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Melon Plagas

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PRINCIPALES PLAGAS

DEL CULTIVO DE

CULTIVO DE

CULTIVO DE

CULTIVO DE

ENEMIGOS NATURALES

ENEMIGOS NATURALES

ENEMIGOS NATURALES

ENEMIGOS NATURALES

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

En el Valle de La Fragua,

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PRINCIPALES PLAGAS DEL CULTIVO DE MELÓN Y

SUS ENEMIGOS

NATURALES

En el Valle de La Fragua, Zacapa, Guatemala.

Roberto Eduardo Dubón Obregón.

Ingeniero Agrónomo Master Scientiae.

Master en Productividad Agrícola.

Post–graduado en Administración de Empresas Agrícolas. Post–graduado con Especialización en Protección de Plantas.

PRESENTACIÓN

Esta publicación nace como un proyecto académico de revisión bibliográfica como requisito previo a la aprobación del Post–grado de Especialización en Protección de Plantas de la Universidad Rafael Landivar de Guatemala y la Universidad de Vicosa de Brasil, siendo calificado con la máxima puntuación.

El autor consciente de la necesidad de implementar con mayor intensidad el Manejo Integrado de Plagas en el cultivo de melón en el Valle de La Fragua, Zacapa, modificó el formato de la publicación y aumentó el contenido de la misma, tanto en texto como en fotografías, con el propóstio de que sirva como guía para los técnicos de protección vegetal y plagueros de las empresas meloneras de la región, para conocer, identificar y comprender la importancia de la entomofauna benéfica natural de la zona, la cual se debe proteger y recuperar. Este documento también es una fuente de consulta para estudiantes de las Ciencias Agrícolas interesados en incursionar sobre el control biológico de insectos plaga, ejercido por insectos depredadores, insectos parasitoides y microorganismos entomopatógenos dentro de un programa de Manejo Integrado de Plagas.

Se distribuye esta publicación como un aporte a la agricultura nororiental, por lo que se autoriza plenamente la reproducción parcial o total del documento, siempre y cuando la misma no tenga objetivo de lucro.

Dedicado a:

P. Agr. Roberto Dubón Paredes.

(4)
(5)

Contenido

INTRODUCCIÓN ... 13

CAPÍTULO I

EL CULTIVO DE MELÓN ... 15

CULTIVO DE MELÓN CANTALOUPE ... 15

CLASIFICACIÓN BOTÁNICA ... 15

DESCRIPCIÓN MORFOLÓGICA ... 16

ECOLOGÍA DEL CULTIVO ... 16

CICLO DE VIDA ... 17

CAPÍTULO II

EL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS ... 21

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS ... 21

CONCEPTOS DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS ... 21

COMPONENTES DEL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS ... 22

NIVELES DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS ... 23

(6)

CAPÍTULO III

PLAGAS DE IMPORTANCIA ECONÓMICA DEL

CULTIVO DE MELÓN ... 27

MOSCA BLANCA ... 27

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ... 28

CICLO DE VIDA ... 28

ECOLOGÍA DE LA PLAGA ... 30

DAÑOS ... 30

CONTROL BIOLÓGICO ... 31

ÁFIDOS ... 32

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ... 32

CICLO DE VIDA ... 33

Áfido de las Cucurbitáceas: Aphis gossypii Glover ... 33

Áfido Verde: Myzus persicae Sulzer ... 33

ECOLOGÍA DE LA PLAGA ... 33

DAÑOS ... 34

CONTROL BIOLÓGICO ... 34

COMPLEJO DE GUSANOS SOLDADOS ... 35

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ... 35

CICLO DE VIDA ... 36

Gusano Soldado, Gusano de la Remolacha: Spodoptera exigua Hüebner ... 36

(7)

Gusano Soldado, Gusano Cogollero: Spodoptera frugiperda Smith ... 37

ECOLOGÍA DE LA PLAGA ... 38

DAÑOS ... 38

CONTROL BIOLÓGICO ... 38

GUSANO DEL MELÓN Y GUSANO PERFORADOR DEL FRUTO

... 39

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ... 39

CICLO DE VIDA ... 40

Gusano del Melón: Diaphania hyalinata Linnaeus ... 40

Gusano Perforador del Fruto: Diaphania nitidalis Stoll ... 40

ECOLOGÍA DE LA PLAGA ... 41

DAÑOS ... 42

CONTROL BIOLÓGICO ... 43

GUSANO DEL FRUTO O GUSANO ELOTERO ... 43

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ... 43

CICLO DE VIDA ... 44

ECOLOGÍA DE LA PLAGA ... 45

DAÑOS ... 46

CONTROL BIOLÓGICO ... 46

MINADORES DE LAS HOJAS ... 47

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA ... 47

CICLO DE VIDA ... 47

ECOLOGÍA DE LA PLAGA ... 48

DAÑOS ... 49

(8)

CAPÍTULO IV

INSECTOS DEPREDADORES ... 57

NEURÓPTEROS ... 57

LEÓN DE ÁFIDOS ... 58

CICLO DE VIDA ... 58

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 59

PLAGAS QUE CONTROLA ... 60

FACTORES LIMITANTES ... 60

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 60

COLEÓPTEROS ... 61

MARIQUITA DEPREDADORA DE ÁCAROS ... 62

CICLO DE VIDA ... 62

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 63

PLAGAS QUE CONTROLA ... 63

FACTORES LIMITANTES ... 63

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 63

MARIQUITA DEPREDADORA DE ÁFIDOS ... 64

CICLO DE VIDA ... 64

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 64

PLAGAS QUE CONTROLA ... 64

FACTORES LIMITANTES ... 65

(9)

CATARINITA ... 65

CICLO DE VIDA ... 65

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 67

PLAGAS QUE CONTROLA ... 67

FACTORES LIMITANTES ... 67

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 67

HEMÍPTEROS ... 68

PEQUEÑA CHINCHE PIRATA ... 69

CICLO DE VIDA ... 69

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 70

PLAGAS QUE CONTROLA ... 70

FACTORES LIMITANTES ... 70

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 71

CHINCHE NABIS ... 71

CICLO DE VIDA ... 71

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 71

PLAGAS QUE CONTROLA ... 72

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 72

CHINCHES ASESINAS ... 72

CICLO DE VIDA ... 72

PLAGAS QUE CONTROLA ... 72

CHINCHE OJONA ... 73

CICLO DE VIDA ... 73

(10)

PLAGAS QUE CONTROLA ... 74

FACTORES LIMITANTES ... 74

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 74

DÍPTEROS ... 75

MOSCAS SYRFIDAS ... 75

CICLO DE VIDA ... 75

PLAGAS QUE CONTROLA ... 77

CAPÍTULO V

INSECTOS PARASITOIDES ... 87

HYMENOPTERA: APHELINIDAE ... 88

AVISPITA ENCARSIA ... 88

CICLO DE VIDA ... 88

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 89

PLAGAS QUE CONTROLA ... 90

FACTORES LIMITANTES ... 90

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 90

AVISPITA ERETMOCERUS ... 91

CICLO DE VIDA ... 92

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 92

PLAGAS QUE CONTROLA ... 92

FACTORES LIMITANTES ... 93

(11)

AVISPITA LYSIPHLEBUS ... 93

CICLO DE VIDA ... 93

ECOLOGÍA DEL INSECTO ... 94

PLAGAS QUE CONTROLA ... 94

FACTORES LIMITANTES ... 95

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 95

HYMENOPTERA: TRICHOGRAMMATIDAE... 95

AVISPITA TRICHOGRAMMA ... 95

CICLO DE VIDA ... 95

PLAGAS QUE CONTROLA ... 96

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 97

HYMENOPTERA: BRACONIDAE ... 98

AVISPITA PARASITOIDE DE LARVAS DE LEPIDOPTEROS ... 98

CICLO DE VIDA ... 98

PLAGAS QUE CONTROLA ... 99

CAPÍTULO VI

MICROORGANISMOS ENTOMOPATÓGENOS ... 101

HONGOS ENTOMOPATÓGENOS ... 101

Beauveria bassiana ... 101

CICLO DE VIDA Y ECOLOGÍA DEL HONGO ... 102

PLAGAS QUE CONTROLA ... 102

(12)

Paecilomyces fumosoroseus ... 103

CICLO DE VIDA ... 103

PLAGAS QUE CONTROLA ... 103

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 103

BACTERIAS ENTOMOPATÓGENAS ... 104

Bacillus thuringiensis (Bt) ... 104

BIOLOGÍA Y MORFOLOGÍA ... 104

PLAGAS QUE CONTROLA ... 106

VIRUS ENTOMOPATÓGENOS ... 106

VIRUS DE LA POLIEDROSIS NUCLEAR (VPN)... 106

BIOLOGÍA Y MORFOLOGÍA ... 106

MÉTODOS DE APLICACIÓN ... 108

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ... 111

ANEXOS ... 117

(13)

INTRODUCCIÓN

tabaco, tomate, chile y algunas especies de árboles frutales, como mango y cítricos.

El cultivo de mayor importancia económica es el melón, que es destinado principalmente a los mercados internacionales, con alguna parte de la producción que se consume en el mercado local. La importancia del cultivo radica principalmente por la extensión de áreas cultivadas, la mano de obra necesaria para las labores culturales y de post-cosecha, así como la generación de divisas para el país.

El cultivo se explota comercialmente en la región por más de tres décadas, período en el cual ha evolucionado tecnológicamente, estando a la vanguardia en los sistemas de cultivo, maquinaria y equipos.

El manejo tradicional de las plagas se ha basado en el uso de plaguicidas químicos, principalmente de los grupos organoclorados, organofosforados, carbamatos, piretroides y neonicotinoides, para el control de los estados de adulto y ninfas de insectos chupadores como mosca blanca y áfidos; así como los estados larvarios de minadores de las hojas y lepidópteros, que tienen la mayor importancia económica en el cultivo de melón, en esta región agrícola.

El uso de agroquímicos ha provocado un desbalance en el equilibrio entre las poblaciones de plagas y las poblaciones de organismos benéficos. Por lo tanto, las plagas se han incrementado a niveles inimaginables, seleccionándose poblaciones de insectos resistentes, ocasionando mayor dependencia de los plaguicidas químicos en dosis cada vez más altas. Aunado a lo anterior, se incrementan los costos de producción, se reduce la productividad del cultivo, se disminuye la rentabilidad para el productor y se aumenta la contaminación ambiental y el riesgo de la salud humana.

(14)

disminución en la calidad de los frutos por el desarrollo de fumagina sobre la mielecilla que produce el insecto durante su alimentación.

Asimismo, se incrementaron las poblaciones de diferentes especies de Spodoptera, que también se han convertido en una plaga de importancia económica, que además de alimentarse del follaje ocasiona daños directos en los frutos de melón. Últimamente están resurgiendo ambas especies de Diaphania como plagas de importancia económica en el cultivo.

Los problemas ocasionados por las larvas de minadores se han incrementado, teniendo que aumentarse el uso de insecticidas diseñados para el control de esta plaga, con el consecuente aumento en los costos de producción. El aumento de las poblaciones de minadores es un reflejo de la poca presencia de organismos benéficos en el cultivo, ya que normalmente éstos mantienen regulada a esta plaga.

En la región, existe el potencial para el uso de agentes biológicos para el control de las principales plagas de importancia económica, que puede consistir en la utilización de depredadores, parasitoides y entomopatógenos. Existe una fauna benéfica natural que puede ser aprovechada eficientemente, la cual se puede reforzar con la introducción y liberación de otras especies de insectos benéficos, que se pueden integrar en el manejo de plagas. Además, se puede involucrar la acción de los microorganismos entomopatógenos, que pueden regular las poblaciones de los insectos plaga causando enfermedades en los individuos, pudiendo inducir la formación de epizootias en la región.

El uso comercial de agentes biológicos en el cultivo de melón en el valle de La Fragua ha sido escaso, el cual se ha limitado al uso de Bacillus thuringiensis para el control de larvas de lepidópteros y a algunas liberaciones de Chrysoperla spp, que hace algunos años realizaron todos los productores de melón.

Los hongos entomopatógenos Beauveria bassiana y Paecilomyces fumosoroseus han demostrado tener potencial para el control de mosca blanca. Estos microorganismos necesitan de condiciones ambientales favorables para su establecimiento y distribución en las poblaciones de insectos. En el valle se han detectado cepas nativas de ambos hongos sobre ninfas de mosca blanca.

Las poblaciones de Chrysoperla sp se han incrementado naturalmente en las áreas silvestres, emigrando ocasionalmente hacia los campos de producción. También se han detectado poblaciones nativas de los parasitoides Encarsia sp, Eretmocerus sp,

Trichogramma sp y Lysiphlebus sp; así como de las chinches depredadoras Orius sp, Nabis sp, Sinea sp y Geocoris sp; la catarinita Hippodamia convergens, al igual que

(15)

CAPÍTULO I

EL CULTIVO DE MELÓN

EL CULTIVO DE MELÓN

EL CULTIVO DE MELÓN

EL CULTIVO DE MELÓN

GENERALIDADES

GENERALIDADES

GENERALIDADES

GENERALIDADES

CULTIVO DE MELÓN

CULTIVO DE MELÓN

CULTIVO DE MELÓN

CULTIVO DE MELÓN CANTALOUPE

CANTALOUPE

CANTALOUPE

CANTALOUPE

El melón es una planta cucurbitacea de ciclo corto, que se adapta a condiciones de climas cálidos y secos, características propias del Valle de La Fragua. En la actualidad es el cultivo de mayor importancia económica en la región, tanto por la generación de empleos directos e indirectos, como la generación de divisas al país, ya que es un cultivo que se explota con fines de exportación (Fotografías 1 y 2).

CLASIFICACIÓN BOTÁNICA

CLASIFICACIÓN BOTÁNICA

CLASIFICACIÓN BOTÁNICA

CLASIFICACIÓN BOTÁNICA

La clasificación botánica del melón es la siguiente:

Reino Vegetal

Subreino Embriobionta

División Magnoliophyta

Subdivisión Magnoliophytina

Clase Magnoliopsida

Subclase Dillidae

Orden Violales

Familia Cucurbitaceae

Género Cucumis

(16)

DESCRIPCIÓN MORFOLÓGICA

DESCRIPCIÓN MORFOLÓGICA

DESCRIPCIÓN MORFOLÓGICA

DESCRIPCIÓN MORFOLÓGICA

El sistema radicular es abundante, muy ramificado y de rápido desarrollo. La raíz puede penetrar hasta 1.8 metros de profundidad, pero la mayor parte de las mismas se mantiene en los primeros 0.6 metros.

La planta de melón es herbacea, con tallos rastreros o trepadores de varios metros de longitud (Fotografía 3). El tallo principal está recubierto de formaciones pilosas y presentan nudos en los que se desarrolla hojas, zarcillos y flores, brotando nuevos tallos de las axilas de las hojas.

El limbo de las hojas es orbicular aovado, reniforme o pentagonal, dividido en 3-7 lóbulos con los márgenes dentados (Fotografía 4). Las hojas también son vellosas por el envés. Estas pueden alcanzar de siete a quince centímetros de largo, por otro tanto de ancho.

Las flores son solitarias, unisexuales y de color amarillo. En la misma planta se producen las masculinas y femeninas, siendo monóica. Las flores masculinas (Fotografía 5), suelen aparecer, en primer lugar, sobre los entrenudos más bajos, aproximadamente a los catorce días después del trasplante. Mientras tanto, las flores femeninas aparecen más tarde en las ramificaciones de segunda y tercera generación, aunque siempre junto a las masculinas, entre los 22 y 24 días después del trasplante. Ambos tipos de flores se abren durante un día solamente. Las flores que fructifican usualmente son completas, tienen tanto estambres como pistilos. El polen es pegajoso y pesado, por lo que debe ser transportado de una flor a otra por insectos, siendo una polinización entomófila. Cuando se ha realizado la polinización, las flores pistiladas comienzan a crecer. Las flores mejor polinizadas se desarrollan más rápido y se vuelven dominantes; las otras se marchitan y caen.

El fruto de melón cantaloupe puede ser de forma esférica, elíptica u ovalada, la corteza es de color verde, con rugosidad en la cáscara en forma de red (Fotografía 6). La pulpa es anaranjada o asalmonada. La placenta contiene las semillas y puede ser seca, gelatinosa o acuosa, en función de su consistencia (Fotografía 7). Resulta importante que sea pequeña para que no reste pulpa al fruto y que las semillas estén bien situadas en la misma para que no se muevan durante el transporte.

La calidad de los frutos de melón cantaloupe se miden con respecto a la formación de la red, a las concentraciones de sólidos solubles (grados brix), al grosor y color de la pulpa y a las dimensiones de la cavidad que contiene las semillas.

ECOLOGÍA DEL CULTIVO

ECOLOGÍA DEL CULTIVO

ECOLOGÍA DEL CULTIVO

ECOLOGÍA DEL CULTIVO

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comporta mejor cuando se cultiva en clima caluroso y seco, o sea, bajo abundante diurnas menores a los 21°C en promedio, son de menor calidad. Aún cuando los melones se desarrollan mejor en temperaturas calurosas, las temperaturas elevadas, de 43°C a 46°C, pueden causar marchitamientos temporales en las guías, quemaduras de sol en los frutos y falta de consistencia o firmeza en los frutos al momento de la cosecha (Cordón, 2000).

El melón cantaloupe requiere de suelos bastante fértiles, bien drenados y que estén relativamente libres de nemátodos y de hongos patógenos. Las plantas son susceptibles a condiciones ácidas, pero se desarrollan bien en suelos ligeramente ácidos (pH 6.8) hasta moderadamente alcalinos (pH 8.0). Los rendimientos máximos se obtienen en suelos de textura media con gran capacidad de retención de humedad y drenaje interno (Cordón, 2000).

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

Debido a las características climáticas propias del Valle de La Fragua, el ciclo de vida del melón cantaloupe es muy corto. Actualmente, el sistema de siembra se realiza por medio de trasplante de piloncitos, producidos en invernaderos, por lo que se requiere de un

A los 22 a 24 días después del trasplante se inicia la floración femenina, momento en que se deben ingresar abejas melíferas Apis melifera para que se realice eficientemente la polinización. Esta dura aproximadamente catorce días.

El cuajado y crecimiento de frutos se inicia a los cuatro días después de la polinización, y continua hasta la cosecha. La formación de la redecilla se inicia a los doce a catorce días después del inicio del cuajado de los frutos.

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1

2

3

4

5

7

6

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CAPÍTULO II

EL MANEJO INTEGRADO

EL MANEJO INTEGRADO

EL MANEJO INTEGRADO

EL MANEJO INTEGRADO DE

DE

DE

DE

PLAGAS

PLAGAS

PLAGAS

PLAGAS

CONCEPTOS BÁSICOS

CONCEPTOS BÁSICOS

CONCEPTOS BÁSICOS

CONCEPTOS BÁSICOS

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

El manejo integrado de plagas (MIP) no es un simple método de control de plagas, es más bien una estrategia que combina el pensamiento en la evaluación y la decisión de aplicar una variedad de métodos de control de plagas para alcanzar resultados que sean económica y medio-ambientalmente efectivos.

CONCEPTOS DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

CONCEPTOS DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

CONCEPTOS DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

CONCEPTOS DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

Según el Instituto Nacional de Investigación Agrícola (2003), el manejo integrado de plagas se puede definir como la estrategia que utiliza diferentes técnicas de control (biológicas, culturales, físicas y químicas), complementarias entre sí y que tiene como prioridad evitar o reducir el daño que ocasiona una o más plagas sobre un determinado cultivo. Se le da prioridad a los métodos que, siendo más seguros para la salud humana y el medio ambiente, permiten la producción económica de productos de calidad para el mercado.

Para Flint y Doane (2003), el concepto de manejo integrado de plagas se basa en el reconocimiento que para controlar las plagas no hay un solo enfoque que ofrezca una solución universal y que la mejor protección del cultivo se puede suministrar por medio de una fusión de varias tácticas y prácticas que tienen base en principios ecológicos sensatos.

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niveles que no causen daños económicos a los cultivos agrícolas, respetando el medio ambiente y a los insectos benéficos que van a ayudar a controlarlos.

Conforme a Agrícola El Sol (2003), el manejo integrado de plagas es un sistema de manejo de plagas que utiliza todos los métodos de control de plagas, compatibles con la conservación del medio ambiente, para mantener las poblaciones de las plagas en cantidades que no causen pérdidas a los agricultores.

La National Academy of Sciences (1992), indica que manejo integrado de plagas es la utilización de todas las técnicas adecuadas para reducir y mantener la población de las plagas por debajo del nivel en que causan daño de importancia económica a la agricultura y a los bosques. Es un sistema que se debe basar en principios y métodos ecológicos simples.

Meister Publishing Company (2003), define el manejo integrado de plagas como un programa montado en muchas tácticas acerca de la prevención y/o prevención del desarrollo de plagas que resulte en un sistema de cultivo sostenible.

COMPONENTES DEL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

COMPONENTES DEL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

COMPONENTES DEL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

COMPONENTES DEL MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

El Departamento de Agricultura de los Estados Unidos recomienda utilizar cuatro componentes en un programa de manejo integrado de plagas que son: prevenir, evitar, monitorear y suprimir.

La prevención es la primera línea de defensa en cualquier programa de manejo integrado de plagas. En esta práctica se mantiene alejadas a las poblaciones de plagas para evitar la infestación en un campo de cultivo. Esto incluye algunas tácticas como el uso de semillas sanas y trasplantes, prevención de la reproducción de malezas, programa de irrigación para evitar situaciones que conduzcan al desarrollo de enfermedades, limpieza de equipos de mecanización entre operaciones de un campo a otro, uso de procedimientos de sanitización en el campo y eliminación de hospederos alternos o sitios de insectos plaga y organismos enfermos.

(23)

El monitoreo y apropiada identificación de las plagas a través de programas de inspecciones y muestreos, incluyendo trampeo, monitoreo del clima y pruebas de suelo donde sea apropiado, deben ejecutarse como la base para cualquier actividad de

supresión. Los registros de la incidencia y distribución de la plaga en cada campo deben

ser guardados. Los registros forman la base para la selección de rotación de cultivos, umbrales económicos y acciones de supresión.

La supresión de las poblaciones de plaga debe de llegar a ser necesaria para evitar pérdidas económicas si las tácticas aplicadas para prevenir y evitar son agotadas o no exitosas. Las tácticas de supresión pueden incluir prácticas culturales como el espaciamiento estrecho en las hileras de cultivo o la optimización de la población de plantas en las líneas de cultivo, labranza alternativa como sistema de no – labranza, cultivos de cobertura o mulches, o el uso de cultivos con alelopatía potencial en la rotación. Las tácticas físicas de supresión pueden incluir el uso de cultivadoras para el control de malezas. También se pueden incluir tácticas como el uso de feromonas para ciertos insectos, el control biológico y el control químico.

NIVELES DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

NIVELES DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

NIVELES DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

NIVELES DE MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS

Existen cuatro niveles de manejo integrado de plagas, que se clasifican de acuerdo a las tácticas aplicadas en cada caso.

Nivel Básico de Manejo de Plagas (NO MIP)

En este nivel de manejo de plagas no existe un manejo integrado de plagas y únicamente se aplican las siguientes tácticas:

a. Sanitización apropiada, mantenimiento y calibración de equipos de aplicación.

b. Muestreos regulares para evitar aplicaciones innecesarias en ausencia de plagas primarias.

c. Confianza en las detecciones visuales y ciclos calendarizados de programación de aplicación de plaguicidas.

Nivel Bajo de Manejo Integrado de Plagas

En este nivel se aplican algunas tácticas relacionadas con los componentes del manejo integrado de plagas:

a. Uso de algunas medidas preventivas.

(24)

c. Utilización de umbrales de acción para indicar la aplicación de plaguicidas.

d. Uso de plaguicidas selectivos y empleo de técnicas de manejo de resistencia.

Nivel Medio de Manejo Integrado de Plagas

En este nivel se refuerzan algunas actividades aplicadas en el nivel bajo y se agregan otras tácticas:

a. Incremento del uso de medidas preventivas.

b. Uso de modelos de pronóstico de insectos y enfermedades como refuerzo adicional.

c. Ajuste de los umbrales de acción de acuerdo a la actividad benéfica.

d. Manipulación física del hábitat de la plaga, como la remoción de los sitios de invernación.

e. Uso de plaguicidas bioracionales.

f. Suplementar las poblaciones de insectos y ácaros benéficos.

Manejo Integrado de Plagas Biointensivo

En este nivel se aplica el sistema completo de manejo integrado de plagas, que incluye las siguientes tácticas:

a. Confianza en las medidas preventivas.

b. Muestreos para determinar el momento de liberación de benéficos.

c. Los umbrales determinan la liberación de benéficos y el uso de bioplaguicidas.

d. Aumento del enfoque en la salud de la planta y calidad del suelo.

e. Uso de plaguicidas bioracionales y microbiales.

(25)

MÉTODOS

MÉTODOS

MÉTODOS

MÉTODOS DE CONTROL EN EL MANEJO INTEGRADO DE

DE CONTROL EN EL MANEJO INTEGRADO DE

DE CONTROL EN EL MANEJO INTEGRADO DE

DE CONTROL EN EL MANEJO INTEGRADO DE

PLAGAS

PLAGAS

PLAGAS

PLAGAS

Los métodos de control que se aplican en un programa de manejo integrado de plagas son: legal, cultural, físico y mecánico, etológico, autocida, biológico y químico.

Control Legal

Este método consiste en mandos gubernamentales o intergubernamentales que señalan el empleo de ciertas técnicas o la prohibición del uso de otras. Entre estas prácticas se puede incluir las cuarentenas y la legislación que exija el control de determinados insectos.

Control Cultural

El control cultural comprende múltiples prácticas que pueden utilizarse en el manejo de plagas. Este método no elimina el problema pero sí contribuye a reducirlo.

Las medidas aplicadas se refieren al uso de variedades resistentes, a la rotación de cultivos, a la destrucción de rastrojos, al arado del suelo, a la alteración de la época de siembra y/o cosecha, a la poda, a la aplicación de abonos, a la limpieza del cultivo, al manejo del agua (riego y drenaje), al uso de cultivos trampa y al manejo y destrucción de hospederos alternos.

Control Físico y Mecánico

Este tipo de control incluye la destrucción o eliminación manual de insectos, el uso de barreras físicas, la aplicación de calor, frío, humedad, energía, sonido y radiación ionizante.

Control Etológico

El control etológico consiste en el uso de distintos dispositivos químicos o físicos que afectan el comportamiento de los insectos. Entre ellos se mencionan las trampas con feromonas, el uso de atrayentes y el uso de repelentes.

Control Autocida

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Control Biológico

En este tipo de control se hace referencia al uso de enemigos naturales para el manejo de las plagas. Estos organismos benéficos pueden ser depredadores, parasitoides y entomopatógenos.

Entre las actividades que se pueden realizar se mencionan: protección y estímulo de las poblaciones de enemigos naturales; introducción, aumento artificial y colonización de depredadores y parasitoides; propagación y diseminación de bacterias, hongos, virus y protozoarios entomopatógenos.

a. Depredadores

Los depredadores son insectos que atacan, matan y se alimentan en varios o en muchos otros individuos, denominados presas, durante su tiempo de vida. Algunos depredadores están especializados en alimentarse en solo uno o en pocas especies cercanamente relacionadas, pero muchos depredadores son mas generalizados y se alimentan en una variedad similar de organismos. Los depredadores son económicamente importantes en el control de insectos plaga e incluye insectos de los ordenes Coleoptera, Hemiptera, Diptera y Neuroptera, así como ácaros de la clase Archnida.

b. Parasitoides

Los parasitoides son organismos que viven y se alimentan dentro o en un hospedero más grande. A diferencia de los depredadores, los organismos parasitoides tienen una prolongada y especializada relación con sus huéspedes. Usualmente parasitan solo un hospedero individualmente durante su vida.

c. Entomopatógenos

Los entomopatógenos son microorganismos que causan enfermedades en los insectos, causándoles la muerte. Pueden ser hongos, bacterias, virus, rickettsias, protozoos y nematodos.

Control Químico

Según Salguero (1993), el control químico es la práctica más usada para el control de plagas. Este consiste en la aplicación de insecticidas.

(27)

CAPÍTULO III

PLAGAS DE

PLAGAS DE

PLAGAS DE

PLAGAS DE IMPORTANCIA

IMPORTANCIA

IMPORTANCIA

IMPORTANCIA

ECONÓMICA

ECONÓMICA

ECONÓMICA

ECONÓMICA DEL CULTIVO

DEL CULTIVO

DEL CULTIVO

DEL CULTIVO

DE MELÓN

En el Valle de La Fragua, el género más importante de aleyrodidos en el cultivo de melón es Bemisia, plaga que ha ocasionado serios daños no solo a este cultivo, sino a todas las hortalizas que se desarrollan en la región. Ocasionalmente, se han encontrado algunos inmaduros de la mosca blanca de los invernaderos (Trialeurodes vaporariorum Westwood) en algunas malezas, ubicadas en quebradas y ambientes silvestres, pero en el cultivo de melón no se ha reportado esta especie (Fotografía 8).

En décadas anteriores King y Saunders (1984), reportaban que en América Central la mosca blanca Bemisia tabaci era una plaga importante en el cultivo de frijol, como vector del virus del mosaico dorado del frijol, siendo una especie de importancia menor en el resto de cultivos anuales (Fotografía 9).

Hace algunos años en Arizona, la mosca blanca de la batata (B. tabaci) cambió de ser una plaga secundaria vectora de virus a ser una plaga primaria en los vegetales de otoño, melones y algodón del suroeste. Este cambio en la situación de plaga se debió al desarrollo de una nueva raza de esta especie, que algunas veces ha sido referida como la mosca blanca de la hoja plateada.

(28)

la hoja plateada (B. argentifolii). En California, B. argentifolii (Fotografía 10), ha desplazado a B. tabaci, por lo tanto, la apropiada identificación de estas especies es importante ya que la primera es más hábil como vector de virus.

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

La clasificación taxonómica de la mosca blanca es la siguiente:

Phylum Arthropoda

Subphylum Mandibulata

Superclase Insecta

Clase Euentomata

Subclase Pterygogenea

Superorden Paraneoptera

Orden Hemiptera

Suborden Sternorrhyncha

Superfamilia Aleyrodoidea

Familia Aleyrodidae

Subfamilia Aleyrodinae

Género Bemisia

Especies B. tabaci Gennadius

B. argentifolii Bellows & Perring

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

Ambas especies de Bemisia son muy similares en la apariencia; además, los estados por los que atraviesan durante su ciclo de vida son los mismos, por lo que la descripción se realiza en forma conjunta, haciendo la distinción respectiva en caso de obtenerse diferencias.

La mosca blanca se puede reproducir de forma sexual, con la intervención del macho y la hembra, y de forma partenogenética del tipo arrenotoquia, en donde la hembra desarrolla huevos que dan origen a nuevas generaciones de machos únicamente.

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Los huevos son colocados en forma individual o en grupos, formando círculos o semicírculos, quedando insertados en el tejido de la hoja por un pedicelo. Son diminutos (0.2 mm), de forma oval con punta en el ápice, dando la apariencia de una punta de lanza, el color es blanco verdoso al momento de la postura, posteriormente toma un color amarillento y se oscurece hasta tornarse café claro. El promedio de duración del estado de huevo en B. tabaci es de 5.1 ± 2.4 días (Fotografías 11 y 12).

El estado ninfal pasa por cuatro estadíos. Al salir del huevo el primer estado ninfal posee piernas y antenas y es móvil. Se le denomina “crawler” (gateador) ya que camina sobre el tejido vegetal hasta que encuentra el sitio apropiado para alimentarse, por lo que inserta el estilete y comienza a succionar la savia del vegetal. En B. argentifolii las ninfas son de 0.2 a 0.3 mm de largo, de color amarillento y apariencia oval y achatada. En B. tabaci las ninfas son de color blanco verdoso, de forma elíptica con una ligera angostura en la parte distal. El período de duración es de 2.4 a 7.1 días, después del cual realiza la muda para pasar al segundo instar (Fotografía 13).

El segundo y tercer estadios son similares y no sufren mayores cambios entre uno y otro. Ambos se encuentran fijos en las hojas y no tienen movimiento de traslación. La forma es ovalada con una leve constricción en el tercio proximal, el color es blanco verdoso y cristalino al principio y opaco al final. El segundo instar dura de 2.4 a 6.7 días y el tercer instar dura de 2.6 a 8.0 días (Elchelkraut, 1987; Hilje, 1995; Palumbo y Kerns, 1998;

una longitud de 0.7 a 0.8 mm. En B. tabaci la ninfa en la primera fase tiene forma plana y transparente y dura de 2.5 a 8.5 días. En la segunda fase (pupa) es de forma abultada y opaca y dura de 3.1 a 9.2 días (Elchelkraut, 1987; Hilje, 1995; Palumbo y Kerns, 1998; Salguero, 1990).

El adulto emerge rompiendo la cápsula “pupal” en forma de “T” invertida, que comienza desde la cabeza hasta la separación del torax y abdomen (Fotografía 15). El cuerpo del adulto recién emergido es de color amarillo pálido, posteriormente el cuerpo y las alas son cubiertas por un fino y ceroso polvo blanquecino, dándole una apariencia blanca a todo el insecto (Elchelkraut, 1987; Godfrey et al, 2002; Palumbo y Kerns, 1998; Salguero, 1990).

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ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

Las moscas blancas se distribuyen mundialmente en las áreas tropicales y subtropicales. Colonizan el envés de las hojas. Los adultos y huevos se encuentran frecuentemente en las hojas jóvenes, en las partes intermedias de las plantas se encuentran ninfas de todos los instares y en las hojas viejas se localizan los estados ninfales más avanzados, pupas y cubiertas ninfales vacías o exuvias.

Los adultos de mosca blanca se establecen en los cultivos siguiendo un patrón agregado, influenciado principalmente por el viento. En el Valle de la Fragua, en donde predominan los vientos que ingresan por el Norte y Este, se han encontrado mayores poblaciones de adultos en estas posiciones en los campos, mientras que los estados inmaduros han sido encontrados en mayores cantidades en las áreas centrales de las plantaciones.

Las moscas blancas presentan un amplio rango de hospederos, incluyendo más de quinientas especies vegetales. Los cultivos más afectados en el Valle de La Fragua son tomate, melón, sandía, tabaco, chile pimiento, pepino y okra.

El metabolismo de B. tabaci depende de la temperatura ambiental. Las temperaturas óptimas de desarrollo son de 20°C a 30°C, aunque se puede desarrollar a partir de los 15°C. Asimismo, la humedad relativa también es determinante en la sobrevivencia de la mosca blanca. A humedades relativas del 21% la sobrevivencia de los adultos es baja y a humedad relativa del 90% es alta. En caso contrario, los huevos y ninfas jóvenes tienen baja sobreviviencia a humedades relativas del 80% y 90%, mientras que al 31% ésta es alta. Por lo tanto, las disminuciones de las poblaciones de la plaga en la época lluviosa se deben al efecto mecánico de mortalidad causado por la lluvia sobre los adultos y al de la alta humedad relativa sobre los estados inmaduros jóvenes.

DAÑOS

DAÑOS

DAÑOS

DAÑOS

La mosca blanca causa tres tipos de daños en los cultivos: 1) succión de nutrientes en las plantas, al insertar el estilete y succionar la savia, 2) transmisión de virus y 3) la producción de excreciones mielosas que causan dos tipos de problemas: interferencia en el proceso fotosintético y/o el favorecimiento de la proliferación de fumaginas.

Con poblaciones moderadas a altas de este insecto ocurren desecaciones en las plantas, éstas se vuelven improductivas y los frutos pierden el valor comercial. B. tabaci ha sido históricamente un problema serio en las cucurbitáceas por la transmisión del lettuce

infectious yellows virus y el squash leaf curl virus. Recientemente B. argentifolii se ha

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mielecilla pegajosa. Cuando se alimenta en calabacitas, causa que las hojas se tornen de color blanquecino o plateado, derivándose de allí su nombre común (Fotografía 17).

Los adultos y ninfas al alimentarse insertan el estilete tubular en el tejido vascular de las hojas y extraen los asimilados de las plantas, como carbohidratos y aminoácidos. También afectan el desarrollo de las plantas al destruir la clorofila y reducir la actividad fotosintética. Altas poblaciones del insecto en plantas jóvenes pueden causar desecación en las hojas y la muerte de la planta. Las poblaciones de mosca blanca causan serios daños económicos en el cultivo de melón, al reducir la calidad y el tamaño de la fruta. La calidad también es impactada por las bajas concentraciones de sólidos solubles en los frutos y por la contaminación de los frutos con la fumagina.

Los geminivirus transmitidos por mosca blanca causan más de cuarenta enfermedades en los cultivos agrícolas, siendo considerados en algunas regiones como el grupo viral más numeroso y expandido. En sandía se han identificado los geminivirus squash leaf cur y

watermelon curly mottle.

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

Muchas avispas, incluyendo especies de los géneros Encarsia y Eretmocerus parasitan las moscas blanca. Las ninfas de mosca blanca también son víctimas de depredadores como la chinche ojona Geocoris sp, el león de áfidos Chysoperla carnea y la catarinita

Hippodamia convergens. En California, B. argentifolii es una plaga introducida y ha

escapado a los enemigos naturales. Algunos parasitoides y depredadores nativos la han atacado pero no mantienen bajos los niveles de daño. La catarinita Delphastus pusillus ha sido introducida en el sur de California para ayudar en el control biológico.

El hongo entomopatógeno Aschersonia aleyrodis es específico para el control de aleyrodidos. El hongo generalista Paecilomyces fumosoroseus ha sido el patógeno más estudiado para el control de mosca blanca. El hongo Beauveria bassiana se formula bajo diversos nombres comerciales. El hongo Verticillium lecanii funciona sobre moscas blancas pero requiere de alta humedad para actuar.

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ÁFIDOS

ÁFIDOS

ÁFIDOS

ÁFIDOS

Aphis gossypii Glover Myzus persicae Sulzer

Existen varias especies de áfidos que atacan a los cultivos anuales en Centroamérica, pero en el cultivo de melón únicamente están reportados el áfido de las cucurbitáceas Aphis

gossypii Glover y el áfido verde Myzus persicae (Sulzer).

En los últimos años, esta plaga ha ido perdiendo importancia económica en el cultivo de melón en el Valle de La Fragua, ya que ha sido controlada eficientemente como consecuencia de los tratamientos aplicados para la mosca blanca. Además, se ha observado una fuerte actividad de insectos benéficos que de alguna forma han mantenido reguladas las poblaciones de esta plaga en las áreas con plantas silvestres.

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

Los áfidos están clasificados taxonómicamente de la siguiente manera:

Phylum Arthropoda

Subphylum Mandibulata

Superclase Insecta

Clase Euentomata

Subclase Pterygogenea

Superorden Paraneoptera

Orden Hemiptera

Suborden Sternorrhyncha

Superfamilia Aphidoidea

Familia Aphididae

Subfamilia Aphidinae

Géneros Aphis Mizus

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CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

Los áfidos son insectos que cumplen un ciclo de metamorfosis incompleta, pasando por los estados de huevo (que efectúan su período dentro del abdomen de la hembra), ninfa (que nace viva) y adulto.

Áfido de las C

Áfido de las C

Áfido de las C

Áfido de las Cucurbitáceas

ucurbitáceas

ucurbitáceas:::: Aphis gossypii

ucurbitáceas

Aphis gossypii

Aphis gossypii Glover

Aphis gossypii

Glover

Glover

Glover

El ciclo de vida está conformado por los estados de ninfas y adultos. Los áfidos de las cucurbitáceas se reproducen por partenogénesis en los climas cálidos, pero también sexualmente en las regiones templadas. El color de todos los estadios es verde pálido a verde amarillento o negro verdoso. Las articulaciones de las patas y los sifones son más oscuros, los ojos son rojos o negros. Dependiendo de la fuente de alimentación, se pueden encontrar adultos alados y sin alas. Los adultos alados tienen alrededor de 1.5 mm de largo pero no son tan robustos como los adultos ápteros (Fotografía 18).

Una generación de áfidos puede tomar únicamente cinco días y se adaptan mejor a las condiciones secas.

Áfido V

Áfido V

Áfido V

Áfido Verde

erde

erde

erde:::: Myzus persicae

Myzus persicae

Myzus persicae

Myzus persicae Sulzer

Sulzer

Sulzer

Sulzer

En su ciclo de vida pasan por los estados de ninfas y adultos, los cuales pueden ser alados o ápteros. Las ninfas y los adultos son de tamaño pequeño. Las ninfas amarillas, rosadas o verde pálido. Los adultos alados tienen cabeza y torax de color café/negro. El abdomen es verde claro o rojo con moteado café/negro. Los adultos ápteros son de color verde pálido o brillante y no tienen la cobertura cerosa. Las ninfas parecen pequeñas versiones de los adultos sin alas (Fotografía 19).

En esta especie solo existe la reproducción partenogenética y no se producen machos en los climas cálidos. Las hembras, tanto aladas como ápteras, son vivíparas. Una hembra puede producir hasta cien ninfas. La duración de una generación depende de la temperatura, que puede ser de diez días o menos en climas cálidos.

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

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En Arizona, el áfido del melón A. gossypii aparece en altas cantidades en los meses más frescos de la primavera, pero a excepción del áfido verde M. persicae, se pueden encontrar poblaciones infestando melones cuando las temperaturas son calurosas. M.

persicae produce las formas migratorias (aladas) para moverse a otro hospedero (malezas

o cultivos), en respuesta a las aglomeraciones de otros áfidos o a la disminución de la calidad de la planta hospedera. Esto ocurre regularmente en los inicios de la primavera.

En California, al igual que en Arizona, las poblaciones de A. gossypii no disminuyen con las altas temperaturas. Pueden estar alteradas al final de la temporada (septiembre y octubre), particularmente en el Valle de San Joaquín y en el norte de California. Las poblaciones de M. persicae tienden a empezar en las hojas bajas y de allí se mueven hacia las partes superiores de las plantas. El áfido verde está distribuido por toda California en un amplio rango de hospederos.

DAÑOS

DAÑOS

DAÑOS

DAÑOS

El áfido de melón A. gossypii puede ser un mayor problema en las plantas jóvenes cuando se alimenta cerca de las guías o puntos de crecimiento de las plantas de melón. Ellos se reúnen en grande números en el envés de las hojas en crecimiento, distorsionando y enrollando las hojas, produciendo grandes cantidades de mielecilla. Los frutos comienzan a recubrirse de las secreciones pegajosas, creando un ambiente favorable para el desarrollo de la fumagina. Adicionalmente, este áfido puede transmitir los virus cucumber mosaic virus, zucchini yellow virus y watermelon mosaic virus, además de otros. Estas enfermedades virales pueden ser más destructivas a los cultivos que la alimentación directa de los áfidos. Los daños por alimentación pueden causar pérdida de vigor, disminución del crecimiento o, eventualmente, la muerte de las plantas.

Los virus watermelon mosaic virus, zucchine yellow mosaic y papaya ringspot virus son transmitidos principalmente por el áfido verde M. persicae. Este áfido se mueve en los campos de melón en grandes cantidades desde la vegetación aledaña a los campos, acarreando virus al moverse y alimentarse de una planta a otra. La incidencia de estos virus causan reducciones significativas en los rendimientos de melón y las infecciones severas de virus pueden resultar en pérdidas totales de los rendimientos. Las altas poblaciones de áfidos verdes pueden reducir el crecimiento de las plantas al remover los fluidos nutritivos, pero raramente las altas poblaciones de este áfido son suficientes para causar daños económicos.

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

Las poblaciones naturales de la catarinita H. convergens puede proveer un control efectivo. Las liberaciones de este insecto no han sido efectivas. Otros depredadores como el león de áfidos, las larvas de syrfidos, Ceratomegilla maculata, Brachycantha

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incluyendo especies de Lysiphlebus, Aphidius, Diaeretiella y Aphelinus, pueden atacar áfidos (Fotografía 20). El control biológico no es efectivo en la reducción de la transmisión de virus por estos áfidos.

El hongo entomopatógeno Verticillium lecanii en condiciones de humedad puede controlar las poblaciones de áfidos.

COMPLEJO DE GUSANOS SOLDADOS

COMPLEJO DE GUSANOS SOLDADOS

COMPLEJO DE GUSANOS SOLDADOS

COMPLEJO DE GUSANOS SOLDADOS

Spodoptera exigua Hüebner, Spodoptera albula Walker, Spodoptera frugiperda Smith

En este documento se menciona como gusanos soldados a las diferentes especies que están incluidas dentro del género Spodoptera.

En el cultivo de melón, en el Valle de La Fragua, se ha determinado la presencia de tres especies que afectan al cultivo, siendo estas S. exigua, S. albula y S. frugiperda.

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

Los gusanos soldados están clasificados taxonómicamente de la siguiente manera:

Phylum Arthropoda

Subphylum Mandibulata

Superclase Insecta

Clase Euentomata

Subclase Pterygogenea

Superorden Oligoneoptera

Orden Lepidoptera

Suborden Glossata

Superfamilia Noctuoidae

Familia Noctuidae

Subfamilia Amphipyrinae

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Especies S. exigua Hüebner

Los lepidópteros son insectos que cumplen un ciclo de metamorfosis completa, pasando por los estados de huevo, larva, pupa y adulto.

Gusano S

Gusano S

Gusano S

Gusano Soldado,

oldado,

oldado, Gusano de la R

oldado,

Gusano de la R

Gusano de la R

Gusano de la Remolacha

emolacha

emolacha:::: Spodoptera exigua

emolacha

Spodoptera exigua

Spodoptera exigua

Spodoptera exigua

Hüebner

Hüebner

Hüebner

Hüebner

Los huevos son de color verde claro y son colocados por la hembra en masas de 50 a 150 sobre las hojas, cubiertos con escamas de color gris provenientes del abdomen de la hembra al momento de la oviposición. El período de desarrollo dura de tres a cinco días.

La larva pasa por cinco o seis estadios, mide de 25 a 35 mm de largo cuando está madura. El color de las larvas puede variar, pero generalmente tienen color gris verdoso en el dorso, con una línea amarilla media dorsal quebrada y una banda subdorsal pálida por debajo. En la fase gregaria es de color verde oscuro a negro total (Fotografías 21 y 22).

Las larvas empupan en el suelo después de un período de prepupa de uno a dos días. La pupa es de color café y se forma en un capullo suelto. Este estado dura de seis a siete días.

Los adultos tienen una envergadura de 5 mm. Las alas delanteras son de color gris con una mancha central pálida o anaranjada en forma circular. Las alas traseras son blancas con venas de color café (Fotografía 23).

Gusano S

Gusano S

Gusano S

Gusano Soldado,

oldado,

oldado, Gusano C

oldado,

Gusano C

Gusano C

Gusano Cortador

ortador

ortador

ortador:

: Spodoptera albula

:

:

Spodoptera albula

Spodoptera albula Walker

Spodoptera albula

Walker

Walker (=

Walker

(=

(=

(=

S. sunia)

S. sunia)

S. sunia)

S. sunia)

La hembra es capaz de ovipositar masas de 60 a 600 huevos cada una; durante su ciclo de vida pone un promedio de 2,200 huevos. La oviposición ocurre en el envés de las hojas y las masa de huevos son cubiertas con un filamento gris claro característico, los huevos son semiesféricos y se tornan oscuros antes de la eclosión, las larvas emergen de tres a cuatro días después de la postura, alimentándose primeramente de la cáscara de la masa de los huevos y luego se alimenta de las hojas más tiernas.

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Después del tercer estadío se caracterizan por ser de color gris-negruzco a gris-parduzco, con una línea dorsal de pares negros a oscuros; cada triangulo tiene un punto central que puede ser blanco, amarillo o naranja brillante con marcas negras. El máximo desarrollo de las larvas ocurre de los 12 a los 14 días después de la eclosión y llegan a medir de 30 a 40 mm de largo.

Finalizando su estado larval, se dejan caer al suelo y se entierran para empupar. Las pupas son de color café brillante y miden de 19 a 20 mm de longitud, en este estado dura de 8 a 15 días.

Entonces, el adulto emerge caracterizándose por una banda negra delgada en su dorso en la posición de la cabeza y por un punto negro en cada una de sus alas. Son grisáceos y tienen una vida como adultos de alrededor de 4 a 8 días (Fotografías 24 y 25).

Durante un ciclo del cultivo del melón (alrededor de dos meses), se presentan dos generaciones de Spodoptera albula, la primera posiblemente como producto de la inmigración del insecto de los alrededores y la segunda generación como resultado de la inmigración y de la autoinfestación.

Gusano S

Gusano S

Gusano S

Gusano Soldado,

oldado,

oldado, Gusano C

oldado,

Gusano C

Gusano C

Gusano Cogollero

ogollero

ogollero

ogollero:::: Spodoptera frugiperda

Spodoptera frugiperda

Spodoptera frugiperda Smith

Spodoptera frugiperda

Smith

Smith

Smith

La hembra coloca los huevos en grupos de hasta 300, en cualquier superficie de la hoja, los cuales son cubiertos con escamas de color gris rosadas provenientes del abdomen de la hembra al momento de la oviposición. La duración de los huevos es de tres a cinco días (Fotografía 26).

Las larvas pasan por cinco a seis estadios y miden de 35 a 40 mm de largo cuando están maduras. El ciclo de larva dura de 14 a 21 días, dependiendo de la temperatura y el tipo de alimento. Los primeros estadios larvales son de color verde con manchas y líneas negras dorsales, después se vuelven verdes con líneas espiraculares y dorsales negras, café beige o casi negras. Se caracterizan por poseer una “Y” invertida en la cabeza, pináculos dorsales negros y cuatro puntos negros en cuadro (::) sobre el último segmento abdominal (Fotografía 27).

La pupa es de 18 a 20 mm de largo y dura de 9 a 13 días. Empupa en el suelo en un capullo suelto o en una celda en el suelo.

(38)

ECOLOGÍA DE LA

ECOLOGÍA DE LA

ECOLOGÍA DE LA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

PLAGA

PLAGA

PLAGA

Las especies de gusanos soldados se distribuyen mundialmente y cuentan con un amplio rango de cultivos hospederos. Las malezas también constituyen un medio importante en el desarrollo de las larvas, dificultando su control, ya que estas se movilizan de los cultivos a las malezas y viceversa, por lo que es importante realizar monitoreos frecuentes.

En climas cálidos el ciclo de vida se reduce, pudiendo encontrarse todos los estadios larvales en el cultivo, mientras que en días frescos y fríos la tasa de desarrollo se reduce.

S. frugiperda en climas cálidos puede completar su ciclo de vida en 30 días, pero en

temperaturas frías, este se puede extender hasta los 80 y 90 días.

DAÑOS

melón cantaloupe, disminuyendo los rendimientos y la calidad de los frutos.

En el monitoreo de esta plaga es importante muestrear visualmente el daño en las plantas y las cantidades de larvas presentes en el cultivo, debiendo realizarse dos muestreos semanalmente. En algunos cultivos en el sur de Texas, se ha utilizado exitosamente un umbral de acción de 0.3 larvas por planta.

CONTROL BIOLÓGICO

Cotesia marginiventris Cresson y Meteorus augraphae Muesbeck.

También se pueden mencionar los depredadores de huevos como Geocoris spp y Orius spp; así como los depredadores de larvas como Chrysopa spp, Nabis sp y Zelus spp.

Las bacterias entomopatogenas Bacillus thuringiensis var. aizawai y B. thuringiensis var. kurstaki, causan mortalidad en las larvas pequeñas de los gusanos soldados. Además, se reporta el virus de la poliedrosis nuclear como agente patógeno de las especies de

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GUSANO DEL

GUSANO DEL

GUSANO DEL

GUSANO DEL MELÓN

MELÓN

MELÓN

MELÓN Y GUSANO PERFORADOR

Y GUSANO PERFORADOR

Y GUSANO PERFORADOR

Y GUSANO PERFORADOR

DEL FRUTO

DEL FRUTO

DEL FRUTO

DEL FRUTO

Diaphania hyalinata Linnaeus, Diaphania nitidalis Stoll

El gusano del melón y el gusano perforador del fruto, ambos del género Diaphania, son plagas que afectan a los cultivos de cucurbitáceas, siendo muy importantes en los melones de Centroamérica. Estos insectos afectan el follaje de las plantas y los frutos de melón, causando daños externos que disminuyen la calidad del producto, así como daños internos, ocasionando una pérdida total del fruto afectado.

CLASIFICACI

CLASIFICACI

CLASIFICACI

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

ÓN TAXONÓMICA

ÓN TAXONÓMICA

ÓN TAXONÓMICA

El gusano del melón y el gusano perforador del fruto tienen la siguiente clasificación taxonómica:

Phylum Arthropoda

Subphylum Mandibulata

Superclase Insecta

Clase Euentomata

Subclase Pterygogenea

Superorden Oligoneoptera

Orden Lepidoptera

Suborden Glossata

Superfamilia Pyraloidea

Familia Pyralidae

Subfamilia Pyraustinae

Género Diaphania

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CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

CICLO DE VIDA

Los gusanos del melón y perforadores del fruto son insectos de metamorfosis completa, pasando por los estados de huevo, larva, pupa y adulto. Ambas especies de Diaphania pueden completar su ciclo de vida en treinta días.

Gusano del M

Gusano del M

Gusano del M

Gusano del Melón

elón

elón

elón:::: Diaphania hyali

Diaphania hyali

Diaphania hyali

Diaphania hyalinata

nata

nata Linnaeus

nata

Linnaeus

Linnaeus

Linnaeus

Los huevos son de forma oval y aplanados. La hembra adulta los deposita en pequeños grupos en el envés de las hojas, flores y frutos. Inicialmente, los huevos son blancos o verdosos, pero pronto cambian a color amarillo. Las dimensiones son alrededor de 0.7 mm de largo y 0.6 mm de ancho. La eclosión puede ocurrir después de los tres a cuatro días, pudiendo llegar a cinco días (Fotografías 32 y 33).

Las larvas pasan por cinco estadios. El desarrollo total de la larva se realiza en alrededor de catorce días, pudiendo llegar a 21 días. Los rangos de duración de cada instar son de 2–3 días para el primero, 2–3 días para el segundo, 1–3 días para el tercero, 1–3 días para el cuarto y 3–8 días para el quinto instar. El largo de las larvas para cada estadio es de 1.5 mm para el primero, 2.6 mm para el segundo, 4.5 mm para el tercero, 10.0 para el cuarto y 16 mm para el quinto instar. Las larvas completamente desarrolladas pueden medir hasta 20 mm de longitud.

Las larvas recién emergidas del huevo no tienen color, pero en el segundo instar adquieren un color amarillo verdoso pálido. Construyen una frágil estructura de seda debajo de las hojas, en donde se protegen durante las horas de luz. En el quinto instar, las larvas tienen líneas subdorsales a lo largo de todo el cuerpo, siendo la característica más importante de la larva. Estas líneas pueden desaparecer justo antes de iniciar el estado de pupa (Fotografía 34).

Previo a empupar, la larva teje un frágil capullo en la planta hospedera o, lo que es más común, en la hojarasca, doblando una sección de la hoja para agregar protección. La pupa mide de 12 a 15 mm de largo y alrededor de 3 a 4 mm de ancho. Es de color café claro a café oscuro. El estado de pupa dura de cinco a diez días.

El adulto tiene una envergadura de 23 a 30 mm. Las alas son de color blanco perla en el centro, con una banda marginal café oscuro o negra, excepto en el interior de las alas traseras. Frecuentemente presentan una brocha al final del abdomen. El último segmento y el mechón anal son negros (Fotografía 35).

Gusano Perforador del F

Gusano Perforador del F

Gusano Perforador del F

Gusano Perforador del Fruto

ruto

ruto

ruto:

:

: Diaphania nitidalis

:

Diaphania nitidalis

Diaphania nitidalis

Diaphania nitidalis Stoll

Stoll

Stoll

Stoll

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pequeños grupos, usualmente de dos a siete por grupo. Son depositados principalmente en los brotes florales, flores y en cualquier punto de crecimiento activo de la planta. La eclosión de los huevos ocurre alrededor de los cuatro días. Se estima que cada hembra puede producir de 300 a 400 huevos.

La larva pasa por cinco estadios. El promedio de desarrollo total de las larvas es de 14 días, pero puede durar hasta 21 días. El rango de duración medio de cada estadio es de 2– 3 días para el primero, 1–3 días para el segundo, 1–3 días para el tercero, 2–3 días para el cuarto y 4–7 días para el quinto instar. Las longitudes promedio del cuerpo para cada estadio es de 1.6 mm para el primero, 2.5 mm para el segundo, 4.0 mm para el tercero, 10 mm para el cuarto, y 15 mm para el quinto instar.

Las larvas maduras pueden medir de 20 a 25 mm cuando están completamente Previo a empupar las larvas cambian a rosado o cobre oscuro (Fotografías 36 y 37).

La pupa regularmente se ubica en una hoja doblada, comúnmente usa material muerto y seco. Hace un débil capullo con poco hilo. La pupa es de forma elongada con medidas de 13 mm de largo, pudiendo llegar hasta 18 mm de largo, y 4 mm de ancho. El color es café claro a café oscuro. Este estado dura de cinco a diez días.

Los adultos son claramente distintivos en su apariencia. La parte central de las dos alas frontales y las alas ocultas es de color amarillo semi-transparente. Las alas tienen un borde café oscuro. Las alas tienen una envergadura de 25 a 30 mm. Ambos sexos presentan una brocha al final del abdomen (Fotografía 38).

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

ECOLOGÍA DE LA PLAGA

El gusano del melón D. hyalinata y el gusano perforador del fruto D. nitidalis se limitan a alimentarse en cucurbitáceas, tanto en plantas silvestres como cultivadas. Los melones cantaloupes, así como todas las especies de cucumis, son atacados pero no son preferidos con relación a otras cucurbitáceas. La sandía raramente es hospedada.

Los adultos de D. hyalinata permanecen dentro del cultivo durante las horas luminosas del día, estando generalmente inactivas durante el día. Vuelan cortas distancias cuando son molestadas.

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produce una feromona que atrae a los machos, con picos de producción de cinco a siete horas después de la puesta de sol.

Los adultos no se encuentran en los campos durante las horas luminosas del día, por lo que probablemente se dispersen en las áreas de árboles y malezas adyacentes durante las horas de calor del día. Las hembras adultas no producen huevos hasta después de tener varios días de edad.

DAÑOS

DAÑOS

DAÑOS

DAÑOS

Las larvas de D. hyalinata se alimentan de las hojas, pueden causar defoliación. También minan los tallos causando la muerte de la porción distal. Se pueden alimentar de las flores y minan las frutas causando su caída o pudrición.

Cuando las larvas se alimentan de las hojas, regularmente las venas quedan intactas, dándole a la planta una apariencia de cordón (Fotografía 39). Asimismo, si la disponibilidad del follaje se reduce o la planta es menos preferida, como el melón cantaloupe, entonces la larva se puede alimentar de la superficie del fruto o, bien, socavar adentro del fruto. Algunos productores algunas veces se refieren a este insecto como “gusano de la cáscara”, porque causan cicatrices en la superficie del melón.

Los daños indirectos ocasionados por el gusano del melón D. hyalinata son del 23% en pérdidas de rendimiento por daño al follaje. Mientras, el daño directo se considera que es del 9 al 10% en la reducción de los rendimientos por el daño a los frutos. Se cree que este insecto es la plaga de mayor importancia en las cucurbitáceas de Florida.

Las larvas de D. nitidalis se alimentan dentro de las flores, de los estigmas y de otros tejidos tiernos. También pueden minar los tallos y los peciolos de las hojas. Las larvas mayores taladran las frutas. La presencia de las larvas adentro de los frutos se puede reconocer por uno o varios agujeros que exudan un excremento de color naranja. Cuando las larvas están bien metidas en la fruta cierran esta entrada con una tela de seda (Fotografía 40).

Los brotes florales son el sitio favorito de alimentación, especialmente para las larvas jóvenes (Fotografía 41). En las plantas con muchos brotes florales, como la calabacita, las larvas pueden completar su desarrollo sin entrar a los frutos. También se pueden mover de brote a brote, alimentándose y destruyendo la capacidad de producción de la planta. La presencia de la larva hace que el fruto sea rechazado en el mercado y que se desarrollen enfermedades fungosas o bacterianas una vez la perforación haya ocurrido. Cuando todos los brotes florales y los frutos hayan sido destruidos, entonces la larva atacará las guías, especialmente el meristemo apical.

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En el Valle de La Fragua se han observado todos los daños descritos anteriormente, pero el mayor temor hacia esta especie de Diaphania es la perforación de los frutos, ya que el melón es el cultivo de cucurbitáceas prevaleciente en la región, por lo que no se da este tipo de selectividad o preferencia, con relación a otras especies de esta misma familia.

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

CONTROL BIOLÓGICO

Las larvas de las dos especies de Diaphania son parasitadas por las avispitas Apanteles sp. y los huevos son parasitados por Trichogramma spp. En realidad existe una amplia variedad de enemigos naturales para Diaphania spp..

Las aplicaciones de Bacillus thuringiensis, en adición a otros insecticidas químicos, son comúnmente recomendadas para la supresión de las poblaciones de D. hyalinata. En el caso de D. nitidalis, la bacteria matará a las larvas, pero usualmente no se recomienda debido al comportamiento de alimentación interna en los frutos, ya que el punto de alimentación de la larva está más allá del rango de actividad estomacal de la toxina.

GUSANO DEL FRUTO O GUSANO ELOTERO

GUSANO DEL FRUTO O GUSANO ELOTERO

GUSANO DEL FRUTO O GUSANO ELOTERO

GUSANO DEL FRUTO O GUSANO ELOTERO

Heliocoverpa zea Boddie (= Heliothis zea)

El gusano del fruto o gusano elotero es una plaga que ataca al cultivo de melón, que aunque no se ha definido o dimensionado el daño real al cultivo en el Valle de La Fragua, es un insecto que se encuentra en el follaje, flores y frutos, por lo que se realizan los controles necesarios para mantener las poblaciones bajas, constituyéndose en una plaga que genera costos en su manejo.

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA

El gusano del fruto o elotero se clasifica taxonómicamente así:

Phylum Arthropoda

Subphylum Mandibulata

Superclase Insecta

Clase Euentomata

Referencias

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