MANUAL DE TOMA DE MUESTRAS
EXAMENES DE LABORATORIO CLINICO
HOSPITAL GUILLERMO GRANT BENAVENTE
CONCEPCION
APL 1.2
2014 - 2019
Elaborado por: BQ. Laura Ramos Pérez Encargada Característica APL 1.2
Laboratorio Clínico - CAA H.G.G.B.
Fecha: Mayo 2014
Revisado por: Dr. Luis Gatica Norambuena Jefe Unidad de Calidad Continua y
Seguridad del Paciente H.G.G.B.
Fecha: Mayo 2014
Aprobado por: Dra. Marina Opazo Riveros
Jefe Laboratorio Clínico LaboratOrio Clínico - CAA
H.G.G.B.
COLABORADORES
DRA. MARINA OPAZO R. BQ. XIMENA CID C. QF. NORA MILLAN H. QF. PATRICIA RIQUELME S. BQ. CHRISTINE PAQUIEN M. BQ. FRANCISCO PINO A. BQ. HENRIETTE CHABOUTY G. BQ. ROBERTO VEGA M. BQ. IVAN RODRIGUEZ L. TM. HECTOR VENEGAS B. TM. INGRID GUTIERREZ S. TM. Ma LORENA DAVILA D. TM. CAROLINA BAEZA C. TM. LYA MONTECINOS TM. ROLANDO ARIAS A. TM. FELIPE FUENTES R. TM. VANESSA GROSOLLI M. TM. FELIPE LEON V.
INDICE
GENERALIDADES
1. INTRODUCCION………. 10
2. ORGANIZACIÓN DEL PRESENTE MANUAL……… 11
3. OBJETIVOS……….. 12
4. ALCANCE Y CAMPO DE APLICACIÓN……….. 12
5. REFERENCIAS NORMATIVAS………. 12 6. TERMINOS Y DEFINICIONES………... 13 7. RESPONSABLES DE SU APLICACIÓN……….. 13 8. RESPONSABLES DE SU SUPERVISIÓN……….. 13 9. DISTRIBUCION………... 14 10. REGISTROS ASOCIADOS………... 14 11. BIOSEGURIDAD……….. 14
GENERALIDADES DE LA TOMA DE MUESTRA 1. FORMULARIOS DE SOLICITUD………..…. 15
2. REQUISITOS DE LA SOLICITUD DE EXAMEN………... 15
3. PERSONAL AUTORIZADO PARA SOLICITAR EXAMENES………... 15
4. MATERIALES DE TOMA DE MUESTRAS……… 16
4.1. Calendario entrega de material ……….……… 16
5. ATENCION EN LAS SALAS DE EXTRACCION PACIENTES AMBULATORIOS DEL CAA………… 16
6. ATENCION EN LAS SALAS DE EXTRACCION PACIENTES HOSPITALIZADOS………... 16
7. UNIDADES DE TOMA DE MUESTRAS………. 16
PROCEDIMIENTOS PARA LA TOMA DE MUESTRA 1. GENERALIDADES……… 17
2. TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA..……….. 17
TECNICA DE EXTRACCION DE SANGRE POR VACIO 2.1. Descripción Material de extracción por vacio………. 17
2.2. Procedimiento extracción al vacío……….. 18
2.3. Etapas de la toma de muestras……… 19
2.4. Normas básicas para el llenado de tubos al vacío………. 20
2.5. Toma de muestras de Hemocultivo………. 21
2.6. Forma de evitar la aparición de hematomas durante la punción venosa……… 21
2.7. Recomendaciones generales……… 21
3. TOMA DE MUESTRAS DE ORINA………. 21
3.1. Orina reciente o de una sola micción……….. 21
3.2. Orina de segundo chorro……… 22
3.3. Orina de 24 horas……… 22
3.4. Orina vesical………. 22
3.5. Orina de sonda de Foley……… 22
3.6. Orina con recolector……… 22
3.8. Tubos para muestras de orina……….. 24
3.9. Esquema para el correcto uso del sistema de recolección de orina……….. 24
4. TOMA DE MUESTRA DE LIQUIDOS BIOLOGICOS……… 25
5. TOMA DE MUESTRAS DE DEPOSICIONES……….. 25
5.1. Muestras tomadas con medio de transporte……….. 25
5.2. Muestras de deposición en frascos con tórula estéril………... 26
6. TOMA DE MUESTRAS DE SECRECIONES……… 26
6.1. Toma de muestra de Flujo vaginal……….. 6.2. Toma de Muestras de Aspirado Nasofaríngeo……….. 26 26 6.3. Toma de muestra Torulado Nasofaríngeo……….. 26
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE SANGRE PARA LOS EXAMENES: 1. ACIDOS BILIARES………. 27
2. ACIDO URICO………. 27
3. ACIDO VALPROICO MINIMO Y MAXIMO ………. 27
4. ADENOSINDEAMINASA (ADA)……… 28
5. ALBUMINA……… 28
6. ALFAFETOPROTEINAS……… 29
7. AMILASA……….. 29
8. AMONIO……… 30
9. ANTICUERPOS ANTI CARDIOLIPINAS IGG E IGM... 30
10. ANTICUERPOS ANTINUCLEARES (ANA) ……… 30
11. ANTICUERPOS ANTICITOPLASMA DE NEUTROFILOS (ANCA) ANTI PR3 Y MPO... 31
12. ANTICUERPOS ANTI CITOMEGALOVIRUS IGG E IGM... 31
13. ANTICUERPOS ANTI DNA……… 31
14. ANTICUERPOS ANTI ENA (RO, LA, SM, RNP, SCL-70, JO-1)………. 32
15. ANTICUERPOS ANTI ENDOMISIO………. 32
16. ANTICUERPOS ANTI ESTREPTOLISINA O (ASO)………. 32
17. ANTICUERPOS ANTI LKM-1……… 33
18. ANTICUERPOS ANTI MITOCONDRIALES (AMA)……… 33
19. ANTICUERPOS ANTI MUSCULO LISO (ML)... 33
20. ANTICUERPOS ANTI MPO……….. 31
21. ANTICUERPOS ANTI PEPTIDOS CITRULINADOS CICLICOS (CCP)………. 33
22. ANTICUERPOS ANTI PR3……… 31
23. ANTICUERPOS ANTI RUBEOLA IGG E IGM... 34
24. ANTICUERPOS ANTI TOXOPLASMA GONDII IGG E IGM ……… 34
25. ANTICUERPOS ANTI TRASNGLUTAMINASA IGG E IGA………... 34
26. ANTICUERPOS ANTI TIROGLOBULINA (TG)………... 34
27. ANTICUERPOS ANTI TPO……… 35
28. ANTICUERPOS ANTI TREPONEMICOS EN SUERO (Treponema pallidum)………. 35
29. ANTICUERPOS ANTI Trypanosoma cruzi (CHAGAS)... 35
30. ANTICUERPOS ANTI VIRUS EPSTEIN BARR IGG E IGM (VCA)... 36
31. ANTICUERPOS ANTI VIRUS HERPES SIMPLEX 1 Y 2 IGG E IGM ……… 36
32. ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO LIBRE (APEl)……….. 36
33. ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO TOTAL (APEt)... 37
34. ANTITROMBINA III……….. 37
35. BETA 2 MICROGLOBULINA………. 38
36. BHCG, GONADOTROFINA CORIONICA HUMANA FRACCION B……… 38 37. BILIRRUBINA TOTAL Y CONJUGADA………
38. CA19-9………..
38 39
39. CA125………. 39
40. CALCIO……….. 39
41. CARBAMAZEPINA MINIMO Y MAXIMO ………. 40
42. CAROTENO BASAL Y SOBRECARGA………... 40
43. CEA (ANTIGENO CARCINOEMBRIONARIO)……… 41
44. CETONEMIA……….... 41
45. CICLOSPORINA MINIMO Y MAXIMO ………. 41
46. COLESTEROL TOTAL……… 42 47. COLESTEROL HDL……… 42 48. COMPLEMENTO SERICO C3 Y C4……… 43 49. CORTISOL AM Y PM………. 43 50. CREATININA………... 43 51. CREATINQUINASA CK-MB MIOCARDICA ……… 44 52. CREATINQUINASA CK TOTAL……… 44 53. CRIOGLOBULINAS……….... 45 54. DESHIDROGENASA LACTICA (LDH)……….... 45 55. DHEA-SO4……… 46 56. DIGOXINA……….... 46 57. DIMERO D………. 46
58. ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN SUERO………... 47
59. ELECTROLITOS PLASMATICOS (Na, K, Cl)... 47
60. ESTRADIOL………. 48
61. FACTOR DE VON WILLEBRAND……… 48
62. FACTOR REUMATOIDEO……….... 48
63. FACTOR V……… 49
64. FACTOR VII………. 49
65. FACTORES VIII Y IX………... 50
66. FENITOINA MINIMO Y MAXIMO ………….……….. 50
67. FENOBARBITAL MINIMO Y MAXIMO ……….... 50
68. FERRITINA……… 51
69. FIBRINOGENO………. 51
70. FOSFATASAS ALCALINAS TOTALES……….. 52
71. FOSFORO………... 52
72. FSH (HORMONA FOLICULO ESTIMULANTE)………. 53
73. GALACTOMANANO……… 53
74. GAMMA GLUTAMIL TRANSFERASA (GGT)……….... 53
75. GASES EN SANGRE ARTERIAL Y COOXIMETRIA……… 54
76. GASES EN SANGRE VENOSA……… 54
77. GLUCOSA BASAL Y POST PANDRIAL………. 55
78. GOT (ASPARTATO AMINOTRANSFERASA)……… 55
79. GPT (ALANINO AMINOTRANSFERASA)……….. 56
80. HANTAVIRUS……….. 56
81. HEMOCULTIVO MICOBACTERIAS (HEMOMAC) ……….. 56
82. HEMOCULTIVO PERIFERICO AEROBIO Y ANAEROBIO………. 57
83. HEMOCULTIVO POR CATETER VENOSO CENTRAL……… 58
84. HEMOGLOBINA A1C (HEMOGLOBINA GLICOSILADA)……….. 58
85. HEMOGRAMA………. 59
86. HEPATITIS A (ANTICUERPOS IGM)……….. 59
87. HEPATITIS B (ANTIGENO DE SUPERFICIE)……… 59
88. HEPATITIS B (ANTICUERPO ANTI CORE)... 60
89. HEPATITIS C (ANTICUERPOS TOTALES)……… 60
91. INMUNOFIJACION DE PROTEINAS EN SUERO………. 61
92. INMUNOGLOBULINAS SERICAS IGG, IGA, IGM E IGE TOTAL……….. 61
93. INSULINA BASAL Y 120 MIN……… 62
94. LACTATO (ACIDO LACTICO)……….. 62
95. LH (HORMONA LUTEINIZANTE)……….... 63
96. LIPASA………... 63
97. LITIO NIVEL MAXIMO Y MINIMO………. 63
98. MAGNESIO……… 64 99. METOTREXATO……….. 64 100. PARACETAMOL………... 101. PERFIL BIOQUIMICO………. 102. PERFIL HEPATICO………. 65 65 65 103. PERFIL LIPIDICO (COLESTEROL TOTAL, COLESTEROL HDL, TRIGLICERIDOS)……… 104. PROCALCITONINA………. 66 66 105. PROGESTERONA……….. 67
106. PROLACTINA Y POOL DE PROLACTINA………. 67
107. PROTEINA C ACTIVADA……… 67
108. PROTEINA C REACTIVA……….. 68
109. PROTEINA S……… 68
110. PROTEINAS TOTALES………. 111. PRUEBA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA ORAL (PTG)……….. 68 69 112. PTH INTACTA………. 69
113. RECUENTO DE PLAQUETAS EN CITRATO……… 70
114. RECUENTO DE RETICULOCITOS………. 70
115. SCREENING NEONATAL DE HIPOTIROIDISMO CONGENITO (HC) Y FENILCETONURIA (PKU)……….... 71
116. TEOFILINA MINIMO Y MAXIMO..……… 71
117. TESTOSTERONA TOTAL………. 72
118. TIEMPO DE PROTROMBINA (TP) + INR………... 72
119. TIEMPO DE SANGRIA IVY……… 73
120. TIEMPO PARCIAL DE TROMBOPLASTINA ACTIVADA (TTPA)……….. 73
121. TRIGLICERIDOS………. 74 122. T3 (TRIYODOTIRONINA)……….. 74 123. T4 (TIROXINA)………. 75 124. T4 LIBRE……….. 75 125. TROPONINA I……….. 75 126. TSH (HORMONA TIROESTIMULANTE)………. 76 127. UREA Y BUN……… 76
128. VANCOMICINA MINIMO Y MAXIMO ……….. 76
129. V.D.R.L. EN SUERO……….. 77
130. VELOCIDAD DE SEDIMENTACION (VHS)……… 77
131. VIH/SIDA……….. 78
132. VITAMINA B12………. 78
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE ORINA PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE ORINA……….……….…. 79
2. CREATININA EN ORINA DE 24 HRS Y CLEARENCE……… 79
3. CULTIVO DE ORINA POR PUNCION VESICAL……….. 80
4. CULTIVO DE ORINA POR SEGUNDO CHORRO O POR RECOLECTOR... 80
5. ELECTROFORESIS E INMUNOFIJACION DE PROTEINAS EN ORINA………. 81
7. MICROALBUMINURIA……… 82
8. PROTEINAS DE BENCE JONES……… 82
9. QUIMICA DE ORINA CUANTITATIVA DE 24 HORAS O AISLADA………. 82
10. SCREENING METABOLICO EN ORINA………... 83
11. UROCULTIVO………. 80
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE DEPOSICIONES PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE DEPOSICIONES………...…. 84
2. COPROCULTIVO………... 84
3. ESTEATOCRITO ACIDO………... 85
4. LEUCOCITOS FECALES………. 85
5. ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS………..………. 85
6. TOXINA A Y B DE Clostridium difficile EN DEPOSICIONES………. 86
7. NOROVIRUS EN DEPOSICIONES……… 86
8. Helicobacter pylori EN DEPOSICIONES……… 87
9. PARASITOLOGICO SERIADO DE DEPOSICIONES (PSD)……….… 87
10. SANGRE OCULTA EN DEPOSICIONES (TEST DE WEBER)……….… 88
11. TEST DE GRAHAM……….. 88
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE LIQUIDOS BIOLOGICOS PARA LOS EXAMENES: 1. ADENOSINDEAMINASA EN LIQUIDOS LCR Y PLEURAL……….….. 89
2. ALBUMINA, AMILASA, COLESTEROL, LDH, LIPASA Y PROTEINAS TOTALES EN LIQUIDOS BIOLOGICOS………. 89
3. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO, PLEURAL, ASCITICO Y OTROS……… 90
4. BANDAS OLIGOCLONALES………... 90
5. CITOQUIMICO DE LCR……… 90
6. CITOQUIMICO DE LIQUIDO PLEURAL, ASCITICO Y PERITONEAL, SINOVIAL, PERICARDICO Y OTROS……… 91
7. CULTIVO CORRIENTE DE LCR……… 92
8. CULTIVO DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO POR DERIVATIVA VENTRICULO PERITONEAL 92 9. CULTIVOS LIQUIDOS ESTERILES NO LCR……….….. 92
10. CULTIVO LECHE MATERNA……….…. 93
11. ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN LCR……… 93
12. IGA SALIVAL……….. 94
13. PLEUROCRITO……….. 94
14. V.D.R.L. EN LCR……… 94
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE SECRECIONES PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA DE ABCESOS Y SECRECIONES………. 95
2. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE EXPECTORACION………. 95
3. CULTIVO CAVIDAD OROFARINGEA………. 96
4. CULTIVO CAVIDADES PARANASALES……… 96
5. CULTIVO FLUJO VAGINAL……….…. 96
6. CULTIVO SECRECION BRONQUIAL………. 97
7. CULTIVO SECRECION CONJUNTIVAL………. 97
8. CULTIVO SECRECION DE HERIDAS PROFUNDAS……….. 98
10. CULTIVO SECRECION ENDOCERVICAL………. 99
11. CULTIVO SECRECION FARINGEA……….... 100
12. CULTIVO SECRECION INTRAOCULAR……… 101
13. CULTIVO SECRECION NASAL……… 101
14. CULTIVO SECRECION OTICA……….... 101
15. CULTIVO SECRECION TIMPANOCENTESIS……….. 102
16. CULTIVO SECRECION URETRAL……….. 102
17. ELECTROLITOS DEL SUDOR………. 103
18. EXAMEN MICOLOGICO DE SECRECIONES, LIQUIDOS Y TEJIDOS……… 104
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE ASPIRADOS Y LAVADO BRONCOALVEOLAR PARA LOS EXAMENES: 1. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE LAVADO BRONQUIAL……….. 105
2. CULTIVO ASPIRADO TRAQUEAL CUANTITATIVO……….. 105
3. CULTIVO LAVADO BRONCOALVEOLAR……… 106
4. TEST RAPIDO ADENOVIRUS RESPIRATORIO………. 106
5. TEST RAPIDO VIRUS INFLUENZA A Y B……… 107
6. TEST RAPIDO VIRUS SINCICIAL RESPIRATORIO……….. 107
7. VIRUS RESPIRATORIO (ADV, INFLUENZA A Y B, PARAINFLUENZA Y SINCICIAL)……… 108
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE MATERIAL GENETICO PARA LOS EXAMENES: 1. CITOMEGALOVIRUS, CUANTIFICACION ADN……….. 109
2. FACTORV DE LEIDEN (Mutación G1691A)……… 109
3. FACTOR II DE LA PROTROMBINA (Mutación G20210A)………. 109
4. VIRUS EPSTEIN BARR, CUANTIFICACION ADN……….. 110
5. VIRUS HERPES SIMPLEX I y II, DETECCION y GENOTIPIFICACION………. 110
6. Bordetella pertussis, Detección de ADN……… 111
7. Mycoplasma pneumoniae, Detección ADN……… 111
8. VIRUS INFLUENZA A Y B, Detección ARN……….. 113
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE MATERIAL BIOLOGICO PARA LOS EXAMENES: 1. ACAROTEST………... 114
2. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE CONTENIDO GASTRICO………. 114
3. BACILOSCOPIA Y CULTIVO DE BIOPSIAS, MATERIAL RESECADO, ENDOMETRIO, GANGLIO, ETC……….. 115
4. CALCULOS URINARIOS………. 115
5. CULTIVO DE BIOPSIA DE TEJIDO U ORGANO……… 115
6. CULTIVO HERIDA/ULCERA PIE DIABÉTICO………. 116
7. CULTIVO RASPADO DE CORNEA……… 117
8. CULTIVO CUANTITATIVO DE TEJIDO QUEMADO……… 117
9. CULTIVO TEJIDO OSEO………. 118
10. CULTIVO ULCERA POR PRESION……….. 118
11. DEMODEX……….. 119
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE PARASITOS PARA LOS EXAMENES:
1. PARASITOS MICROSCOPICOS……… 120
INDICACIONES ESPECIFICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE DISPOSITIVOS PARA LOS EXAMENES: 1. CULTIVO DE CATETER……….. 121
2. CULTIVO DE DISPOSITIVO……… 121
3. CULTIVO DE PUNTA DE CATETER VENOSOS CENTRAL……… 122
ROTULACION DE MUESTRAS………. 123
TRANSPORTE Y CONSERVACION DE LAS MUESTRAS……… 124
RECEPCION DE MUESTRAS………. 126
ENTREGA DE RESULTADOS………. 128
CRITERIOS DE RECHAZOS DE MUESTRAS………. 129
ANEXOS ANEXO 1: INSTRUCCIONES A PACIENTES……… 130
ANEXO 2: CARACTERISTICAS MATERIALES DE TOMA DE MUESTRAS……….. 138
ANEXO 3: USO DE LA PAGINA WEB……… 144
ANEXO 4: CARTERA DE SERVICIOS LABORATORIO CLINICO……… 146
ANEXO 5: NORMATIVA DE LA INFECCION POR VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA VIH/SIDA……… 156
ANEXO 6: FORMULARIO DE CONSENTIMIENTO………. 157
GENERALIDADES
1. INTRODUCCIÓN
El Laboratorio clínico presta servicios de exámenes de laboratorio para confirmar y/o descartar un diagnóstico, monitorear un tratamiento, pesquisar alguna patología o factor de riesgo y colaborar con estudios epidemiológicos y de Salud Pública.
Nuestra misión es entregar servicios de alta calidad que permita a los clínicos, contar con resultados confiables y precisos que contribuyan a satisfacer las necesidades de los usuarios y favorecer la promoción, prevención, curación y rehabilitación de la salud de las personas.
El Laboratorio clínico del Hospital Guillermo Grant Benavente, recibe muestras para análisis de los servicios clínicos, UCIES, Servicio de Urgencia y Centro de Atención Ambulatoria del propio Hospital, muestras derivadas de Hospitales y CESFAM pertenecientes a la red de establecimientos del Servicio de Salud Concepción y Servicio de Salud Arauco. Además, es centro de referencia suprarregional del país para algunos análisis.
El laboratorio clínico cuenta con una amplia cartera de servicios a disposición de todos nuestros usuarios, que incluye exámenes de rutina y de especialidades, como también un sistema de Urgencia que funciona las 24 horas del día.
El proceso total de análisis de los exámenes, consta de tres etapas; preanalítica, analítica y postanalítica, todas muy importantes para proporcionar un producto de calidad, confiable y oportuno, por lo que es primordial estandarizar y actualizar los procedimientos, que aseguren la calidad y trazabilidad de los exámenes.
Este manual está orientado a descripción de los procedimientos de la fase preanalítica de los exámenes, para la obtención de muestras o especímenes de los pacientes que cumplan con las condiciones técnicas necesarias para su posterior procesamiento, incluyendo una adecuada conservación y transporte de ellas al laboratorio. La organización de este manual permite ser una herramienta práctica de consulta y de apoyo técnico para todo el personal clínico que realiza la extracción de muestras de sangre y/u otros especímenes, incluyendo los requisitos específicos para algunos de ellos. También, es aplicable, al personal que entrega información y/o material para la toma de algunas muestras a nuestros pacientes.
El presente manual actualiza y reemplaza al Manual de Toma de muestras año 2009, distribuido por Circular Nº3, del 25 de septiembre de 2009; y fe de erratas distribuida por Circular Nº 4 del 13 de noviembre de 2009.
2. ORGANIZACIÓN DEL PRESENTE MANUAL
Los contenidos del presente manual se han organizado de la siguiente forma:
1.- Procedimientos para la Toma de muestras de exámenes de sangre, orina, Líquidos Biológicos, Deposiciones y otros.
2.- Indicaciones específicas para cada examen clasificadas por orden alfabético según el Tipo de espécimen: sangre, orina, líquidos biológicos, deposiciones, fluidos biológicos, etc. Cada examen posee una ficha técnica con la información necesaria para obtener una buena calidad de las muestras.
Sugerencia para el buen uso del presente manual
1.- Buscar en el índice el examen a realizar, ver página:
3. OBJETIVOS 3.1. General
Brindar un instrumento que establezca los procedimientos y actividades de la fase pre-analítica, de la toma, manejo y transporte de muestras y/o especímenes clínicos de pacientes adultos y niños, que den garantías de calidad a las muestras recepcionadas en el laboratorio clínico, para su óptimo procesamiento y resultados.
3.2. Específicos
3.2.1. Estandarizar los procedimientos de la fase pre-analítica, tales como: la solicitud de exámenes, la toma de muestras, instrucciones al paciente, transporte y conservación de las muestras, de manera que permitan garantizar un resultado de calidad y oportuno.
3.2.2. Contribuir a la seguridad del paciente y de las personas involucradas en los procesos de toma, manejo y transporte de muestras.
4. ALCANCE Y CAMPO DE APLICACIÓN
El alcance del presente manual, corresponde a la etapa pre-analítica de los exámenes que se realizan en el Laboratorio Clínico del Hospital Guillermo Grant Benavente (HGGB).
Está dirigido a los funcionarios que solicitan, toman muestras, entregan instrucciones y transportan muestras desde los servicios clínicos de pacientes hospitalizados, de pacientes ambulatorios provenientes del CAA y del servicio de Urgencia del Hospital Guillermo Grant Benavente, como también, desde establecimientos externos que envían muestras para su análisis en el Laboratorio Clínico del HGGB. Además, esta dirigido al personal del laboratorio que toma y recepciona muestras.
5. REFERENCIAS NORMATIVAS
5.1. Decreto N° 433/2012. Reglamento de Laboratorio s Clínicos y Unidades de Toma de muestras.
5.2. NCh 2547. Of 2003. INN Chile. Laboratorios clínicos. Requisitos particulares para la calidad y la
competencia.
5.3. Normas Técnico-Administrativas de Laboratorios Clínicos. División de Salud de las Personas. Minsal
1998.
5.4. Norma técnica nº3. Precauciones para la prevención de infecciones cruzadas (Precauciones estándar y
adicionales). Equipo de Prevención y Control IAAS. 2010.
5.5. Ley Nº 19937 del 24/02/2004 Ley de Autoridad Sanitaria y Gestión.
5.6. Ley N°19966 Régimen de Garantías en Salud (AUG E).
5.7. Ley Orgánica Minsal. DFL 1/2005, Art.4° Nº 11 : Estándares de calidad, Nº 12: Sistema de Acreditación.
5.8. DS Nº 15/2007 Minsal Reglamento del Sistema de Acreditación de Prestadores Institucionales de Salud.
5.9. DS Nº 18/2009 Minsal .Aprueba los Estándares Generales de Acreditación para Prestadores
institucionales de Salud; Atención cerrada y Atención abierta 5.10. Manual de Bioseguridad Laboratorio Clínico HGGB.
5.11. Murray PR, Baron EJ, Pfaller MA Tenover FC, Yoken RH. Specimen Collection, Transport, and Storage. En: Manual of Clinical Microbiology 7th ed. American Society of Microbiology, Washington DC 1999; 4: 33-63.
5.12. Procedimientos y Técnicas de Laboratorio. ISP. Chile.
5.13. Normas para el óptimo desarrollo de programas de búsqueda masiva de fenilquetonuria (PKU) e hipotiroidismo congénito (HC) y otros errores innatos del metabolismo (EIM). Ministerio de Salud de Chile. Segunda edición. 2007.
5.14. Clinical Laboratory Standards Institute (NCCLS), USA.RBP- EIA: Collecting, processing and handling venous, capillary and blood spot samples. June 2005. PATH a catalyst for global health.
6. TERMINOS Y DEFINICIONES
6.1. Ayuno estricto: No ingerir alimentos ni agua, al menos por 8 horas previo al examen.
6.2. Ayuno relativo: No ingerir alimentos ni agua, al menos 3 a 4 horas previo al examen.
6.3. CAA: Centro de Atención Ambulatoria
6.4. Concentración nivel máximo o peak: Concentración máxima de la droga que se alcanza durante un
intervalo de dosificación.
6.5. Concentración nivel mínimo o valle: Concentración mínima de la droga que se alcanza durante un
intervalo de dosificación, antes de la administración de la dosis siguiente.
6.6. Estado estacionario: Equilibrio alcanzado durante una dosificación crónica, de modo que la cantidad de
fármaco administrado se iguala a la cantidad eliminada.
6.7. Examen: conjunto de operaciones que tienen por objeto determinar el valor o característica de una
propiedad.
6.8. HGGB: Hospital Guillermo Grant Benavente.
6.9. ISP: Instituto de Salud Pública de Chile.
6.10. LBA: Lavado bronco alveolar. 6.11. LCR: Líquido cefalorraquídeo.
6.12. Muestra: Parte representativa de distintos especímenes biológicos destinados a entregar información sobre el sistema biológico, tales como; sangre, orina, líquidos biológicos.
6.13. Muestra primaria (espécimen): Recolección de una o más partes tomadas inicialmente desde un sistema.
6.14. Paciente: Todas aquellas personas a las que se les ha solicitado una o varias pruebas analíticas. Según procedencia: Hospitalizados, Ambulatorios, establecimientos externos.
6.15. PCR: Reacción en Cadena de la Polimerasa. 6.16. PKU: Fenilcetonuria.
6.17. Solicitud de examen: Documento normalizado que emite el profesional solicitante y es remitido al laboratorio para la realización de los exámenes.
6.18. V.D.R.L: Venereal Disease Research Laboratory.
6.19. Vida media de eliminación: Tiempo necesario para que la concentración de un fármaco disminuya a la mitad.
7. RESPONSABLES DE SU APLICACIÓN
7.1. Profesionales que solicitan exámenes. 7.2. Personal que efectúa toma de muestras.
7.3. Personal que entrega información y/o material al paciente. 7.4. Personal que transporta las muestras.
7.5. Personal que recibe las muestras en el Laboratorio Clínico. 7.6. Personal que procesa las muestras en el Laboratorio Clínico.
8. RESPONSABLES DE LA SUPERVISION
8.1. Jefes de Servicios Clínicos del HGGB.
8.2. Enfermeras Supervisoras de los Servicios Clínicos del HGGB.
8.3. Encargados de las Unidades de Toma de Muestras del HGGB y de los establecimientos de la red.
8.4. Encargados de secciones y de calidad del Laboratorio.
9. DISTRIBUCIÓN
9.1. Jefes de Servicios Clínicos y enfermeras supervisoras del HGGB; UCI Adulto, UCI Cardioquirúrgica, UCI Quirúrgica, UCI Pediatría, UCI Neonatología, Unidad Quemados, Medicina Adulto, Neurología, Diálisis, Cirugía, Neurocirugía, Urología, Pensionado, Pensionado, Obstetricia, Cirugía Infantil y Plastía, Neonatología, Medicina Niños, Máxilo Facial, Lactantes, Ginecología/Obstetricia, Pabellón, Oftalmología, Oncología, Otorrinolaringología, Psiquiatría, Traumatología.
9.2. Director de establecimientos externos de la red y/o en convenio.
9.3. Encargada de Unidad de Toma de Muestras del Laboratorio clínico y Encargada de Subunidad de Toma de muestras del Centro de Atención Integral de Salud Sexual (CAISS) del HGGB.
9.4. Encargado de Recepción del Laboratorio Clínico HGGB.
9.5. Encargados secciones del laboratorio clínico: Hematología, Química clínica e inmunoanálisis, Serología de Sífilis, Biología Molecular, Inmunología, Técnicas especiales, Microbiología, Tuberculosis, Urgencias y Laboratorio de referencia Programa HC-PKU.
9.6. Jefe Unidad de Laboratorio Clínico. 9.7. Unidad de Calidad del HGGB. 9.8. Subdirector Médico HGGB y CAA.
9.9. Subdirector Gestión del Cuidado del HGGB.
9.10. Jefes de Centros de responsabilidad: Medicina de Adulto, Quirúrgico, Diagnóstico Terapéutico, Urgencia y Paciente Crítico, Materno infantil, Cardioquirúrgico y Psiquiatría y Salud mental del HGGB.
10. REGISTROS ASOCIADOS
10.1. Registros de recepción y de ejecución de los exámenes en sistema informático. 10.2. Registros de la procedencia y tipo de exámenes en sistema informático.
10.3. Registros de rechazos de muestras en sistema informático.
11. BIOSEGURIDAD
Todas las muestras de fluidos biológicos se consideran potencialmente contaminadas. El personal que manipula las muestras, debe cumplir con las normas establecidas en el Manual de Bioseguridad del Laboratorio clínico (APL-MB-02-02).
GENERALIDADES DE LA TOMA DE MUESTRA
1. FORMULARIOS DE SOLICITUD
El laboratorio cuenta con solicitudes u órdenes de exámenes impresos, donde el profesional autorizado debe llenar los datos solicitados en el formulario indicado.
Además, el laboratorio dispone de los siguientes formularios especiales: 1.1. Formulario solicitud examen VIH.
1.2. Formulario consentimiento informado para examen VIH. 1.3. Formulario solicitud exámenes Virus respiratorios.
1.4. Formulario solicitud examen V.D.R.L. y Planilla Informe V.D.R.L. 1.5. Formulario solicitud de investigación bacteriológica de la tuberculosis. 1.6. Formulario solicitud exámenes de Biología Molecular.
1.7. Formulario General del ISP para estudios parasitológicos: Serología para Hidatidosis. Se encuentra
disponible en la página Web del ISP www.ispch.cl/documento/13913
(
*).1.8. Formulario para casos sospechosos de infección por Hanta Virus. Se encuentra disponible en la
página Web del Ministerio de Salud www.epi.minsal.cl
(
*).(*): Estos exámenes se realizan en el Laboratorio clínico del HGGB, pero requieren de un formulario proporcionado por el ISP.
2. REQUISITOS DE LA SOLICITUD DE EXAMEN.
La solicitud de exámenes autorizada por profesional médico debe completarse con los siguientes datos:
2.1. Nombres y apellidos del paciente.
2.2. RUT del paciente
2.3. Edad del paciente.
2.4. Fecha de Nacimiento.
2.5. N° ficha clínica.
2.6. Procedencia: servicio clínico, consultorio, hospital., etc.
2.7. Membrete o timbre del servicio o establecimiento solicitante.
2.8. Diagnóstico.
2.9. Tratamiento.
2.10. Exámenes solicitados.
2.11. Tipo de muestra y sitio anatómico de origen (cuando corresponda). 2.12. Nombre y firma del profesional solicitante (código cuando corresponda).
2.13. Antecedentes del paciente relacionados con tratamientos en curso: Nombre, Dosis y Hora última dosis del medicamento para estudios de niveles plasmáticos de drogas, fracción inspirada de oxígeno (Fi02), temperatura (gases en sangre), tratamientos anticoagulante(s) y/o antibióticos.
NOTA: Es importante que el profesional que solicita los exámenes, llene los formularios de solicitud con letra clara y legible (de preferencia letra imprenta), para evitar el rechazo de las muestras.
3. PERSONAL AUTORIZADO PARA SOLICITAR EXAMENES
En el nivel secundario y terciario de salud, los exámenes de laboratorio serán solicitados por profesionales médicos cirujanos y odontólogos. En condiciones especiales, la Dirección del establecimiento podrá autorizar a otro profesional para extender la solicitud de examen (matrona, enfermera).
4. MATERIAL PARA LA TOMA DE MUESTRAS
El material para la Toma de Muestras se entrega a los usuarios internos y externos, de acuerdo al programa y calendario establecido por el Laboratorio Clínico. Es obligatorio registrar la cantidad de material solicitado y el servicio o Unidad solicitante.
4.1. CALENDARIO ENTREGA DE MATERIAL 4.1.1. Lugar: Laboratorio Clínico, 3º Piso CAA. 4.1.2. Fecha: Primera semana del mes.
4.1.3. Horario: Lunes a Viernes 08:00 – 09:00 Hrs 15:30 – 17:00 Hrs
4.1.4. Servicios: Hospitalizados, Urgencia, Consultorios, Hospitales externos y Unidad de Toma de muestra del Laboratorio.
4.1.5. Materiales: Tubos al vacío, Frascos estériles y no estériles, Agujas múltiples, Jeringa para gases, Kit para aspirados, materiales para la extracción al vacío, Materiales para exámenes microbiológicos.
5. ATENCIÓN EN LAS SALAS DE EXTRACCION PARA PACIENTES AMBULATORIOS DEL CAA
5.1. El paciente debe presentar su carné de identidad y la solicitud de examen en el mesón de atención del subterráneo del CAA. Deberá esperar su turno anunciado por altoparlante y dirigirse a la sala de extracción.
5.2. El funcionario que realiza la extracción deberá:
5.2.1. Recepcionar la orden médica y generar las etiquetas de código de barra. 5.2.2. Preparar el material a utilizar de acuerdo a los exámenes solicitados.
5.2.3. Solicitar al paciente el carné de identidad y verificar los datos con la solicitud de exámenes.
5.2.4. Constatar que el paciente está preparado para tomarse el examen, anímicamente y biológicamente (administración de medicamentos, ayuno, régimen y hora de toma de muestra).
5.2.5. Registrar en la solicitud de examen si el paciente está con tratamiento anticoagulante o ingiere otros medicamentos.
5.2.6. Informar al paciente el procedimiento a realizar y solicitar su consentimiento verbal. 5.2.7. Realizar la toma de muestra utilizando la técnica de extracción por vacío.
5.2.8. Una vez finalizada la extracción, verificar que el lugar de la punción ha dejado de sangrar.
5.2.9. Despedir al paciente sólo si está en condiciones de salir caminando, especialmente si es un paciente que acude a la toma de muestra sin acompañante.
6. ATENCION EN LAS SALAS DE LOS SERVICIOS PARA PACIENTES HOSPITALIZADOS
El funcionario que realiza la extracción deberá:
6.1. Comparar la solicitud entregada por el clínico con toda la información requerida (Nombre completo Rut, número de sala, número de cama, ficha clínica y diagnóstico).
6.2. Verificar que la solicitud de exámenes tenga letra clara y legible.
6.3. Corroborar el nombre del paciente. Solicitar que diga su nombre completo y si es poco frecuente que lo deletree. Si el paciente no puede contestar, preguntar a familiares.
6.4. No alterar la solicitud de exámenes sin autorización del médico para evitar rechazo de las muestras.
7. UNIDADES DE TOMA DE MUESTRAS
7.1. Salas de Hospitalizados de los servicios del HGGB. 7.2. Servicios de Urgencia del HGGB.
7.3. Unidad de Toma de Muestras Pediátricas y Adultos del Laboratorio clínico del HGGB.
7.4. Subunidad de Toma de muestras del Centro de Atención Integral de Salud Sexual (CAISS) del HGGB, 7.5. Unidades de toma de muestras de Consultorios y establecimientos externos para pacientes adultos y
PROCEDIMIENTOS PARA LA TOMA DE MUESTRAS
1. GENERALIDADES
1.1. El personal que manipula muestras o fluidos corporales, deberá cumplir con las precauciones universales establecidas en el Manual de Bioseguridad del Laboratorio clínico (APL-MB 02-02)
1.2. La obtención de líquidos estériles (líquido sinovial, pleural o LCR) por aspiración con aguja percutánea debe ser precedida siempre por la cuidadosa descontaminación de la piel.
1.3. En algunas ocasiones, los pacientes deben participar activamente en la toma de muestra, como en el caso de la obtención de un esputo. Para ello, proporcionar al paciente instrucciones completas y detalladas (ver ANEXO 1 instructivos para pacientes) y tratar de estimular su cooperación.
1.4. Las muestras microbiológicas deben ser tomadas con volumen suficiente para permitir un análisis completo y deben ser puestas en recipientes estériles para evitar riesgos para quienes manipulan las muestras. 1.5. Evitar la contaminación de la superficie externa del material de toma de muestra con sangre, exudados o
heces, por la posibilidad de riesgo biológico en su contacto.
1.6. Las muestras para gonococo deben ser inoculadas directamente en medios selectivos provistos por el laboratorio (placas de Thayer-Martin) y transportarlos inmediatamente al Laboratorio.
2.
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA
Las muestras de sangre son utilizadas como apoyo diagnóstico, control de tratamiento de diversas enfermedades y detección de enfermedades metabólicas y sistémicas. Los métodos y horarios de recogida de las muestras dependen de las pruebas solicitadas por el médico.
TÉCNICA DE EXTRACCIÓN POR VACÍO (Técnica normada por el laboratorio) 2.1. Descripción Material de extracción por vacío
Esta técnica permite la extracción de sangre directamente de la vena al tubo, sin manipulación de ella. Se compone de una aguja biselada por los dos extremos, que se adapta a un soporte especial.
La aguja, está compuesta de dos partes, la más larga se utiliza para la flebotomía, y la más corta cubierta con teflón, se utiliza para pinchar el tubo colector (o de extracción), que se introduce en el porta tubo o camisa una vez canalizada la vena.
El volumen de llenado de cada tubo dependerá de su tamaño y de la intensidad del vacío de su interior, esto garantiza una proporción entre el volumen de sangre recogida y el anticoagulante de su interior.
El tubo de extracción está al vacío, por lo que al atravesar su tapón con la aguja corta se llena automáticamente de sangre
El sistema de vacío se complementa con un adaptador luer que permite la extracción desde un catéter.
Aguja de punción
Aguja con teflón
Figura 2: Sistema BD Vacutainer de toma de muestra múltiple.
2.2. Procedimiento extracción por vacío 2.2.1. Realizar el lavado de manos. 2.2.2. Utilizar guantes y pechera plástica.
2.2.3. Solicitar al paciente la cédula de identidad y verificar los datos del paciente con los indicados en solicitud de exámenes.
2.2.4. Preparar el material a utilizar de acuerdo a los exámenes solicitados. 2.2.5. Ligar al paciente y buscar la vena por palpación.
2.2.6. Limpiar la zona con un algodón con Etanol al 70%, con movimientos en espiral desde adentro hacia fuera.
2.2.7. Colocar la aguja en el portatubo enroscándola por el centro, manteniendo tapada la aguja de punción. Es importante asegurar la correcta colocación de la aguja en el porta tubo, ya que puede desmontarse con la presión ejercida por el vacío del tubo.
2.2.8. Luego de puncionar la vena y cuando la sangre deja de fluir, retirar el tubo y mezclar con movimientos suaves. Sucesivamente introducir los tubos que se precisen respetando el orden de llenado y mezclando suavemente para evitar que la muestra se coagule o se hemolice.
2.2.9. Desligar antes de retirar la aguja.
2.2.10. Retirar el porta tubo de la vena y realizar compresión con tórula de algodón. Si el paciente se encuentra con tratamiento con anticoagulantes, comprimir la zona de punción durante 10 minutos. Si el paciente ingiere ácido acetilsalicílico (aspirina), comprimir la zona de punción durante 5 minutos. Una vez que ha dejado de sangrar poner un parche.
2.2.11. Desechar la aguja en un contenedor para la eliminación del material cortopunzante con la mínima manipulación evitando recapsular la aguja.
2.2.12. Rotular las muestras indicando el nombre y los dos apellidos del paciente. 2.2.13. Ordenar muestras en gradilla para su traslado
No tomar en vena donde se está pasando medicamentos o soluciones terapéuticas.
No envolver las muestras con las órdenes de solicitud
PORTA TUBO
2.3. ETAPAS DE LA TOMA DE MUESTRAS
Nota: Si la sangre no fluye en el tubo, girar ligeramente la aguja para descartar que esté ocluida por la pared interna de la
vena. Si la sangre sigue sin fluir, posiblemente no se haya encontrado la vena en la punción. Antes de retirar la aguja saque el tubo para preservar el vacío para una utilización posterior. Recomenzar desde el inicio.
Verificar los datos del paciente.
Ligar el brazo del paciente. Buscar la vena apropiada para la extracción. Limpiar la zona. Puncionar sosteniendo la unidad completa (portatubos y aguja) entre el dedo índice y el pulgar de la mano derecha.
Cambiar la posición de las manos tan pronto como la aguja este en la vena
Colocar Tubo Situando los dedos índice y medio en las aletas del portatubos mientras se presiona para introducir el tubo dentro del portatubos con el pulgar de la mano derecha
Esperar el llenado completo y retirar el tubo con la mano derecha apoyando el pulgar sobre una de las aletas del portatubos.
Si se requieren más muestras de sangre inserte otro tubo repitiendo el procedimiento.
Soltar ligadura.
Homogenizar el tubo muy suavemente. Inviértalo varias veces para asegurar la mezcla de la sangre con el anticoagulante.
Retirar aguja y colocar parche
Para reutilizar la camisa, presione el mango de la aguja en el recipiente para desechos (contiene una ranura especial para ello) y gire el portatubos hacia la derecha hasta desechar solo la aguja.
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2.4. NORMAS BÁSICAS PARA EL LLENADO DE TUBOS AL VACIO
2.4.1. NUNCA destapar los tubos al vacío, ya que al volverlos a cerrar se produce un exceso de presión dentro del mismo (la sangre más el vacío) y esto hace que el tapón salte y se derrame la muestra. 2.4.2. Respetar siempre la proporción sangre- anticoagulante.
2.4.3. Dejar resbalar la sangre por la cara interna del tubo, ya que si cae directamente al fondo puede producir espuma con ruptura de hematíes (Hemólisis).
2.4.4. Una vez lleno el tubo, invertir suavemente varias veces (6-8 veces) para mezclarlo y homogeneizarlo con la muestra.
2.4.5. Respetar el tiempo de llenado según normativa (5.14). El orden de extracción y llenado de los tubos
es:
a) Frascos de Hemocultivos.
b) Tubos de coagulación (tapa celeste). c) Tubos sin aditivos (tapa amarilla/tapa roja)
d) Tubos con otros aditivos; Heparina de Litio (tapa verde) e) Tubos de hemograma (tapa Lila)
f) Tubos con otros aditivos; Oxalato y fluoruro de sodio (tapa gris) g) Tubos de VHS (tapa negra).
2.2.6. El examen de AMONIO, en caso de ser solicitado, debe ser tomado antes de los otros exámenes. 2.2.7. Depositar y ordenar los tubos en las gradillas en forma vertical.
Si no se requiere realizar hemocultivo, el orden es el siguiente:
TAPA CELESTE CITRATO DE SODIO
TAPA AMARILLA/ TAPA ROJA SIN ANTICOAGULANTE TAPA VERDE HEPARINA DE LITIO TAPA LILA EDTA TAPA GRIS FLUORURO DE SODIO TAPA NEGRA TUBO ESPECIAL PARA VHS
2.5. TOMA DE MUESTRAS DE HEMOCULTIVO
2.5.1. La toma de muestra debe ser efectuada por personal profesional capacitado, con ayudante, siguiendo estrictamente la técnica aséptica.
2.5.2. Rotular frasco de hemocultivo con los datos demográficos del paciente, temperatura corporal, sala, cama, hora y forma de obtención de muestra (punción periférica) evitando escribir sobre el código de barras.
2.5.3. Lavar la zona a puncionar con agua jabonosa. Enjuagar con abundante agua. Secar con tórula de algodón.
2.5.4. Ligar brazo del paciente.
2.5.5. Utilizando guantes estériles, realizar la desinfección de la zona a puncionar. Ayudado de algodón empapado con solución antiséptica. Limpiar la zona elegida realizando un espiral desde el centro hasta la periferia. Se debe esperar los tiempos de secado del antiséptico.
2.5.6. Extraer, por punción venosa, la cantidad necesaria a depositar en el frasco de hemocultivo. Desligar el brazo del paciente.
2.5.7. Luego de extraer la aguja, presionar sitio de punción con un algodón limpio y seco. 2.5.8. Cambiar la aguja de la jeringa.
2.5.9. Abrir el sello del frasco de hemocultivo y desinfectar el tapón de goma para luego introducir el volumen de muestra necesario al frasco por punción. NUNCA sacar tapón de goma.
2.5.10. Si se desea tomar más de una muestra se debe esperar mínimo 30 minutos para puncionar el mismo sitio, o bien se puede obtener al mismo tiempo de ambos brazos.
2.6. FORMA DE EVITAR LA APARICIÓN DE HEMATOMAS DURANTE LA PUNCIÓN VENOSA 2.6.1. Pinchar solamente la pared superior de la vena.
2.6.2. Quitar la ligadura antes que la aguja. 2.6.3. Usar venas grandes.
2.6.4. Aplicar leve presión en el lugar de la punción durante algunos minutos.
2.7. RECOMENDACIONES GENERALES
2.7.1. Siempre utilizar sistema al vacío. En casos de pacientes con dificultad para puncionarlos utilizar el sistema tradicional (jeringa con aguja o mariposa).
2.7.2. Si fracasa en la punción debe intentarlo en la otra extremidad “NUNCA INTENTAR DOS VECES EN LA MISMA VENA O EN LA MISMA EXTREMIDAD”
3. TOMA DE MUESTRAS DE ORINA
Las muestras de orina son utilizadas como apoyo diagnóstico y control en el tratamiento de las enfermedades del riñón o del tracto urinario y en la detección de enfermedades metabólicas y sistémicas. Los métodos y horarios de recogida de las mismas dependen de las pruebas solicitadas por el médico.
3.1. ORINA RECIENTE O DE UNA SOLA MICCIÓN
Utilizada normalmente en el uroanálisis de rutina (fisicoquímico y sedimento).
Es la orina recogida al azar en un recipiente estéril. Se recomienda que la muestra sea de la primera micción del día, segundo chorro, porque refleja con más exactitud la concentración de la orina, aunque no son esenciales ni la hora de recogida ni el volumen de la micción.
3.2. ORINA DE SEGUNDO CHORRO
Preferir la primera orina de la mañana, por ser de mayor concentración o retención mínima de 3-4 horas. Realizar aseo genital prolijo con abundante agua y sin secar. Si la paciente es mujer, se debe extremar medidas de cuidado para no contaminar la muestra con secreción vaginal. De ser necesario usar un tampón de algodón.
Eliminar el primer chorro.
Recoger el segundo chorro de orina directamente en frasco de boca ancha estéril. Tapar el frasco.
3.3. ORINA DE 24 HORAS
Es la orina excretada durante todo un día y se usa para las determinaciones cuantitativas de algunos analitos presentes en este medio.
3.3.1. Si el paciente es ambulatorio, es fundamental explicarle el procedimiento de forma clara y precisa verbalmente y por escrito para que pueda realizar la toma de muestra correctamente. (Ver ANEXO 1 instrucciones al paciente).
3.3.2. Si el paciente está hospitalizado y no puede recoger el mismo la muestra es importante colocar un letrero en la cama para que todo el personal sepa que se está realizando el examen.
a) Realizar la recogida de la orina en un contenedor limpio (de boca ancha de 2000 a 3000 ml. de capacidad mínima).
b) El período de recolección comienza a las 8 de la mañana. Eliminar la primera orina.
c) Continuar recogiendo la orina del día, incluyendo la orina de las 8 de la mañana del día siguiente.
d) Homogeneizar el volumen recogido, medir y enviar al laboratorio, un frasco que contenga
aproximadamente 30ml. Anotar las diuresis total en la orden de examen y recipiente.
e) Si por alguna razón pierde orina durante la recolección o recolecta más de 24 horas, debe
comenzar de nuevo al día siguiente, ya que el resultado obtenido no sería válido.
3.4. ORINA VESICAL
Es la orina obtenida por punción suprapúbica o por citoscopia.
3.5. ORINA DE SONDA DE FOLEY
La orina obtenida de una sonda vesical desde de la propia vejiga urinaria. Tomando las medidas de asepsia correspondientes, recoger la orina en frasco estéril y evitar que la sonda toque el interior o los bordes del frasco.
NUNCA recoger orina en bolsa de recolección.
3.6. ORINA CON RECOLECTOR
Muestra adecuada en pacientes que no controlan esfínter (recién nacido y lactante). La muestra debe ser tomada con un recolector dependiendo si es niña o niño.
3.6.1. Niña:
a) El personal que toma la muestra debe lavarse las manos con agua y jabón. Enjuagar y secar. b) Separar suavemente con una mano la zona genital externa (vulva) durante todo el procedimiento
de limpieza.
c) Lavar, solamente el área por la cual pasa la orina d) Enjuagar con abundante agua tibia (jarro) y luego secar.
e) Colocar el recolector desde la horquilla hacia arriba sobre los labios mayores, presionándolo por los bordes para que se adhiera a la piel.
paciente no ha orinado, cambiar el recolector e instalar uno nuevo siguiendo el mismo procedimiento anterior. Utilizar como máximo dos recolectores. Evaluar la posibilidad de utilizar un tercer recolector de acuerdo a las características locales del paciente.
g) Una vez que la paciente ha orinado, retirar, sellar y colocar el recolector en frasco de boca ancha, etiquetado con nombre del paciente. Sellar bien el envase.
h) El tiempo de transporte no debe exceder los 30 minutos, de no ser así, refrigerar la muestra entre 2 y 8 °C no excediendo de una hora.
i) No transportar la muestra de orina en el mismo contenedor de las muestras de sangre.
j) Si la muestra está refrigerada, transportarla en contenedor con unidades refrigerantes.
3.6.2. Niño:
a) El personal que toma la muestra debe lavar sus manos con agua y jabón. Enjuagar y secar.
b) Lavar, solamente el área por la cual pasa la orina. Limpiar los genitales con agua y jabón retrayendo suavemente el prepucio.
c) Enjuagar con abundante agua tibia.
d) Colocar el recolector dejando solo el pene en su interior, presionando los bordes para que se adhiera a la piel.
e) El recolector debe permanecer adherido como máximo 45 minutos. Si tras ese tiempo el paciente no ha orinado, cambiar el recolector e instalar uno nuevo. Utilizar como máximo dos recolectores. Evaluar la posibilidad de utilizar un tercer colector de acuerdo a las características locales del paciente.
f) Una vez que el paciente ha orinado, retirar, sellar y colocar el recolector en frasco de boca ancha, etiquetarlo con nombre del paciente y fecha.
g) Sellar bien el envase.
h) El tiempo de transporte no debe exceder los 30 minutos, de no ser así, refrigerar la muestra entre 2 y 8 °C no excediendo de una hora.
i) Si la muestra está refrigerada, transportar en contenedor con unidades refrigerantes.
3.7. TRASPASO DE MUESTRAS DE ORINA DESDE FRASCO A TUBOS AL VACIO 3.7.1. Una vez obtenida la orina, tapar el frasco.
3.7.2. Levantar el sello amarillo de la tapa del frasco.
3.7.3. Limpiar con una mota de algodón con alcohol al 70 % la tapa de goma de los tubos que serán ocupados en el traspaso.
3.7.4. Insertar el tubo con la tapa hacia abajo, presionar para que la orina fluya dentro del tubo, hasta alcanzar el nivel óptimo.
3.7.5. Invertir el tubo varias veces para homogenizar la muestra con el aditivo.
3.7.6. Llenar la cantidad de tubos necesarios de acuerdo a los exámenes solicitados: Tubo sedimento urinario, Tubo Urocultivo, Tubo para Química de orina (El orden de los tubos no es relevante). 3.7.7. Rotular los tubos y enviar al laboratorio junto con la orden médica.
3.8. TUBOS PARA MUESTRAS DE ORINA
Las muestras de orina deben ser traspasadas al tubo correspondiente, dependiendo de los exámenes solicitados.
(*): Estos exámenes requieren un tubo exclusivo. Si la solicitud indica sólo electroforésis y/o inmunofijación de proteínas en orina, tomar 2 tubos tapa blanca; uno para análisis de proteinuria y otro para realizar la electroforésis y/o la inmunofijación.
3.9. ESQUEMA PARA EL CORRECTO USO DEL SISTEMA DE RECOLECCION DE ORINA
NOTA: El volumen mínimo de orina requerido para realizar los traspasos es de 20 ml.
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Una vez obtenida la orina, tapar el frasco.
Sacar el sello amarillo e insertar la tapa de goma del tubo en el frasco.
Invertir el tuvo varias veces para homogenizar con el aditivo
Rotular el tubo.
UROCULTIVO
Tubo tapa goma Gris (4 ml) Exámenes: • Cultivo de orina • Identificación bacteriana y recuento • Antibiograma ORINA COMPLETA
Tubo cónico tapa rojo con amarillo (8ml) Examenes: • Análisis Fisicoquímico de orina • Sedimento urinario QUIMICA DE ORINA CUANTITATIVA
Tubo tapa blanca sin aditivos (6 ml) Exámenes: • Creatinina • Amilasa • Urea • Glucosa • Proteínas • Microalbuminuria • Calcio • Acido úrico • Electrolitos (Na, Cl, K) • Electroforesis de proteínas orina* • Inmunofijación en orina*
4. TOMA DE MUESTRAS DE LIQUIDOS BIOLOGICOS
La toma de muestra de líquidos biológicos es realizada por profesional médico en procedimientos quirúrgicos. Los líquidos biológicos más comúnmente analizados son líquido cefalorraquídeo, Pleural, Ascítico, Sinovial, Peritoneal, Pericárdico y otros.
4.1. TOMA DE MUESTRA DE LCR
4.1.1. Explicar el procedimiento al paciente. 4.1.2. Realizar el lavado de manos.
4.1.3. Solicitar al paciente que adopte posición fetal.
4.1.4. Preparar piel según norma para procedimientos invasivos, a la altura de la columna dorso lumbar.
4.1.5. Pincelar con alcohol yodado o povidona yodada en zona a puncionar y esperar que el antiséptico se seque en la piel.
4.1.6. Lavar las manos con técnica quirúrgica (Médico).
4.1.7. Presentar al médico guantes estériles y equipo de ropa n°3 para preparación de campo estéril. 4.1.8. Presentar la ampolla de lidocaína al 2 % y la jeringa de 5 cc para anestesiar el sitio elegido para
la punción.
4.1.9. Presentar el Trocar de punción lumbar al médico para introducir en sitio elegido, extraer el mandril del trocar y observar la salida de LCR.
4.1.10. Presentar los tubos estériles envueltos en gasa estéril para la recolección de la muestra.
Obtener 3 muestras: Citoquímico: 1 Tubo Lila y 1 Tubo sin aditivos.
Cultivo: 1 Tubo sin aditivos.
Si además se solicitan exámenes de Biología Molecular o Electroforesis de Proteínas en LCR, no se requieren muestras adicionales (Ver ficha de cada examen solicitado).
4.1.11. Retira el trocar y sellar el sitio de punción con una gasa estéril. 4.1.12. Dejar al paciente en decúbito dorsal, según indicación.
4.1.13. Retirar el equipo y eliminar material cortopunzante. 4.1.14. Realizar el lavado de manos
4.1.15. Enviar las muestras al laboratorio.
5. TOMA DE MUESTRAS DE DEPOSICIONES
5.1. MUESTRAS TOMADAS CON MEDIO DE TRANSPORTE
5.1.1. Toma de muestra en Recién Nacidos, Lactantes y pacientes postrados a) Humedecer la tórula en medio de transporte Cary Blair
b) Introducirla 2 cm en el recto con movimiento circular
c) Retirar y colocar la tórula con la muestra en el tubo con medio de transporte Cary Blair d) Enviar la tórula al Laboratorio Clínico.
e) No tomar la muestra del pañal
5.1.2. Toma de muestras en niños y adultos
a) La deposición debe ser emitida en un recipiente limpio y seco
b) Con tórula con medio de transporte Cary Blair, tomar la muestra recién emitida directamente de la deposición cuidando de no mezclarla con orina
c) Colocar la tórula con la muestra en el tubo con medio de transporte d) Enviar al Laboratorio Clínico.
5.2. MUESTRAS DE DEPOSICION EN FRASCOS CON TORULA ESTERIL 5.2.1. Toma de muestra a recién nacidos y Lactantes
a) En pacientes con pañal, frotar la tórula de madera, humedecida en el buffer, contra la zona del pañal donde se visualiza la muestra.
b) Dejar caer la tórula dentro del frasco con buffer PBS c) Cortar el extremo distal de la tórula.
d) Enviar inmediatamente al Laboratorio Clínico. 5.2.2. Toma de muestra en niños y adultos
3. Depositar la deposición recién emitida en un recipiente limpio y seco evitando el contacto con orina y agua.
4. Tomar una pequeña cantidad de muestra con la paleta y depositarla en el frasco.
5. En caso de deposiciones líquidas se debe tomar la muestra en frasco con buffer PBS ayudado de tórulas estériles.
6. Enviar inmediatamente al Laboratorio Clínico.
6. TOMA DE MUESTRAS DE SECRECIONES
6.1. Toma de muestras de flujo vaginal 6.1.1. Realizar el lavado de manos.
6.1.2. Poner al paciente en posición ginecológica.
6.1.3. Utilizando guantes, introducir el espéculo lubricado con suero fisiológico.
6.1.4. Introducir la tórula presionando y rotándola contra la pared vaginal impregnándola con el flujo. 6.1.5. Introducir la tórula en el medio de transporte Stuart o Amies.
6.1.6. Retirar el espéculo.
6.1.7. Eliminar los guantes. Realizar el lavado de manos.
6.1.8. En el caso de niñas prepuberales, tomar la muestra desde los labios menores con tórula humedecida con suero fisiológico estéril.
6.2. Toma de muestra de Aspirado nasofaríngeo (ANF) 6.2.1. Realizar el lavado de manos.
6.2.2. Utilizando guantes, romper el sobre que contiene el kit de aspiración y conectar el final del tubo con diámetro menor a una sonda de alimentación estéril.
6.2.3. Conectar el otro extremo de diámetro mayor a la bomba de vacío.
6.2.4. Medir con la sonda de diámetro menor desde la aleta de la fosa nasal hasta el lóbulo de la oreja, medida que se introducirá en la fosa nasal del paciente.
6.2.5. Insertar la sonda de alimentación por la fosa nasal del paciente.
6.2.6. Retirar la sonda, girando suavemente, repetir el procedimiento en la otra fosa nasal. Aspirar un volumen aproximado de 8 - 10 ml de solución tampón pH 7.2 frío a través del tubo colector para arrastrar toda la secreción de la sonda.
6.2.7. Cambiar la tapa del tubo colector, identificar con los datos del paciente. 6.3. Toma de muestra de Torulado Nasofaríngeo (TNF)
6.3.1. Realizar el lavado de manos.
6.3.2. Utilizando guantes, introducir la tórula de dacrón estéril en la fosa nasal y una segunda por boca hasta alcanzar la nasofaringe tratando de obtener la máxima cantidad posible de secreción y células epiteliales.
6.3.3. Colocar las dos tórulas en el tubo con medio de transporte STF cuidando que el algodón quede sumergido en el medio.
INDICACIONES ESPECIFICAS PARA TOMA DE MUESTRAS DE SANGRE
ACIDOS BILIARES
USO DIAGNOSTICO Marcador de la función hepática. La concentración sérica se incrementa en
pacientes con hepatitis aguda, hepatitis crónica, cirrosis hepática y cáncer hepático.
METODO DE ESTUDIO Colorimétrica enzimática
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Suero
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos)
TOMA DE MUESTRA Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo.
CONSERVACION 2 °C a 8 °C hasta 5 días
TRANSPORTE En gradillas en forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA No utilizar muestras hemolizadas o intensamente lipémicas.
SECCION Urgencia
Química Clínica e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica:1 hora
Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas
ACIDO URICO
USO DIAGNOSTICO Determinación cuantitativa de ácido úrico en suero plasma u orina.
METODO DE ESTUDIO Uricasa
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Suero o plasma
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa
verde (Heparina de Litio)
TOMA DE MUESTRA Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION 20 °C a 25 °C por 3 días
2 °C a 8 °C por 7 días
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas
SECCION Urgencia
Química Clínica e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica:1 hora
Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas
ACIDO VALPROICO MINIMO Y MAXIMO
USO DIAGNOSTICO Monitorización de las concentraciones del fármaco.
METODO DE ESTUDIO Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas
REQUISITOS DE PACIENTE No requiere ayuno
TIPO DE MUESTRA Suero o Plasma
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa
verde (Heparina de Litio)
Antes de la toma de muestra, el paciente deberá recibir la droga, a lo menos, 3 – 5 vidas media, para lograr el estado estacionario y asegurar la correcta interpretación de la concentración sérica. Esto se obtiene después de 3 – 4 días de tratamiento. Nivel mínimo: Inmediatamente antes de administrar la dosis siguiente.
Nivel máximo: 2 horas después de la administración del medicamento o según indicación del médico. Se recomienda no ingerir alimentos en este lapso, para no alterar la absorción del medicamento.
Anotar en orden y tubo los niveles mínimo y máximo que corresponden. Especificar en orden el estado clínico del paciente, edad, peso y sexo.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION 2 °C a 8 °C hasta 7 días
-20 °C hasta 3 meses
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA
La toma de muestra está basada en las propiedades farmacocinéticas de la droga, su forma de administración (intramuscular, intravenosa, oral), la posología y el objetivo clínico para el cual se solicita el monitoreo.
SECCION Urgencia
Química Clínica e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica:1 hora
Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas
ADENOSINDEAMINASA (ADA)
USO DIAGNOSTICO Marcador para enfermedades infecciosas tales como: Mononucleosis, Fiebre
tifoidea y Hepatitis. Valores de ADA muy bajos, reflejan una inmunodeficiencia.
METODO DE ESTUDIO Espectrofotométrico
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Suero
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos)
TOMA DE MUESTRA Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION La muestra debe ser analizada lo antes posible.
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA No utilizar muestras con fibrina, hemolizadas o contaminadas
SECCION Urgencia
Química Clínica e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica: 1 hora
Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas
ALBUMINA
USO DIAGNOSTICO Diagnóstico de insuficiencia hepática, deshidratación aguda, pérdida de proteínas
.
METODO DE ESTUDIO Verde de bromocresol
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Suero y plasma
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador)o Tubo tapa roja (Sin aditivos)o Tubo tapa
verde (Heparina de Litio)
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION 20 °C a 25 °C hasta 2 meses
2 °C a 8 °C hasta 5 meses
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA Interferencias con medicamentos o sustancias endógenas.
SECCION Urgencia
Química Clínica e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica:1 hora
Hospitalizados: menos de 4 horas Externos: 24 horas
ALFAFETOPROTEINA (AFP)
USO DIAGNOSTICO
Determinación cuantitativa en el tratamiento de pacientes con cánceres testiculares no seminomatosos y como ayuda en la detección de las anomalías congénitas del tubo neural abierto en fetos.
METODO DE ESTUDIO Inmunoanálisis quimioluminiscente de micropartículas
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Suero o plasma
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa
verde (Heparina de Litio)
TOMA DE MUESTRA Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION 2 °C a 8 °C hasta 7 días (se debe separar el suero del coágulo)
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA Las muestras no deben presentar fibrina, eritrocitos ni partículas en suspensión.
No realizar el examen con muestras recogidas después de una amniocentesis.
SECCION Química Clínica e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA Hospitalizados: menos de 8 horas
Externos: 24 horas
AMILASA
USO DIAGNOSTICO Diagnóstico de pancreatitis y otros trastornos pancreáticos que provocan un
incremento en la actividad de α-amilasa en suero y orina.
METODO DE ESTUDIO actividad de la α-amilasa Sustrato CNPG3
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Suero y plasma
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos) o Tubo tapa
verde (Heparina de Litio)
TOMA DE MUESTRA Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION 2 °C a 8 °C y 20 °C a 25 °C hasta 7 días
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA No utilizar muestras hemolizadas o lipémicas
SECCION Urgencia
Química e Inmunoanálisis
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica:1 hora
Hospitalizados: menos de 8 horas Externos: 24 horas
AMONIO
USO DIAGNOSTICO Diagnóstico y seguimiento de patologías relacionadas con daño hepático grave,
determinados errores congénitos del metabolismo.
METODO DE ESTUDIO Glutamato deshidrogenasa
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno no indispensable.
TIPO DE MUESTRA Plasma
MATERIALES Tubo tapa Lila (EDTA) o Tubo tapa verde (Heparina de Litio)
TOMA DE MUESTRA
Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío. Tomar la muestra sin ligadura y en forma atraumática. Debe ser el primer examen extraído. Una vez tomada la muestra introducirla inmediatamente en hielo.
Muestras enviadas desde establecimientos externos: centrifugar la muestra y enviar solo el plasma.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo.
CONSERVACION Una vez separado el plasma de los elementos figurados, la muestra es estable por
2 horas entre 2 ºC y 8 ºC; -20 ºC por 3 semanas.
TRANSPORTE
Mantener la muestra refrigerada todo el tiempo desde su recolección. Sangre total: Enviar al Laboratorio antes de 15 minutos.
Plasma: Enviar al Laboratorio antes de 2 horas.
LIMITACIONES DE MUESTRA El amonio es estable en sangre total por aproximadamente 15 minutos.
No utilizar muestras hemolizadas
SECCION Urgencia
TIEMPO DE RESPUESTA
Unidad crítica:1 hora
Hospitalizados: menos de 8 horas Externos: 24 horas
ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINAS IgG e IgM
USO DIAGNOSTICO Diagnóstico del síndrome antifosfolípido. Relacionado con enfermedades del tejido
conjuntivo, LES y enfermedades infecciosas como sífilis, SIDA y fiebre Q.
METODO DE ESTUDIO ELISA
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno relativo
TIPO DE MUESTRA Suero
MATERIALES Tubo tapa amarilla (Gel separador) o Tubo tapa roja (Sin aditivos)
TOMA DE MUESTRA Sangre obtenida por punción venosa utilizando la técnica de extracción por vacío.
CANTIDAD DE MUESTRA El volumen que indique el tubo
CONSERVACION 2 °C a 8 °C hasta 4 días
TRANSPORTE En gradillas de forma vertical. Evitar movimientos bruscos durante el transporte.
LIMITACIONES DE MUESTRA No utilizar muestras lipémicas, ictéricas, hemolizadas o contaminadas.
SECCION Inmunología
TIEMPO DE RESPUESTA 5 días hábiles
ANTICUERPOS ANTINUCLEARES (ANA)
USO DIAGNOSTICO Diagnóstico de enfermedades del tejido conectivo, entre ellas el Lupus eritematoso
sistémico (LES), síndrome de Sjögren, esclerodermia, etc.
METODO DE ESTUDIO IFI (Inmunofluorescencia indirecta)
REQUISITOS DEL PACIENTE Ayuno relativo
TIPO DE MUESTRA Suero
