
Con el cual estamos cumpliendo el requisito indispensable para optar el título de Biólogo Pesquero.
Trujillo, abril del 2021.
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Br. Asmat Marcial Sergio Alberto DNI: 70372709
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DEDICATORIA
A Dios padre, porque por su gracia soy lo que soy y su gracia no fue en vano para conmigo para conmigo.
A mis padres Diana y Alberto quienes, con su amor, sacrificio y perseverancia;
inculcaron en mí el valor de la educación.
A mis hijas Flavia y Mia, que fueron el punto de partida para desarrollar en mi la mejora constante.
A todas las personas que creyeron en mí y en este proyecto.
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AGRADECIMIENTO
Agradezco en gran medida a mis padres Diana y Alberto, que siendo ellos los artífices de mi educación me apoyaron de forma incondicional, a mis familiares por creer en mí y a mis hijas Flavia y Mia por ser el impulso que se necesita para poder seguir avanzando.
A mi asesor por guiarme en este camino del conocimiento y todos los docentes con los cuales compartí muchas experiencias que quedaran marcadas en mí.
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EL ASESOR
El que suscribe, M. Cs. Gustavo Ywanaga Reh asesor del presente Informe de Tesis titulado: Calidad de agua del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú
Certifica:
Que la investigación ha sido desarrollada de conformidad y con orientaciones pertinentes, de acuerdo a los objetivos propuestos, siendo redactado bajo mi asesoramiento, acogiendo las observaciones y sugerencias alcanzadas.
Por lo tanto, autorizo a Sergio Alberto Asmat Marcial, Bachiller en Ciencias Biológicas a que continúe con el trámite que le corresponde.
Trujillo, abril del 2021.
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M.Cs. Nelson Gustavo Ywanaga Reh
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MIEMBROS DEL JURADO
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Dr. Moises Efraín Díaz Barboza PRESIDENTE
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Dra. Alina Mabel Zafra Trelles SECRETARIO
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M. Cs. Nelson Gustavo Ywanaga Reh VOCAL
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APROBACIÓN
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Dr. Moises Efraín Díaz Barboza PRESIDENTE
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Dra. Alina Mabel Zafra Trelles SECRETARIO
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M. Cs. Nelson Gustavo Ywanaga Reh VOCAL
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Índice
PRESENTACIÓN ... iv
DEDICATORIA ... v
AGRADECIMIENTO ... vi
MIEMBROS DEL JURADO ... viii
Índice ... x
RESUMEN ... xii
ABSTRACT ... xiii
I. INTRODUCCIÓN ... 1
1.1. Realidad problemática ... 1
1.2. Justificación y relevancia ... 2
1.3. Marco teórico conceptual ... 2
1.4. Marco empírico ... 3
1.5. Problema ... 6
1.6. Objetivo general: ... 6
Objetivos específicos: ... 6
II. MATERIAL Y MÉTODOS ... 7
2.1. Tipo de investigación ... 7
2.2. Población y muestra ... 7
2.3. Criterios de inclusión ... 8
2.4. Unidad de análisis ... 8
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2.5. Instrumentos ... 8
2.5.1. Para determinar los parámetros físicos: ... 8
2.5.2. Para determinar los parámetros químicos: ... 8
2.5.3. Parámetros Microbiológicos ... 10
2.6. Control de calidad de los datos: Prueba de validez y confiabilidad ... 12
2.7. Procedimiento... 12
2.8. Procesamiento de los datos ... 13
2.9. Definición de variables ... 13
2.10. Consideraciones éticas y de rigor ... 13
III. RESULTADOS... 14
3.1. Hallazgos ... 14
3.2. Discusión ... 27
IV. CONCLUSIONES ... 30
V. RECOMENDACIONES ... 31
VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ... 32
Anexos ... 35
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RESUMEN
Se realizó un estudio de aguas proveniente del río Piura utilizada incipientemente para cultivo de langostino, con el fin de generar una información integral para una futura propuesta tendiente a la crianza de esta especie. El agua ha sido tomada del río Piura mediante un desvío el curso del río, y pasa a un canal que desvía el agua hacia un posterior uso. Investigaciones anteriores, realizadas en el río Piura, determina la presencia de concentraciones relativamente aptas para el cultivo (ph, Alcalinidad, Amonio, etc). Para corroborar estos datos en 2019 se planteó un estudio más profundo sobre estas aguas, mediante el actual en la investigación, se muestrearon 2 puntos con un total de 29 muestras, donde se analizó parámetros físico – químicos, coliformes totales, fecales, y análisis de fitoplancton. Los análisis determinaron que las concentraciones de amonio son bajos (mediana: 0.3mg/lt). Con base en lo que menciona la literatura científica, estas concentraciones son viables para llevar a cabo una actividad de cultivo, Además, se detectó la variación de los valores en épocas de lluvia. Se concluye que los factores que influyen en la calidad del agua pueden deberse a varios motivos: desde razones naturales y geológicas, sobe la temática del agua como eje transversal y práctico podemos asegurar la viabilidad del cultivo de Litopenaeus vannamei.
Palabras claves: Canal de agua, Cultivo y Litopenaeus vannamei.
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ABSTRACT
A study of waters from the Piura river used incipiently for shrimp farming was carried out, in order to generate comprehensive information for a future proposal aimed at raising this species. The water has been taken from the Piura river by diverting the course of the river, and passes into a channel that diverts the water for later use.
Previous research, carried out in the Piura River, determines the presence of concentrations that are relatively suitable for cultivation (pH, Alkalinity, Ammonium, etc.). To corroborate these data in 2019, a more in-depth study on these waters was proposed, through the current one in the investigation, 2 points were sampled with a total of 29 samples, where physical-chemical parameters, total coliforms, fecal, and analysis of phytoplankton. The analyzes determined that the ammonium concentrations are low (median: 0.3mg./lt). Based on what the scientific literature mentions, these concentrations are viable to carry out a cultivation activity. In addition, the variation of the values was detected in rainy seasons. It is concluded that the factors that influence water quality may be due to several reasons: from natural and geological reasons, on the theme of water as a transversal and practical axis, we can ensure the viability of the cultivation of Litopenaeus vannamei.
Keywords: Water channel, Crop and Litopenaeus vannamei.
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I. INTRODUCCIÓN
1.1. Realidad problemática
El sector acuicultura es uno de los tantos sistemas de producción alimenticia que ha crecido de manera rápida en las últimas décadas. La actividad acuícola se ha intensificado y se ha diversificado, avanzando tecnológicamente, contribuyendo a la producción de los alimentos, generando inocuidad y seguridad alimentaria, divisas de manera significativa. (Gonzaga et al.,2016)
Actualmente la acuicultura se ha industrializado, desarrollándose de manera rápida en todo el mundo, inclusive más que otros sectores pecuarios productivos;
convirtiéndose en la mejor alternativa por tener una buena viabilidad económica en la producción de alimentos, que se apoya en procesos y técnicas del cultivo de organismos acuáticos en condiciones que se pueden controlar. (Guerrero et al., 2004;
Montemayor et al., 2005, Allsopp et al., 2008)
La nueva tendencia sobre la acuicultura, es descrita como aquella actividad económica que busca manejar la calidad del agua para la crianza de organismos acuáticos cautivos con la finalidad de ser comercializados. La actividad acuícola tiende a degradar el medio ambiente, mediante desechos que quedan en el agua, como los alimentos que no son consumidos por los peces y sus heces, aplicación de sustancias químicas, nutrientes que quedan disueltas que generan eutrofización; todo ello genera un costo ambiental, social y económico. (Buschmann, 2015)
Para obtener agua de calidad, se debe tener pozos profundos, debido a que la composición iónica es mayor que la salinidad (Valenzuela et al., 2002; Valenzuela et al., 2010). Es importante la composición iónica del agua para poder obtener altas probabilidades de sobrevivencia de los organismos, con la presencia de calcio, cloro, sulfato, potasio y magnesio; cualquiera de estos componentes iónicos se utilizará en pocas cantidades, excepto la falta de potasio porque afectaría directamente la sobrevivencia de los camarones (Angulo et al., 2005). Es importante las cantidades o proporciones de los iones Mg/K y Na/K (3.68:1 y 37.91:1) para asegurar un crecimiento correcto. (Valenzuela et al., 2010; Esparza et al., 2009).
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1.2. Justificación y relevancia
La población sigue en aumento y por ende se deben estudiar nuevas formas de proporcionar alimentos de calidad de una forma sostenida, para esto se necesitan estudiar diversas formas de producción y la acuicultura es una de ella. Este trabajo tiene como finalidad establecer conocimientos para posteriores conocimientos sobre el cultivo de este recurso Litopenaeus vannamei.
1.3. Marco teórico conceptual
Conductividad: “la conductividad es una medida de la propiedad que poseen las soluciones acuosas para conducir la corriente eléctrica. Esta propiedad depende de la presencia de iones, su concentración, movilidad, valencia y de la temperatura de la medición” (Sanabria, 2016).
pH: es la medida de la concentración de iones de hidrógeno, [H +]. Cada solución acuosa se puede medir para determinar su valor de pH. Este valor varía de 0 a 14 pH. Los valores por debajo de 7 pH exhiben propiedades ácidas. Los valores superiores a 7 pH exhiben propiedades básicas (también conocidas como cáusticas o alcalinas). Dado que 7 pH es el centro de la escala de medición, no es ácido ni básico, se llama neutral (HATCH, 2018)
Salinidad: la salinidad es la medida de sales disueltas en el agua. La salinidad con la conductividad está muy relacionada por la cantidad de iones disueltos que aumentan los valores de ambos.
Temperatura: la temperatura de un cuerpo viene a ser la medida de su estado de enfriamiento o calentamiento, cuando es tocado, siendo así que el sentido del tacto permite hacer una estimación de la temperatura (Peña, 2007).
Turbidez: es la propiedad óptica que causa la luz cuando es absorbida y dispersada, por los cambios de flujos mediante la toma de muestras (Carpio, 2007).
Alcalinidad: es la capacidad que tiene un material para poder neutralizar los ácidos, se determina mediante titulación.
Amonio: es un catión formado por la neutralización del amoníaco, que actúa como una base débil.
Cobre: es un elemento químico cuyo símbolo es Cu, es un metal que tiene como color pardo rojizo, muy brillante, maleable, resistente a la corrosión y conductor de calor y electricidad.
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Fosfato: resulta de la combinación del ácido fosfórico con alguna base, se puede encontrar como abono o mediante la obtención del ácido fosfórico.
Magnesio: elemento químico cuyo símbolo es Mg, es metal alcalino, de color blanco y plateado, es ligero y maleable.
Nitrato: es un contaminante del agua subterránea, esta presente en las áreas rurales.
Nitrito: es anión con nitrógeno (N) y oxígeno (O), se une a compuestos inorgánicos y orgánicos, forma compuestos como las sales.
Sílice: resulta de la combinación del oxígeno con el silicio y entra en composición con otros minerales.
Pseudomonas: es un tipo de bacilo, ligeramente curveados, son gram negativo, aeróbico estricto.
Vibrios sp: es un tipo de bacteria, que pertenece a la familia Vibrionaceae, son anaerobias facultativas, son móvil por un solo flagelo polar. Habitan en el agua de mar o en agua dulce, se las puede encontrar en animales acuáticos.
Salmonella: es una bacteria de la familia Enterobacteriaceae, contiene bacilos gran negativos.
Coliformes: es un tipo de bacteria que conforma la familia Enterobacteriaceae, es facultativo con flagelos peritricos.
1.4. Marco empírico
En los países del Asia, el agua de las lagunas y ríos, se utiliza para el cultivo de camarones, pues combinan la salmuera que procede de estanques para evaporación de sal, así poder obtener una mejor salinidad de 5ups. (Boyd et al. 2002).
En América Latina, la mayoría de países que cultivan camarones epicontinentales, extraen agua del subsuelo con cierta salinidad para que pueda ser utilizada de manera directa. Las aguas extraídas algunas veces pueden tener baja salinidad o estar sobre el límite hipotónico de acuerdo a la especie (0.5ups), como en el caso de algunas granjas en México o Brasil o Ecuador que tienen 1ups de salinidad (Nuñez y Velázquez 2001; Treece 2002). Sin embargo, no se ha determinado que exista una significativa diferencia entre el uso del agua reconstituida o preparada con el agua que es extraída del subsuelo. (Saoud et al., 2003; Sower y Tomasso, 2006; Valenzuela et al., 2010)
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En el Perú la actividad acuícola, ha tenido en los últimos años un incremento. En el año 2000 existían aproximadamente 1,115 derechos otorgados para unas 10,809 hectáreas que tenían espejos de agua (Produce, 2007); para el año 2008 ya existían aproximadamente 3,172 acuicultores con sus derechos para un área de 23,048 hectáreas que tenían espejos de agua (Produce 2008), evidenciando claramente que la actividad acuícola es una alternativa para el desarrollo del país.
Para un buen desempeño de la actividad acuícola, dependerá de la cantidad y de la calidad del agua. Las aguas de las cuencas están siendo afectadas por las aguas residuales, residuos industriales y mineros, desmoste y basura que las diversas actividades de producción, así también las lluvias ácidas, entre otros. Todo ello disminuye considerablemente la posibilidad de realizar la actividad acuícola. (Carrillo et al.,2012)
En el Perú, la Ley N° 29338 “Ley de Recursos Hídricos” y su Reglamentos el Decreto 001-2010-AG, sostiene que el agua es un patrimonio de la Nación, es así que su empleo está orientado a priorizar las necesidades primarias y para la producción, en el orden siguiente: (i) agrario, pesquero y acuícola, (ii) industrial, energético, minero y medicinal, (iii) transporte, turístico y recreativo, (iv) otros usos. Esta ley en su artículo 79 autoriza que se viertan las aguas residuales que sean tratadas previa opinión técnica que sea favorable por parte de las autoridades ambientales y de la salud, para que se así cumplimiento de los estándares de calidad ambiental de las aguas, con los límites máximos permitidos, con ello queda el vertimiento directo del agua residual o indirecto prohibido sin antes tener la autorización.
La especie Litopenaeus vannamei tiene una gran tolerancia a los factores del medio ambiente, siendo capaz de soportar salinidades entre 0.5 – 45ups; suele crecer de manera muy favorable a densidades de 50 org/m2, con ambientes bajas de salinidad entre 10 y 15ups (Wyban y Sweeny, 1991; McGraw et al., 2002), siendo así que se convierte en una especie ideal para el cultivo epicontinental.
El cultivo de camarones epicontinentales en aguas con baja salinidad tiene una mayor viabilidad para hacer frente a la contaminación de la costa (Saoud et al., 2003;
Martínez et al., 2009). El cultivo de Litopenaeus vannamei (camarón blanco del pacífico) en las aguas epicontinentales se ha extendido con mucha rapidez, siendo así que se puede cultivar en tanques con diferentes densidades y diversas
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salinidades, sacando mucho provecho a la capacidad eurihalina, facilitando el cultivo en aguas con sales bajas. (Roy et al., 2007; Esparza et al., 2010)
Este tipo de cultivo o actividad sirve como medio de subsistencia para millones de pobladores en el mundo entero. Según la FAO (2009), el principal producto acuático que se comercializa son los camarones, cuyos ingresos están por encima de los $14 000 millones de dólares; por lo que este tipo de actividad se mantendrá en el tiempo por su aporte al abastecimiento de mariscos y peces en el mundo (Naylor y Burke, 2005).
Wicki (1996), manifiesta que las características del agua de abastecimiento para un cultivo de camarón de agua dulce son: la temperatura fluctúa entre 34 y 18°C siendo lo ideal entre 29 a 31°C, el oxígeno disuelto, el rango optimo es 75% de saturación, asimismo, el pH se considera aceptable si está entre 7.0 a 8.5, la alcalinidad como CaCO3 es aceptable 150, dureza total menor a 40mg/L, nitritos menos a 0.1mg/L y nitratos menor a 20mg/L.
Así mismo, Wyk (1999) encontró valores recomendados para la calidad de agua en el cultivo, como el pH ligeramente básico de 7.0 a 8.3, una alcalinidad menos a 100 mg/L, una concentración de calcio mayor a 100 mg/L, magnesio mayor a 50 mg/L, cobre menor a 25ppb. Por otra parte, Boyd y Col (2002) recomendó un pH entre 7 a 8 con una alcalinidad de 70, un magnesio desde 3 a 64 mg/L, y una concentración de potasio entre 4 a 12.4 mg/L.
La Autoridad Nacional del Agua (2017) encontró que el agua del río Piura es caracterizado por un pH que va desde 7.6 a 8.3, en el caso del fósforo encontró desde 0.61 hasta 0.180 mg/L, cantidades aceptables de nitrito (como N) (menores a 0.004), cantidades óptimas de nitrato desde 0.004 hasta 0.164 mg/L, valores de potasio de 2.0 hasta 2.9, así mismo, hallo que la concentración de magnesio varió de entre 0.053 hasta 0.153 mg/L.
El propósito de este trabajo de investigación fue determinar la calidad de agua del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei, de octubre 2019 – enero 2020, Distrito Chapaira, Piura 2020. Así mismo determinar los principales parámetros químicos, biológicos y físicos.
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1.5. Problema
¿Cuál es el nivel de calidad de agua del canal alimentador en cultivo de Litopenaeus vannamei, Chapaira- Piura?
1.6. Objetivo general:
Determinar la calidad de agua del canal alimentador en cultivo de Litopenaeus vannamei, Chapaira- Piura.
Objetivos específicos:
OE1: Determinar indicadores microbiológicos del canal alimentador en cultivo de Litopenaeus vannamei, Chapaira- Piura.
OE2: Determinar los principales parámetros físicos y químicos del canal alimentador en cultivo de Litopenaeus vannamei, Chapaira- Piura.
OE3: Determinar los principales grupos algales del canal alimentador en cultivo de Litopenaeus vannamei, Chapaira- Piura.
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II. MATERIAL Y MÉTODOS
2.1. Tipo de investigación Cuantitativo
2.2. Población y muestra
La población es el agua del canal alimentador que se encuentra en nuestra área de estudios que estuvo ubicada en el Caserío de Chapaira, distrito de Castilla, provincia y departamento de Piura; las muestras fueron recolectadas desde el 22 de octubre del 2019 al 22 de febrero del 2020, con ayuda del GPS se tomaron 2 puntos de muestreo, siendo éstos denominados P1 (5° 07’39’’ S y 80°36’03’’ W) y P2 (5°07’37’’
S y 80°36’51’’ W).
La muestra tomada fue de 500 ml, debidamente rotulada y posteriormente se le realizó la lectura en fresco. Para ello se utilizó una cámara de NeuBauer con porta- objeto modificado, con el cual se realizó un conteo de 04 cuadrantes multiplicando el número resultante por 2500.
Figura 1
Vista Panorámica del Canal Alimentador, ubicando P1 y P2 Fuente de elaboración según Google Maps.
P1 P2
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En el punto P1 se recolectaron muestras para análisis microbiológicos y en el punto P2 para análisis físicos y químicos. En el canal alimentador se realizaron diversos análisis de agua, los cuales constaron de físico-químico y microbiológicos, así mismo como determinar las principales familias de fitoplancton.
2.3. Criterios de inclusión
Los criterios de inclusión de muestras son referentes al agua empleada en el cultivo de la estación, estas fueron tomadas de los puntos 1 y 2, son aguas de características normales, sin tratamiento previo.
2.4. Unidad de análisis
Los parámetros físicos y químicos, se tomaron con una frecuencia de 01 vez a la semana, siendo la hora de muestreo las 12m (NH3, NO2, CaCO3, K, Ca, Mg, PO4, Cu, SiO2 y NO3).
Los parámetros microbiológicos se tomaron con una frecuencia de una vez a la semana en el cual se determinó la cantidad de posibles microorganismos presentes.
También se determinaron las familias presentes e identificaron las algas altamente perjudiciales para Litopenaeus vannamei.
2.5. Instrumentos
2.5.1. Para determinar los parámetros físicos:
1. Conductividad: Se utilizó un multiparamétrico Pro 20 Hanna.
2. pH: Se utilizó un pHmetro marca Hanna.
3. Salinidad: es la consecuencia de la presencia de sales solubles en ciertas concentraciones. Se utilizó el multiparamétrico Pro 20 Hanna.
4. Temperatura: Se utilizó un Multiparamétrico Pro 20 Hanna.
2.5.2. Para determinar los parámetros químicos:
a) Alcalinidad: para obtener este valor numérico se utilizaron 10 ml de muestra, que fueron colocados en un tubo de ensayo modificado, se le agregó la pastilla reactiva de alcalinidad (CaCo3) y posteriormente con un instrumento se trituró
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la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
b) Amonio: para obtener este valor numérico se utilizaron 10 ml de muestra, que fue colocado en un tubo de ensayo modificado, se le agregó la pastilla de amonio (NH3) 01, seguida de la pastilla de amonio (NH3) 02, y posteriormente con un instrumento se trituró las pastillas, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para su la lectura.
c) Calcio: para obtener este valor numérico se utilizaron 10 ml de muestra, que fue colocada en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de cobre (Ca), y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
d) Cobre: para obtener este valor numérico se utilizó 10 ml de muestra, que fue colocada en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de cobre (Cu), y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
e) Fosfato: para obtener este valor numérico se utilizó 10 ml de muestra, que fue colocada en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de fosfato (PO4), y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
f) Magnesio: para obtener este valor numérico se utilizó 19.9 ml de agua destilada y 0.1 de muestra, se colocó en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactante de nitrito (Mg), y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
g) Nitrato: para obtener este valor numérico se utilizó 10 ml de muestra, que fue colocada en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de nitrato (N03), y posteriormente con un instrumento se triturará la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
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h) Nitrito: para obtener este valor numérico se utilizó 10 ml de muestra, que fue colocado en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de nitrito (NO2), y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
i) Sílice: para obtener este valor numérico se utilizó 10 ml de muestra, que fue colocada en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de Óxido de Sílice (SiO2), y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
j) Potasio: para obtener este valor numérico se utilizó10 ml de muestra, que fue colocada en un tubo de ensayo modificado, se le agregó 01 pastilla reactiva de Potasio, y posteriormente con un instrumento se trituró la pastilla, para luego de unos minutos ser adecuadamente limpiada y colocada en el fotómetro para realizar la lectura.
2.5.3. Parámetros Microbiológicos
Se procedió a preparar 3 medios de cultivos selectivos, esto fueron Cetrimidad Agar, MacConkey Agar y TCBS Agar.
a) Cetrimida Agar
Fundamento: Aísla posibles Pseudomonas aeruginosas, es la misma peptona de gelatina, que aporta los nutrientes para que se desarrolle lo bacteriano, con cloruro de magnesio y sulfato de potasio, generalmente promueve la formación de pigmentos como: pioverdina, piocianina y fluorecencia; por otra parte, “la cetrimida que es un detergente catiónico, actúa como inhibidor y libera el nitrógeno y el fósforo de casi todas las células de la flora acompañante” (Britania, 2015).
b) MacConkey Agar
Fundamento: Medio de cultivo selectivo que aísla Salmonella, Shigella y Coliformes (Deacuerdo con Harm. EP/UDP/JP).
A través de este cultivo las peptonas suelen aportar los nutrientes que son necesarios para que se desarrollen las bacterias, ayuda a contener la lactosa; también “teniendo en otra parte la mezcla de sales biliares y el cristal
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violeta que inhibirán el desarrollo de la mayoría de bacterias gran negativas”
(Britania, 2015).
c) TCBS Agar
Fundamento: Aísla todos los Vibrio spp. Como Vibrio cholerae o Vibrio parahemolyticus.
Con la peptona de carne, el extracto de levadura y tripteína logran aportar aquellos nutrientes necesarios que ayudan al crecimiento de bacterias como la bilis de buey, los inhibidores de la flora, el citrato de sodio y el pH alcalino que favorecen al aislamiento de Vibrio spp.
El compuesto Cloruro de Sodio de 0.25g por cada 100 ml logra mantener el balance del osmosis y ayuda a la selectividad del medio; también la sacarosa es el hidrato de carbono que será fermentable.
Cabe recalcar que posee algunos indicadores de pH como el azul de bromotimol o el azul de timón que generan un color verde si el medio es alcalino y amarillo si es ácido. (Britania 2015)
La toma de muestra se realizó, llevando tubos estériles, e introduciendo el tubo 30 cm bajo la superficie del agua abriéndolo y cerrándolo dentro del agua evitando así la contaminación.
Ésta muestra fue luego llevadas al laboratorio para su posterior análisis.
La siembra se realizó mediante placas Petri con medio de cultivo (TCBS, MACKONKEY; CETRIMIDE), las cuales fueron rotuladas de manera exacta, la sub-muestra a sembrar constó de 20 microlitros de agua de canal que fueron tomados con asas muestreadoras de 20um, la cual fue colocada sobre la superficie del agar y sembrado de manera uniformado de lado a lado. Luego de ser sembrada pasaron a la incubadora en aerobiosis a una temperatura de 35,6°C por 24 horas. La técnica se basó en conteo de unidades formadoras de colonia (UFC) (Camacho et col, 2009), presentes en los 20 microlitros de muestra.
Para determinar Coliformes totales se utilizó el Caldo Lauril, se sembró de la siguiente forma: la muestra constó de 1ml y fue agregada a un tubo que contiene 9ml de solución salina, procurando que no choque en las paredes internas del tubo, formando la solución 1 (10 a la menos1), paso seguido,
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se procedió a colocar en el Vortex, para homogenizar la solución 1, se sembró 1ml en los 3 tubos (muestras 10 a la menos 1) de manera igual, luego se colocó una muestra de 1ml de la solución 1 y se le agregó a un nuevo tubo con 9ml solución salina c y se formó la solución 2 (10 a la menos 2), y se procedió igual que con solución 1, paso seguido, se realizó lo mismo con un nuevo tubo con 9ml solución salina formando la solución 3 (10 a la menos 3), se procedió igual que con lo anterior mencionado y se incubó a 44°c por 2 días.
Para el grupo de coliformes fecales, se conformó por bacterias Gram negativas, que fueron capaces de fermentar a la lactosa con gas dentro de las 48 h que fueron incubadas a 44.5 ± 0.1°C. Para este grupo no se ha incluido una especie en común; sino que también se adapta a la especie de Escherichia coli. La demostración del “recuento de organismos coliformes, puede realizarse mediante el empleo de medios de cultivo líquidos y sólidos con características selectivas y diferenciales” (Camacho, 2009).
Posteriormente los tubos que evidencia gas en la campana de Durham fueron tomados como positivos y se tomó con una alícuota de 1ml el cual fue llevado a un tubo con 10 ml de Brilla con su respectiva campana de Durham, y mantenido la rotulación, luego fue puesto en baño maría por 2 días más, la lectura se realizó a las 24 y 48 horas.
2.6. Control de calidad de los datos: Prueba de validez y confiabilidad
Con la finalidad de obtener una gran calidad en los datos, se realizaron calibraciones de los equipos pH-metro, multiparamétrico.
Se realizó la verificación del fotómetro utilizado para darle validez a los datos obtenidos.
2.7. Procedimiento
Con base de los datos que se obtuvieron de la muestra, se obtuvieron cuadros de frecuencia, concentraciones y porcentajes, para la parte descriptiva de la investigación, la cual facilitó la observación de las tendencias de variables, físicas, químicas y microbiológicas.
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2.8. Procesamiento de los datos
Con base de los datos que se obtuvieron de la muestra, se obtuvieron cuadros de frecuencia, concentraciones y porcentajes, para la parte descriptiva de la investigación, la cual facilitó la observación de las tendencias de variables, físicas, químicas y microbiológicas.
2.9. Definición de variables
Calidad de agua: frase usada para describir química, física y bilógicamente al recurso hídrico
2.10. Consideraciones éticas y de rigor
Que la investigación ha sido desarrollada de conformidad y con orientaciones pertinentes, con validez científica
Tal informe ha sido redactado bajo mi asesoramiento, acogiendo las observaciones y sugerencias alcanzadas.
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III. RESULTADOS 3.1. Hallazgos
Tabla1
Valores obtenidos de los parámetros físico y químicos sobre la calidad de agua
En la Tabla 1 podemos observar las fluctuaciones de los parámetros físico químicos durante la investigación realizada durante Agosto – febrero 2020.
La Temperatura fue bastante constante, presentando un mínimo de 23.6 y un máximo de 28.5 grados centígrados, estos fueron tomados con un multiparamétrico Hatch. La Turbidez presentó un mínimo de 14 y un máximo de 40 FTU. La salinidad al ser un cuerpo de agua continental fue muy baja presentando mínimos de 0.2 mg/lt y máximos de 0.5 mg/lt. El pH presentó un mínimo de 6 y un máximo de 8.2. La Alcalinidad (CaCO3) presentó mínimo de 85 y máximos de 160. El amonio presentó mínimos de 0 y máximos de 0.13 mg/lt. Los nitritos fluctuaron entre 0 mg/lt a 0.019 mg/lt. Los fosfatos presentaron un mínimo de 3.7 mg/lt y un máximo de 17.7 mg/lt. El
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calcio tuvo valores de 32 mg/lt como mínimo y de 131 mg/lt como máximo, El dióxido de Sílice tuvo mínimo de 3.1 mg/lt y máximo de 11.7 mg/lt. El magnesio presentó valores mínimos de 13 mg/lt y máximos de 45 mg/lt. Los niveles de cobre fueron muy bajos fluctuando de 0 a 0.08 mg/lt en el caso mas alto, mientras que el potasio se mantuvo constante entre 2 y 4.1 mg/lt.
Tabla 2
Valores obtenidos de los parámetros microbiológicos sobre la calidad de agua
En la Tabla 2 podemos observar las fluctuaciones de los parámetros microbiológicos durante la investigación realizada durante Agosto – febrero 2020.
Las cianofitas fueron las más frecuentes durante la investigación dando mínimos de 10 000 cel/ml y máximos de 50 000 cel/ml. Las clorofitas se mantuvieron ausentes durante toda la investigación a excepción del día 8 de enero del 2020 que se observó 5 mil cel/ml, las diatomeas de la misma forma, se presentaron solo el día 27 de
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el conteo de algas potencialmente perjudiciales para Litopenaeus vannamei dio como resultado cero para Anabaenopsis sp, Anabaerna y Aphanizomenom. La microbiología se caracterizó por la presencia de posibles pseudomonas dando como resultados mínimos de 0 y máximos de 1300 UFC/ml, Se evidencio presencia de Vibrio amarillo los días 01 y 22 de enero, también se obtuvo resultados positivos para lacto bacterias positivas, presentando el día 22 y 29 de enero del 2020 un mínimo de 300 UFC/ml y el 1 de enero un máximo de 2200 UFC/ml. Las lacto bacterias negativas solo tuvieron presencia el día 01 de enero del 2020.
Figura 2
Variación de la temperatura con respecto al tiempo
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
Comparando los datos cuantitativos observo que son similares en número y la tendencia que ellos muestran (23.4 ºC como mínimo y 26.9 como máximo a excepción
24.1 23.6 24.8 23.425.6 24.6 28.5
26.4 25.9 26.9
0 5 10 15 20 25 30
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Temperatura
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del muestro de día 19 de diciembre en el cual se observa una mayor temperatura (28.5ºC).
Figura 3
Variación de la turbidez respecto del tiempo
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 3 se muestran las variaciones en la turbidez del agua del canal alimentador para cultivo de L. vannamei durante la investigación Octubre – febrero 2020, en el cual se observa una variable estable durante los 2 primeros meses de muestreo, pero con la llegada de las lluvias en la Sierra, la turbidez aumenta considerable, llegando a tener altos niveles en diciembre.
16
20 18 24
18 22
30 40
14
7.6 8.3 0
5 10 15 20 25 30 35 40 45
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Turbidez
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Figura 4
Variación de la salinidad con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 4 se muestra la variación de la salinidad del agua del canal alimentador para cultivo de L. vannamei, la salinidad fue una variable muy estable durante toda la investigación Octubre – febrero 2020.
0.5
0.4 0.4
0.5 0.4
0.3
0.2 0.2 0.2
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Salinidad
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Figura 5
Variación del pH con respecto al tiempo
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 5 se muestra la variación del pH, se observa que la mayoría de datos se encuentran en el rango de 6 a 8.6 durante la investigación Octubre – febrero 2020.
7.3 6.9
7.8 8.1 7.4
8.6
7.9 8
2.2 6
2.8 3.2
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
pH
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Figura 6
Variación de la Alcalinidad con respecto al tiempo
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la figura 6 se muestra los datos de variación cuantitativa de Alcalinidad durante la investigación octubre – febrero 2020, se observa que este fue una variable variante, obteniendo valores de 160 el día 8 de enero de 2020 y 155 Los días 11 de diciembre del 2019 y 15 enero del 2020
95
115 125 115
130 105
155 150 125
150 160 155
105
85 85
120
0 20 40 60 80 100 120 140 160 180
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Alcalinidad
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Figura 7
Variación del Amonio con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 7 se muestran los datos cuantitativos de Amonio durante la investigación octubre – febrero 2020, se observa una gran variación sin ninguna tendencia, obteniendo valores de 0.13 el día 15 de enero 2020 y 0.9 los días 18 de diciembre del 2019 y 19 de febrero del 2021, mostrando valores mínimos los días 6 de noviembre del 2019 y el 22 de enero del 2021.
0.03 0.02
0
0.01 0.01 0.03
0.07 0.09
0.02 0.04
0.07 0.13
0 0.03
0.01 0.09
0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12 0.14
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Amonio (NH3)
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Figura 8
Variación de los parámetros Nitrito y Nitratos con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 8 se muestran los datos cuantitativos de nitritos y nitratos durante la investigación octubre – febrero 2020, los nitritos tuvieron una frecuencia de muestreo diaria, mientras que los nitraros tuvieron una frecuencia de muestreo mayor. Se observa una mínima variación para el nitrito, por otro lado, los nitratos muestran una variación mostrando valores de 0.6 el día 13 de noviembre del 2019 y valores mínimos de 0.12 el día 23 de octubre del 2019.
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
P. Químicos
Nitritos NO2 Nitratos NO3
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Figura 9
Variación de los Parámetros Químicos (Calcio (Ca), Dióxido de Sílice (SiO2), Magnesio (Mg), Cobre (Cu) y Potasio (K)) con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 9 se muestran los datos cuantitativos Calcio, Cobre, Sílice, Potasio y Magnesio durante la investigación octubre – febrero 2020, agrupados con una frecuencia de muestreo de 7 a 15 días-
0 20 40 60 80 100 120 140
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
P. Químicos
Calcio Ca Diox. Silice SiO2 Magnesio Mg Cobre (total) Cu Potasio K
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Figura 10
Presencial de algas (Cel/ml): Cianofitas, Clorofitas, diatomeas, Euglenofitas; con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 10 se muestran los datos cuantitativos de los grandes grupos algales Cianofitas, Clorofitas, diatomeas, Euglenofitas durante la investigación octubre – febrero 2020, agrupados con una frecuencia de muestreo de 1 vez por semana.
0 10000 20000 30000 40000 50000 60000
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Presencia de alga en Agua (Cel/ml)
PRODUCTIVIDAD COLUMNA H2O ( Cel/ml) Cianofitas PRODUCTIVIDAD COLUMNA H2O ( Cel/ml) Clorofitas PRODUCTIVIDAD COLUMNA H2O ( Cel/ml) Diatomeas PRODUCTIVIDAD COLUMNA H2O ( Cel/ml) Euglenofitas
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Figura 11
Variación de la presencia de algas perjudiciales en la columna de agua (Cel/ml) con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 11 se muestran los datos cuantitativos de las especies de algas perjudícales para el cultivo de L. vannamei durante la investigación octubre – febrero 2020, agrupados con una frecuencia de muestreo de 1 vez por semana
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
columna de Agua (Cel/ml)
Columna Agua (Cel/ml.) Anabaenop Columna Agua (Cel/ml.) Anabaena Columna Agua (Cel/ml.) APHANIZ
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Figura 12
Parámetros microbiológicos (ufc/ml.) del agua con respecto al tiempo.
Nota. Obtenidos del canal alimentador para el cultivo de Litopenaeus vannamei del Río Piura, Perú. Del 22 de octubre 2019 al 22 febrero 2020.
En la Figura 12 se muestran los datos cuantitativos de los parámetros microbiológicos para el cultivo de L. vannamei durante la investigación octubre – febrero 2020, con una frecuencia de 2 veces al mes.
0 500 1000 1500 2000 2500 3000 3500 4000
23-Oct-19 23-Nov-19 23-Dec-19 23-Jan-20
Valores
Tiempo
Microbiologicos
Microbiol. H2O (ufc/ml.) BV Microbiol. H2O (ufc/ml.) BA Microbiol. H2O (ufc/ml.) P.pseudo. Microbiol. H2O (ufc/ml.) Lac(-) Microbiol. H2O (ufc/ml.) Lac(+)
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IV. ANÁLISIS Y DISCUSIÓN
En el cultivo de camarón existen diversas variables en el medio que podrían afectar la supervivencia, la productividad y el crecimiento de las especies. Por ello es necesario tener un óptimo conocimiento del medio para poder manejar estanques de crianza de camarones y de acuerdo a los resultados obtenidos de la evaluación se podría ver si se daría la crianza.
Los parámetros físicos como la temperatura, se debe tener en cuenta que cuando T°
C sube a 10°C genera la elevación de hasta 3 veces los procesos biológicos y químicos (Angulo et al,2005). Esto generará que el camarón logre consumir hasta 3 veces más el oxígeno a 35°C en ves que sea 25°C haciendo que la necesidad de oxígeno disuelto sea mayor para los camarones y para el resto de los órganos aeróbicos del estanque, esto se vuelve más crítica en agua caliente, lo contrario sucede en agua fría, siendo así que la temperatura varia de 24.1 hasta 28.5.
Turbidez (FTU) varia de 32 a 40, lo que en acuicultura se busca es la turbidez relacionada a los organismos planctónicos, donde las partículas de los minerales son negativas para la cría.
Salinidad presento una variación de 0.2 a 0.5 ppt, y según se Wyban y Sweeny (1991); McGraw et al., (2002), Litopenaeus vannamei “posee una gran tolerancia a intervalo de salinidad entre 0.5-45 ups (unidades prácticas de salinidad);
particularmente crece muy bien a densidades de siembra por encima de 50 org/m 2 en ambientes a bajas salinidades entre los 10 y 15 ups en medio acuático y la hemolinfa son isoosmóticos” (Wicki, 1996).
La tolerancia de salinidad para los camarones es amplia y logran sobrevivir de 0 ppm a 50 ppm, pero el rango de crecimiento ideal es de 15 hasta 25 ppm. En los estanques la salinidad, así como la temperatura pueden ocasionar estratificación del agua, debido a que la salinidad logra subir con la salinidad.
El parámetro químico del pH de agua de los estanques va a depender del nivel de concentración en O2 y de otros elementos ácidos. Se observa que el pH vario de 2.8 a 8.6; por lo que, si presenta pH alto, hay demasiadas algas, no se debería fertilizar el medio, pero si presenta bajo pH, se tendría que fertilizar. Para que se realice la fotosíntesis se consume CO2 lo que conduce al aumento del pH y a su vez la producción de CO2, con la respiración se genera la baja del pH. El agua considera
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buena para el cultivo de camarones es la que tiene de 6.5 pH hasta 9; “si el pH es inferior a 5 todo el tiempo, generalmente el agua contiene ácido sulfúrico de la oxidación del sedimento con sulfides. Hay que hacer un tratamiento del suelo con CAL”. (Wicki, 1996)
Alcalinidad CaCO3 presento una variación de 85 a 160 mg/lt, debido a que la alcalinidad en los estanques de cultivo de camarón L. vannamei es un parámetro de alta importancia. Su valor en producción no debe de bajar de 80 mg/lt CaCO3 para lograr óptimos crecimientos y buena sobrevivencia en los estanques, y según los valores obtenidos son buenas condiciones. (Wicki, 1996)
El Amonio NH3 (mg./lt.) presento valores de 0 a 0.13 (mg./lt.), se sabe que el pH “del agua modula el riesgo de toxicidad del amoníaco. El amoníaco es un compuesto tóxico a menudo presente en el agua del estanque, un desecho metabólico excretado principalmente a través de las branquias de los peces y camarones, y también se genera a través de la degradación microbiana de la materia orgánica (microalgas en descomposición, heces, fertilizantes orgánicos y alimentos no consumidos); “algunos fertilizantes inorgánicos utilizados en la acuacultura también pueden ser fuentes de amoníaco”. (Wicki 1996)
Existen muchos factores que influyen en la concentración de amoniaco en un estanque acuícola. Lo más importante es la tasa de alimentación, así como la calidad del alimento y los recambios de agua. EL pH de agua va a determinar el porcentaje de amoniaco en el agua de un estanque. Para un pH bajo debe predominar la fama que es menos tóxica NH4+. Es decir, a medida que el pH incrementa, el NH4+ debe de cambiar la forma toxica y se aumentara la concentración NH3 en el agua. Cuando el agua es dulce a pH 7,0 solamente el 0,7 por ciento de amoniaco estará en forma toxica de NH3, cuando el pH este en 0,9 esto aumentará hasta un 42 por ciento aproximado, mas de 88 por ciento a pH 10. Por ello, un estanque con agua dulce con 6 ppm de amoniaco y pH 7,0 de agua tendrá solo 0,042 ppm en la forma toxica de amoniaco (6ppm x 0,7/100=0,042 ppm del NH3). Además, en estanques con agua verde el Ph cambia a 9,0 o más durante las horas de la tarde; a pH 9,0 con NH3 a 42% en un estanque 6 ppm de amoniaco tendrá 2,5ppm de NH3 es decir 6ppmx42/100=2,5 ppm de NH3.
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El estudio arrojo que los valores para Nitritos NO2 presento variación de 0 a 0.013 mg/L, y para Nitratos NO3 0.13 a 0.555 mg/L. Wicki (1996) menciona que, las características del agua de abastecimiento para un cultivo de camarón de agua dulce son: la temperatura fluctúa entre 34 y 18°C siendo lo ideal entre 29 a 31°C, el oxígeno disuelto, el rango optimo es 75% de saturación, asimismo, el pH se considera aceptable si está entre 7.0 a 8.5, la alcalinidad como CaCO3 es aceptable 150, dureza total menor a 40mg/L, nitritos menos a 0.1mg/L y nitratos menor a 20mg/L. (Wicki 1996)
Fosfatos PO4 varió de 3.2 a 17.7 y el Calcio (Ca) de 32 a 131, el Dióxido sílice SiO2 varió de 1.6 a 11.7. EL Magnesio (Mg) presento variación de 13 a 44, Cobre (Cu) de 0 a 0.08, el Potasio (K) presento variaciones de 2 a 4.1, según Boyd y Col en (2002) recomendó un pH entre 7 a 8 con una alcalinidad de 70, un magnesio desde 3 a 64 mg/L, y una concentración de potasio entre 4 a 12.4 mg/L. Así mismo, Valenzuela et al (2010) y Esparza et al (2009), menciona “que a menudo la falta de potasio afecta en la sobrevivencia del camarón A su vez es muy importante que exista una buena proporción entre los iones, Na/K y Mg/K (37.91:1 y 3.68:1 respectivamente) para asegur0ar un correcto crecimiento”. (Roy y Davis, 2007)
Según los valores obtenidos se parecía que hubo mayor presencia de Cianofitas, que iba en aumento de 10000 a 50000, mientras que no se pudo ver muchos Euglenofias, Clorofitas, Diatomeas. Por lo tanto, los estanque para producción de camarones son sistemas que tiene mucha variabilidad del ambiente y sobre el cual no se puede tener control. Suelen ser sistemas de mono cultivo y por ello son inestables y tiene mucha facilidad de ser perturbadas; para lograr mantenerlos necesitan de subsidios, como fertilizantes, recambio de agua, cal y alimento de tipo balanceado. Se identificaron productores primarios como: bacterias heterótrofas y autótrofas, así también fitoplancton, macrofitas y fitobentos.
Se identificaron especie de Anabaenop, Anabaena y aphaniz.
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V. CONCLUSIONES
Se logró determinar que la calidad del agua es adecuada para cultivas Litopenaeus vannamei, después de un proceso de aclimatación en el cual paulatinamente se reduciría la concentración de la salinidad hasta el punto de 0,5 a 1,0 ppm.
Se determinó que las características microbiológicas del agua del Canal son adecuadas ya que presenta una cantidad no perjudicial para la biología del Litopenaeus vannamei.
Se logró determinar que los parámetros fisicoquímicos son totalmente adecuados para el cultivo de la especie Litopenaeus vannamei, ya que los químicos que son perjudiciales para este cultivo se encontraron muy por debajo del límite máximo saludable para la biología de Litopenaeus vannamei.
Se determinó una presencia mínima de algas en el cuerpo de agua por lo que se considera que el agua es adecuada para el cultivo de Litopenaeus vannamei cabe recalcar que no se encontraron fitoplancton tóxico para esta especie.
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VI. RECOMENDACIONES
Se considera como turbidez un factor muy importante ya que se ve sujeto a las variaciones del ambiente, un aumento de turbidez tiene relación con la presencia de lluvias en la sierra y o también con la entrada de un cuerpo de agua llamado Poechos.
Se recomienda tomar especial atención en los parámetros de amonio de alcalinidad y de nitritos, ya que estos son los más determinantes al llevar un cultivo de Litopenaeus vannamei.
Se recomienda tener en consideración el tratamiento de aguas que se le puede realizar para que de esta manera no afecte los resultados de las diversas dimensiones utilizadas en esta investigación, es muy común en estas actividades el uso de floculantes para disminuir de manera drástica la turbidez del agua, pero al agregar los floculantes se produce una variación de las dimensiones lo cual no daría una información real.
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BIBLIOTECA
DE CIENCIAS
BIOLOGICAS
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Sower, A., Tomasso, J. (2006). Production characteristics of Litopenaeus vannamei in low-salinity water augmented with mixed salts. Journal of the World Aquaculture Society. 37: 214-217.
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Wyban, J., Sweeney, J.N. (1991). Intensive shrimp production technology. High Health Aquaculture Inc., Hawaii. 158 pp.
BIBLIOTECA
DE CIENCIAS
BIOLOGICAS
Anexos
BIBLIOTECA
DE CIENCIAS
BIOLOGICAS
Figura 14:
Título: Lectura de algas
Descripción: Esta foto fue tomada durante una de las lecturas algales que se realizaron durante la investigación Octubre – Febrero 2020 con el fin de establecer las condiciones del análisis de estos datos.
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DE CIENCIAS
BIOLOGICAS
Figura 15:
Título: Prueba de Coliformes Fecales
Descripción: Esta foto fue tomada durante el trabajo de microbiología que se realizaron durante la investigación Octubre – Febrero 2020 con el fin de establecer los valores cualitativos para coliformes fecales.
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DE CIENCIAS
BIOLOGICAS
Figura 16:
Título: Análisis de fitoplancton
Descripción: Esta foto fue tomada durante el trabajo de análisis algal que se realizó durante la investigación Octubre – Febrero 2020 con el fin de explicar la forma correcta de colocación de la muestra
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DE CIENCIAS
BIOLOGICAS
Figura 17:
Título: Análisis de microbiología convencional
Descripción: Esta foto fue tomada durante el trabajo de conteo de UFC después del trabajo de microbiología que se realizó durante la investigación Octubre – Febrero 2020 con el fin de establecer el valor cuantitativo para cada uno de estos medios.
Figura 18:
Título: Laboratorio
Descripción: Esta foto fue tomada durante el trabajo que se realizaron durante la investigación Octubre – Febrero 2020 con el fin de demostrar las condiciones donde se realizaron todos los análisis.
