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UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ FACULTAD DE ZOOTECNIA

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(1)

UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ

FACULTAD DE ZOOTECNIA

“CAUSAS DE RECHAZO A LA MARCACIÓN EN CORDEROS DE LA RAZA JUNIN DE LA S.A.I.S. TUPAC

AMARU PERIODO 1996 - 2005”

TESIS

PRESENTADA POR LA BACHILLER

CERRON RUIZ, YESENIA ADELAIDA PARA OPTAR EL TITULO PROFESIONAL DE:

INGENIERO ZOOTECNISTA Huancayo - Perú

2 008

(2)

ASESOR

Ing. M. Sc. NELSON MARIO ROMAN MERCADO

(3)

MI TESIS LA DEDICO CON TODO MI AMOR Y CARIÑO A TI DIOS POR DARME LA OPORTUNIDAD DE VIVIR Y REGALARME UNA FAMILIA MARAVILLOSA.

A MIS PADRES: VICTOR Y ADELAIDA, HERMANOS: NANCY, ANGEL, MARLENE,

SOFIA, RODNEY, MERCY Y SOBRINOS

(4)

AGRADECIMIENTOS

1. Al Ing. M.Sc. Nelson Mario Román Mercado, por su apoyo en el asesoramiento del presente.

2. A La empresa SAIS “Tupac Amaru” Ltda. Nº 1, a sus autoridades, comunidades socias y un reconocimiento especial al M.V. Baudilio Santiago Urbano, por sus consejos y apoyo en el presente.

3. A mis profesores y colegas de la Facultad de Zootecnia, de la

Universidad Nacional del Centro del Perú, por sus consejos y apoyo

incondicional.

(5)

INDICE Pg

Resumen Introducción.

CAPITULO I.

Revisión bibliografica.

1.1. Origen de la raza Junín en el Perú.

1.2. Distribución y población de ovinos en el Perú.

1.3. Características de la Raza Junín.

1.4. Manejo del Ovino Junín.

1.4.1. Destete de corderos.

1.4.2. Esquila y trabajos adicionales.

1.4.3. Clasificación y reclasificación del ganado de reproducción.

1.4.4. Formación de puntas.

1.4.5. Empadre.

1.4.6. La Gestación.

1.4.7. La parición.

1.4.8. Perneo

1.5. Marcación de ganado ovino.

1.6. Investigaciones relacionadas con el estudio.

CAPITULO II.

Materiales y métodos.

2.1. Lugar de estudio.

2.2. Duración.

8 10

12 12 12 14 15 16 16 17 21 21 21 22 22 23 27

28

29

29

(6)

2.3. Materiales.

2.4. Población.

2.5. Metodología para obtención de datos.

2.6. Variables.

2.7. Técnicas e instrumentos de recolección de datos.

2.7.1. Técnicas.

2.7.2. Instrumentos.

2.8 Procedimiento de recolección de datos.

2.9. Técnicas de procesamiento y análisis de datos.

CAPITULO III.

Resultados y discusión.

3.1. Defectos fenotipicos a la marcación de ovinos hembras Raza Junín.

3.1.1. Mancha.

3.1.2. Mancha marrón.

3.1.3. Pelo.

3.1.4. BRH.

3.1.5. Boca mala (prognatismo).

3.1.6. Fuera de tipo.

3.1.7. Fenómeno.

3.1.8. Enfermo.

3.1.9. Pequeño.

3.1.10. Negro.

3.1.11. Total sobre marcados.

3.2. Defectos fenotipicos a la marcación de ovinos machos Raza Junín.

29 29 30 30 31 31 31 32 32

34

34

35

36

37

38

39

40

41

42

43

44

44

46

(7)

3.2.1. Chiclones (Criptorquidea – uni o bilateral) 3.2.2. Mancha.

3.2.3. Mancha marrón.

3.2.4. Pelo.

3.2.5. BRH.

3.2.6. Boca mala (prognatismo) 3.2.7. Fuera de tipo.

3.2.8. Fenómeno.

3.2.9. Enfermo.

3.2.10. Pequeño.

3.2.11. Escroto dividido.

3.2.12. Negro.

3.1.13. Total sobre marcados.

CAPITULO IV.

Conclusiones.

CAPITULO V.

Recomendaciones.

CAPITULO VI.

Bibliografía.

ANEXOS

46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58

60

62

63

66

(8)

RESUMEN

El presente trabajo de investigación fue realizado en la SAIS “Tupac Amaru” Ltda. Nº 1, en la unidad de producción de Pachacayo, ubicada en la región Junín, provincia de Jauja, distrito de Canchayllo, que es la base de operaciones de la empresa mencionada, donde se ubica las oficinas centrales de manejo empresarial. El problema formulado fue ¿Cuáles son las principales causas de rechazo y su tendencia a la marcación de ovinos de la raza Junín?. La hipótesis planteada fue que existen diferentes proporciones y una tendencia creciente de las causas de rechazo a la marcación en los ovinos Junín de la S.A.I.S. Tupac Amaru Ltda N°1. Los objetivos del presente estudio fueron: Evaluar y analizar las principales causas de rechazo a la marcación, sus indicadores y su tendencia en los corderos de la raza Junín de la S.A.I.S.

Tupac Amaru Ltda N°1 en el periodo comprendido entre el año 1996 al 2005.

Establecidas las ecuaciones de regresión lineal y cuadrática para los porcentajes de defectos fenotipicos de los corderos de la raza Junín a la marcación. Los resultados obtenidos fueron: Las ecuaciones lineales son las que mas se adecuan al presente estudio; Para corderos hembras los defectos fenotipicos, manchas, pelo y negro, muestran una tendencia negativa no significativa; fenómenos muestra una tendencia negativa significativa;

prognatismo, fuera de tipo y enfermos, muestran una tendencia negativa

altamente significativa. y manchas marrones, BRH y pequeños, muestran una

tendencia positiva no significativa. Para corderos machos los defectos

fenotipicos, prognatismo, fuera de tipo, fenómenos y negro, muestran una

tendencia negativa significativa; criptorquidea muestran una tendencia negativa

(9)

altamente significativa; enfermos poseen una tendencia negativa no

significativa; manchas, mancha marrón, pelo y pequeños muestran una

tendencia positiva no significativa; BRH posee una tendencia positiva

significativa y escroto dividido una tendencia positiva altamente significativa.

(10)

ªINTRODUCCIÓN

La producción de ovinos en el país es una de las actividades de

mayor importancia en la ganadería nacional, ya que una buena parte de la

población peruana se dedica al trabajo en este rubro. La Sociedad Agrícola

de Interés Social. “Tupac Amaru” Ltda. N° 1, tiene una relevancia nacional y

mundial en la crianza de ovinos de la raza Junín, que ha desarrollado la

única raza en el Perù, a pesar de haber pasado por una serie de dificultades

fundamentalmente sociales y técnico científicas. La marcación es una faena

ganadera que consiste en aplicar una serie de marcas o señales a los

corderos y también se efectúa la primera selección de los ovinos

descartando para la reproducción aquellos corderos que presentan cuernos,

prognatismo, manchas marrones o negras, britch y aquellos que no

muestran el tamaño y tipo en relación a las características zootécnicas de

la raza Junín en este caso. La investigación en la empresa requiere ser

impulsada, en función a los aspectos más básicos, como es la presencia de

(11)

rechazos en corderos a la marcación, de tal forma que se considere un juzgamiento fenotípico más efectivo y eficiente sobre los defectos más importantes dentro de esta especie, a fin de disminuir el efecto económico que trae consigo este problema.

Un análisis retrospectivo de los mismos durante los últimos años es necesario, ya que según ellos podemos establecer sus indicadores y formular una proyección a futuro encaminada a plantear estrategias para la disminución de los animales con estos defectos. Por lo que el problema formulado es ¿Cuáles son las principales causas de rechazo y su tendencia en corderos a la marcación de ovinos de la raza Junín de la S. A.

I. S. Tupac Amaru Ltda. Nº 1 durante los años 1 996 al 2 005?.

La hipótesis que nos hemos planteado fue que existen diferentes proporciones y una tendencia creciente de las causas de rechazo a la marcación en los ovinos Junín de la S.A.I.S. Tupac Amaru Ltda N°1 durante los años 1 996 al 2 005.

El Objetivo del presente estudio fue:

Evaluar y analizar las principales causas de rechazo a la marcación, sus indicadores y su tendencia en los corderos de la raza Junín de la S.A.I.S.

Tupac Amaru en el periodo comprendido entre el año 1996 al 2005

(12)

CAPITULO I

REVISIÓN BIBLIOGRAFICA

1.1. ORIGEN DE LA RAZA JUNIN EN EL PERÚ.

“El ovino Junín es la primera raza desarrollada en la región andina del continente americano y una de las pocas razas creadas en el Hemisferio Occidental durante el presente siglo. Dentro de un gran rebaño cerrado, como animal adaptado a las condiciones ambientales de la sierra alta y puna pero susceptible de aclimatarse a regiones de menor altitud, como la costa y los valles interandinos. La raza Junín se halla entre la quinta y sexta generación ovina como rebaño cerrado o núcleo sin mezcla, situación que le confiere la condición genética de raza. El tiempo transcurrido en la formación del ovino Junín ha sido mayor que en todos los casos de ovinos de doble propósito, comparables hasta cuando se les consideró como raza definida” 1

1.2. DISTRIBUCIÓN Y POBLACIÓN DE OVINOS EN EL PERÚ.

“La mayor parte de los aproximadamente 15 millones de ovinos del

Perú se encuentra en la zona sur (56,11%) y centro (35,92%). Puno es el

(13)

departamento con la mayor población nacional de ovinos, con un (35,2%), seguido por Junín (11,48%) y Cuzco (10,2%) En estos lugares de mayor densidad poblacional, la ganadería ovina ha alcanzado sus progresos en cuanto a manejo y mejoramiento genético” 2 .

En términos regionales, el 99% de ellos se encuentra en la Sierra 3 . La mayor parte de la población ovina está en manos de las comunidades campesinas, los cuales se desarrollan bajo sistemas agropastoriles o netamente ganaderos 4 .

Los ovinos Criollos están más concentrados en las comunidades del centro y del sur del Perú, donde la altura, la topografía accidentada y la baja calidad de los pastizales naturales, hacen imposible la agricultura y la crianza de vacunos. Las condiciones bajo las cuales se les cría son bastante difíciles, ya que aparte de los factores limitantes, climáticos y de altitud, son muy escasos los recursos agropecuarios a disposición de las familias campesinas, encontrándose sistemas de producción complejas con interacciones fuertes entre y dentro de cultivos, y entre y dentro de especies animales. En muchos casos, la minimización del riesgo del productor se logra mediante la explotación de diversas especies vegetales y animales 5, 6 .

El ovino criollo en las comunidades campesinas de la Costa y la

Sierra del Perú se crían formando parte de rebaños llamados mixtos, en

los cuales la proporción de cada especie animal depende de las

(14)

condiciones ambientales donde se desarrolla la producción, y confundidas con éstos, las necesidades del campesino 5 .

1.3. CARACTERISTICAS DE LA RAZA JUNIN

La División Ganadera de la Cerro de Pasco Corporation, planificó la formación de un tipo de ovino adaptado a las condiciones ambientales de la Región Alto-Andina, en base a cruzamientos y selección, fijando una meta de productividad de ovinos que puedan alcanzar un rendimiento promedio de 9 libras de lana y 25 Kg de carcasa por ovino esquilado y beneficiado respectivamente 7 .

Las características fenotipicas del ovino Junín que exhiben una conformación de doble propósito y una habilidad de supervivencia por el mejor aprovechamiento de los recursos forrajeros en el pastoreo a campo abierto en las zonas alto andinas, sin recibir suplemento en la alimentación. Además poseen gran alzada, robustez, buenos aplomos, pecho amplio, cuerpo de notable profundidad, capa blanca sin pliegues, la cabeza destacada por ser fuerte sin cuernos, con cara amplia descubierta de lana, los ojos se encuentran bien separados, los ollares son tan profundos, preferentemente negros y extremidades ligeramente altas, con pezuñas negras y gran habilidad para el desplazamiento 8 .

Los carneros adultos pesan un promedio de 75 Kg. , las ovejas 46

Kg. Los corderos llegan a pesar 23 Kg. Al destete y 36 Kg. A 8 meses,

tienen un rendimiento de carcasa de 50%, produce una lana de notable

(15)

limpieza y se tipifica en el mercado internacional como lana de cruza media (58’S a 60’S) y arroja un alto rendimiento fabril 8 .

“El diámetro promedio oscila entre 23 y 25 micras, la longitud de mecha es de 12 cm. En carneros y 9 cm. En borregas; la capacidad mejoradora del ovino Junín está dada por su adaptación a las condiciones de la puna característica de producción y supervivencia” 1 .

1.4. MANEJO DEL GANADO OVINO JUNIN.

En la S.A.I.S.”Tupac Amaru” Ltda. N° 1, se realiza secuencialmente las siguientes faenas ganaderas:

- ENERO: Selección y reclasificación de carnerillos y borreguillas, borregas y carneros, esquila general, dosificación contra parásitos gastrointestinales.

- FEBRERO: Esquila general. Dosificación contra parásitos gastrointestinales. Destete de los corderos machos seleccionados para futuros padres. Destete de los corderos criptorquideos o “chiclones”.

- MARZO: Destete general de corderos. Formación de puntas por clases y edades. Dosificación de adultos contra dístomas y para corderos contra parásitos gastrointestinales

- ABRIL: Preparación del ganado para el empadre. Concurso de vellones.

- MAYO: Empadre de ganado ovino. Movimiento de reproductores.

- JUNIO: Control de empadre de lanares.

(16)

- JULIO: Finaliza empadre de lanares. Saca de carneros. Dosificación contra parásitos gastro intestinales. Preparación de canchas de parición en lo que respecta a acequias de riego.

- AGOSTO: Riego en las canchas de parición. Dosificación de ovinos contra dístomas.

- SETIEMBRE: Movimiento de las borregas a sus canchas de parición.

- OCTUBRE: Parición de ovinos.

- NOVIEMBRE: marcación de corderos en tres etapas comprendiendo la señal de sexo y edad en las orejas; el tatuaje en la cara interna del pliegue de la babilla, la vacunación contra ectima. La castración y descole mediante los anillos de goma especiales.

- DICIEMBRE: Última etapa de parición y marcación de corderos.

Preparación para la esquila.

NOTA: Trabajos eventuales durante todo el año se efectúan con lanares y vacunos en forma complementaria 9 -

1.4.1. Destete de Corderos

“El desbarate de corderos consiste en separar a estos de sus madres y a la vez realizar el “Cambio de Clase”, pasando los corderos con testículos a ser carnerillos, los corderos machos que fueron castrados pasan a ser caponcillos, en el caso de los corderas hembras éstas pasan a ser borreguillas” 10 .

1.4.2. Esquila y Trabajos Adicionales

El programa de esquila se elabora con anticipación de tal

modo la movilización de las puntas hacía el galpón de esquila

(17)

coincida su llegada con el turno que le corresponde, sin que exista congestión ni que falte ganado en el galpón 11 .

Los Administradores de las Unidades de Producción cuyo ganado se encuentra en esquila, quedan responsabilizados que su ganado viaje sin apuro y que estén adecuadamente alimentados, de igual forma al regreso. Además el Administrador de la Unidad en donde se esta esquilando, queda encargado del debido manejo del ganado dentro del galpón, manteniendo en los corrales la cantidad justa para evitar aglomeraciones y muertes por asfixia 12 .

1.4.3. Clasificación y Reclasificación del Ganado de reproducción:

“Los animales se clasifican y reclasifican individualmente

haciendo uso del corral de brete doble de dos metros de ancho y

doce metros de largo instalados en cada galpón de esquila,

cuando tiene lana de doce meses de crecimiento, inmediatamente

antes de la esquila. Esta tarea requiere amplios conocimientos

para interpretar adecuadamente las características que muestra el

animal; requiere idoneidad e imparcialidad de juicio; este trabajo

está orientado a la crianza de ovinos con mayor peso corporal, es

decir que la proporción debe ser 2/3 para producción de carne y

1/3 para producción de lana” 13 .

(18)

Clasificación de hembras:

“La clasificación preliminar comienza en la marcación, a esta edad se rechazan a los que tienen defectos como: Manchas, pelo, BRH, boca mala, tipo, fenómeno, enfermo, pequeño, negro, etc. La primera clasificación de borregas), se realiza a los 13 a 15 meses de edad inmediatamente antes de ingresar a la esquila, estas ingresan a las diferentes 7 clases, las que son identificadas con arete de plástico de diferente color para cada clase: los que se describen” 13 :

Clase Stud.- Lleva arete de color rojo, es de clase ideal de la raza, son animales grandes con pesos excelentes, cobertura de lana en todo el cuerpo a excepción de la cara, vellón uniforme, carácter de vellón destacado, buena densidad de vellón, buena longitud, buenos aplomos, proveniente de progenie Stud o Super.

Clase Super .- Identificado con arete de color azul, se caracterizan por ser animales grandes pero menor tamaño que los de la clase anterior, buena cobertura, buen carácter, crecimiento y uniformidad adecuada, buena densidad de vellón, buena conformación, proviene de madres de clase Stud, Super o

“A”.

Clase “A”.- Identificada con arete de color verde, son animales

de menor tamaño que los de clase Super, tienen buena cobertura,

presentan vellón uniforme y de buen carácter; crecimiento

(19)

adecuado y denso, proviene de las progenies Super, “A” y “B”

(destacadas).

Clase “B”.- Se identifican con arete de color amarillo, son animales grandes pero presentan menor cobertura de lana, vellón un tanto uniforme, no resalta carácter de vellón, crecimiento adecuado, moderada densidad de vellón, provienen de las progenies de las clases anteriores y las mejore de la clase

“C”.

Clase “C”.- Identificadas con arete de color negro, se caracterizan por ser animales pequeños comparados con los de la clase anterior, poca cobertura de lana, vellón no muy uniforme, poco carácter de lana. Poca densidad, crecimiento moderado, provienen de las madres de todas las clases.

Clase “R”.- Identificadas con arete de color marrón, se caracterizan por ser animales pequeños, de lana fina y corta, muestran poca cobertura de lana en el cuerpo, presentan lana suelta de escaso carácter, provienen de progenie “C” y “R”.

Clase aceptable.- Identificadas con arete de color blanco, con animales grandes pero de lana gruesa, poca densidad y vellón sin carácter, provienen de madres de todas las clases.

Clasificación de Machos:

La clasificación se realiza muy rigurosamente anotándose

todas las características en tarjeta individual que se abren en la

primera esquila, allí se anotan edad, N° de arete, longitud de

mecha, finura de lana, peso vivo, peso de vellón y clase y

(20)

demás características manifiesta que es necesario clasificar con todo rigor, teniendo en cuenta que la incidencia de las características del macho es mayor. Es decir el macho tiene numerosa descendencia en un año mientras que la hembra produce un cordero 13 .

De acuerdo a la clasificación se forman 10 clases que se identifican con aretes de plástico de diferentes colores del siguiente modo:

Clase de carneros color arete Stud rojo

S ++ anaranjado S +1/2 negro S + blanco S azul A + verde A marrón B amarillo Venta pita azul Camal sin arete

Esquila propiamente dicha

“La esquila viene a ser la extracción del vellón del

cuerpo del animal mediante elementos cortantes, una

buena esquila consiste en obtener un vellón completo

cortado a ras de la piel, sin efectuar segundos cortes, ni

(21)

inferir cortes al cuerpo del animal, además de buena rapidez” 11

1.4.4. Formación de Puntas

“Después de la esquila se procede a ordenar las puntas de borregas de acuerdo a sus clases selectivas y a su edad, tal como fueron clasificados en el galpón de esquila” 9 .

1.4.5. El Empadre

“Esta faena consiste en aparear las borregas con los carneros en una época determinada a fin de lograr crías. En la S.

A. I. S Tupac Amaru empieza el primer día útil del mes de mayo de cada año, finalizando el último día del mes de junio. Dentro de este periodo las borregas tiene oportunidad de presentar hasta 3 celos y ser cubiertas, asegurando la preñez en las fisiológicamente normales, se deja un margen de 5 a 7 días por las pequeñas diferencias existentes en la duración de los ciclos estruales y así asegurar la cubrición de borregas que presentan celos irregulares, teniendo en cuenta que el ciclo estrual de la borrega es de 17 días como promedio” 10 .

1.4.6. La Gestación.

“La gestación de las hembras de ovino “Junín” dura 148 días

aproximadamente, durante este lapso de tiempo las borregas

requieren de un manejo adecuado para la cual se dispone de

canchas que tengan topografía plana o moderadamente

accidentada con abundante pasto, disponibilidad de agua con el fin

de proporcionar a las borregas los requerimientos nutricionales que

(22)

permitan un buen desarrollo de los fetos, para que estos nazcan sanos, fuertes, con buenos pesos y mas aptos para pararse y mamar en muy corto tiempo y de este modo puedan soportar las inclemencias del clima 14 . El proceso de gestación puede ser interrumpido por distintas causas y en distintos momentos. Sin embargo, los momentos cruciales son el principio y al final del proceso, por lo que el uso de perros en esta etapa también es restringido pues predispone los abortos” 11 .

1.4.7. La Parición

“Las canchas de parición deben ser las mejores y tener bien definidas sus zonas para preñadas, callejón y tantaje. Las zonas para callejón deben ser las más abrigadas y las de tantaje estar desprovistas de espinas para evitar cojera en los corderos. Se usan rediles de malla de alambre de 100 metros de longitud utilizando 14 postes de fierro, los cambios de sitio de estos rediles se hará cada 2 o 3 días en temporada seca y diariamente cuando llueve a fin de evitar infecciones. Para la protección de los corderos recién nacidos los días de helada fuerte, intensas lluvias o nevadas persistentes se utilizarán las “chuclas” que son pequeñas chozas ubicadas en las inmediaciones del redil de preñadas” 14 .

1.4.8. Perneo

“Consiste en colocar a las borregas en posición sentada con

las piernas separadas a fin de examinar minuciosamente el vientre,

los pezones, la vulva, etc. y de esta manera diagnosticar a las

borregas preñadas, puesto que a la palpación de la parte inferior

(23)

del vientre se nota la presencia del cordero, asimismo tanto la ubre como la vulva se observan congestionadas en borregas preñadas” 9 .

Durante la operación del perneo se manipula a las borregas suavemente para evitar abortos en las que resulten preñadas 15 .

1.5 MARCACION DEL GANADO OVINO.

“La marcación tiene también como fin examinar el cordero, principiando por la boca para descartar prognatismo, la cabeza para descartar cuernos, manchas en piel, cuerpo para ver el desarrollo, estado de nutrición y la cobertura de lana que está en potencia, en corderos machos los testículos para descartar criptorquidias. Del mismo modo los futuros padres serán seleccionados de las clases altas, Stud, Super y A +.

Los corderos machos de las demás clases inferiores son castrados mediante anillos de jebe que evita una operación cruenta. Las hembras serán clasificadas en dos rangos: Buenas, las que no presentan defectos que las descalifiquen enteramente, y malas aquellas con defectos hereditarios no propias para la crianza las que también servirán para el propósito de camal. El proceso de marca propiamente dicho consiste en hacer la señal de sexo y año de nacido en las orejas del cordero, y el aretamiento de futuros padres” 13 .

“La clasificación preliminar comienza en la marcación, a esta edad se

rechazan a los que tienen defectos como: manchas, pelo, BRH, boca

mala, tipo, fenómeno, enfermo, pequeño, negro entre otras deficiencias

(24)

corporales que no permiten su posterior reproducción y que una posterior clasificación de hembras se realiza a los 13 a 1 5 meses de edad antes de ingresar a la esquila, estas ingresan a las clases determinadas previa identificación con aretes de diferentes colores” 13 .

“Para desarrollar este trabajo se instalan corrales portátiles de malla de alambre en lugares limpios, nunca usados como dormideros para evitar infecciones, adyacente al corral grande se construye dos corrales pequeños para encerrar corderos machos y hembras por separado. La marcación es simultánea en dos corrales. Aquí se realiza la primera selección de corderos y se consideran las siguientes clases” 13,9 :

EN MACHOS.

Padres S.A. I. S.- que se seleccionan de todos los corderos machos de progenie estud, super y “A” Debiendo ser los mejores, la clasificación es muy rigurosa, son identificados con aretes metálicos enumerados correlativamente.

Padres venta.- para esta clase se seleccionan los mejores corderos de la progenie “B”, se destinan a la venta como reproductores.

Capones.- Se destinan en esta clase a todos los corderos que no reúnan condiciones para futuros reproductores en las clases altas y todos los corderos machos de las clases bajas, se procede a la castración.

Chiclones.- Son aquellos a quienes todavía no les a descendido uno

de los testículos, quedan con cola entera y se destinan al engorde

después del destete.

(25)

Rechazados.- Llamados también “corderos salchichas” se ubican en esta clase los corderos que tiene defectos marcados en el cuerpo o en la lana quedan con cola entera para su rápida identificación.

EN HEMBRAS:

Buenas.- Son las que no tiene defectos y se destinan para futuras madres.

Empadrables.- Son aquellas que presentan defectos menos importantes, que no inciden directamente en la producción. Se identifica con un piquete en el vértice de la oreja izquierda.

Rechazos.- Son las que presentan defectos marcados descalificatorios, quedan con cola entere y se les denomina

“Corderos salchicha” al igual que en machos 13 .

Se rechazan por las siguientes causas:

“Mancha negra, mancha marrón, pelo en la lana, brich, prognatismo, tipo, fenómeno, enfermo, pequeño, hueso fino, negro, cara cubierta escroto dividido, etc, cuya descripción de estos son detallados en la parte de materiales y métodos del presente” 13 .

“Durante la marcación todos los corderos sin excepción son

vacunados contra enterotoxemia y ectima contagioso por vía

subcutánea y escarificación respectivamente, se realiza la castración

y descole utilizando anillos de jebe, y se concluye colocando las

señales tanto de edad como de propiedad” 13 .

(26)

“Con respecto a la constitución genética de una población, menciona que, para describir la constitución genética de esta tendríamos que especificar sus genotipos y decir cuántos de cada genotipo existen. La constitución genética del grupo estaría totalmente descrita por la proporción o porcentaje de los individuos que pertenecieran a cada genotipo o, en otras palabras, por las frecuencias de los tres genotipos en los individuos, y que la comparación de las frecuencias observadas con las frecuencias esperadas puede considerarse como una prueba de que las condiciones bajo las que depende el equilibrio Hardy – Weinberg, se satisfacen. Las frecuencias esperadas están basadas en las frecuencias génicas observadas después de que las diferencias de fertilidad o viabilidad han manifestado su efecto” 13 .

“Con respecto al número de generaciones para lograr un cambio específico en las frecuencias génicas algunas veces es necesaria una conexión con programas de mejoramiento o en relación con algunas medidas eugenésicas propuestas. Consideraremos aquí sólo el caso de selección contra un gen recesivo cuando la eliminación del homocigoto indeseable es completa, o sea s=1. Esto se aplicaría contra un recesivo indeseable en un programa de mejoramiento.

Teniendo en consideración, qué, cuando la frecuencia de un gen recesivo es baja, la selección es muy lenta para cambiarla” 16 .

(27)

1.6. INVESTIGACIONES RELACIONADAS CON EL ESTUDIO.

El departamento técnico ha mencionado que los porcentajes para el año 1 993, de corderos rechazados fueron para la mayor cantidad de rechazados machos de animales enfermos, no especificándose las enfermedades, y que su porcentaje fue de 29,71 %, presentándose también animales con mancha, presencia de pelo, boca mala entre otras, y para el año 2 000, la mayor tasa de presentación fue para corderos con presencia de pelo cuyo porcentaje fue de 20,08 %, haciendo que ella haya tenido una tasa creciente de presentación. Menciona también que la marcación, normalmente realizada al mes de edad, es una operación de selección y verificación de sexos; así como de identificación de la propiedad y año de nacimiento del cordero mediante señales convencionales registradas. Al mismo tiempo se aprovecha para realizar los trabajos sanitarios de vacunación contra enfermedades propias de los corderos 17 .

Evaluando datos de la raza Junin, mencionan que los corderos con

mancha negra, presencia de marrón en orejas y patas, han disminuido en

forma progresiva, en cuanto a fenómeno y pequeño se mantienen. Los

animales con preseca de pelo, prognatismo y enfermo van

incrementándose y los casos de animales con Britch y tipo van

disminuyendo e incrementandose respectivamente en forma bastante

variada 18 .

(28)

CAPITULO II

MATERIALES Y MÉTODOS

2.1. LUGAR DE ESTUDIO.

El trabajo de investigación fue realizado en la S.A.I.S. “Tupac Amaru”

Ltda. Nº 1, en la unidad de producción de Pachacayo, ubicado en la región

Junín, provincia de Jauja, distrito de Canchayllo, que es la base de

operaciones de la empresa mencionada, donde se ubica las oficinas

centrales de manejo empresarial. La unidades de producción están

situada a una altitud promedio de 3700 m.s.n.m., la empresa en su

conjunto se caracteriza por presentar un clima sub-húmedo y semi-frígido,

con variaciones bruscas de temperatura entre el día y la noche, siendo

mas uniforme en la época de lluvias y de fuertes contrastes en la época

seca, acompañada de alta luminosidad, sequedad ambiental y fuertes

heladas, donde la temperatura está por debajo de Oº C. Los valores de los

aspectos climáticos más importantes son: Precipitación de 850 mm anual,

temperatura media anual de 8 º C, humedad relativa media anual de 58 %.

(29)

2.2. DURACION.

El trabajo tuvo una duración que comprendió desde el mes de marzo del año 2006, hasta el mes de noviembre del mismo año comprendiendo un total de nueve meses. Los datos analizados fueron en base a los registros de marcación, desde el año 1996 hasta el año 2005.

2.3. MATERIALES.

- Planilla de marcación – corderos: es un instrumento que incluye datos generales sobre la unidad de producción, clase de animales empadradas, trabajador a cargo, fecha de marcación, detalles de animales marcados, causas de rechazo, firmas de clasificador y administrador.

- Resumen general de selección y marcación de corderos nacidos en el año: instrumento en el que se considera las clases de animales marcados y por unidades de producción y total.

- Máquina fotográfica.

- Computadora.

2.4. POBLACIÓN.

Se trabajó, con datos de los animales nacidos durante los años de

estudio, correspondiendo a animales de ambos sexos, y el total referidos

para el trabajo normal dentro de la empresa.

(30)

2.5. METODOLOGÍA PARA OBTENCIÓN DE DATOS.

Los datos fueron llevados a un registro elaborado para efectos de análisis, a partir de los registros de marcación anual, correspondiendo datos sobre porcentajes de presentación de defectos establecidos para la raza, de acuerdo a las normas de trabajo que impone la empresa.

2.6. VARIABLES.

Las variables en estudio fueron:

Defectos fenotípicos establecidos para la raza de ovinos Junín, siendo los siguientes para el análisis del presente:

* Chiclones (Criptorquidea – uni o bilateral): Denominación a los machos sin presencia de testículos, de ambos o de uno de ellos.

* Mancha: Animal con manchas pequeñas en lana, de color diferente al blanco en cualquier parte del animal..

* Mancha marrón: Cualquier mancha marrón en lana de diferentes tamaños.

* Pelo: Manifestación de filamentos que crece en los poros de la epidermis de los mamíferos. Conjunto del vellón, en cantidad marcada.

* BRH: Presencia de fibras fuertemente meduladas, gruesas, largas y con poco rizado, generalmente s encuentra en los cuartos posteriores del ovino.

* Boca mala (Prognatismo): Que en términos técnicos son los

denominados prognatismo superior o inferior, cuando los dientes no tocan

el rodete dentario en forma efectiva.

(31)

* Tipo: Animales fuera de tipo consignado para la raza, tomando en cuenta el aspecto exterior del animal.

* Fenómeno: Animales con presencia de patas supernumerarias, doble cabeza, siameses. También denominados los animales con faltas de algún órgano exterior.

* Enfermo: Corderos que por determinadas circunstancias intramaterna o de nacimiento nacen con deficiencias generales corporales y que no se recuperan hasta la marcación.

* Pequeño: Animales que no alcanzan el tamaño corporal adecuado para la raza, determinado por las deficiencias de peso vivo.

* Escroto dividido: Manifestado por la división total del escroto, haciendo una separación de los testículos por efecto de división escrotal.

* Negro: Animales con lana totalmente de color negro.

2.7. TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCION DE DATOS.

2.7.1. TÉCNICAS.

La técnica usada fue la observación documental, teniendo como base las planillas de marcación – corderos y el resumen general de marcación anual existentes en informe final de la empresa.

2.7.2. INSTRUMENTOS.

Se usaron las planillas de marcación – corderos y el

resumen general de marcación anual y llevadas a las hojas de

calculo de Excel, para ser copiadas al programa de SPSS 12.0.

(32)

2.8. PROCEDIMIENTO DE RECOLECCION DE DATOS.

Fueron realizados siguiendo el orden siguiente:

- Análisis de datos registrados durante los últimos 10 años.

- Estructuración de los cuadros base de análisis para efectos de operaciones estadísticas.

- Registro de los datos base para el procesamiento de datos por el programa estadístico SPSS 12.0.

2.9. TÉCNICA DE PROCESAMIENTO Y ANALISIS DE DATOS.

Los datos fueron procesados por el programa SPSS 11.0, mediante los análisis de regresión lineal simple, análisis de la regresión cuadrática para luego decidir técnica y estadísticamente en función al análisis de correlación y de determinación cuales son las tendencias más probables de las mismas.

Los modelos aditivos lineales considerados son:

Para el análisis de regresión simple:

Y = a + bX Dónde:

Y = Variable dependiente (porcentaje de animales con defectos).

a = Coeficiente de intercepción.

b = Coeficiente de regresión.

X = Variable independiente año de presentación de defectos.

Para el análisis de regresión cuadrática:

(33)

Y = a + b 1 X + b 2 x 2 Dónde:

Y = Variable dependiente (porcentaje de animales con defectos).

a = Coeficiente de intercepción.

b 1 = Coeficiente de regresión parcial para la variable año lineal..

X = Variable independiente año lineal de presentación de defectos b 2 = Coeficiente de regresión parcial para la variable año cuadrático.

X 2 = Variable independiente año cuadrático de presentación de defectos.

Se establecieron los respectivos coeficientes de correlación lineal y múltiple, así como los coeficientes de determinación para cada uno de los defectos analizados, del mismo modo las significancias estadísticas respectivas.

Se aplicó la prueba de X 2 para comparar las frecuencias genotípicas

observadas en los diferentes años y compararlas con las frecuencias

genotípicas esperadas, utilizando la propuesta de Steel y Torrie (1 995).

(34)

CAPITULO III

RESULTADOS Y DISCUSION

3.1. DEFECTOS FENOTIPICOS A LA MARCACION DE OVINOS HEMBRAS RAZA JUNIN.

En función a la cantidad de animales marcados machos y hembras, que se muestran en el cuadro Nº 3.1.

CUADRO Nº 3.1. NUMERO DE ANIMALES HEMBRAS, MACHOS Y TOTAL QUE FUERON MARCADOS.

AÑOS MACHOS HEMBRAS TOTAL 1996 19109 19547 38656 1997 20216 20494 40710 1998 20845 20943 41788 1999 20616 20883 41499 2000 18819 19395 38214 2001 20045 20750 40795 2002 20058 20531 40589 2003 18413 19365 37778 2004 20600 21128 41728 2005 17304 18374 35678 PROMEDIO 19602,5 20141,0 39743,5 D.S. 1149,93 909,78 2051,24

C.V. (%) 5,87 4,52 5,16

(35)

En el que se puede manifestar que los valores muestran una variación baja durante el periodo analizado y que esto es un reflejo del propio trabajo que viene desde el empadre y la parición.

A los análisis de regresión lineal y cuadrática de los porcentajes de presentación de defectos fenotipicos, para ovinos hembras de la raza Junín, durante el periodo analizado, sobre un promedio general de ovinos marcados de 39 755,40 ± 2 057,23 , muestran los siguientes resultados.

3.1.1. MANCHA.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 17,321 – 0,637X, b = n. s; r = 0,329 n. s. y R 2 = 0,109 n. s.

Promedio = 13,82 ± 5,85 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con mancha va disminuyendo en 0,637%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 18,130 - 1,041X – 0,037X 2 y R 2 = 0,111 n. s.

Por lo que se establece que por cada año lineal analizado la

presentación de animales con mancha va disminuyendo en 1,041% y a la

(36)

vez va disminuyendo en 0,037% por cada año cuadrático analizado.

Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,111% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 551,970, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto, habiendo años en los cuales se han presentado con mayor frecuencia y en otros no.

3.1.2. MANCHA MARRON.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 11,811 – 0,743X, b = n. s; r = 0,522 n. s. y R 2 = 0,273 n. s.

Promedio = 15,90 ± 4,31 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con mancha marrón va disminuyendo en 0,743%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 18,289 - 2,497X – 0,295X 2 y R 2 = 0,547 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la

presentación de animales con mancha marrón va disminuyendo en

2,497% y a la vez va disminuyendo en 0,295 por cada año cuadrático

(37)

analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,547% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 745,649, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.3. PELO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 25,497– 0,154X, b = n. s; r = 0,134 n. s. y R 2 = 0,018 n. s.

Promedio = 24,65 ± 3,48 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con pelo va disminuyendo en 0,154%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 24,080 + 0,555X – 0,064X 2 y R 2 = 0,038 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la

presentación de animales con pelo va aumentando en 0,555% y a la vez

va disminuyendo en 0,064% por cada año cuadrático analizado. Siendo el

coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,038% no

significativo desde el punto de vista estadístico.

(38)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 239,254, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.4. BRH (BRICH).

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 13,887 – 0,696X, b = n. s; r = 0,405 n. s. y R 2 = 0,164 n. s.

Promedio = 17,71 ± 5,19 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con BRH va disminuyendo en 0,696%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 12,289 + 1,494X – 0,073X 2 y R 2 = 0,176 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la

presentación de animales con BRH va aumentando en 1,494% y a la vez

va disminuyendo en 0,073% por cada año cuadrático analizado. Siendo el

coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,173% no

significativo desde el punto de vista estadístico.

(39)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 842,314, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.5. BOCA MALA (PROGNATISMO).

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 9,863 – 0,43X, b = **; r = 0,856 ** y R 2 = 0,733 **

Promedio = 7,50 ± 1,52 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con boca mala va disminuyendo en 0,43%, siendo este coeficiente estadísticamente altamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también altamente significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 9,678 - 0,337X – 0,009X 2 y R 2 = 0,735 **.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con boca mala va disminuyendo en 0,337% y a la vez va disminuyendo en 0,009% por cada año cuadrático analizado.

Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,735%

altamente significativo desde el punto de vista estadístico.

(40)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 148,037, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.6. FUERA DE TIPO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 2,91 – 0,224X, b = **; r = 0,828 ** y R 2 = 0,686 **.

Promedio = 1,68 ± 0,82 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales fuera de tipo va disminuyendo en 0,224%, siendo este coeficiente estadísticamente altamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también altamente significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 2,953 - 0,245X + 0,002X 2 y R 2 = 0,686 **.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la

presentación de animales fuera de tipo va disminuyendo en 0,245 y a la

vez va aumentando en 0,002% por cada año cuadrático analizado. Siendo

el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,686% altamente

significativo desde el punto de vista estadístico.

(41)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 105,691, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.7. FENOMENO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 0,545 – 0,044X, b = *; r = 0,577 * y R 2 = 0,333 * Promedio = 0,30 ± 0,23 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales fenómenos va disminuyendo en 0,04%, siendo este coeficiente estadísticamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 0,891 - 0,218X – 0,016X 2 y R 2 = 0,412 *.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales fenómenos va disminuyendo en 0,218% y a la vez va disminuyendo en 0,016% por cada año cuadrático analizado.

Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,412%

significativo desde el punto de vista estadístico.

(42)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 26,056, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.8. ENFERMO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 9,899 – 0,722X, b = **; r = 0,805 ** y R 2 = 0,648 **

Promedio = 5,93 ± 2,71 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales enfermos va disminuyendo en 0,722%, siendo este coeficiente estadísticamente altamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también altamente significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 7,801 + 0,327X – 0,095X 2 y R 2 = 0,72 **.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales enfermos va aumentando en 0,327% y a la vez va disminuyendo en 0,095% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,72% altamente significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 393,712, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(43)

3.1.9. PEQUEÑO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 7,259 + 0,835X, b = n. s; r = 0,548 n. s. y R 2 = 0,301 n. s.

Promedio = 11,85 ± 4,61 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales pequeños va aumentando en 0,835%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 5,573 + 1,678X - 0,077X 2 y R 2 = 0,317 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales pequeños va aumentando en 1,678% y a la vez va disminuyendo en 0,077% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,317% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 507,216, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(44)

3.1.10 .NEGRO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 0,413 – 0,009X, b = n. s; r = 0,135 n. s. y R 2 = 0,018 n. s.

Promedio = 0,364 ± 0,20 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales negros va disminuyendo en 0,009%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 0,452 - 0,849X + 0,002X 2 y R 2 = 0,023% n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales negros va disminuyendo en 0,849% y a la vez va aumentando en 0,002% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,023% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 19,087, valor significativo (p ≤ 0,05), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.1.11. TOTAL SOBRE MARCADOS.

La ecuación de regresión lineal establecida para el total de

ovinos hembras con algún defecto es:

(45)

Y = 5,834 + 1,49X, b = n. s; r = 0,400 n. s. y R 2 = 0,16 n. s.

Promedio = 6,65 ± 1,13 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con algún defecto fenotipico para la raza va aumentando en 1,49%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 4,433 + 0,849X – 0,064X 2 y R 2 = 0,347 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con algún defecto fenotípico va aumentando en 0,849% y a la vez va disminuyendo en 0,064% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,347% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 786,441, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para el total de animales con algún defecto fenotípico para la raza Junín.

(46)

3.2. DEFECTOS FENOTIPICOS A LA MARCACION DE OVINOS MACHOS RAZA JUNIN

A los análisis de regresión lineal y cuadrática de los porcentajes de presentación de defectos fenotipicos para ovinos machos, durante el periodo analizado muestran los siguientes resultados.

3.2.1. CHICLONES (CRIPTORQUIDEA – UNI O BILATERAL).

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 16,265 – 1,273X, b = **; r = 0,923 n. s. y R 2 = 0,852 **

Promedio = 9,26 ± 4,18 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales chiclones va disminuyendo en 1,273%, siendo este coeficiente estadísticamente altamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también altamente significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 13,919 - 0,100X – 0,107X 2 y R 2 = 0,89 **

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales chiclones va disminuyendo en 0,100% y a la vez va disminuyendo en 0,107% por cada año cuadrático analizado.

Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,89

altamente significativo desde el punto de vista estadístico.

(47)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 281,215, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.2.2. MANCHA.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 13,824 – 0,328X, b = n. s; r = 0,08 n. s. y R 2 = 0,006 % n. s.

Promedio = 15,63 ± 12,45 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con mancha va disminuyendo en 0,328%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 4,411 + 5,035X – 0,429X 2 y R 2 = 0,076 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con macha va aumentando en 0,119% y a la vez va disminuyendo en 0,012% por cada año cuadrático analizado.

Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,153% no

significativo desde el punto de vista estadístico.

(48)

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 123,052, valor altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años para la presentación de este defecto.

3.2.3. MANCHA MARRON.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 10,642 – 0,026X, b = n. s; r = 0,02 n. s. y R 2 = 0,0002 n. s.

Promedio = 10,78 ± 3,73 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con mancha marrón va disminuyendo en 0,026%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo y los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 16,129 - 2,718X + 0,249X 2 y R 2 = 0,262 n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con macha va disminuyendo en 2,718% y a la vez va aumentando en 0,249% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,262% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 361,127, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(49)

3.2.4. PELO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 16,143 – 0,074X, b = n. s; r = 0,075 n. s. y R 2 = 0,06 n. s.

Promedio = 16,55 ± 2,96 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con pelo va disminuyendo en 0,074%, siendo este coeficiente estadísticamente no significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también no significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 16,513 - 0,111X + 0,017X 2 y R 2 = 0,008 % n. s.

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con pelo va disminuyendo en 0,111% y a la vez va aumentando en 0,017 por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,008% no significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 252,139, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(50)

3.2.5. BRH (BRICH).

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 3,575 + 1,676X, b = *; r = 0,982 n. s. y R 2 = 0,465 * Promedio = 12,79 ± 7,44 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con BRH va aumentando en 1,676%, siendo este coeficiente estadísticamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 10,338 - 0,706X + 0,307X 2 y R 2 = 0,565 *

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con BRH va disminuyendo en 0,706% y a la vez va aumentando en 0,307% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,565% y significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 155,303, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(51)

3.2.6. BOCA MALA (PROGNATISMO).

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 15,802 – 0,818X, b = *; r = 0,722 * y R 2 = 0,521 * Promedio = 11,30 ± 3,43 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales con boca mala va disminuyendo en 0,818%, siendo este coeficiente estadísticamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 11,852 + 1,57X – 0,180X 2 y R 2 = 0,682 *

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales con baca mala va aumentando en 1,57% y a la vez va disminuyendo en 0,180% por cada año cuadrático analizado.

Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,682%

significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 211,304, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(52)

3.2.7. FUERA DE TIPO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 2,875 – 0,279X, b = *; r = 0,576 * y R 2 = 0,332 * Promedio =1,34 ± 1,47 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales fuera de tipo va disminuyendo en 0,279%, siendo este coeficiente estadísticamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y = 3,50 - 0,591X + 0,028X 2 y R 2 = 0,354 *

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales fuera de tipo va disminuyendo en 0,591% y a la vez va aumentando en 0,028% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,354% significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 256,125, valor

altamente significativo (p ≤ 0,01), que indica la dependencia de los años

para la presentación de este defecto.

(53)

3.2.8. FENOMENO.

La ecuación de regresión lineal establecida para este defecto es:

Y = 0,677 – 0,058X, b = *; r = 0,761 * y R 2 = 0,579 * Promedio = 0,36 ± 0,23 %

Lo que indica que por cada año analizado la presentación de animales fenómenos va disminuyendo en 0,058%, siendo este coeficiente estadísticamente significativo. Siendo los coeficientes de correlación lineal y determinación también significativos.

La ecuación de regresión cuadrática establecida para este defecto es:

Y =0,80 - 0,119X + 0,006X 2 y R 2 = 0,613 *

Lo que indica que por cada año lineal analizado la presentación de animales fenómenos va disminuyendo en 0,119 y a la vez va aumentando en 0,006% por cada año cuadrático analizado. Siendo el coeficiente de determinación múltiple cuadrática de 0,613% significativo desde el punto de vista estadístico.

El valor de Ji- Cuadrado calculado es de 16,333, valor

significativo (p ≤ 0,05), que indica la dependencia de los años para la

presentación de este defecto.

Referencias

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